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UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL

FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA

TRABAJO DE TITULACIÓN

PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE:

MÉDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA

TEMA

“PREVALENCIA DE PARÁSITOS GASTROINTESTINALES EN

CAPRINOS DE LOS CANTONES GUAYAQUIL, SAMBORONDÓN Y

DAULE”

AUTOR

TOMAS ALEXANDER REYES AGUAYO

TUTOR ACADÉMICO

Dro. Pablo Torres Lasso, Mg.

Guayaquil, Febrero 2015

3

CERTIFICACIÓN DE TUTORES

En calidad de tutores del trabajo de titulación:

CERTIFICAMOS

Que hemos analizado el trabajo de Titulación como requisito previo para optar por

el Título de Tercer Nivel de Médico(a) Veterinario(a) Zootecnista.

El trabajo de titulación se refiere a:


CAPRINOS DE LOS CANTONES GUAYAQUIL,

SAMBORONDÓN Y DAULE”

Presentado por:

Tomas Alexander Reyes Aguayo Cédula # 0931065403

TUTORES

_________________________ ________________________

. Dro. Pablo Torres Lasso, Mg. Dra. Patricia Cumbe, Ph.D.

TUTOR ACADÉMICO TUTOR METODOLÓGICO

_______________________________

Blgo. Xavier Rodríguez, Mg.Sc.

TUTOR DE ESTADÍSTICA

Guayaquil, Febrero 2015

4

La responsabilidad del contenido de este trabajo

de titulación, me corresponde exclusivamente: y

el patrimonio intelectual de la misma Facultad de

Medicina Veterinaria y Zootecnista de la

Universidad De Guayaquil

TOMAS ALEXANDER REYES AGUAYO.

5

Dr. Roberto Cassís Martínez, PhD.

RECTOR.

Dra. María de Lourdes Salazar Mazamba, PhD.

DECANA

Abgdo. Evert Vidal Arteaga Ramírez

SECRETARIO

Dr. Pablo Torres, Mg.

TUTOR ACADÉMICO

6


CAPRINOS DE LOS CANTONES GUAYAQUIL,

SAMBORONDÓN Y DAULE”

TOMAS ALEXANDER REYES AGUAYO

TRABAJO DE TITULACIÓN

PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE:

MÉDICA VETERINARIA ZOOTECNISTA.

Los miembros del Tribunal de Sustentación designados por la Comisión Interna de

la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, damos por Aprobada la presente

investigación con la Nota de ---- ( ---- ), Equivalente a ----------------.

Dra. María Guadalupe García Moncayo, Mg. Sc.

PRESIDENTE

M.V.Z. María del Carmen Zambrano, Mg. Sc. Dra. Patricia Cumbe, Ph.D.

EXAMINADOR PRINCIPAL EXAMINADOR PRINCIPAL

Blgo. Xavier Rodríguez, Mg.Sc.

EXAMINADOR SUPLENTE

7

DEDICATORIA

A Dios, por darme la oportunidad de vivir y por estar conmigo en cada paso que

doy, por fortalecer mi corazón e iluminar mi mente y por haber puesto en mi

camino a aquellas personas que han sido mi soporte y compañía durante todo el

periodo de estudio.

Dedico el trabajo a mis padres por el apoyo incondicional que siempre me dieron,

por el apoyo de siempre y la confianza que siempre me dieron a lo largo de mi

carrera profesional.

A mis amigos que siempre estuvieron apoyándome.

8

AGRADECIMIENTO

A todos mis maestros ya que ellos me enseñaron valorar los estudios y a superarme

cada día, también agradezco a mis padres porque ellos estuvieron en los días más

difíciles de mi vida como estudiante.

A la Dra. Lucila Silva que me enseno muchísimo en el área veterinaria le agradezco

infinitamente con todo el corazón.

A mis tutores que ayudaron por su paciencia, dedicación motivación, criterio y

aliento.

A todos Gracias de todo corazón!!

PENSAMIENTO

9

Índice DEDICATORIA ...................................................................................................................... 7

AGRADECIMIENTO .............................................................................................................. 8

INDICE DE TABLAS .............................................................................................................. 13

INDICE DE ANEXOS ............................................................................................................ 14

I. INTRODUCCIÓN ........................................................................................................... 16

1.4. OBJETIVOS .................................................................................................................. 17

1.4.1 OBJETIVO GENERAL ............................................................................................... 17

1.4.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS ............................................................................................ 17

1.5 VARIABLES. ............................................................................................................... 17

VARIABLE DEPENDIENTE. ................................................................................................... 17

VARIABLES INDEPENDIENTES. .............................................................................................. 17

1.6 HIPOTESIS. ................................................................................................................ 17

1.6.1 HI: ............................................................................................................................. 17

II. REVISIÓN LITERATURA................................................................................................... 18

2.1. GENERALIDADES DE LOS PARÁSITOS GASTROINTESTINALES. ...................................... 18

2.2. HELMINTOS GASTROINTESTINALES............................................................................. 18

2.3. NEMATELMINTOS. ...................................................................................................... 19

2.4. CARACTERISTICAS GENERALES. ................................................................................... 19

2.5. DESCRIPCIÓN DE LOS NEMATODOS ..................................................................................... 19

2.5.1. BUNOSTOMUM ............................................................................................................ 19

2.5.2. COOPERIA. .................................................................................................................. 20

10

2.5.3. HAEMONCHUS ............................................................................................................. 20

2.5.4. OSTERTAGIA SPP. ......................................................................................................... 21

2.5.5. OESOPHAGOSTOMUN SPP. ............................................................................................. 21

2.5.6. TRICHOSTRONGYLUS ..................................................................................................... 21

2.5.7. TRICHURIS .................................................................................................................. 22

2.6.8. STRONGYLOIDES ........................................................................................................... 22

2.6. PHYLUM PLATHELMINTHES........................................................................................... 23

2.6.2. CESTODOS ................................................................................................................ 23

2.7 PROTOZOOS GASTROINTESTINALES............................................................................. 24

2.7.1. EIMERIA ..................................................................................................................... 24

2.8. DINAMICA DE LOS PARASITOS GASTROINTESTINALES ................................................ 25

2.9. TRANSMISIÓN ............................................................................................................. 25

2.10. FACTORES ASOCIADOS AL PARASITISMO .................................................................. 25

2.11. PATOGENICIDAD. ...................................................................................................... 26

2.12. PATOGENESIDAD Y VIRULENCIA................................................................................ 26

2.13. INTERÉS SANITARIO.................................................................................................. 27

2.14. DIAGNÓSTICO. ......................................................................................................... 27

2.14.1. DIAGNOSTICO COPROPARASITARIO. ..................................................................... 27

2.14.2. MÉTODO DE FLOTACIÓN. ....................................................................................... 28

A) MÉTODO DE FLOTACIÓN SALINA ............................................................................................ 28

B) MÉTODO DE FLOTACIÓN AZUCARADA .................................................................................... 28

2.14.3. MÉTODO DE FROTIS DIRECTO. ............................................................................... 28

2.14.4. MÉTODO DE SEDIMENTACIÓN. .............................................................................. 28

III. MATERIALES Y MÉTODOS ............................................................................................. 30

3.1. CARACTERÍSTICAS DEL ÁREA DE ESTUDIO. .................................................................. 30

SAMBORONDÓN.- A 33 KM. DE GUAYAQUIL SE ENCUENTRA SU CABECERA CANTONAL, SU

TEMPERATURA PROMEDIO ES DE 25°C Y SU PRECIPITACIÓN PROMEDIO ANUAL ES DE

1000MM. ............................................................................................................................ 30

3.2. MATERIALES. .............................................................................................................. 30

3.2.1. DE LABORATORIO. ................................................................................................... 30

11

3.2.1.1. MATERIALES Y REACTIVOS. .......................................................................................... 30

3.2.1.2. EQUIPOS.................................................................................................................. 31

3.2.2. DE OFICINA. ............................................................................................................. 31

3.2.2.1. MATERIALES............................................................................................................. 31

3.2.2.2. EQUIPOS.................................................................................................................. 31

3.3. METODOLOGÍA DE TRABAJO ....................................................................................... 32

3.3.1. TIPO DE INVESTIGACIÓN................................................................................................. 32

3.3.3.1. POBLACIÓN. ............................................................................................................. 32

3.3.3.2. MUESTRA. ............................................................................................................... 32

3.3.4. PROCEDIMIENTO. .................................................................................................... 32

LAS MUESTRAS DE HECES SE RECOLECTÓ EN HORAS DE LA MAÑANA ANTES DEL QUE GANADO SALGA A

RAMONEAR, SE RECOGE LAS HECES EN FUNDAS ESTÉRILES CON IDENTIFICACIÓN Y NUMERO DE MUESTRA

PARA SU RESPECTIVO ANÁLISIS EN EL LABORATORIO (ANEXO.IV) (ANEXO,V) ..................................... 32

SE TOMÓ LAS MUESTRAS Y SE UTILIZÓ 4 MÉTODOS DE LAS CUALES LOS DESCRIBO A CONTINUACIÓN:....... 33

3.3.4.1.1. MÉTODO DE FLOTACIÓN CON SOLUCIÓN SALINA SATURADA. ........................... 33

3.3.4.1.2. MÉTODO DE FLOTACIÓN CON SOLUCIÓN AZUCARADA. ..................................... 34

3.3.4.1.3. MÉTODO DE SEDIMENTACIÓN SIMPLE. .............................................................. 35

3.4.4.1.4. MÉTODO DE FROTIS DIRECTO ................................................................................... 36

3.3.3.2. ANÁLISIS ESTADÍSTICO. ......................................................................................... 36

IV. RESULTADOS EXPERIMENTALES ................................................................................... 37

4.1 IDENTIFICACIÓN LOS PARÁSITOS GASTROINTESTINALES ............................................................. 37

TABLA 1. PREVALENCIA POR HELMINTOS EN CAPRINOS DE LOS CANTONES GUAYAQUIL,

SAMBORONDOM Y DAULE. ...................................................................................................... 37

TABLA2. ASOCIACIÓN PARASITARIA POR HELMINTOS EN CAPRINOS DE LOS CANTONES GUAYAQUIL,

SAMBORONDOM Y DAULE. ...................................................................................................... 38

4.2 DETERMINAR LA PREVALENCIA DE PARASITOSIS EN CAPRINOS POR GRUPO ETÁREO. . 39

TABLA 3. PREVALENCIA DE PARASITOSIS POR GRUPO ETAREOS. ....................................................... 39

4.3 DETERMINAR LA PREVALENCIA DE PARÁSITOS EN CAPRINOS POR SEXO. .................... 40

TABLA 4. PREVALENCIA DE PARÁSITOS CAPRINOS POR SEXO. .......................................................... 40

V. DISCUSIÓN ....................................................................................................................... 41

VI. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES ........................................................................ 42

12

6.1. CONCLUSIONES ........................................................................................................... 42

6.2. RECOMENDACIONES ................................................................................................... 42

VII. RESUMEN .................................................................................................................... 43

VIII. SUMMARY .................................................................................................................. 44

IX. BIBLIOGRAFÍA ............................................................................................................... 45

X. ANEXO ........................................................................................................................... 49

13

INDICE DE TABLAS

TABLA # TITULO PAGINA

TABLA 1. PREVALENCIA POR HELMINTOS EN CAPRINOS DE LOS CANTONES GUAYAQUIL,

TABLA2. ASOCIACIÓN PARASITARIA POR HELMINTOS EN CAPRINOS DE LOS CANTONES GUAYAQUIL, 38

TABLA 3. PREVALENCIA DE PARASITOSIS POR GRUPO ETAREOS. 39

TABLA 4. PREVALENCIA DE PARÁSITOS CAPRINOS POR SEXO. 40

14

INDICE DE ANEXOS

TABLA # TITULO PAGINA

ANEXO 1. HUEVO DE NEMALTELMINTOS GASTROINTESTINALES

EN CAPRINOS LO MAS COMUNES EN NUESTRO MEDIO.¡ERROR! MARCADOR NO DEFINIDO.

ANEXO II. HUEVO DE PLANTELMINTOS GASTROINTESTINALES EN

CAPRINOS LO MAS COMUNES EN NUESTRO MEDIO.¡ERROR! MARCADOR NO DEFINIDO.

ANEXO III. HUEVO DE PROTOZOO GASTROINTESTINALES EN

CAPRINOS MÁS COMUNES EN NUESTRO MEDIO.¡ERROR! MARCADOR NO DEFINIDO.

ANEXO IV. HOJA DE REGISTRO DE CAPO. ......................... ¡ERROR! MARCADOR NO DEFINIDO.

ANEXO V. HOJA DE REGISTRO DE LABORATORIO. ........... ¡ERROR! MARCADOR NO DEFINIDO.

ANEXO VI. RECOGIDA DE MUESTRA. ................................ ¡ERROR! MARCADOR NO DEFINIDO.

ANEXO VII. PREPARACION DE METODO DE FLOTACION SEDIMENTACION.¡ERROR! MARCADOR NO DEFINIDO.

ANEXO VIII. FOTOGRAFIA DE LOS HUEVOS Y OOQUISTES DE LOS PARASITOS

GASTROINTESTINALES. ........................................................... ¡ERROR! MARCADOR NO DEFINIDO.

............................................................................................... ¡ERROR! MARCADOR NO DEFINIDO.

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15

Si los deseos no se cumplen es mejor esperarlos,

lo mejor es no esperarlos y emprenderlos.

16

I. INTRODUCCIÓN

El problema de las infecciones parasitarias en explotaciones ganaderas son muy

frecuentes y no existe ninguna duda que el control es absolutamente necesario. Es

precisamente que en algunos casos es difícil determinar si los tratamientos

antiparasitarios son efectivos o no.

No es posible erradicar por completo a los parásitos de las explotaciones

ganaderas y es por eso que debemos convivir con ellos, debemos tener un control

óptimo para que los animales puedan desarrollar inmunidad frente a los parásitos

sin afectar sus características productivas (Castro J).

El ganado caprino a pesar de ser una especie de fácil crianza, el manejo que se les

da en muchos casos no es el adecuado, las condiciones ambientales, la

alimentación y el mal manejo sanitario son factores predisponentes para que su

productividad no sea la esperada (Gallegos, 2007).

Las enfermedades y los padecimientos que producen los parásitos

gastrointestinales generalmente desencadenan una serie de síntomas provocando lo

que se conoce como gastritis verminosa. Entre los síntomas que se pueden

presentar debido a una parasitosis interna tenemos un enflaquecimiento

progresivo, diarreas acuosas, inapetencia, y baja en la producción (Gallegos,

2007).

Los objetivos de este proyecto fueron la identificación de los parásitos

gastrointestinales y la prevalencia tanto en sexo como en grupo etareo,

muestreados en los cantones Guayaquil, Samborondon y Daule.

En el presente trabajo se establecieron las siguientes razones que justifican esta

investigación: ampliar las opciones de control de los parásitos, ofrecer un mayor

bienestar a los animales, e informar el riesgo zoonotico.

17

1.4. OBJETIVOS

1.4.1 OBJETIVO GENERAL

Determinar la prevalencia de parásitos gastrointestinales en caprinos de los

cantones Guayaquil, Samborondom y Daule.

1.4.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS

Identificar los parásitos gastrointestinales presentes en los caprinos de los

cantones Guayaquil, Samborondón y Daule.

Determinar la prevalencia de parasitosis en caprinos por grupo etáreo

Determinar la prevalencia de parasitosis en caprinos por sexo

1.5 VARIABLES.

Variable dependiente.

Prevalencia de parasitosis en caprinos

Variables independientes.

Edad

Sexo

1.6 HIPOTESIS.

1.6.1 Hi:

Hi: El índice de parasitosis gastrointestinales en caprinos es alto en las Upas

seleccionadas.

18

II. REVISIÓN LITERATURA

2.1. GENERALIDADES DE LOS PARÁSITOS GASTROINTESTINALES.

Los parásitos gastrointestinales como su nombre lo indica son parásitos que viven

en el sistema digestivo, afectando en algunas ocasiones otro órgano. Estos

parásitos provocan infestaciones a todo tipo de animales más frecuentemente en la

época húmeda.

Existen muchos casos en los que se presenta el multiparasitismo, o presencia de

diferentes especies de parásitos alojados en un solo hospedero; o el

poliparasitismo, que se refiere a la existencia de una gran cantidad de parásitos de

la misma especie, muchas veces ubicados en el mismo o en distintos órganos del

hospedador (United States Department of Agriculture [USDA], 2007).

Los parásitos gastrointestinales producen diversos efectos patógenos en el

hospedador.

Los parásitos gastrointestinales más comunes que atacan a la explotaciones caprinas

son producidas por helmintos, y protozoarios siendo estos: Ostertagia sp.,

Strongyloides sp., Trichostrongylus sp., Cooperia sp., Haemonchus contortus,

Trichuris sp., Nematodirus sp., Oesophagostomum sp., entre otros.

2.2. HELMINTOS GASTROINTESTINALES.

Los helmintos son vulgarmente conocidos también con el término de gusano, son

organismos pluricelulares. Desde el punto de vista de Bowman (2010) manifiesta

que: ‘‘los helmintos incluyen los platelmintos (vermes planos, trematodos, y

cestodos), nematelmintos o nematodos (vermes redondos), acantocéfalos y

anélidos’’.

19

2.3. NEMATELMINTOS.

También conocidos como nemátodos, nematode. Son un filo de vermes

pseudocelomados con más de 25.000 especies registradas. Se conocen

vulgarmente como gusanos redondos debido a la forma de su cuerpo en un corte

transversal (Gallegos, 2007).

2.4. CARACTERISTICAS GENERALES.

Los nematodos son gusanos redondos no segmentados. El cuerpo es filiforme con

simetría bilateral y ciertas hembras desarrollan dilataciones corporales más o

menos globosas. Poseen un aparato digestivo, sexos separados y su ciclo es

indirecto y directo.

Los huevos pueden identificarse específicamente por su contenido uno o más

blastómero, mórula o larva, forma, tamaño, color. La eclosión de los huevos puede

darse dentro del hospedador o en el medio ambiente (EcuRed).

2.5. Descripción de los Nematodos

A continuación se describe los nematodos más frecuentes en nuestro medio que

afectan a las cabras:

2.5.1. Bunostomum

Son de color gris blanquesino hasta rojo grisáceo. Su hospedador son ovejas,

cabras, ciervo.

Se localizan en el intestino delgado que es su órgano predilecto, ya que posee

extremo cefálico, los machos pueden medir de 12 – 17mm y 600 – 640 micras su

espícula es no filiforme, mientras las hembras miden unos 20 – 25mm y sus

huevos de 85 – 105 X 45 – 60 micras en estado adulto mide 1 – 3 cm, su capsula

bucal en forma de embudo.

Los huevos son infecciosos en el pasto, en regiones tropicales pueden ser

infecciosos hasta 50 días en pasto, pueden migrar a diversos órganos como

pulmones y tráquea.

http://www.ecured.cu/Gusanos

20

Los síntomas que pueden presentar los animales por este tipo de parasito es que al

penetrar las larvas a través de la piel causan picor en las patas y pezuñas, también

producen diarrea sanguinolenta y por deficiencia de hierro anemia. Se recomienda

para su diagnóstico exámenes coproparasitarios y su tratamiento productos como

benzimidazoles, levamisol, tetrahidropimidinas (Junquera, 2015).

2.5.2. Cooperia.

El color de este parasito es rojizo, su hospedador son las ovejas, cabras, bovinos y

se localizan en el intestino delgado, ya que su cuerpo está dotado de cresta

longitudinales, su bolsa copuladora bien desarrollada, alcanza una longitud

máxima 10mm. Los huevos de este parasito alcanzan un tamaño de 40 X 80

micras, su ciclo vital directo común para los nematodos y sus huevos eclosionan

en 24 horas, sobre vive entre 5 y 12 meses en el medio ambiente, aunque puede

hibernar.

Los síntomas son parecidos a los de los parásitos Bunostomum, con diarrea

sanguinolenta y anemia, por tal razón se sugiere el examen coproparasitario. Estos

parásitos se pueden tratar con benzimidazoles, levamisol, tetrahidropimidinas

(Junquera, 2015).

2.5.3. Haemonchus

Este parasito se localiza en abomaso, y su hospedador son las cabras, estos

parásitos pueden medir en machos 1 – 22 mm y las hembras 25 – 34mm.

En su cavidad bucal tienen una lanceta dorsal con la que erosiona la mucosa

gástrica, los huevos miden unos 80 X 45 micrones, una hembra puede poner hasta

unos 5000 huevos diarios, son de color amarillento contiene de 6 a 8 blastómeros.

Los síntomas que provocan son que las larvas y los adultos perforan o dañan la

mucosa estomacal y chupan sangre de los vasos sanguíneos adyacentes, lo cual

causa gastritis y ulceras en las paredes estomacales, danos al hígado y

hipropotinemia.

21

El diagnóstico se basa en examen coproparasitarios y su tratamiento con

benzimidazoles, levamisol y la tetrahiroprimidinas (Junquera, 2015).

2.5.4. Ostertagia spp.

La Ostertagia spp., se localizan en el intestino delgado, tienen forma de alambre,

los adultos miden 12mm de longitud, color pardo rojizo. Posee una vesícula

cefálica. Las espículas de los machos son finas y rectas. Los huevos miden 45 X

85 micras y son ligeramente asimétricos.

Los síntomas que puede provocar son diarrea mucosa con color pútrido,

deshidratación, edemas, perdidas de apetito y peso por la adsorción de alimentos y

debilitamiento progresivo. El tratamiento con benzimidazoles, albendazol,

febendazol, netobimin y oxfendazol (Junquera, 2015).

2.5.5. Oesophagostomun Spp.

El genero Oesophagostomun columbianum, sus hospedadores son los caprinos,

ovinos, bovinos, se alojan en el intestino delgado y grueso.

Los adultos alcanzan de 15 y 20 mm de longuitud, las hembras son mayores que

los machos. Lo huevos miden de 60 X 100 micras y tienen una membrana

posterior bastante delgada.

Las afecciones que pueden causar en fase aguda son fiebre, pérdida de apetito y de

peso, colitis, fuerte diarreas acuosa o mucosa, verde oscura o negra. Las

infecciones crónicas producen anemia y edema, además de diarreas, lo que resulta

en un debilitamiento notable de los animales, el fármaco selectivo para combatir

estos parásitos son los antihelmínticos (Junquera, 2015).

2.5.6. Trichostrongylus

Son parásitos de color gris rojizo, que se los puede encontrar en ovinos, bovino,

caprino y otros rumiantes.

22

Se localizan en el intestino delgado, son finos como el pelo, los adultos son

esbeltos, alcanzan 11mm de longitud, los huevos miden unos 40 – 80 micras, a

cambio otros trichostrongylus se localizan en el cuajo y duodeno, en el macho

miden de 4^0 – 7^7 mm X 81 – 130 micras y hembras 4^7 – 8^8 X 82 – 103

micras.

Sus síntomas pueden provocar enteritis o gastritis, diarrea o estreñimiento,

debilitación general y pérdida de apetito y peso. El tratamiento consiste en

suministrar benzimidazoles y endectocidas para los adultos (Junquera, 2015).

2.5.7. Trichuris

El trichuris es de color amarillento, se localizan en el ciego e intestino grueso. Los

adultos miden 3 a 8 cm de longitud, los machos 50 – 80 mm de longitud, tiene un

espícula que mide aproximadamente 5 – 6 mm, la parte posterior del cuerpo más

grueso y la parte anterior es más fina, los huevos son pardo-amarillentas, los

huevos miden 40 X 70 micras y tiene un ciclo vital directo.

Estos parásitos provocan síntomas como enteritis, ulceras e incluso hemorragia

intestinal, diarrea acuosa, colitis, pérdida progresiva de peso y anemia. El

tratamiento con benzimidazoles y endectocidad (Junquera, 2015).

2.6.8. Strongyloides.

Se localiza en el intestino delgado, la hembra mide 6 – 8 mm X 50 – 68 micras, su

cola mide unos 73 – 86 micras de longitud, los huevos miden 25 X 50 micras y al

ser expulsado por las heces cada huevo ya contiene una larva.

Las hembras producen huevos sin ser fecundado por el macho, fuera del

hospedador eclosionan y completan su desarrollo como larvas infectiva y

sobreviven hasta 4 meses, fuera del hospedador penetran en la piel, las larvas

migran a los pulmones por vasos sanguíneos, llegan a la cavidad bucal, son

tragadas y final alcanzan al intestino. Las larvas llegan a las ubres a través de flujo

sanguíneo y hay pueden infectar a crías en lactación.

23

Los síntomas que puede provocar al animal son la enteritis, diarrea sanguinolenta,

anemia, pérdida de apetito y debilidad, también causan la muerte a los animales

fuertemente infectados. Por tal razón siempre se recomienda el uso de

antiparasitarios como antihelmínticos (Junquera, 2015).

2.6. Phylum PLATHELMINTHES.

Se caracterizan por tener un cuerpo blando y aplanado dorsalmente y por ser

hermafrodita. Los adultos se localizan en el intestino, conductos biliares,

pulmones, vasos sanguíneos y otros órganos de sus hospedadores. Contiene a los

grupos de Trematoda, Cestoda y Turbelaria.

2.6.1. DESCRIPCION DE LOS PLATELMITNTOS

Tienen el cuerpo aplanado, carecen de segmentaciones y son relativamente cortos.

Están dotados de ventosas que se fijan al hospedador.

Son hermafroditas y cada individuo pose ambos aparatos reproductores. La

mayoría de huevos de tremátodos, son arrastrados a la luz intestinal para luego

salir al exterior con las heces (Bowman, 2010).

2.6.2. CESTODOS

Entre los cestodos que afectan a la cabra se encuentra el género Moniezia, que se

caracteriza por parasitar a rumiantes. Este parasito presenta un ciclo vital indirecto,

algunas especies depositan sus huevos directamente en el intestino delgado y otras

especies expulsan segmentos los cuales son evacuados junto con las heces, estos se

adhieren a la vegetación y pueden soportar varios meses en ese estado hasta

encontrar un hospedador intermediario y pasar al definitivo.

Los huéspedes intermediarios pueden ser algunos ácaros oribatidos, los cuales

ingieren los huevos, estos eclosionan en su interior donde habitan por mucho

tiempo hasta que el hospedador final consume los ácaros infestado presente en el

pasto contaminado.

24

Los síntomas que puede causar en el animal son diarrea, eliminación de

proglotides, falta de apetito y adelgazamiento progresivo, para su tratamiento se

utiliza niclosamida, praziquantel, albemdazol y febendazol (Junquera, 2015;

Valcárcel, 2011).

2.7 PROTOZOOS GASTROINTESTINALES.

Los protozoarios, suelen ser muy patógenos en el intestino delgado, estos parásitos

afectan a los animales, tanto doméstico como silvestres provocando perjuicios en su

salud (Bowman, 2010). Los géneros más comunes de protozoarios gastrointestinales

son Eimeria, Cryptosporidium.

2.7.1. Eimeria

Las especies Eimeria spp, se caracterizan por presentar un ciclo vital continuo, el

70% de su desarrollo se da en el intestino delgado y el restante 30% en el intestino

grueso. Ingresan al cuerpo del hospedador por medio de la ingesta cuando este

pastorea o consume alimentos que contienen ooquistes, estos se encuentran en el

medio externo y una vez que se interna en el anfitrión pasan rápidamente a su

siguiente estadio, hasta alcanzar la madurez y empezar su reproducción. Su ciclo

dura entre 19 y 22 días, y culmina con la liberación de nuevos ooquistes por medio

de las heces (Drugueria, 2005).

Este tipo de parasito se presenta debido al mal manejo sanitario y alimenticio que

recibe los animales, al medio ambiente que puede ser propicio para su desarrollo y

a los factores predisponente que presenta el hospedador (Cipresillo,2009).

Los síntomas que se pueden presentar son diarrea con heces blandas y malolientes,

se acompañan con la disminución de apetito, anemia, adelgazamiento, mal estado

general, deshidratación y debilidad (Ramos, 2005).

Para su tratamiento se recomienda tratar con metafilactina de un coccidicida el

cual se aplica a una dosis de 1 ml por cada 2.5 kg de peso corporal (20 mg/kpv).

25

2.8. DINAMICA DE LOS PARASITOS GASTROINTESTINALES

La temperatura y húmeda son unos de los factores importantes en el desarrollo de

los parásitos, por lo tanto los huevos al exterior juega su papel de supervivencia, su

desarrollo puede retrasarse por las bajas temperaturas y si aumenta su velocidad de

desarrollo también.

La humedad es otro factor limitante, las larvas son capaces de desarrollarse en

pequeños números si la humedad relativa es de 70 y 100%, pero en general

requiere un mínimo del 96% para el desarrollo (Irene, 2000).

Otros factores que interviene en la transportación de las larvas son el viento y las

lluvias, ya que las larvas infectantes sobreviven en condiciones adversas del suelo.

2.9. TRANSMISIÓN

La transmisión parasitaria es de forma directa o indirecta. La transmisión directa

implica que el parasito pueda llegar al hospedador infectado o receptivo por

transmisión sexual, transmisión fecal. Mientras que la transmisión indirecta

implica el paso de agentes patógenos de unos individuos a otros por medio de

formites, mecánico, o biológicos (Quiroz, 1990).

La vía de entrada predilecta para los enteroparásitos, es el contacto y penetración

por vía oral, el cual se produce de forma accidental, cuando el hospedero ingiere

agua, suelo o alimentos vegetales o animales, en los cuales están presentes las

formas infectantes del parásito ya sea quistes y ooquistes de protozoos, huevos

embrionados, larvas de helmintos, entre otros (Gállego, 2007).

2.10. FACTORES ASOCIADOS AL PARASITISMO

Bowman, 2010 dice que los factores asociados al parasitismo son los siguientes:

Edad.- Los animales jóvenes por su parte inmunología y por no tener experiencia

previa.

26

Exposición previa.- Radica en el primer contacto con el parasito, si se mantiene de

forma no tan frecuente los animales adquieren una inmunidad.

Tipo de Explotación.- Al ir aumentando el número de cabezas de ganado por Ha,

hay mayor riesgo de contaminación parasitaria.

Nutrición y estado de salud.- animales con bajo perfil nutricional son más

propensos a sufrir mayores pérdidas ante un grado de infestación parasitaria

2.11. PATOGENICIDAD.

La patogenicidad de los parásitos gastrointestinales se debe a diferentes factores

que influyen tales como: dependientes del parásitos y dependientes del hospedador

(Gallegos, 2007). La virulencia del parasito no solo se debe a la especie del

parasito sino también de la raza y la población del mismo.

2.12. PATOGENESIDAD Y VIRULENCIA

La patogenicidad parasitaria depende de los factores intrincicos, o dependientes

directamente del parasito, como los factores extrínsecos, o dependiente del

hospedador (Gallegos, 2007).

Por las manifestaciones y su naturaleza puede ser expoliatriz, traumática, toxica,

irratativa, infectante, antigénica, mecánica, bacteriferica, etc. (Quiroz, 1990).

La acción expoliatriz, los endoparásitos sustraen al huésped, para su alimentación,

una cantidad más o menos grande de sustancias nutritivas, que en ciertos casos

pueden causar grande desequilibrio a la salud de su huésped (Quiroz, 1990).

Una acción mecánica es producida por la obstrucción parasitaria ya que muchos

parásitos se localizan en el intestino, conductos biliares, vasos sanguíneos y ciertas

viseras a esto se denominan fenómeno de obstrucción o comprensión (Quiroz,

1990).

Tanto como los ecto y endoparásitos ejercen una acción traumática más o menos

evidente en los órganos y tejida sobre su huésped (Quiroz, 1990).

27

La acción toxica deriva de los fenómenos de desasimilación y desintegración de

los mismo e incluso de segregar verdaderas toxinas (Quiroz, 1990).

La virulencia o capacidad intrínseca de un parasito puede causar una enfermedad

depende no solo de cada especie de parasito en particular, sino también de la raza

o las cepas o poblaciones del mismo (Gallegos, 2007).

2.13. INTERÉS SANITARIO

Las infestaciones parasitarias presentan variaciones tanto en su distribución y

cambios climáticos y actividades tanto animales como humanas, así como la

posibilidad de erradicar o controlar las mismas (OMS, 1981).

La zoonosis parasitaria experimenta constante adiciones, la cual menciono a

continuación:

1.- Variaciones en la relación agente/hospedador.

2.- Nuevas posibilidades de contacto entre ambos, facilitadores por la rapidez,

comunicaciones, la intromisión humana en focos naturales de infección, la

introducción de especies animales exóticas, en círculos humanos, la facilitación de

los contagios por modificaciones en los síntomas de producción animal.

3.- Mejora del conocimiento sobre las relaciones filogenético de los agentes y el

perfeccionamiento de la especificidad y sensibilidad de los métodos, diagnostico,

que permiten fijar, cada vez con más precisión.

Esta variabilidad es de gran importancia por lo que influye en las condiciones

ambientales de diversas zonas del mundo y las características socio económica

(Cordero, 2000).

2.14. DIAGNÓSTICO.

2.14.1. DIAGNOSTICO COPROPARASITARIO.

El diagnóstico de las heces fecales se basa en el diagnóstico de las heces fecales,

los métodos más utilizados, se detallan a continuación:

28

2.14.2. MÉTODO DE FLOTACIÓN.

Los métodos de flotación fecal se utilizan para separar los parásitos en todos sus

estadios (huevos, ooquistes, quistes o larvas), basados en sus diferentes

densidades. La densidad es el peso de un parásito otro objetivo por unidad de

volumen. La densidad (gravedad específica) de las diferentes soluciones está

determinada por la cantidad de sal o de azúcar que contienen (Virbac, 2005).

Para obtener un resultado preciso al realizar una flotación fecal, es necesario

utilizar la solución correcta. A continuación, se detalla el proceso de ambos

métodos utilizados:

a) Método de flotación salina

Es un método de uso común en la práctica veterinaria, por ser rápida, brindar

buenos resultados y de fácil preparación. También nos facilita la identificación de

protozoarios, nematodos y algunos cestodos, unos de los métodos complejos.

b) Método de flotación Azucarada

Es una de las técnicas que nos permite observar e identificara los helmintos, los

cual es una técnica limita. Al igual que la técnica anteriormente mencionada, es

fácil preparación y es rápida.

2.14.3. MÉTODO DE FROTIS DIRECTO.

Es un método que nos sirve para la identificación de un determinado parásito y nos

permite la observación y conocer el número de formas larvarias que se encuentra

en la muestra de heces.

Este método de diagnóstico parasitario es el más económico utilizado para realizar

análisis de laboratorio, se lo utiliza para identificar protozoarios intestinales,

larvas, quistes y huevos de parásitos.

2.14.4. MÉTODO DE SEDIMENTACIÓN.

Este método demuestra que es de mayor rendimiento en comparación del examen

directo y de sulfato de zinc, y es más eficiente en la determinación de quistes de

protozoos y huevos de helmintos intestinales (Claudia, 2008).

29

Este método nos permite hallar huevos y quistes de parásitos presentes en las

heces gracias a la soluciones de éter o solución salina.

30

III. MATERIALES Y MÉTODOS

3.1. CARACTERÍSTICAS DEL ÁREA DE ESTUDIO.

El trabajo de investigación se llevó a cabo en los cantones de la provincia del

Guayas; se describen a continuación:

Samborondón.- A 33 km. De Guayaquil se encuentra su cabecera cantonal, su

temperatura promedio es de 25°C y su precipitación promedio anual es de

1000mm.

Daule.- A 45 km de Guayaquil se encuentra su cabecera cantonal, su temperatura

promedio es de 24°C y una precipitación promedio anual de 1500mm.

Guayaquil.- Las temperaturas son estables, en general el día es cálido y pude

alcanzar temperaturas de 28-30°.

3.2. MATERIALES.

3.2.1. DE LABORATORIO.

3.2.1.1. Materiales y reactivos.

Guantes de exploración

Mandil

Portaobjetos

Cubreobjetos

Vasos de precipitación 100, 250 ml

Vasos plásticos desechables

Mortero

Gasa

Tubos de ensayo

Asa de platino

31

Pipeta Pasteur

Pipetas volumétricas 1, 5, 10 ml

Gradillas

Palillos de madera

Agua destilada

Solución salina 331 g

Solución azucarada 454 g

3.2.1.2. Equipos.

Hielera

Microscopio binocular

Cámara para microscopio

Balanza electrónica

3.2.2. DE OFICINA.

3.2.2.1. Materiales.

Hojas para impresora

Cuaderno de apuntes

Fundas plásticas

Esferográficos

Lápiz

Hojas de registro

Memoria USB

3.2.2.2. Equipos.

Cámara fotográfica

Impresora

Computadora

32

3.3. METODOLOGÍA DE TRABAJO

3.3.1. Tipo de investigación.

Se realizó un estudio de tipo no experimental, descriptivo, transversal

3.3.3.1. Población.

Conformada por caprinos de las UPAS incluidas en el proyecto (poner el nombre)

de la FMVYZ de la universidad de Guayaquil, donde se censaron un total de 351

cabras en 20 UPAS

3.3.3.2. Muestra.

Se realizó un muestreo dirigido por aspectos operativos, en donde se clasificaron las

UPAS de acuerdo al número de cabras en: pequeñas (1 a 10 caprinos), medianas (11 a

20 caprinos) y grandes (más de 20 caprinos); se colectaron muestras al 100 % de los

caprinos en las Upas pequeñas, al 50 % de caprinos en las UPAS medianas y al 25 %

de caprinos en las UPAS grandes, dando un total de 160 muestras que representa el

46 % del total de la población.

3.3.4. PROCEDIMIENTO.

Las muestras de heces se recolectó en horas de la mañana antes del que ganado

salga a ramonear, se recoge las heces en fundas estériles con identificación y

numero de muestra para su respectivo análisis en el laboratorio (Anexo.IV)

(Anexo,V)

Una vez recogida la muestra se las transporta en cadena de frio, hasta el

laboratorio. La muestra puede ser conservada hasta 3 días en refrigeración, ya que

de lo contrario, los parásitos no sobrevivirán.

33

Se tomó las muestras y se utilizó 4 métodos de las cuales los describo a

continuación:

3.3.4.1.1. MÉTODO DE FLOTACIÓN CON SOLUCIÓN SALINA

SATURADA.

Este método cualitativo es muy común en la práctica diagnostica veterinaria, se

obtienen buenos resultados, es fácil de preparar y se conserva por largo tiempo

(Koffoyd y Barber 2005).

Para preparar este tipo de método de flotación con solución salina saturada

debemos tener la siguiente concentración:

-Solución Salina Saturada:

Cloruro de sodio (NaCl) ………………………. 331 g.

Agua destilada ………………………….…... 1000 ml

Calentar a 50°C hasta disolver

El protocolo de método de flotación utilizado en este estudio fue

descrito por VIRBAC (2005) es el siguiente procedimiento:

1. Pesar de 2 a 5 gramos de la muestra de heces (usar el mortero si es

necesario homogenizar la misma).

2. Diluir la muestra previamente pesada en 20 ml.

3. Disolver las heces con una cuchara o varilla de vidrio.

4. Diluir y filtrar con un cedazo o colador, hasta observar la

homogenización de la muestra.

5. Verter en un tubo de ensayo.

34

6. Colocar una lámina cubre objetos y dejar reposar por un mínimo de

15 minutos y un máximo de 30.

7. Retirar cuidadosamente el cubreobjetos del tubo de ensayo junto con

la gota de fluido adherida.

8. Colocar el cubre objetos sobre un portaobjetos limpio.

9. Observar al microscopio.

Bowman (2010), sugiere que ‘‘a fin de evitar la omisión o el solapamiento

de algunos campos, iniciar el examen a lo largo de un borde del cubreobjetos

desde una esquina a la contraria. Desplazarse después al ancho de un campo y

continuar el examen’’. Se recomienda seguir esta sugerencia para todos los

métodos que requieran de observación microscópica.

3.3.4.1.2. MÉTODO DE FLOTACIÓN CON SOLUCIÓN AZUCARADA.

Esta solución se recomienda para el diagnóstico de helmintos (Koffoyd y Barber

2005).

Para preparar este tipo de método de flotación con solución azucarada debemos

tener la siguiente concentración:

-Solución Azucarada:

Solución Azucarada (Sheather)………………………. 454 g.

Agua destilada ………………………….…... 355 cc

Se realizó el método de flotación utilizando el siguiente

procedimiento descrito por VIRBAC (2005):

35

1. Pesar de 2 a 5 gramos de la muestra de heces (usar el mortero si es

necesario homogenizar la misma).

2. Diluir la muestra previamente pesada en 20 ml.

3. Disolver las heces con una cuchara o varilla de vidrio.

4. Diluir y filtrar con un cedazo o colador, hasta observar la

homogenización de la muestra.

5. Verter en un tubo de ensayo.

6. Colocar una lámina cubre objetos y dejar reposar por 30 minutos.

7. Retirar cuidadosamente el cubreobjetos del tubo de ensayo junto con

la gota de fluido adherida.

8. Colocar el cubre objetos sobre un portaobjetos limpio.

9. Observar al microscopio.

3.3.4.1.3. MÉTODO DE SEDIMENTACIÓN SIMPLE.

Este método se siguió el siguiente procedimiento por Bowman (2010):

1. Mezclar en un vaso de precipitación, 10 g de heces con 10 ml agua.

2. Pasar la suspensión por el cedazo o colador.

3. Centrifugar durante 3 minutos a 1500 – 2000 rpm.

4. Desechar el sobrenadante.

5. Repetir los pasos 4 veces hasta que el sobrenadante esté claro.

6. Agitar el sedimento con ayuda de una varilla de vidrio.

7. Centrifugar durante 1 minuto a 2000 rpm.

8. Decantar el sobrenadante.

36

9. Agregar una gota de lugol en el portaobjeto.

10. Observar directamente al microscopio sin colocar una laminilla

cubreobjeto.

3.4.4.1.4. Método de Frotis Directo

El método tienes su sencillez y rapidez para llevarlo a cabo y muy utilizado en el

diagnóstico de los protozoarios intestinales. Procedimiento (Virbac, 2005):

1. en el portaobjeto se coloca, por separado, una gota de solución salina o

lugol.

2. Se toma una muestra de 4mg de heces, y se mezcla con la solución salina.

3. Se retira fibras y otros fragmentos gruesos.

4. Se coloca el cubre objeto.

5. Se observa al microscopio.

3.3.3.2. ANÁLISIS ESTADÍSTICO.

El análisis estadístico fue de tipo descriptivo, para evaluar los datos, se utilizó el

método porcentual para determinar en porcentaje el número de animales positivos

o negativos con la siguiente la fórmula:

PREVALENCIA =

x 100

El procesamiento y consolidación de la información se realizó a través del

programa Epi Info (CDC). El análisis estadístico de resultados incluyó la

evaluación de las variables independientes y su relación con la presencia de

parásitos. Se empleó el test de X2 y diferencia de dos proporciones en el

tratamiento de variables cualitativas.

37

IV. RESULTADOS EXPERIMENTALES

4.1 Identificación los parásitos gastrointestinales

En la tabla 1 se presenta la prevalencia de parásitos, de acuerdo a la especia de

helmintos. Entre los cestodos M. expanza (57,7%), y entre los nematodos Coperia

spp (28,6%), H. contortus (15,4%), Oesophagostomun sp (13,7%), T. axei

(11,5%), Strongyloides sp (10,4%), T. ovis (6,6%), C. ovina (5,5%), Bunostomun

sp (4,4%), O. ostertagi (0,0%), Nematodirus sp. (0,0%) y Eimeria sp. (0,0%).

Tabla 1. Prevalencia por helmintos en caprinos de los cantones Guayaquil,

Samborondom y Daule.

PARASITO #

ANIMALES POSITIVOS

PREVALENCIA

Haemonchus contortus 28 15,4

Eimeria spp. 0 0,0

Monienza expanza 105 57,7

Strongyloides spp. 19 10,4

Nematodirus spp. 0 0,0

Bunostomun spp. 8 4,4

Cooperia spp. 52 28,6

Chabertia ovina 10 5,5

Oesophagostomun spp. 25 13,7

Ostertagia ostertagi 0 0,0

Trichuris ovis 12 6,6

Trichostrongylus axei 21 11,5

38

En la Tabla 2, se presenta las asociaciones parasitarias. La más frecuentes fue el

monoparasitismo (52,5%), la especie predominante fue M. expanza (15,4%),

seguido con el biparasitismo (40,2%), cooperia – M. expanza (8.8%).

Tabla2. Asociación parasitaria por helmintos en caprinos de los cantones

Guayaquil, Samborondom y Daule.

MONOPARASITISMO frecuencia %

Bunostomun spp. 3 1,6

Chabertia ovina 7 3,8

Cooperia spp. 20 11,0

Eimeria spp 0 0,0

Haemonchus contortus 7 3,8

Monienza expanza 28 15,4

Nematodirus sp. 0 0,0

Oesophagostomun spp. 9 4,9

Ostertagia ostertagi 0 0,0

Strongyloides spp. 14 7,7

Trichostrongylus axei 3 1,6

Trichuris ovis 5 2,7

BIPARASITISMO

Cooperia spp. - Monienza expanza 16 8,8

Haemonchus contortus - Monienza expanza 15 8,2

Oesophagostomun spp. - Monienza expanza 15 8,2

Trichostrongylus axei - Monienza expanza 5 2,7

Trichuris ovis - Monienza expanza 5 2,7

Trichostrongylus axei - Cooperia spp. 4 2,2

Bunostomun spp. - Monienza expanza 4 2,2

Strongyloides spp. - Monienza epanza 3 1,6

Chabertia ovina - Monienza expanza 2 1,1

Cooperia spp. - Trichuris ovis 1 0,5

15.4 0.0

57.7 10.4

0.0 4.4

28.6 5.5

13.7 0.0

6.6 11.5

0 10 20 30 40 50 60 70

Haemonchus contortus

Monienza expanza

Nematodirus sp.

Cooperia sp.

Oesophagostomun sp.

Trichuris ovis

PREVALENCIA POR ESPECIE DE PARASITO

39

Haemonchus contortus - Strongyloides sp. 1 0,5

Haemonchus contortus - Oesophagostomun spp. 1 0,5

Haemonchus contortus - Bunostomun spp. 1 0,5

Trichuris ovis - Chabertia ovina 1 0,5

TRIPARASITISMO

Trichostrongylus axei - Cooperia spp. - Monienza expanza 8 4,4

Haemonchus contortus - Cooperia spp. - Monienza expanza 2 1,1

Strongyloides spp - Cooperia spp. - Monienza expanza 1 0,5

TETRAPARASITISMO

Haemonchus contortus - Trichostrongylus axei - Cooperia spp. - Monienza expanza 1 0,5

4.2 DETERMINAR LA PREVALENCIA DE PARASITOSIS EN

CAPRINOS POR GRUPO ETÁREO.

En la tabla 3, se presenta la prevalencia de parásitos por grupos etareos. Se puede

observar que de 1 – 4 años es el mayor nivel parasitario, una de la especie con más

prevalencia es la Monienza expanza, sigue cooperia spp.

Tabla 3. Prevalencia de parasitosis por grupo etareos.

Especie de parásitos < 1 año 1 a 2 años 3 a 4 años 5 a 6 años 7 años o mas

Haemonchus contortus 0 14 13 1 0

Ostertagia ostertagi 0 0 0 0 0

Trichostrongylus axei 0 8 12 1 0

Cooperia spp 9 23 19 1 0

Trichuris ovis 0 6 4 2 0

Bunostomun spp. 0 1 5 1 1

Nematodirus spp. 0 0 0 0 0

Strongyloides spp. 1 10 6 2 0

Chabertia ovina 0 4 6 0 0

Oesophagostomun spp. 0 11 12 2 0

Monienza expanza 7 48 43 6 1

Eimeria spp. 0 0 0 0 0

40

4.3 DETERMINAR LA PREVALENCIA DE PARÁSITOS EN

CAPRINOS POR SEXO.

En la Tabla 4, se presenta le prevalencia por sexo, como se observa el mayor rango

lo obtienen las hembras, Monieza expanza como el de mayor rango parasitario en

hembras, sigue cooperia spp, Haemanchus contortus, Trichostrongylus axei,

Trichuris ovis. El de mayor rango parasitario en machos es la monienza expanza.

Tabla 4. Prevalencia de parásitos caprinos por sexo.

Especie de parásitos Macho Hembra

Haemonchus contortus 0 28

Ostertagia ostertagi 0 0

Trichostrongylus axei 1 19

Cooperia spp. 5 44

Trichuris ovis 2 10

Bunostomun spp. 0 8

Nematodirus spp. 0 0

Strongyloides spp. 2 14

Chabertia ovina 2 6

Oesophagostomun spp. 0 25

Monienza expanza 10 93

Eimeria spp. 0 0

41

V. Discusión

De los 182 muestras analizadas en el laboratorio se determinó con mayor número

de prevalencia los parasitos de Monieza expanza, Cooperia spp., Haemonchus

contortus, Oesophagostomun spp., Trichostrongylus spp., y Strongyloides spp., de

los cuales Monienza expanza fue el de mayor porcentaje, debido, a la falta de

aplicación de un plan sanitario. Y con menor prevalencia tenemos Trichuris ovis,

Chabertia ovina, Bunostomun spp. Asi mismo, Nieto y Isakovich (2005) señalan

que los endoparásitos que atacan a los caprinos son principalmente helmintos y

protozoos y son muy susceptibles a la infestación de múltiples especies de

parásitos’’, también mencionan que el 90% de las cabras hospedan lombrices en

sus intestinos. Por lo cual, el alto porcentaje de parasitismo en cabras se debe a su

rusticidad y por la falta de manejo tecnico adecuado que el propietario le brinda. A

pesar de un deficiente plan sanitario, no se encontró la presencia de Eimeria spp.

Considerado como especie zoonosica.

Con respecto al sexo, el presente estudio se determinó un total de 91,76% en

hembras infectadas y en machos el 8,24%, hembras. En referencia a ello, en

estudios realizados en ovinos de la provincia de Chimborazo por Cabrera (2007),

42

encontró parasitosis gastrointestinal de la especie nemátodo en un porcentaje de

28% en machos y 23% en hembras. Estos resultados podrían variar dependiendo

de la repuesta inmune tanto en machos y hembras.

Por otro lado, en referencia a la edad, Colina et al., (2013) menciona que los

rumiantes se parasitan con mayor frecuencia entre 1 y 3 años de edad. En este

trabajo, se encontró resultados similares, ya que los animales de entre 1-4 años

fueron los más parasitados. Lo que significa que las cabras de esta edad podrían

ser más propensos a parasitosis.

VI. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES

De la presente propuesta de investigación se concluye y se recomienda lo

siguiente:

6.1. CONCLUSIONES

6.1.1 Todas las cabras estudiadas presentan alto grado de parasitosis en Guayaquil,

Daule y Samborondom.

6.1.2. Las muestras procedentes de cabras hembras presentan mayor número

positivos.

6.1.3. Los animales de 1 – 4 años presentan mayor riesgo parasitario.

6.1.4. Los parásitos de mayor prevalencia son de la especie Monienza expanza y

Cooperia spp.

6.2. RECOMENDACIONES

6.2.1. Realizar más investigaciones similares acerca de los parásitos

gastrointestinales en caprinos.

43

6.2.2. Realizar medidas de control y prevención con el fin de combatir las

parasitosis gastrointestinales en animales.

6.2.3. Informar a las autoridades competentes sobre los resultados obtenidos del

presente trabajo.

6.2.4. Fomentar programas para la prevención y control de los parásitos

gastrointestinales.

VII. RESUMEN

La parasitosis en las diferentes explotaciones pecuarias es muy común, existen

parásitos internos y externos que pueden llegar a provocar grandes daños y

perjuicios tanto en estado productivo como económico. Las diferentes especies de

parásitos que pueden afectar el ganado caprino son varios, lo que el caprino al ser

resistentes a enfermedades lo hace rustico y se obtiene una gran prevalencia de

parásitos y en condiciones poco favorable podemos ver el alto grado parasitario.

Los síntomas que más se presentan por esta enfermedad son el adelgazamiento y

pérdida del estado general de los animales (pérdida de peso, decaimiento,

inapetencia, etc.). El objetivo del presente trabajo es determinar la prevalencia de

parásitos gastrointestinales e identificar las diferentes especies de parásitos que

afectan al ganado caprino. El estudio se llevó a cabo en los cantones de Guayaquil,

Samborondón y Daule, en las cuales se procedió a la toma 182 de muestras en total

de los tres cantones, para su posterior análisis coproparasitario en el laboratorio.

En el cantón Daule es donde la que mayor porcentaje de parásitos se encontraron,

siendo mayor la especie Nematoda y Platyhelminthes. En referencia a la edad, los

animales más afectados fueron de 1 – 2 años, y de acuerdo al sexo las hembras

presentaron más parásitos que los machos. Por lo que concluimos que, el índice de

44

parásitos en caprinos son altos en las unidades de producción estudiadas, por lo

cual, un buen manejo sanitario, control y seguimientos de enfermedades debería

evitarse para evitar el alto índice parasitario.

Palabras Claves: Parasitosis, parásitos, Manejo sanitario, Unidades de

producción.

VIII. SUMMARY

The parasites in the different livestock farms is very common, there are internal and

external parasites that can provoke great damages both in production and economic

status. Different species of parasites that can affect goats are several, so the goat to be

resistant to diseases makes rustic and a high prevalence of parasites is obtained in

unfavorable conditions and can see the parasitic high degree. The symptoms that

occur with this disease are thinning and loss of general state of the animals (weight

loss, weakness, loss of appetite, etc.). The aim of this study is to determine the

prevalence of gastrointestinal parasites and identify different species of parasites that

affect goats. The study was carried out in the cantons of Guayaquil, Samborondón

and Daule, where they proceeded to take 182 samples in total of the three cantons

coproparasitario for subsequent laboratory analysis. In the canton Daule it is where

the highest percentage of parasites were found, with larger species Nematoda and

Platyhelminthes. In reference to age, the most affected animals were 1-2 years,

45

according to sex females had more parasites than males. So we conclude that the rate

of parasites in goats are high in the production units studied, therefore, a good health

management, control and monitoring of diseases should be avoided to avoid high

parasitic index.

Key words: Parasitosis, parasitic Species, sanitary Managing, experimental Units

(U.E.).

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47

Navone, G. T., Gamboa, M. I., Kozubsky, L. E., Costas, M. E., Cardozo, M. S.,

Sisliauskas, M. N., & González, M. (2005). Estudio comparativo de

recuperación de formas parasitarias por tres diferentes métodos de

enriquecimiento coproparasitológico. Parasitología latinoamericana, 60(3-

4), 178-181. Recuperado el 18 de Enero de 2015, de

http://www.scielo.cl/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S0717-

77122005000200014&lang=es

Nieto, S. O., & Isakovich, J. (2005). Enfermedades más comunes en caprinos y

ovinos. En I. N. Agriicolas, Manual de produccioon de ovinos y caprinos.

Venezuela: INIA. Recuperado el 19 de Enero de 2015, de

http://www.fundacite-

zulia.gob.ve/download/Manual_de_produccion_ovino_y_caprino.pdf

Organización Mundial de la Salud [OMS]. (1981). Infecciones intestinales por

protozoos y helmintos. Suiza: OMS. Recuperado el 20 de agosto de 2014,

de http://whqlibdoc.who.int/trs/WHO_TRS_666_(part1)_spa.pdf

Pala, L. P. (2011). Determinación de los tiempos de reinfestación de las cargas

parasitarias (parásitos pulmonares, gastrointestinales y hepáticos), en

ovinos de la estación de Altura Moyocancha ubicada a 3600 msnm

perteneciente a la ESPOCH. Tesis de Grado, Escuela Superior Politécnica

de Chimborazo. Facultad de Ciencias Pecuarias. Escuela de Ingeniería

Zootécnica, Riobamba, Ecuador. Recuperado el 19 de Enero de 2015, de


Quiroz, H. (1990). Parasitología. México: Limusa, S.A. de C.V.

Valcárcel, F. (2010). Atlas de parasitología ovina. España: Servet.

Vallat, B. (2014). Los ganaderos son actores clave en la lucha contra las

zoonosis. Recuperado el 19 de agosto de 2014, de Albéitar Portal

Veterinaria: http://albeitar.portalveterinaria.com/noticia/13025/La-firma-

48

invitada/Los-ganaderos-son-actores-clave-en-la-lucha-contra-las-

zoonosis.htm

49

X. ANEXO

ANEXO 1. HUEVO DE NEMALTELMINTOS GASTROINTESTINALES EN

CAPRINOS LO MAS COMUNES EN NUESTRO MEDIO.

Haemonchus contortus

Ostertegia ostertagi

Trichostrongylus sp.

Cooperia sp.

50

Bunostomun sp.

Nematodirus sp.

Strongyloides sp.

Chabertia ovina

Oesophagostomum sp.

51

Trichuris sp.

Elaborado por: Autor.

Fuente: Cahuana, 2007

ANEXO II. HUEVO DE PLANTELMINTOS GASTROINTESTINALES EN

CAPRINOS LO MAS COMUNES EN NUESTRO MEDIO.

Moniezia

expansa

Elaborado por: Autor.

Fuente: Castillo, 2013

52

ANEXO III. HUEVO DE PROTOZOO GASTROINTESTINALES EN

CAPRINOS MÁS COMUNES EN NUESTRO MEDIO.

Eimeria arloinji

Eimeria faurei

Eimeria girluthi

Eimeria caprovina

Elaborado por: Autoro.

Fuente : Jaboticabal, 2012.

53

ANEXO IV. HOJA DE REGISTRO DE CAPO.



HOJA DE REGISTRO DE TRABAJO DE CAMPO

PROYECTO CABRAS CAPACITACIONES PBO DIPA

Provincia: Guayas Cantón: Daule

Numero de UPA 1 Recinto: Los Limos

Clasificación de

UPA Mediana Propietario: Jaime Gordillo Veliz

Ubicación GPS Teléfonos:

Cantidad de

animales 20

Tipo de alimentación del ganado Pastoreo Libre

Como el ganado se abastece de agua Canal cercano de agua

Frecuencia de abortos no

Frecuencia de muerte post parto del cabrito No

Frecuencia de animales estériles No

Problemas más frecuentes Problemas podales

Plan de vacunación No

Plan de desparasitación No

Plan sanitario de corral No

Aplicación de vitaminas No

Características del corral Caña, piso tierra, una parte con techado de zinc

Dimensiones del corral 5 x 6 m.

Observación sanitaria del corral Regular

Presencia de vectores biológicos Si

Motivo de los animales Venta

Tiempo en esta actividad 5 años

Ordeña a las cabras y cuantas veces No

Ustedes consume leche de cabra, por qué? No

Fecha de muestreo: 27 de Septiembre del 2014

#

Anima

l

Condicione

s de animal Edad

: Sexo

: Raza:

Estado

de

mucosa

s

Observaciones

:

1 Buena 1 H

mestiz

a

Norma

l

2 Buena 4 H

mestiz

a

Norma

l

3 Buena 4 H

mestiz

a

Norma

l

4 Regular 2 H mestiz Norma

54

Reyes Aguayo, T.A. 2016. Trabajo de titulación.

a l

5 Buena 3 H

mestiz

a

Norma

l

6 Buena 4 H

mestiz

a Pálidas

7 Buena 4 H

mestiz

a

Norma

l

8 Buena 3 H

mestiz

a

Norma

l

9 Regular -1 H

mestiz

a

Norma

l

10 Buena 2 H

mestiz

a

Norma

l

55







Clasificación de

UPA Mediana Propietario: Ángel Gabriel

Gordillo

Ubicación GPS Teléfonos: Cantidad de

animales 20


Como el ganado se abastece de agua Canal cercano de agua Frecuencia de abortos No Frecuencia de muerte post parto del cabrito No Frecuencia de animales estériles No Problemas más frecuentes Perros que matan a las cabras

Plan de vacunación No Plan de desparasitación No Plan sanitario de corral Limpieza cada seis meses Aplicación de vitaminas No Características del corral Caña, piso tierra, una parte con techado de zinc

Dimensiones del corral 5 x 4 m. Observación sanitaria del corral Regular Presencia de vectores biológicos No

Motivo de los animales Venta Tiempo en esta actividad 5 años

Ordeña a las cabras y cuantas veces No Ustedes consume leche de cabra, por qué? No Fecha de muestreo: 27 de Septiembre del 2014


#

Anima

l

Condicione

s de animal Edad

: Sexo

: Raza:

Estado

de

mucosas

Observacione

s:

11 Buena 3 H mestiza Normal



14 Buena 3 H mestiza Pálidas






20 Buena 1 H mestiza

Normal

56







Clasificación de

UPA

Mediana Propietario: Manuel Cercado

Gordillo

Ubicación GPS Teléfonos: 0969969524

Cantidad de

animales

32




Frecuencia de muerte post parto del

cabrito

De repente por mal manejo


Problemas más frecuentes Perros que matan las cabras



Plan sanitario de corral Cada mes

Aplicación de vitaminas Si 1 vez al año

Características del corral Cerca de Caña, piso de tierra, techado de zinc


Observación sanitaria del corral Bueno

Presencia de vectores biológicos Si (garrapata)



Ordeña a las cabras y cuantas veces Solo de ordeñan cuando vienen niños a pedir para la

tos



#

Anima

l

Condicione

s de animal

Edad

:

Sexo

: Raza:

Estado

de

mucosa

s

Observaciones

:

21 Regular 3 H

mestiz

a Pálidas

22 Regular 2 H

mestiz

a Pálidas

23 Regular 2 H

mestiz

a Pálidas

24 Buena 3 H

mestiz

a Pálidas

25 Buena 3 H

mestiz

a Normal

26 Regular 3 H

mestiz

a Normal

27 Buena 2 H

mestiz

a Normal

28 Normal 2 H

mestiz

a Normal

57


29 Normal 4 H

mestiz

a Normal

30 Regular 6 H

mestiz

a Normal

31 Regular 2 H

mestiz

a Pálidas

32 Regular 3 H

mestiz

a Pálidas

33 Regular 5 H

mestiz

a Normal

34 Normal 2 H

mestiz

a Pálidas

35 Regular 3 H

mestiz

a Normal

58







Clasificación de

UPA

Grande Propietario: Douglas Medina Sesma


Cantidad de

animales

110





cabrito

No














Ustedes consume leche de cabra, por qué? De vez en cuando, cuando tienen tos


#

Anima

l

Condicione

s de animal

Edad

:

Sexo

: Raza:

Estado

de

mucosa

s

Observaciones

:

36 Normal

-1 M

Mestiz

a

Normal

37 Buena

-1 M

Mestiz

a

Normal

38 Buena

-1 H

Mestiz

a

Normal

39 Regular

1 H

Mestiz

a

Normal

40 Normal

2 H

Mestiz

a

Normal

41 Normal

3 H

Mestiz

a

Normal

42 Normal 4 H Mestiz Normal

59

#

Animal

Condiciones

de animal Edad: Sexo: Raza:

Estado

de

mucosas

Observaciones:

48 Normal 2 H Mestiza Normal

49 Normal 3 H Mestiza Buena


51 Normal 2 H Mestiza Regular

52 Regular 2 H Mestiza Normal

53 Buena -1 H Mestiza Normal


55 Buena 4 H Mestiza Normal







62 Normal -1 H Mestiza Normal



















a

43 Normal

2 H

Mestiz

a

Normal

44 Normal

2 H

Mestiz

a

Normal

45 Normal

2 H

Mestiz

a

Normal

46 Normal

4 H

Mestiz

a

Normal

47 Normal

2 H

Mestiz

a

Normal

60







Reyes Aguayo, T.A. 2016. Trabajo de titulación

61






Numero de UPA 5 Recinto: Las Mercedes

Clasificación de

UPA

Mediana Propietario: Elvis Alvarado Zúñiga


Cantidad de

animales

14



Frecuencia de abortos No


cabrito

No


Problemas más frecuentes Perros depredadores



Plan sanitario de corral Una vez al año limpieza

Aplicación de vitaminas Si

Características del corral Caña, piso de tierra, techado de zinc



Presencia de vectores biológicos Si garrapatas







#

Anima

l

Condicione

s de animal

Edad

:

Sexo

:

Raza: Estado

de

mucosa

s

Observaciones

:

87 Buena 3 H

mestiz

a Normal

88 Buena 4 H

mestiz

a Normal

89 Buena 2 H

mestiz

a Pálidas

90 Buena 4 H

mestiz

a Pálidas

91 Buena 1 H

mestiz

a Pálidas

92 Buena 2 H

mestiz

a Normal

93 Buena 2 M

mestiz

a Normal

62






Numero de UPA 6 Recinto: Tierra Blanca

Clasificación de

UPA

Pequeña Propietario: José Luis Campuzano


Cantidad de

animales

6


Como el ganado se abastece de agua Agua Potable



cabrito

No





Plan sanitario de corral Cada ocho días


Características del corral madera, piso tierra, una parte con techado de zinc


Observación sanitaria del corral Buena

Presencia de vectores biológicos No

Motivo de los animales Venta y consumo



Ustedes consume leche de cabra, por qué? Si porque tiene más nutrientes



#

Anima

l

Condicione

s de animal Edad

: Sexo

: Raza:

Estado

de

mucosa

s

Observaciones

:

94 Regular 3 H

mestiz

a Normal

95 Normal 3 H

mestiz

a Normal

96 Buena -1 H

mestiz

a Normal

97 Buena -1 H

mestiz

a Normal

98 Buena -1 H

mestiz

a Normal

99 Buena 1 M

mestiz

a Normal

63



HOJA DE REGISTRO DE TRABAJO DE CAMPOPROYECTO

CABRAS CAPACITACIONES PBO DIPA


Numero de UPA 7 Recinto: Tierra Blanca

Clasificación de

UPA

Pequeña Propietario: Carlos Eugenio

Campuzano


Cantidad de

animales

6


Como el ganado se abastece de agua Agua Potable



cabrito

No





Plan sanitario de corral Cada ocho días


Características del corral madera, piso tierra, una parte con techado de zinc




Motivo de los animales Venta y consumo



Ustedes consume leche de cabra, por qué? Si porque tiene más nutrientes

Fecha de muestreo: 3 de Octubre del 2014


#

Anima

l

Condicione

s de animal

Edad

:

Sexo

: Raza:

Estado

de

mucosa

s

Observaciones

:

100 Regular 3 H

mestiz

a Normal

101 Normal 3 H

mestiz

a Normal

102 Buena -1 H

mestiz

a Normal

103 Buena -1 H

mestiz

a Normal

104 Buena -1 H

mestiz

a Normal

105 Buena 1 M

mestiz

a Normal

64






Numero de UPA 8 Recinto: Sta. Barbara

Clasificación de

UPA

Grande Propietario: Darío Morán Dominguez


Cantidad de

animales

30





cabrito

No







Características del corral Cerca de Caña, piso de tierra, con techado de zinc









#

Anima

l

Condicione

s de animal

Edad

:

Sexo

:

Raza: Estado

de

mucosa

s

Observaciones

:

106 Regular 10 H

mestiz

a Pálidas

107 Regular 3 H

mestiz

a Normal

108 Regular 5 H

mestiz

a Normal

109 Buena 4 H

mestiz

a Normal

110 Buena -1 H

mestiz

a Normal

111 Regular 4 H

mestiz

a Normal

112 Buena 4 H

mestiz

a Normal

65


113 Regular 4 H

mestiz

a Normal

114 Buena 1 M

mestiz

a Normal

115 Buena 2 H

mestiz

a Normal

116 Buena 2 H

mestiz

a Normal

117 Buena 3 H

mestiz

a Normal

118 Regular 4 H

mestiz

a Normal

119 Buena 1 H

mestiz

a Normal

120 Buena 3 H

mestiz

a Normal

66






Numero de UPA 9 Recinto: La Condensa

Clasificación de

UPA

Pequeña Propietario: Pedro Raúl Medina


Cantidad de

animales

11


Como el ganado se abastece de agua Agua potable



cabrito

No







Características del corral Malla metálica, con techado de zinc





Tiempo en esta actividad 1 año



Fecha de muestreo: 3 de octubre del 2014


#

Anima

l

Condicione

s de animal

Edad

:

Sexo

: Raza:

Estado

de

mucosa

s

Observaciones

:





125 Buena 2 H

Mestiz

a Normal

126 Buena 2 H

Mestiz

a Normal

67





Provincia: Guayas Cantón: Guayaquil

Numero de UPA 10 Recinto: La Germania

Clasificación de

UPA

Mediana Propietario: Marco Contreras


Cantidad de

animales

30





cabrito

No


Problemas más frecuentes No


Plan de desparasitación Si



Características del corral Cerca de Caña, piso de tierra, parte con techado de

zinc









#

Anima

l

Condicione

s de animal

Edad

:

Sexo

: Raza:

Estado

de

mucosa

s

Observaciones

:

127 Regular 1 H

mestiz

a Normal

128 Buena 2 H

mestiz

a Normal

129 Buena 3 H

mestiz

a Normal

130 Buena 5 H mestiz Normal

68







Numero de UPA 11 Recinto: La ladrillera

Clasificación de

UPA

Grande Propietario: Avelino Aguayo


Cantidad de

animales

35

Tipo de alimentación del ganado Desecho de vegetales




cabrito

No


Problemas más frecuentes Diarreas





Características del corral Cerca de Caña, piso de tierra, una parte con techado de

zinc




Motivo de los animales Comercial venta de leche


Ordeña a las cabras y cuantas veces Si, una vez a la semana

Ustedes consume leche de cabra, por qué? Si porque es nutritiva

a

131 Buena 5 H

mestiz

a Normal

132 Regular 6 H

mestiz

a Normal

133 Buena 6 H

mestiz

a Normal

69

Fecha de muestreo: 13 /dic/2015



#

Anima

l

Condicione

s de animal

Edad

:

Sexo

: Raza:

Estado

de

mucosa

s

Observaciones

:

134 Buena 3 H

mestiz

a Normal

135 Regular 3 H

mestiz

a Normal

136 Buena 2 H

mestiz

a Normal

137 Regular 1 H

mestiz

a Normal

138 Regular 2 M

mestiz

a Normal

139 Regular 2 M

mestiz

a Normal

140 Regular 2 M

mestiz

a Normal

141 Regular 4 H

mestiz

a Pálidas

142 Regular 3 H

mestiz

a Normal

143 Regular 4 H

mestiz

a Pálidas

145 Regular 3 H

mestiz

a Pálidas

70






Numero de UPA 12 Recinto: Bejuco Pietro

Clasificación de

UPA

Pequeña Propietario: Edison Abelardo

Calderon


Cantidad de

animales

8





cabrito

No






Aplicación de vitaminas Si (2 veces al año)

Características del corral Cerca de Caña, piso de tierra, techo de madera






Ordeña a las cabras y cuantas veces Si de vez en cuando

Ustedes consume leche de cabra, por qué? Si porque es nutritiva



#

Anima

l

Condicione

s de animal

Edad

:

Sexo

: Raza:

Estado

de

mucosa

s

Observaciones

:

146 Regular 5 H

mestiz

a Pálidas

147 Regular 2 H

mestiz

a Normal

148 Regular 2 H

mestiz

a Normal

71





Provincia: Guayas Cantón: Samborondom

Numero de UPA 13 Recinto: Bellavista

Clasificación de

UPA

Pequeña Propietario: Martha Irene Fariño

Ubicación GPS Teléfonos: -

Cantidad de

animales

10

Tipo de alimentación del ganado Maíz, Pastoreo Libre




cabrito

No


Problemas más frecuentes Mastitis


Plan de desparasitación Si cada 6 meses

Plan sanitario de corral Si varios días a la semana

Aplicación de vitaminas Si complejo b

Características del corral Malla metálica, piso tierra, con techado de zinc


Observación sanitaria del corral Bueno


Motivo de los animales Venta de leche


Ordeña a las cabras y cuantas veces Si depende de cuantas veces venda la leche

Ustedes consume leche de cabra, por

qué?

Si porque es saludable


Reyes Aguayo, T.A. 2016. Trabajo de titulación

#

Anima

l

Condicione

s de animal

Edad

:

Sexo

:

Raza: Estado

de

mucosa

s

Observaciones

:

149 Buena 3 H

mestiz

a Normal

150 Buena 6 H

mestiz

a Normal

151 Regular 7 H

mestiz

a Normal

152 Regular 6 H

mestiz

a Normal

72





Provincia: Guayas Cantón: Samborondón

Numero de UPA 14 Recinto: San Matías

Clasificación de

UPA

Mediana Propietario: Magno Rodriguez


Cantidad de

animales

26 14 Grande 12 pequeños

Tipo de alimentación del ganado Panca de arroz




cabrito

Año 2014




Plan de desparasitación Una vez al año

Plan sanitario de corral Limpieza mensual

Aplicación de vitaminas Si (hierro)


Dimensiones del corral 4 x3 m.


Presencia de vectores biológicos Si (piojo)

Motivo de los animales Venta comercial






#

Anima

l

Condicione

s de animal

Edad

:

Sexo

: Raza:

Estado

de

mucosa

s

Observaciones

:

153

Regular

2 H

Mestiz

a Buena

154

Normal

4 H

Mestiz

a Buena

155

Regular

5 H

Mestiz

a Regular

156

Normal

2 H

Mestiz

a Buena

157

Regular

4 H

Mestiz

a Regular

158

Normal

1 H

Mestiz

a Regular

73






Numero de UPA 15 Recinto: La sequita

Clasificación de

UPA

Pequena Propietario: Juana maria peñafiel


Cantidad de

animales






cabrito

Año 2014

















#

Anima

l

Condicione

s de animal

Edad

:

Sexo

: Raza:

Estado

de

mucosa

s

Observaciones

:

159

Regular

2 H

Mestiz

a Buena

160

Normal

4 H

Mestiz

a Buena

161

Regular

5 H

Mestiz

a Regular

162

Normal

2 H

Mestiz

a Buena

163

Regular

4 H

Mestiz

a Regular

74






Numero de UPA 16 Recinto: Entrada a la Barranca

Clasificación de

UPA

pequena Propietario: Vicenta Calderon

Vargas


Cantidad de

animales






cabrito

2014

















#

Anima

l

Condicione

s de animal

Edad

:

Sexo

: Raza:

Estado

de

mucosa

s

Observaciones

:

164

Regular

2 H

Mestiz

a Buena

165

Normal

4 H

Mestiz

a Buena

166

Regular

5 H

Mestiz

a Regular

75






Numero de UPA 17 Recinto: San Lorenzo

Clasificación de

UPA

pequeña Propietario: Oswaldo Torres

Rodriguez


Cantidad de

animales

6 14 Grande 12

pequeños





cabrito

2014

















#

Anima

l

Condicione

s de animal

Edad

:

Sexo

: Raza:

Estado

de

mucosa

s

Observaciones

:

167

Regular

2 H

Mestiz

a Buena

168

Normal

4 H

Mestiz

a Buena

169

Regular

5 H

Mestiz

a Regular

76






Numero de UPA 18 Recinto: Entrada a la Barranca

Clasificación de

UPA

Pequeña Propietario: Mora Medina Johana


Cantidad de

animales






cabrito

no

















#

Anima

l

Condicione

s de animal

Edad

:

Sexo

: Raza:

Estado

de

mucosa

s

Observaciones

:

170

Regular

2 M

Mestiz

a Buena

171

Normal

4 M

Mestiz

a Buena

172

Regular

5 M

Mestiz

a Regular

77






Numero de UPA 19 Recinto: Ladrillera

Clasificación de

UPA

Pequeña Propietario: Magno Rodriguez


Cantidad de

animales

10 5 grandes 5 pequeñas





cabrito

No















Fecha de muestreo: 7 de noviembre del 2014


#

Anima

l

Condicione

s de animal

Edad

:

Sexo

: Raza:

Estado

de

mucosa

s

Observaciones

:

173

Regular

2 H

Mestiz

a Buena

174

Normal

4 H

Mestiz

a Buena

175

Regular

5 H

Mestiz

a Regular

176

Normal

2 H

Mestiz

a Buena

177

Regular

4 H

Mestiz

a Regular

78






Numero de UPA 20 Recinto: San Matías

Clasificación de

UPA

Mediana Propietario: Magno Rodriguez


Cantidad de

animales






cabrito

no






Aplicación de vitaminas no











#

Anima

l

Condicione

s de animal

Edad

:

Sexo

: Raza:

Estado

de

mucosa

s

Observaciones

:

178

Regular

2 H

Mestiz

a Buena

179

Normal

4 H

Mestiz

a Buena

180

Regular

5 H

Mestiz

a Regular

181

Normal

2 H

Mestiz

a Buena

182

Regular

4 H

Mestiz

a Regular

79

ANEXO V. HOJA DE REGISTRO DE LABORATORIO.

82

HOJA DE LABORATORIO: ANÁLISIS EN EL LABORATORIO

UPA 1 FECHA RECOLECCIÓN 27 de Septiembre del 2014

PROPIETARIO Jaime Gordillo Veliz FECHA DE ANÁLISIS 29 de Septiembre del 2014

UBICACIÓN Los Limos HORA DE ANÁLISIS 9h30 – 13h00

Numero

de

muestra

Consistencia

Método

Directo

Método

De

Sedimentación

Método de

flotación con

agua azucarada

Método de

flotación

con sol. Sal

Nematodos Protozoario Cestodos

1 Dura

X X

X Cooperia sp

Monienza

Expansa

2 Dura X X X Cooperia sp

3 Dura

X X

X

Monienza

Expansa

4 Dura

X X

X

Haemonchus

contortos

Monienza

Expansa

5 Dura

X X

x X

Haemonchus

contortos

Monienza

Expansa

6 Dura

X X

X

Strongyloides

papillosus

7 Dura

X

X

Strongyloides

papillosus

8 Dura X X Cooperia sp

9 dura X X Monienza

83

Expansa

10 dura X X

Haemonchus

contortos

Monienza

Expansa

84


UPA 2 FECHA RECOLECCIÓN 27 de septiembre del 2014

PROPIETARIO Ángel Gabriel Gordillo FECHA DE ANÁLISIS 29 de Septiembre del 2014


Numero

de

muestra

Consistencia

Método

Directo

Metodo

De

Sedimentació

n

Método

de

flotación

con agua

azucarad

a

Método

de

flotació

n con

sol. Sal

Nematodos Protozoari

o Cestodos

11 Dura

X X

X Cooperia sp

Monienza

Expansa

12 Dura X X

X Trichostrongylus axei

13 Dura

X X

X X

Monienza

Expansa

14 Dura

X X

X

Haemonchus

contortos

Monienza

Expansa

15 Dura

X X

X X Cooperia sp

Monienza

Expansa

16 Dura X X Strongyloides

85

papillosus

17 Dura

X

X X

Oesophagostom

un Sp.


19 dura

X

X

Haemonchus

contortos

Monienza

Expansa

20 Dura X X

86



PROPIETARIO Manuel Cirilo Cercado Gordillo FECHA DE ANÁLISIS 29 de Septiembre del 2014


Numero

de

muestra

Consistencia

Método

Directo

Método

De

Sedimentación

Método de

flotación

con agua

azucarada

Método de

flotación

con sol.

Sal


21 Dura

X X

X Cooperia sp

Monienza

Expansa

22 Dura X X X Haemonchus contortos

23 Dura

X X

X X

Monienza

Expansa

24 Dura X X X Trichostrongylus axei

25 Dura

X X

X X

Monienza

Expansa

26 Dura

X X

X

Strongyloides

papillosus

Monienza

Expansa

27 Dura

X X

X X Oesophagostomun Sp.

Monienza

Expansa

87


29 Dura

X

X Cooperia sp

Monienza

Expansa

30 Dura

X


Monienza

Expansa

31 Dura

X

X Cooperia sp

Monienza

Expansa

32 Dura

X

X X Cooperia sp

Monienza

Expansa

33 Dura

X


Monienza

Expansa

34 Dura

X

X X Trichostrongylus axei

Monienza

Expansa

35 Dura

X X


Monienza

Expansa

88



PROPIETARIO Douglas Medina Sesma FECHA DE ANÁLISIS 1 de Octubre del 2014


Numero

de

muestra

Consistencia

Método

Directo

Método

De

Sedimentación

Método de

flotación

con agua

azucarada

Método

de

flotación

con sol.

Sal


36 Dura

X X

X

Cooperia sp

Haemonchus contortos

Monienza

Expansa

37 Dura

X X

X

Strongyloides

papillosus

38 Dura

X X

X X

Monienza

Expansa

39 Dura X X


Cooperia sp

40 Dura

X X

X X

Monienza

Expansa

41 Dura

X

X X

Strongyloides

papillosus

89

42 Dura X X X Oesophagostomun Sp.


44 Dura

X

X Haemonchus contortos

Monienza

Expansa

45 Dura X X


Cooperia sp 46 Dura X X

Oesophagostomun Sp

47 Dura

X X

Trichostrongylus axei

Cooperia sp

Monienza

Expansa

48 Dura X X

Trichostrongylus axei

Cooperia sp

49 Dura

X X


Cooperia sp

Monienza

Expansa

50 Dura

X X


Cooperia sp

Monienza

Expansa

51 Dura

X X


Cooperia sp

Monienza

Expansa

53 Dura

X X

X Trichostrongylus axei Cooperia sp

Monienza

Expansa

54 Dura

X X


Cooperia sp

Monienza

Expansa

55 Dura

X X


Cooperia sp

Monienza

Expansa

56 Dura

X X


Monienza

Expansa

57 Dura

X X


Monienza

Expansa

58 Dura

X X


Monienza

Expansa

59 Dura X X X Haemonchus contortos Monienza

90

Expansa


61 Dura X X Haemonchus contortos




65 Dura

X

X X Haemonchus contortos

Monienza

Expansa

66 Dura

X

X X Cooperia sp

Monienza

Expansa

67 Dura

X

X X Cooperia sp

Monienza

Expansa

68 Dura

X

X X Cooperia sp

Monienza

Expansa

69 Dura

X

X Cooperia sp

Monienza

Expansa

70 Dura

X

X X Cooperia sp

Monienza

Expansa

71 Dura

X

X Trichostrongylus axei Cooperia sp

Monienza

Expansa

72 Dura

X

X X

Strongyloides

papillosus

Monienza

Expansa

73 Dura

X

X X

Strongyloides

papillosus

74 Dura

X

X X

Strongyloides

papillosus

75 Dura

X

X X

Strongyloides

papillosus

76 Dura X X X Strongyloides

91

papillosus



79 Dura

X


Monienza

Expansa

80 Dura

X X


Monienza

Expansa

81 Dura

X X


Monienza

Expansa

82 Dura

X X

X Oesophagostomun Sp.

Monienza

Expansa

83 Dura

X X


Monienza

Expansa

84 Dura

X X


Monienza

Expansa

85 Dura

X X


Monienza

Expansa

86 Dura

X X


Monienza

Expansa

92



PROPIETARIO Elvis Alvarado Zúñiga FECHA DE ANÁLISIS 1 de Octubre del 2014


Numer

o de

muestr

a

Consistenci

a

Método

Directo

Método

De

Sedimentació

n

Método de

flotación

con agua

azucarada

Método de

flotación

con sol.

Sal


o Cestodos

87 Dura

X

X Trichuris ovis

Monienza

Expansa

88 Dura X X Trichuris ovis

89 Dura

X

X X

Oesophagostomun

Sp.

Monienza

Expansa

90 Dura X X


Cooperia sp

91 Dura

X X

X X

Monienza

Expansa

92 Dura X X X Trichuris ovis

93 Dura

X X

X X

Oesophagostomun

Sp.

Monienza

Expansa

93



PROPIETARIO José Luis Campuzano FECHA DE ANÁLISIS 1 de Octubre del 2014

UBICACIÓN Tierra blanca HORA DE ANÁLISIS 10h00 – 13h45

Numero

de

muestra

Consistencia

Método

Directo

Método

De

Sedimentación

Método de

flotación

con agua

azucarada

Método

de

flotación

con sol.

Sal


94 Dura

X X

X Trichuris ovis

Monienza

Expansa


96 Dura

X X

X X

Oesophagostomun

Sp.

Monienza

Expansa


98 Dura

X

X X Cooperia sp

Monienza

Expansa

99 Dura X X Trichuris ovis

.

94


UPA 7 FECHA RECOLECCIÓN 3 de octubre del 2014

PROPIETARIO Carlos Eugenio Campuzano FECHA DE ANÁLISIS 6 de Octubre del 2014

UBICACIÓN Tierra blanca HORA DE ANÁLISIS 10h30 – 14h00

Numero

de

muestra

Consistencia

Método

Directo

Método

De

Sedimentació

n

Método de

flotación

con agua

azucarada

Método de

flotación

con sol.

Sal


o Cestodos

100 Dura

X X

X

Monienza

Expansa

101 Dura

X X

X

Oesophagostomun

Sp.

102 Dura

X X

X

Oesophagostomun

Sp.

Monienza

Expansa


104 Dura

X

X Cooperia sp

Monienza

Expansa

105 Dura X X X Trichuris ovis

95



PROPIETARIO Darío Moran Domínguez FECHA DE ANÁLISIS 6 de Octubre del 2014

UBICACIÓN Sta. Barbara HORA DE ANÁLISIS 10h30 – 14h00

Numero

de

muestra

Consistenci

a

Métod

o

Direct

o

Método

De

Sedimentació

n

Método

de

flotación

con agua

azucarad

a

Método de

flotación

con sol. Sal


o Cestodos

106 Dura

X X

X

Monienza

Expansa

107 Dura

X X

X

Oesophagostomun

Sp.

108 Dura

X X

X

Oesophagostomun

Sp.

Monienza

Expansa

109 Dura X X X

Cooperia sp

110 Dura

X X

X X Cooperia sp

Monienza

Expansa

111 Dura X X X X

Monienza

96

Expansa

112 Dura

X X

X X

Strongyloides

papillosus

Monienza

Expansa

113 Dura

X

X X Cooperia sp

Monienza

Expansa


115 Dura

X

X X

Strongyloides

papillosus

116 Dura

X

X X Oesophagostomun Sp

Monienza

Expansa

117 Dura

X

X

Strongyloides

papillosus

118 Dura

X

X X Oesophagostomun Sp

Monienza

Expansa

119 Dura X X X Oesophagostomun Sp

120 Dura

X

X

Monienza

Expansa

97



PROPIETARIO Pedro Raúl Medina FECHA DE ANÁLISIS 6 de Octubre del 2014

UBICACIÓN La Condensa HORA DE ANÁLISIS 10h30 – 14h00

Numero de

muestra Consistencia

Método

Directo

Método

De

Sedimentación

Método de

flotación

con agua

azucarada

Método de

flotación con

sol. Sal


121 Dura

X X

X X

Monienza

Expansa

122 Dura

X X

X X

Strongyloides

papillos

123 Dura

X X

X X

Monienza

Expansa

124 Dura X X X X Cooperia sp

125 Dura

X X

X X Cooperia sp

Monienza

Expansa

126 Dura

X

X X

Strongyloides

papillos

98



PROPIETARIO Marcos Contreras Huacon FECHA DE ANÁLISIS 8 de Octubre del 2014

UBICACIÓN La Germania HORA DE ANÁLISIS 8h30 – 14h00

Numero

de

muestra

Consistenci

a

Método

Directo

Método

De

Sedimentació

n

Método de

flotación

con agua

azucarada

Método

de

flotació

n con

sol. Sal


o Cestodos

127 Dura

X X

X X

Monienza

Expansa


129 Dura

X X

X X

Monienza

Expansa


131 Dura

X X

X X Cooperia sp

Monienza

Expansa



99



PROPIETARIO Avelino Aguayo FECHA DE ANÁLISIS 8 de Octubre del 2014

UBICACIÓN La Ladrillera HORA DE ANÁLISIS 8h30 – 14h00

Numero

de

muestra

Consistencia

Método

Directo

Método

De

Sedimentación

Método

de

flotación

con agua

azucarada

Método

de

flotación

con sol.

Sal


134 Dura

X X

X X

Monienza

Expansa


136 Dura

X X

X X Bunostomun

Monienza

Expansa


138 Dura

X X

X X Bunostomun

Monienza

Expansa

139 Dura

X

X X X Bunostomun

Haemonchus contortos

140 Dura X X X X Bunostomun


142 Dura X X X Bunostomun Monienza

100

Expansa

143 Dura

X

X X Bunostomun

Monienza

Expansa

144 Dura

X

X X

Monienza

Expansa

145 Dura

X

X

Monienza

Expansa

101



PROPIETARIO Edison Abelardo Calderón FECHA DE ANÁLISIS 13 de Octubre del 2014

UBICACIÓN Bejuco Pietro HORA DE ANÁLISIS 9h30 – 16h00

Numero de


Método

Directo

Método

De

Sedimentación

Método de

flotación con

agua

azucarada

Método de

flotación

con sol. Sal


146 Dura

X X

X X Cooperia sp

Monienza

Expansa

147 Dura X X X X Chavertia ovina

148 Dura

X X

X X Bunostomun

Monienza

Expansa

102



PROPIETARIO Martha Irene Miranda Fariño FECHA DE ANÁLISIS 13 de Octubre del 2014

UBICACIÓN Bellavista HORA DE ANÁLISIS 9h30 – 16h00

Numero de


Método

Directo

Método

De

Sedimentación

Método de

flotación

con agua

azucarada

Método de

flotación con

sol. Sal


149 Dura

X X

X X

Monienza

Expansa

150 Dura X X X X Chavertia ovina

151 Dura

X X

X X Haemonchus

contortos

Monienza

Expansa

152 Dura X X X X Chavertia obina

103


UPA 14 FECHA RECOLECCIÓN 14 de Octubre del 2014

PROPIETARIO Magno Rodriguez – Ana Gordillo Veliz FECHA DE ANÁLISIS 15 de Octubre del 2014

UBICACIÓN San Matías - Quevedo HORA DE ANÁLISIS 8h30 – 12h00

Numero de


Método

Directo

Método

De

Sedimentación

Método de

flotación con

agua

azucarada

Método de

flotación con

sol. Sal


153 Dura

X X

X X

Monienza

Expansa

154 Dura X X

X X Chavertia

ovina

155 Dura

X X

X X

Monienza

Expansa

156 Dura X X

X X Chavertia

obina

158 Dura

X X

X X

Monienza

Expansa

104



PROPIETARIO Juana María Santana Peñafiel FECHA DE ANÁLISIS 15 de Octubre del 2014

UBICACIÓN La sequita HORA DE ANÁLISIS 8h30 – 12h00

Numero

de

muestra

Consistencia

Método

Directo

Método

De

Sedimentación

Método de

flotación

con agua

azucarada

Método de

flotación con sol.

Sal


159 Dura

X X

X X

Monienza

Expansa

160 Dura X X

X X Chavertia ovina

Trichuris ovis

161 Dura

X X

X X

Monienza

Expansa

162 Dura X X X X Chavertia obina

163 Dura

X X

X X Trichuris vis

Monienza

Expansa

105


UPA 16 FECHA RECOLECCIÓN 18 de Octubre del 2014

PROPIETARIO Vicenta Calderón Vargas FECHA DE ANÁLISIS 20 de Octubre del 2014

UBICACIÓN Entrada a la Barranca HORA DE ANÁLISIS 9h00 – 12h00

Numero

de

muestra

Consistenci

a

Método

Directo

Método

De

Sedimentació

n

Método de

flotación

con agua

azucarada

Método

de

flotació

n con

sol. Sal


164 Dura

X X

X X Chavertia

ovina

Monienza

Expansa

165 Dura X X X X Trichuris ovis

166 Dura

X X

X X

Trichuris

ovis

106



PROPIETARIO Oswaldo Torres Rodríguez FECHA DE ANÁLISIS 22 de Octubre del 2014

UBICACIÓN San Lorenzo HORA DE ANÁLISIS 10h15 – 14h30

Numero

de

muestra

Consistenci

a

Método

Directo

Método

De

Sedimentació

n

Método

de

flotación

con agua

azucarad

a

Método

de

flotación

con sol.

Sal


o Cestodos

167 Dura

X X

X X

Monienza

Expansa

168 Dura X X

X X Trichuris ovis

Cooperia sp

169 Dura

X X

X X

Trichuris

ovis

Monienza

Expansa

107



PROPIETARIO Mora Medina Johana FECHA DE ANÁLISIS 22 de Octubre del 2014

UBICACIÓN Entrada a la Barranca HORA DE ANÁLISIS 10h15 – 14h30

Numero de

muestra

Consistenci

a

Método

Directo

Método

De

Sedimentació

n

Método

de

flotación

con agua

azucarad

a

Método

de

flotación

con sol.

Sal


o Cestodos

170 Dura

X X

X X Chavertia ovis

Monienza

Expansa

171 Dura X X X X Bunostomun

172 Dura

X X

X X Cooperia sp

Monienza

Expansa

\

108


UPA 19 FECHA RECOLECCIÓN 7 de noviembre del 2014

PROPIETARIO Sr. Rosa Arteaga Mora FECHA DE ANÁLISIS 10 de noviembre del 2014

UBICACIÓN Ladrillera HORA DE ANÁLISIS 9h30 – 13h00

Numero

de

muestra

Consistencia

Método

Directo

Método

De

Sedimentació

n

Método

de

flotación

con agua

azucarad

a

Método

de

flotación

con sol.

Sal


o Cestodos

173 Dura X X X X Cooperia sp 174 Dura X X X X Cooperia sp

175 Dura

X X

X X

Strongyloide

s papillosus

Monienza

Expansa

176 Dura

X X

X X

Haemonchu

s contortos

Monienza

Expansa

177 Dura

X X

x X

Strongyloide

s papillosus

109


UPA 20 FECHA RECOLECCIÓN 21 de noviembre del 2014

PROPIETARIO Sr. Jhon Jairo Calderon FECHA DE ANÁLISIS 23 de noviembre del 2014

UBICACIÓN Ladrillera HORA DE ANÁLISIS 9h30 – 13h00

Numero

de

muestra

Consistencia

Método

Directo

Método

De

Sedimentación

Método

de

flotación

con agua

azucarada

Método

de

flotación

con sol.

Sal



179 Dura

X X

X X

Strongyloides

papillosus

180 Dura

X X

X X

Monienza

Expansa

181 Dura

X X

X X

Trichostrongylus

axei

Cooperia sp

182 Dura

X X

X X

Haemonchus

contortos

Monienza

Expansa

.

110

ANEXO VI. RECOGIDA DE MUESTRA.

FIG 1. RECOGIENDO MUESTRA DE HECES.

Tomas Reyes, 2015 Trabajo de Titulación

ANEXO VII. PREPARACION DE METODO DE FLOTACION

SEDIMENTACION.

FIG 2 Se aprecia realizando los métodos de flotación.

FIG 3. Se observa el método de centrifugación.

111


ANEXO VIII. FOTOGRAFIA DE LOS HUEVOS Y OOQUISTES DE LOS

PARASITOS GASTROINTESTINALES.

FIG 4. Monienza expanza FIG 5. Haemonchus contortus

FIG 6. Bunostomun spp. FIG 7. Ttrichostrongylus ovinos


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