PROCEDIMIENTO DE LIMPIEZA, DESINFECCION Y ESTERILIZACION · procedimiento de limpieza, desinfeccion...

PROCEDIMIENTO DE LIMPIEZA, DESINFECCION Y ESTERILIZACION

CODIGO: P-SA-56 FECHA DE EMISION: 14/11/2015

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PAGINA: Página 1 de 30


ELABORÓ REVISÓ APROBÓ REFERENTE DE LABORATORIO REPRESENTANTE DE CALIDAD

DIRECTOR (S) TECNICO (S)

SECRETARIO DE SALUD

REPRESENTANTE DE LA DIRECCIÓN



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1. OBJETIVO Establecer normas de limpieza, desinfección y esterilización para las áreas de laboratorio a fin de mantenerlas limpias y en orden para garantizar ambientes de trabajo adecuados y seguros. 2. ALCANCE Este procedimiento es aplicable para todas las áreas de trabajo, para los equipos, material limpio y sucio y los elementos en general del Laboratorio de Salud Pública del Meta. 3. DEFINICIONES

- Antimicrobiano: Agente que mata los microorganismos o suprime su crecimiento y proliferación.

- Antiséptico: Sustancia que inhibe el crecimiento y el desarrollo de microorganismos pero no necesariamente los mata. Los antisépticos suelen aplicarse a las superficies corporales.

- Autoclave: Aparato que sirve para esterilizar material médico-quirúrgico o de laboratorio, utilizando vapor de agua a alta presión y temperatura.

- Biocida: Término general para cualquier agente que mate organismos. - Descontaminación: Cualquier proceso utilizado para eliminar o matar

microorganismos. También se utiliza para referirse a la eliminación o neutralización de sustancias químicas peligrosas y materiales radioactivos.

- Desinfección: Remoción o destrucción de microorganismos patógenos de objetos inanimados o superficiales, normalmente por uso de un agente químico. En este proceso se induce una destrucción de microorganismos, excepto las esporas bacterianas por la aplicación directa de agentes físicos o químicos. No destruye a todos los microorganismos sino que reduce el número de ellos hasta un nivel aceptable.

- Desinfectante: Agentes químicos que inhiben el crecimiento microbiano y se aplican sobre material inerte como pisos, mesas y equipos.

- Detergente enzimático: detergente que contiene enzimas proteolíticas que disuelven la materia orgánica; preferiblemente de pH neutro, disminuyendo la posibilidad de corrosión.

- Detergente: agente químico utilizado para la eliminación de la suciedad insoluble en agua. Debe eliminar la suciedad orgánica e inorgánica, no producir daño en lo equipos, no dejar residuos (facilidad de enjuague) y no ser tóxico para el personal que lo manipula.

- Esterilización: Proceso donde se efectúa la destrucción o muerte de los microorganismos en general, desde los protozoos pasando por los hongos y bacterias hasta los virus. Se dice que un elemento es estéril cuando está libre de cualquier tipo



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de vida. Sólo artículos estériles deben usarse dentro de un campo estéril. Si hay duda sobre la esterilidad de cualquier cosa, debe considerarse no estéril. La esterilidad es algo absoluto: está o no está estéril.

- Esterilización por vapor a presión: La esterilización por vapor a presión se lleva a cabo en un autoclave. Estos equipos emplean vapor de agua saturado, a una presión de 15 libras lo que permite que la cámara alcance una temperatura de 121ºC. El tiempo de esterilización usualmente es de 15 minutos, sin embargo, en algunas oportunidades, dadas las características del material, es necesario variar el tiempo de esterilización.

- Germicida químico: Sustancia o mezcla de sustancias químicas utilizada para matar microorganismos.

- Limpieza: aplicación correcta de productos químicos en una secuencia, dada en función de concentración, tiempo temperatura y acción mecánica, en orden a obtener superficies libres de residuos.

- Microbicida: Sustancia o mezcla de sustancias químicas que mata microorganismos. Este término se utiliza a menudo en lugar de «biocida», «germicida químico» o «antimicrobiano».

- Sanitización: Reducción de bacterias contaminantes que garantice los estándares de salud pública y controles de los microorganismos alteradores y patógenos. Es un proceso integrado y continuo de limpieza y desinfección. La eficiencia del proceso depende de la concentración del desinfectante, tiempo de exposición, número de microorganismos presentes, pH, presencia de materia orgánica y temperatura de aplicación.

4. RESPONSABLES

• Auxiliares laboratorio y personal de apoyo de servicios generales son responsables de seguir las directrices consignadas en este documento.

• Profesionales del laboratorio son responsables de verificar las actividades de limpieza y desinfección y seguir los lineamientos consignados en este documento.

5. GENERALIDADES 5. 1 RECOMENDACIONES PARA EL USO DE LOS DESINFECTANTES Y ESTERILIZANTES • No deben mezclarse en un mismo recipiente productos antisépticos o desinfectantes de

distinta composición.

• No se debe modificar la concentración establecida para cada procedimiento.

• No se deben tapar utilizando cubiertas de metal, algodón, gasa, corcho o papel. Usar la tapa original.



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• Una vez que se vierte el contenido del desinfectante o antiséptico, no deben retornarse a

su envase original.

• Nunca debe llenarse un envase semivacío a partir de otro. • Las diluciones deben hacerse a la temperatura (si aplica), y según el procedimiento indicado

por el fabricante. • Deben almacenarse en áreas secas, ventiladas y protegidas de la luz.

• Vigilar y controlar la fecha de vencimiento de los antisépticos y desinfectantes

• Usar Tapabocas y elementos de protección necesarios para realizar las actividades de limpieza y desinfección.

• Siempre se debe Limpiar antes de la desinfección ya que la materia orgánica inactiva el

desinfectante.

• Manipularlo siempre en lugares con ventilación adecuada, hacer las preparaciones cada doce horas antes de usar, almacenar en envases plásticos opacos y no en recipientes metálicos y deben tener las siguientes características:

• Con tapa hermética. • El recipiente debe ser de uso exclusivo para el producto. • Purgar o enjuagar previamente el recipiente con el desinfectante que a ser envasado. • El recipiente no debe haber contenido ningún tipo de sustancia química o de consumo

humano. • Para el desecho de estos envases se debe tener en cuenta lo establecido en la

normatividad vigente de residuos hospitalarios y similares, (no se debe incinerar). • Evitar las salpicaduras y derrames. • La concentración necesaria para el nivel deseado de desinfección depende de la

cantidad de material orgánico presente.

• Esterilizar por separado y en equipos diferentes el material sucio no se debe mezclar con el material limpio.

• Envolver los elementos compatibles de acuerdo al tipo de material y tipo • Antes de que el material sea empacado para ser sometido al proceso de esterilización debe ser

inspeccionado visualmente para asegurar que no haya materia orgánica visible ni alteración en las condiciones físicas del mismo; si se detecta suciedad o materia orgánica, éste debe volver al proceso de limpieza. El material corroído, oxidado, alterado, dañado o roto debe desecharse.

• Identificar cada paquete o elemento con la siguiente información:

§ Nombre del elemento que contiene el paquete



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§ Fecha de esterilización, fecha de caducidad § Responsable del empacado y procesado.

• Los paquetes deben ser colocados de tal manera que el vapor de aire pueda circular entre ellos. • El tiempo de esterilización se debe comenzar a contar una vez que se han alcanzado los 121ºC

en la cámara interna del autoclave.

• Todo material resistente al calor, compatible con la humedad, debe ser autoclavado.

• El material sucio una vez sea esterilizado se debe desechar en bolsa roja o en recipientes para material cortopunzante según corresponda.

• Se deben desechar los objetos estériles que presentan las siguientes características:

• Si se tiene duda sobre el tiempo de esterilización o el funcionamiento del esterilizador. • Si un paquete estéril cae al piso. • Cuando se tenga duda de la esterilidad de un equipo o elemento, se debe considerar como contaminado. • Todo material estéril almacenado por más de 15 días se considera contaminado. • Cuando un elemento estéril se pone en contacto con uno contaminado, éste se considera contaminado.

• Los materiales e insumos y los elementos estériles deben ser identificados como tales y almacenados separadamente en áreas destinadas para ello. • Los artículos deberán permanecer estériles a partir de su salida del autoclave. • Se deberá facilitar la identificación de su contenido e indicar que fue esterilizado. • Se deberán guardar los paquetes en un lugar protegido, libre de polvo, roedores e insectos, a una temperatura ambiente entre 15° C y 25° C y en estantes cerrados, para elementos que no roten con frecuencia. • El almacenamiento debe hacerse de manera que se utilicen primero los productos con menor tiempo de expiración. Recordar que el tiempo de esterilidad de un elemento no lo da el sistema de esterilización empleado, sino las condiciones de empaque, manipulación, transporte y almacenamiento. DURACIÓN EN ALMACENAMIENTO ESTERILIZACION.

La duración máxima en almacenamiento depende de los siguientes factores:



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• La vida en almacenamiento de los elementos esterilizados (frascos, cubiertos, hisopos, compresas, pinzas, tijeras, pipetas entre otros) es de 8 días. • Los paquetes se conservarán en condiciones que los protejan contra temperaturas y humedad extremas. • Todo el abasto de material estéril se revisará periódicamente para excluir el que ya caduco. Cualquier paquete vencido en su fecha, o contaminado, deberá volver a esterilizarse. • Calculando el número de paquetes según las necesidades diarias, éstos raramente se inutilizan por caducidad. • Los más antiguos se emplearán primero para evitar su vencimiento

Método de control de esterilidad Para aceptar o rechazar los resultados de esterilización los siguientes criterios.

Resultado del control de esterilización Cinta Indicadora (CI) Ampolla indicadora

biológica (AIB)

ACEPTABLE (A) viraje a color negro color fucsia

RECHAZO (R) no cambio de color Color amarillo

5.2TIPOS DE DESINFECTANTES

• Hipoclorito de sodio:

El cloro, oxidante de acción rápida, es un germicida químico de uso muy extendido y de amplio espectro, provoca quemadura de las paredes celulares de los microorganismos, alteración de las moléculas de proteínas y ácidos nucleicos e inhibición enzimática. Normalmente se vende en forma de lejía, una solución acuosa de hipoclorito sódico que puede diluirse en agua para conseguir distintas concentraciones de cloro libre. Las soluciones madre o de trabajo de lejía almacenadas en recipientes abiertos, particularmente a temperaturas elevadas, liberan cloro gaseoso con lo que se debilita su potencial germicida. La frecuencia con la que deben prepararse nuevas soluciones de trabajo de lejía depende de su potencia inicial, del tamaño y el tipo de los recipientes (por ejemplo, con o sin tapa), de la frecuencia y el tipo de uso, y de las condiciones ambientales. A título de orientación general, las soluciones que reciban materiales con gran cantidad de materia orgánica varias veces al día deben cambiarse al menos diariamente.



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Se debe desinfectar con hipoclorito: Pisos, paredes, baños, mesas, material del laboratorio, equipo metálico inoxidable, superficies de trabajo, líquidos de desecho y descontaminación de las superficies. Las preparaciones de Hipoclorito deben ser usadas antes de 12 horas después de su preparación, posteriormente de ese tiempo pierden su acción por la luz, el calor y la materia orgánica.

• Alcoholes: Los alcoholes actúan desnaturalizando las proteínas, disolviendo las capas lipídicas y como agentes deshidratantes. Se recomienda la utilización del Alcohol Etílico, no desnaturalizado, o Alcohol Isopropílico al 70%. La acción deshidratadora de ambos alcoholes al 95% limita suutilidad, ya que las proteínas deshidratadas resisten la desnaturalización. El etanol al 70% se usa como antiséptico de la piel y como desinfectante en los termómetros clínicos orales y algunos instrumentos quirúrgicos. El etanol y el isopropanol son utilizados como desinfectantes y antisépticos clínicos. Tomar en cuenta que el alcohol etílico al 70% tiene un efecto bacteriostático y que al 95% su efecto es bactericida.

Su actividad cae bruscamente en concentraciones menores al 50%. Las bacterias sometidas a la acción de alcohol concentrado sufren destrucción de la pared celular, permitiendo el paso de contenido intracelular y componentes de la pared celular al medio externo (endotoxinas). Las bacterias sometidas a la acción de alcohol al 70% sufren una deshidratación menos violenta, conservando la integridad celular. El alcohol se considera un desinfectante de nivel intermedio y se usa en la desinfección de superficies y artículos no críticos

El alcohol tiene la ventaja de no ser corrosivo. Las desventajas de los alcoholes en los equipos son que dañan la cubierta de los lentes, tienden a alterar y endurecer el material de goma y plástico, se inactivan en presencia de materia orgánica y se evaporan rápidamente. Esto condiciona que no se deben usar alcoholes como método de desinfección de alto nivel ni para materiales en inmersión. 5.2PREPARACION DE LAS SOLUCIONES DE LIMPIEZA Y DESINFECCION DE USO:

• Hipoclorito de sodio:



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• DETERGENTE LÍQUIDO:



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Ejemplo: DETERGENTE LÍQUIDO comercial al 99% y deseamos preparar al 2%. Es necesario preparar 1 litro = 1000 ml de DETERGENTE LÍQUIDO al 2%. Formula: V1 X C1= V2 X C2 V1= V2 X C2 C1 V1=1000ml x 2% V1= 20 ml volumen requerido de DETERGENTE LÍQUIDO al 99% 99% Se debe agregar 20 ml de Detergente Líquido al 99% a 980 ml de agua para tener 1000 ml de una dilución al 2%.

5. 3 DESINFECCIÓN AMBIENTAL

Las superficies ambientales que se han empolvado (pisos, mesones, muebles, etc.) deben limpiarse y desinfectarse usando cualquier agente o desinfectante que esté destinado al uso ambiental. Además, la desinfección ambiental requiere el uso de un sistema de aspersión o Aero solución.

• Aspersión: Consisten en una lluvia fina o rocío tenue de líquido antibacteriano que va

depositando la solución desinfectante en una película muy fina, llegando a lugares de difícil acceso (lámparas, techo, paredes, etc.) al igual que áreas de poca visibilidad como en la parte inferior de las mesas. Este sistema de aspersión economiza tiempo de trabajo pues requiere de 8-15 minutos. Se realiza por medio de una bomba y/o sistema de aspersión la cual imita un sistema de fumigación.

6.0 DESARROLLO 6. 1 LIMPIEZA Y DESINFECCIÓN DE EQUIPOS

N. RESPONSABLE ACTIVIDAD FLUJOGRAMA REGISTRO

INICIO

INICIO



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Equipos: Neveras, congeladores, centrifugas, baños serológicos, incubadoras, hornos de secado, autoclaves, etc. Nota: Cada vez que ocurra un derrame en algunos de los equipos se debe proceder a limpiar y desinfectar el área afectada. -Tener en cuenta recomendaciones del fabricante del equipo. 6.2 LIMPIEZA DEL MATERIAL METÁLICO

1 Auxiliar de Laboratorio

Desconectar el equipo de la corriente eléctrica.

2

Auxiliar de Laboratorio

Desocupar el equipo, es decir sacar el material que pueda contener. (El material que requiera refrigeración se ingresara de inmediato a otra nevera). En el caso de Baños serológicos sacar el agua. Neveras y congeladores, descongelar el aparato dejando la puerta abierta (si aplica).

3


Lavar con agua jabonosa con ayuda de esponja o paño limpio toda la parte exterior e interior del equipo.

4

Auxiliar de Laboratorio Limpiar con paño húmedo el

equipo hasta retirar completamente el jabón

5


Desinfectar las superficies con el desinfectante de alcohol al 70%

6

Auxiliar de Laboratorio Conectar nuevamente el

equipo a la corriente eléctrica.

F-SA-59 Limpieza y

desinfección de equipos

7 FIN


1 INICIO

INICIO

Lavar con Detergente

Desinfectar

Conectar el equipo

FIN

Desconectar el equipo

Desocupar el equipo

Limpiar



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6.3 LAVADO DE MATERIAL NO CONTAMINADO (Material laboratorio de Fisicoquímico (alimentos y aguas); Frascos o Tubos donde se preparan y almacenan los medios de cultivo)


1 Inicio

2 Auxiliar de

Laboratorio

Vaciar el contenido de los elementos del Laboratorio.


Enjuagar con abundante agua de chorro.


Lavar con Detergente Líquido, restregar suavemente y en una sola dirección con esponja o churrusco (cuando se evidencian residuos de alimentos o reactivos en el material).


Lavar con abundante agua de grifo hasta que no se genere espuma

F-SA-59

Limpieza y

desinfección de

equipos


Escurrir muy bien en el lavado cada uno de los materiales metálicos.


Secar a temperatura ambiente el material


Organizar el material en los estantes.

9

FIN

Lavar con Detergente Líquido neutro o alcalino, restregar suavemente

Lavar con agua de grifo

Escurrir el material

Secar a temperatura ambiente

INICIO

Vaciar el contenido

Enjuagar

Organizar el material

FIN



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Colocar en contacto con agua de chorro

4


Sumergir el material en Detergente Líquido al 2% durante 30 minutos

5

Auxiliar de Laboratorio Enjuagar con agua de

chorro


Escurrir el material en el mesón a temperatura ambiente

8 Auxiliar de Laboratorio Llevar el material al horno

de secado a temperatura de 70°C.

F-SA-46 Control de temperatura,

limpieza y desinfección de

equipos 9 Auxiliar de

Laboratorio Ubicar el material en el lugar de destino.

10 FIN

Nota: El material de vidrio nuevo debe ser lavado como se describió anteriormente. Los elementos que tengan contacto con productos con contenido graso deben ser lavados con detergente líquido alcalino El material sucio debe ser ubicado en el área de lavado. Por ningún motivo el tiempo para realizar el lavado del material sucio debe superar 24 horas, puede dejarse en alguno de los procesos de limpieza.

6.4 LAVADO DE MATERIAL CONTAMINADO SIN INACTIVAR


1

Inicio


Retirar la cinta indicadora (de

esterilización ) del material si aplica

3


Sumergir en hipoclorito de sodio al 0,5% (5000

ppm) durante 10 minutos para inactivar

Colocar en agua de chorro

Sumergir en Detergente Líquido al 2% Enjuagar con agua de chorro


Llevar al horno de secado

INICIO

Retirar la cinta indicadora

Sumergir en hipoclorito de sodio


FIN



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4

Auxiliar de Laboratorio Enjuagar en agua de

chorro

5


Dejar con Detergente Líquido al 2% durante

30 minutos

7 Auxiliar de

Laboratorio Escurrir sobre el mesón en el área de secado los

frascos boca abajo hasta que estén bien

secos.

8 Auxiliar de

Laboratorio Llevar al horno de secado a temperatura de 70°C. No tapar las botellas, ni tubos. Las tapas se secaran a temperatura ambiente.

F-SA-46 Control de

temperatura,

limpieza y

desinfección de

equipos

9 Profesional del

laboratorio Realizar al azar inspección visual del material lavado

10 Auxiliar de

Laboratorio Almacenar el material y tapar los frascos debajo del mesón en el sitio identificado como material limpio.

11

FIN

NOTA: Los elementos que tengan contacto con productos con contenido graso deben ser lavados con DETERGENTE LÍQUIDO alcalino .

6.5 LAVADO DE MATERIAL CONTAMINADO INACTIVADO


1

INICIO


Tomar el material (tubos, láminas, frascos, placas escavadas, etc.) contaminado de los recipientes de inactivación

Enjuagar en agua de chorro

Dejar con Detergente Líquido al 2%


INICIO

Llevar al horno de secado

Realizar inspección visual d


FIN

Tomar el material contaminada del recipiente



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Descartar las puntas en el frasco desechable destinado para esto. **Los tubos usados en las pruebas de colinesterasa se deben sumergir en agua desionizada durante 2 horas.

6.6 LAVADO DE LÁMINAS


1

INICIO

con hipoclorito de sodio al 0,5% (5000 ppm)

3

Auxiliar de Laboratorio Enjuagar con agua de chorro el

material.


Lavar con Detergente Líquido al 2%. Ayudarse de churrusco y/o esponja para remover partículas.

5

Auxiliar de Laboratorio Dejar en Detergente Líquido al

2% durante 30 minutos.

6

Auxiliar de

Laboratorio Enjuagar con agua de chorro

7 Auxiliar de

Laboratorio Sumergir en agua desionizada durante 30 minutos**.

8 Auxiliar de

Laboratorio Escurrir el material a temperatura ambiente

9 Auxiliar de

Laboratorio Llevar el material al horno de secado a temperatura de 70°C

F-SA-46 Control de temperatura,

limpieza y desinfección de

equipos

11 Auxiliar de

Laboratorio Ubicar el material en el lugar de destino.

12 FIN

FIN

Enjuagar con agua de chorro

Lavar el material con Detergente Líquido al 2%.

Dejar en Detergente Líquido al 2% durante 30 minutos.

Enjuagar con agua de chorro

Sumergir en agua desionizada

Ubicar el material

INICIO


Secar el material en el horno



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2 Auxiliar y/o Profesional del Laboratorio

Colocar las láminas en agua jabonosa de un día para otro


Lavar con abundante agua de chorro

4

Auxiliar y/o Profesional del Laboratorio

Un día antes de montaje de extendidos en láminas se sumergen en una solución 1:1 (v/v) de alcohol etílico 96% y acetona durante una hora

5 Auxiliar de laboratorio

Retirar y secar inmediatamente una a una


Emplearlas para el fin indicado.

7

FIN

6.7 LIMPIEZA DE BOTELLAS PARA PRUEBAS DE RESISTENCIA A INSECTICIDAS

N. RESPONSABL

E ACTIVIDAD FLUJOGRAMA REGISTRO

1

INICIO

Colocar en agua jabonosa de un día para otro

Lavar agua de chorro

Sumergir en una solución 1:1 (v/v) de alcohol etílico 96% y acetona durante una hora

Retirar y secar inmediatamente una a una

INICIO

FIN



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2


Enjuagar las Botellas tapa rosca usadas con etanol al 96% 3 veces, agitando las botellas una a una y renueve el etanol en cada enjuague. No descartar el etanol con residuos de insecticida por la cañería, recogerlo en garrafa debidamente marcada y/o identificada.


Lavar las botellas con agua caliente con jabón detergente neutro.


Renovar el jabón y dejar en remojo toda la noche


Enjuagar a chorro de agua por lo menos 10 veces cada botella

6

Auxiliar de laboratorio

Dejar las botellas en agua de chorro aproximadamente una hora


Secar las botellas hasta su totalidad a temperatura ambiente donde no se empolven. Si se cuenta con horno de secado de vidrio puede dejarlas hasta por 4 horas

8 Profesional del

laboratorio

Verificar lavado: Seleccionar 5 botellas al azar e introduzca en ellas mosquitos los cuales deben seguir vivos durante las siguientes 3 horas. Si los mosquitos caen o mueren inicie nuevamente

Enjuagar las Botellas tapa rosca usadas con etanol al 96% 3 veces,

Lavar las botellas con agua caliente con jabón detergente neutro.

Renovar el jabón y dejar en remojo toda la noche

Enjuagar a chorro de agua por lo menos 10 veces cada botella

Dejar las botellas en agua limpia aproximadamente una hora

FIN

Secar las botellas a temperatura ambiente

Verificar lavado de botellas



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el proceso de lavado con todo el lote de botellas.

9 FIN

6.8 LIMPIEZA MATERIAL DE CAMPO DE ENTOMOLOGIA


1

INICIO

2


Sumergir después de usar el material en campo (frascos, jaulas, Tarros de criaderos, Tarros de mosquitos, Trampas CDC, Angulo, etc.). en agua corriente con hipoclorito de sodio al 0,5% (5000 ppm) durante 10 minutos (equipos con dispositivos eléctricos no sumergir)


Enjuagar con abundante agua de la llave


Lavar con Detergente Líquido neutro al 2%


Enjuagar con abundante agua de la llave

6


INICIO

Sumergir el material en hipoclorito de sodio

Enjuagar con agua de la llave

Lavar con Detergente Líquido neutro al 2%

Enjuagar con agua de la llave




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7


Distribuir en los sitios de almacenamiento

8 FIN

6.9 LIMPIEZA Y DESINFECCIÓN CABINA


1

INICIO

2 Auxiliar del Laboratorio

Semanalmente: Limpiar y desinfectar el interior y la puerta con alcohol al 70%- 90%

3

Auxiliar del Laboratorio Sacar el contenido

entomológico

4

Auxiliar del Laboratorio

Limpiar las bandejas con Detergente Líquido neutro y agua, usando una esponja o paño. No utilizar cepillos de acero o esponjillas, ya que esto puede dañar el compartimiento.

5

Auxiliar del Laboratorio

Limpiar las bandejas con alcohol al 70%- 90%

7

FIN

INICIO

Limpiar el interior del equipo y la puerta con alcohol al 70%- 90%

Sacar el contenido entomológico

Limpiar las bandejas con detergente y agua, usando una esponja o paño

Limpiar de bandejas con alcohol al 70%- 90%


FIN

FIN



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6.10 LIMPIEZA Y DESIMFECCIÓN DE ÁREAS EN CASO DE DERRAME DE FLUIDOS


1

INICIO


Delimitar inmediatamente la zona donde se produjo el derrame


Aplicar hipoclorito de Sodio 1 (10000 ppm) % Sobre el derrame. Dejar actuar durante 10 minutos


Limpiar el producto del derrame utilizando una compresa. Deseche la compresa en la bolsa roja


Lavar con detergente la zona delimitada. Realice la limpieza y desinfección habitual de esa zona

6

FIN

6.11 LIMPIEZAY DESINFECCIÓN DEL LABORATORIO


1

INICIO

INICIO

INICIO

Delimitar la zona donde está el

derrame

Limpiar el derrame

Aplicar hipoclorito de sodio

Lavar con detergente Realice la limpieza

habitual de esa zona

FIN



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2

Personal de servicios generales

LIMPIEZA DE PISOS: Diario Realizar barrido para recoger residuos grandes y visibles de manera uniforme por las superficies cubriendo la escoba con un trapo No utilizar la escoba directamente para evitar levantamiento de polvo y propagación de esporas

F-SA-60 control de limpieza y desinfección

de áreas

3


DESINFECCIÓN DE PISOS: Diario Limpiar con trapero húmedo impregnado Con el desinfectante que corresponda (Ver anexo No. 1)

LIMPIEZA DE MESONES Y VERTEDEREOS Diario Con una compresa de gasa húmeda e impregnada con detergente sobre la superficie de los mesones. En un recipiente plástico con agua sumergir la compresa, enjuagar y pasarlo por los mesones hasta retirar el detergente.


DESINFECCIÓN DE MESONES Y


de áreas

Diario Limpieza de mesones y vertedereos

Diario Limpiar de pisos

Diario Desinfección de pisos

Diario Mesones y vertederos



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VERTEDEREOS Diario Con una compresa de gasa húmeda e impregnada con desinfectante pasarlo por los mesones y vertederos. Realice la desinfección según el cronograma de desinfectantes

5


RETIRO DE RESIDUOS DE ÁREAS Diario Sacar la basura del laboratorio sin entrar la el carro de recolección, la caneca deberá ser sacada al pasillo con todo y bolsa. La bolsa se debe cambiar.

6


LIMPIEZA DE LAVAOJOS Y DUCHAS Semanalmente Limpiar con gasa y detergente neutro la superficie del lavaojos, remover el detergente con suficiente agua (hasta retirar el detergente). Para lavaojos y duchas, abrir la llave de paso de aguapara purgar

F-SA-60 control de

limpieza y desinfección de áreas

Diario Retiro de residuos

Semanalmente Purgar lavaojos y duchas de emergencia



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7


LIMPIEZA DE VENTANAS: Semanalmente Limpiar las ventanas con trapo húmedo y líquido para vidrios

8


LIMPIEZA DE LAMPARAS Semanalmente Limpiar lámparas con trapo húmedo. (Verificar que están frías y apagadas antes de hacer la limpieza)

9


LIMPIEZA PROFUNDA DE PISOS Y PAREDES Quincenalmente Lavar y restregar pisos y paredes con cepillo y detergente. Para los pisos posteriormente hacer la desinfección (ver actividad No. 3) Nota: Evitar el exceso de humedad, usando el mínimo de agua requerida. Retomar las actividades de ensayo solo hasta que el laboratorio se encuentre totalmente seco.


LIMPIEZA y DESINFECCIÓN DE CAJONES

Quincenalmente Limpiar y desinfectar cajones.

Semanalmente Limpiar lámparas

Quincenalmente Limpieza profunda de pisos y paredes

Semanalmente Limpiar las ventanas



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Quincenalmente Limpiar con trapo húmedo los cajones en los que se guarda el material del laboratorio y en el cuarto de depósito los mesones donde se almacenan reactivos. Para el área de microbiología desinfectar las superficies ya limpias con gasa y el desinfectante que corresponda (Ver anexo 1)

11

FIN

RECOMENDACIONES: marcar los elementos de aseo de cada área con tinta indeleble, para evitar contaminación cruzada 6.11 LIMPIEZA Y DESINFECCION DE CANECAS Y CUARTO DE RESIDUOS


1

INICIO

2


RETIRO DE CANECAS DE LAS ÁREAS: Semanalmente Recolectar las canecas sin bolsa de cada área y llevarlas al cuarto de aseo para iniciar el

FIN

INICIO

Semanalmente Retirar y lavar las Canecas



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procedimiento de lavado Lavar las canecas con detergente y agua restregando las superficies un cepillo para remover mugre Posteriormente remover el detergente con suficiente agua. LIMPIEZA CUARTO DE RESIDUOS: Semanalmente Lavar y restregar con agua y jabón los pisos y paredes con la ayuda de una escoba hasta remover la suciedad

3 Personal de servicios generales

Desinfectar las canecas con El detergente que corresponda (Ver anexo No. 1)


Enjuagar con abundante agua


Dejar escurrir y secar las canecas En el cuarto de residuos secar con trapero


Ubicar nuevamente en el área correspondiente las canecas.

8


Colocar la bolsa de acuerdo con el color que corresponda y diligencie la Planilla de Registro


de áreas

Dejar escurrir y secar las canecas

Ubicar nuevamente en el área correspondiente

Colocar la bolsa de acuerdo con el color que corresponda y diligencie la Planilla de Registro

Desinfectar las canecas

Enjuagar con abundante agua



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9

FIN

ADVERTENCIAS Y RECOMENDACIONES:

• En caso de ser necesario lave las canecas si presenta algún tipo de derrame en el momento en que ocurre el evento.

6.12 LIMPIEZA DE AREAS COMUNES Y OFICINAS:


1

INICIO

2 Personal de

servicios generales

Diario: Sacar la basura del área sin entrar la bolsa de recolección general, la caneca deberá ser sacada al pasillo con todo y bolsa. La bolsa se debe cambiar

3 Personal de

servicios generales

Realizar barrido del área

4 Personal de

servicios generales

Limpiar el polvo de los muebles y superficies

5 Personal de

servicios generales

Trapear los pisos

6

Personal de

servicios

generales

Semanal: Limpiar los vidrios de la zona

FIN

INICIO

Sacar la basura del área

Realizar barrido del área

Limpiar el polvo de los muebles y superficies

Limpiar los vidrios de la zona

FIN

Trapear los pisos



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7

FIN

RECOMENDACIONES: marcar los elementos de aseo de cada área con tinta indeleble, para evitar contaminación cruzada 6.13 PRESENCIA DE MATERIA GRASA O SOLIDOS QUE SE ADIHEREN AL RECIPIENTE Material de Fisicoquímico (BALONES, TUBOS, Baker)


1 Inicio

2 Auxiliar de

Laboratorio

Vaciar el contenido de los elementos del recipiente al sifón.

3


Enjuague con agua de chorro el material.

4


Adicione al material Detergente Líquido al 2%

c 5


Ingrese el material al equipo ultrasonido. Realizar inspección del material cada 20 minutos.

6

Auxiliar de Laboratorio Enjuagar con agua de

chorro


Escurrir el material en el mesón a temperatura ambiente

9 Auxiliar de Laboratorio Ubicar el material en el

lugar de destino.

10 FIN

INICIO

Vaciar el contenido

Colocar en agua de chorro

Adicionar en Detergente Líquido al 2%

Ingrese el material al equipo ultrasonido

Enjuagar con agua desionizada



FIN



VERSION: 01


6.14 ESTERILIZACION


1 INICIO


Seleccionar el material a esterilizar, previamente limpio y desinfectado. No mezcle el material limpio con el sucio, esterilice por separado.


Envolver los instrumentos y materiales a esterilizar con papel kraf.


Sellar con cinta de esterilizar los paquetes.


Identificar completamente cada paquete

6


Realizar la carga del material en el autoclave.

F-SA-59 Registro de limpieza y

desinfección de equipos

INICIO

Seleccionar el material a esterilizar

Identificar los paquetes

Realizar la carga del autoclave

Envolver con papel kraf el material

Sellar con cinta de esterilizar los paquetes



VERSION: 01



7


Iniciar al ciclo de esterilización

8


Abrir el autoclave una vez se finalice el proceso de esterilizacion y dejar secar el material dentro del autoclave.

9


Verificar el cambio de color de la cinta y/o la ampolla indicadora biologica.

F-SA-61 Control de esterilidad

10


Almacenar el material esteril.

11 FIN

7. REGISTROS

Registro Responsable Como conservarlo

Donde conservarlo

Tiempo de conservación

Disposición final

F-SA-59 Limpieza y desinfección de

equipos

Profesional Universitario – Profesional de Laboratorio –

Auxiliar de Laboratorio -

Medio físico

Según Listado Maestro de

documentos F-MC-04, Según F-MC-03 -Listado maestro de


documentos F-MC-04, Según F-MC-03 -Listado maestro de registros y/o tabla


documentos F-MC-04, Según F-MC-03 -Listado

maestro de

FIN

Iniciar al ciclo de esterilización

Dejar secar el material dentro del autoclave

Almacenar el material esteril.

Verificar el cambio de color de la cinta y/o la ampolla indicadora biologica



VERSION: 01


Registro Responsable Como

conservarlo Donde

conservarlo Tiempo de

conservación Disposición

final registros y/o tabla de retención documental

de retención documental

registros y/o tabla de retención documental

F-SA-46 Control de temperatura, limpieza

y desinfección de equipos

Profesional Universitario – Profesional de Laboratorio –

Auxiliar de Laboratorio -

Medio físico







Según Listado Maestro de documentos F-MC-04, Según F-MC-03 -Listado maestro de registros y/o tabla de retención documental

F-SA-60 control de limpieza y

desinfección de áreas Profesional

Universitario – Profesional de Laboratorio –

Auxiliar de Laboratorio-

Servicios Generales

Medio físico








F-SA-34 Control Interno de equipos Profesional



Servicios Generales

Medio físico








F-SA-61 control de Esterilización Profesional



Servicios Generales

Medio físico








8. ANEXOS

CONCENTRACIONES RECOMENDADAS DE HIPOCLORITO DE SODIO

Proceso de Uso Concentración en ppm

Concentración en %

Tiempo de Acción en contacto (minutos)

Fluidos biológicos, derrame de sangre, cepas bacterianas 10.000 1 10



VERSION: 01


Lavado Terminal de Áreas Críticas y Semicriticas 5.000 0,5 10

Lavado rutinario de Áreas Críticas y Semicriticas 2.500 0,25 10

Lavado Rutinario y Terminal de Áreas No Criticas 2.000 0,2 10

9. HISTORIAL

VERSIÓN VIGENCIA IDENTIFICACIÓN DE LOS CAMBIOS

1 14/11/2015 Versión inicial

PROCEDIMIENTO DE LIMPIEZA, DESINFECCION Y ESTERILIZACION · procedimiento de limpieza, desinfeccion...

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