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ZONAS COSTERAS S.A.S. Laboratorio ambiental

INFORME TÉCNICO No. 2584

CARACTERIZACIÓN FISICOQUÍMICA, MICROBIOLÓGICA E

HIDROBIOLÓGICA EN LA CIÉNAGA DE MALLORQUÍN

PIMAS S.A.S. Solicitante: Ing. Franklin Torres Bejarano

Dirección: Calle 72 No. 24 B - 35

Ciudad: Barranquilla – Atlántico

FEBRERO– 2021 Estudio conducido por: Laboratorio Ambiental Zonas Costeras S.A.S. Acreditación IDEAM: Laboratorio Acreditado para los parámetros según Resolución No.0237 de 07 de marzo de 2019. Participación en el Programa Interlaboratorio de Control de la Calidad del Agua Potable – PICCAP.

Objetivo del Programa: Evaluar continuamente la calidad analítica de los diferentes laboratorios que realizan análisis físicos, químicos y microbiológicos en agua para consumo humano en el país, midiendo los resultados emitidos en ensayos de aptitud o comparaciones interlaboratorio, siguiendo lineamientos de la norma NTC-ISO/IEC 17043:2010. (Dando cumplimiento al Artículo 27 del decreto 1575 de 2007 del MPS - MAVDT).

INFORME TECNICO No. 2584

CARACTERIZACIÓN FISICOQUÍMICA, MICROBIOLÓGICA E HIDROBIOLÓGICA EN LA CIÉNAGA DE MALLORQUÍN

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TABLA DE CONTENIDO

1. INTRODUCCIÓN. ...................................................................................................................................................................... 4

2. OBJETIVO GENERAL. .............................................................................................................................................................. 4

2.1. OBJETIVOS ESPECÍFICOS. ................................................................................................................................................. 4

3. ÁREA DE ESTUDIO. ................................................................................................................................................................. 6

4. Información sobre las características y trazabilidad del muestreo. ........................................................................................... 7

5. Listado de parámetros de la matriz Biota. ................................................................................................................................. 7

6. Listado de parámetros fisicoquímicos y microbiológicos. .......................................................................................................... 8

7. Información sobre la trazabilidad de lecturas de análisis fisicoquímicos e hidrobiológicos. ...................................................... 8

8. Métodos matrices biótica. ........................................................................................................................................................ 10

9. DEFINICIONES. ...................................................................................................................................................................... 12

10. RESULTADOS. ..................................................................................................................................................................... 13

10.1 CARACTERIZACIÓN FISICOQUÍMICA Y MICROBIOLOGÍA DE AGUA SUPERFICIAL. .................................................. 13

10.2. Comunidades planctónicas. SM 10200 B. .......................................................................................................................... 15

11. CONCLUSIONES. ................................................................................................................................................................. 29

12. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS. ..................................................................................................................................... 30



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LISTA DE FIGURAS

Figura 1. Fisionomía del área de estudio. .......................................................................................................................................... 5

Figura 2. Esquema de ubicación general del área de estudio sin escala. ........................................................................................ 6

Figura 3. Esquema de contextualización geográfica del área de estudio: En rojo puntos de agua superficial, en amarillo puntos

hidrobiológicos. .................................................................................................................................................................................. 6

Figura 4. Medición de pH, Oxígeno disuelto, Temperatura, Profundidad, Humedad relativa e Intensidad lumínica. ........................ 9

Figura 5. Toma de muestra de agua superficial. .............................................................................................................................. 10

Figura 6. Obtención de muestra de fitoplancton y zooplancton. ...................................................................................................... 10

Figura 7. Obtención de muestra de Macroinvertebrados bentónicos y acuáticos. ........................................................................... 11

Figura 8. Abundancia general de la comunidad fitoplancton en la ciénaga de Mallorquín. ............................................................ 18

Figura 9. Abundancia y riqueza relativa de fitoplancton a nivel de Phylum y clase. ........................................................................ 18

Figura 10. Láminas de Fitoplancton reportado en la ciénaga de Mallorquin. A: Chaetoceros sp1, B: Chaetoceros sp2, C:

Chaetoceros sp3, D: Coconeis sp, E: Gyrosigma sp, ...................................................................................................................... 20

Figura 11. Comunidad Zooplanctónica encontrada en el área de muestreo. A. Larva Nauplio, B. Copépodo Cyclopoida. ............ 22

Figura 12. Abundancia general relativa de morfoespecies reportadas en la masa de agua............................................................ 24

Figura 13. Organismos más comunes de la comunidad bentónica. A. Anomalocardia sp, B. Macoma sp, C. Tellina sp, D. Adrana

sp, E. Nassarius sp, F. Balanus sp. ................................................................................................................................................. 25

Figura 14. Abundancia general relativa de morfoespecies reportadas en la masa de agua............................................................ 27

Figura 15. Organismos más comunes de la comunidad bentónica. A. Balanus sp, B. Melongena sp, C. Macoma sp, D. Leukoma

sp, E. Tellina sp, F. Anomalocardia sp G. Melampus coffea, H. Melampus monile, I. Neritina sp, J. Uca sp. ................................. 28

LISTA DE TABLA

Tabla 1. Descripción y localización geográfica del área de estudio. .................................................................................................. 7

Tabla 2. Trazabilidad del muestreo. ................................................................................................................................................... 7

Tabla 3. Características del muestreo – Comunidades Hidrobiológicas. ........................................................................................... 7

Tabla 4. Lista de los ensayos, métodos, técnicas, unidades y límites de detección y cuantificación empleados en el estudio de

caracterización de la matriz agua. ..................................................................................................................................................... 8

Tabla 5. Parámetros fisicoquímicos y microbiológicos registrados en el cuerpo de agua. .............................................................. 14

Tabla 6. Análisis cuantitativo de fitoplancton asociada a la masa de agua estuarina en un sector de la ciénaga de Mallorquín. ... 17

Tabla 7. Índices de diversidad biológica de fitoplancton. Ciénaga de Mallorquin. ........................................................................... 19

Tabla 8. Análisis cuantitativo de zooplancton asociada a la masa de agua estuarina en un sector de la ciénaga de Mallorquín. .. 22

Tabla 9. Macroinvertebrados bentónicos asociados al lecho marino del margen continental. ........................................................ 24

Tabla 10. Índices de diversidad biológica de macroinvertebrados asociados al lecho marino. ....................................................... 25

Tabla 11. Macroinvertebrados acuáticos asociados a la ciénaga de Mallorquín. ............................................................................ 26

Tabla 12. Índices de diversidad biológica de macroinvertebrados acuáticos en la ciénaga de Mallorquín. .................................... 27



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1. INTRODUCCIÓN.

Este documento contiene información de la metodología del muestreo y análisis en la matriz agua superficial y biota, según el

alcance definido, dirigida a conocer algunos aspectos de carácter ecológico en un sector de la ciénaga de Mallorquín; la cual es

un cuerpo de agua costero con características estuarinas, que recibe aportes de agua del rio Magdalena, el arroyo León y el mar

Caribe, convirtiéndola en un ecosistema altamente productivo para la alimentación y reproducción de muchas especies,

garantizando así la supervivencia y crecimiento de la fauna acuática.

El estudio sobre el recurso hídrico estuarino tiene como objetivo proveer información del estado fisicoquímico de la masa de agua

superficial; así como estimar las comunidades hidrobiológicas que habitan en el ecosistema.

La selección de las estaciones de muestreos fue según las especificaciones técnicas aportadas por los profesionales

contratantes.

Se definieron parámetros entre físicos químicos y microbiológicos para el análisis de agua y cuatro grupos taxonómicos como

parte de los elementos de calidad biológica. La compañía conductora del estudio Zonas Costeras S.A.S., determinó

conjuntamente con la parte contratante los métodos de muestreo y análisis más adecuados para establecer el estado ecológico,

siendo esta metodología acreditada por el Instituto de Hidrología, Meteorología y Estudios Ambientales, según Resolución.

No.0237 de 07 de marzo de 2019. La elección de los procedimientos metodológicos para su aplicación surge de los estándares

nacionales e internacionales más recientes y de mayor seguimiento por las autoridades nacionales competentes para que la

aplicación facilite la comparación de los resultados y el aprovechamiento (siempre que sea posible) de los datos históricos.

2. OBJETIVO GENERAL.

Proveer información del estado fisicoquímico, microbiológico e hidrobiológico de la ciénaga de Mallorquín.

2.1. OBJETIVOS ESPECÍFICOS.

Determinar los valores de algunos factores fisicoquímicos y microbiológico del agua superficial.

Identificar los grupos taxonómicos de fitoplancton, zooplancton, Macroinvertebrados bentónicos y acuáticos asociado al

ecosistema.

Describir estructural y ecológicamente las comunidades hidrobiológicas, de acuerdo con los índices biológicos de

diversidad de Shannon, riqueza de Margalef y dominancia de Simpson.



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Para la caracterización de las aguas superficiales se establecieron dos (2) estaciones de control asociadas área de influencia del

proyecto. La toma de muestra fue mediante muestreo simple tomada en la capa superficial del agua; simultáneamente se

midieron parámetros en campo tales como pH, temperatura, oxígeno disuelto, conductividad y profundidad. Para el componente

hidrobiológico se seleccionó una estación de control, donde se incluyó los grupos biológicos: microflora (Fitoplancton),

microfauna (Zooplancton) y Macroinvertebrados bentónicos (Grupo Infauna) y acuáticos.

La ciénaga de Mallorquín se encuentra ubicada en el centro de la costa norte de Colombia, departamento del Atlántico,

geográficamente a 74°50’ de longitud oeste y 11°02’ de latitud norte (Datum Magna Sirgas), limita por el norte con el mar Caribe,

por el sur con la avenida Circunvalar en el tramo que conduce del barrio las Flores de Barranquilla con el corregimiento La Playa,

por el oriente con el tajamar occidental del río Magdalena y por el occidente con la desembocadura del arroyo Grande.

Figura 1. Fisionomía del área de estudio.



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3. ÁREA DE ESTUDIO.

La Ciénaga de Mallorquín, se localiza geográficamente a 11°02' N y 74°50' O de la ciudad de Barranquilla en el centro de la

costa norte de Colombia, departamento del Atlántico (Figura 2 y Figura 3).

Figura 2. . Esquema de ubicación general del área de estudio sin escala.

Figura 3. Esquema de contextualización geográfica del área de estudio.



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3.1. Descripción y localización de los puntos de muestreo.

Los puntos se georreferenciaron en formato angular, usando el Datum: Magna Sirgas, con un GPS Garmin–Map 62s y se

convirtieron al formato de coordenadas planas: Planas Gauss-Krueger; Magna Sirgas (Tabla 1).

Tabla 1. Descripción y localización geográfica del área de estudio.

ESTACIONES DE MUESTREO

GEOREFERENCIA DATUM: Magna Sirgas

FORMATO DE POSICIÓN: hdddºmm´ss´´ EQUIPO: GARMIN - MAP76CSx

GEOREFERENCIA Origen de la Zona: Bogotá

FORMATO DE POSICIÓN: Planas Gauss-Krueger

LATITUD LONGITUD NORTE ESTE

Estación 1 11º02’7,75’’ 74º51’17,19’’ 1712269,130 915062,125

Estación 2 11º02’9,27’’ 74º50’59,49’’ 1712314,448 915599,558

4. Información sobre las características y trazabilidad del muestreo.

La información sobre la trazabilidad del muestreo, los métodos y técnicas de los parámetros considerados en el estudio

hidrobiológico se señala en la Tabla 3.

Tabla 2. Trazabilidad del muestreo.

PLAN DE MONITOREO

No. PUNTO DE MUESTREO

MATRIZ DE LA MUESTRA

FECHA Y HORA DE INICIO DE MONITOREO

FECHA Y HORA DE FINALIZACIÓN DE

MONITOREO

FECHA DE RECEPCIÓN DE

MUESTRA

1915 Estación 1.

Agua Superficial

2021-02-13/10:28 2021-02-13/11:00 2021-02-13/13:05

Estación 2. Agua

Superficial y Biota 2021-02-13/9:20 2021-02-13/10:15 2021-02-13/13:05

5. Listado de parámetros de la matriz Biota. Tabla 3. Características del muestreo – Comunidades Hidrobiológicas.

PLAN DE

MONITOREO

CÓDIGO DE AUTORIZACIÓN

TÉCNICA DE SERVICIOS

PARÁMETRO MÉTODO DE MUESTREO

PM - 1915 4691

Fitoplancton SM 10200 B modificado, Villafañe, V.E. & Reid, F.M.H. 1995. Métodos de microscopia para la cuantificación del fitoplancton en: Alveal, K., Ferrairo, M.E., Oliveira, E. C. y Sar. E. (eds.)

Manual de Métodos Ficológicos. Editorial Aníbal Pinto S.A. Chile. Zooplancton

Macroinvertebrados Bentónicos SM 10500 B, C



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6. Listado de parámetros fisicoquímicos y microbiológicos. La información sobre los métodos y técnicas de los parámetros considerados en el estudio en la matriz agua se señala en la

Tabla 4.

Tabla 4. Lista de los ensayos, métodos, técnicas, unidades y límites de detección y cuantificación empleados en la caracterización.

ENSAYO MÉTODO DE REFERENCIA UNIDAD LDM* LCM**

pH (In situ) SM 4500-H+ B /Electrométrico U de pH No aplica No aplica

Temperatura (In situ) SM 2550 B /Electrométrico °C No aplica No aplica

Conductividad (In Situ) SM 2510 B /Electrométrico mS/cm No aplica No aplica

Oxígeno Disuelto (In situ) SM 4500-O G / Electrométrico mg/L No aplica 0,20

Salinidad SM 2520 B / Electrométrico UPS No aplica 0,004

DBO5 SM 5210 B, SM 4500-O G /Incubación a 5 días y Electrodo de Membrana. mg O2/L 0,20 2,00

Sólidos Suspendidos Totales SM 2540 D /Gravimétrico - Secado a 103ºC – 105ºC mg/L No aplica 6,0

Nitratos SM 4500-NO3-E /Reducción con Cadmio mg N-NO3/L 0,20 0,50

Nitrógeno Amoniacal SM 4500-NH3 B, C / Destilación - Volumétrico mg N- NH4/L No aplica 1,5

Nitrógeno Total

SM 4500-NO2 B / Colorimétrico M.I. Cálculo

(N-NO2+N-NO3+NTK)

mg N/L 2,30 5,00 SM 4500-NO3-E /Reducción con Cadmio

SM 4500-Norg C y 4500-NH3 B, C /Semi Micro - Kjeldahl,

Destilación y Volumétrico

Ortofosfato SM 4500-P E /Ácido Ascórbico mg P-PO4/L No aplica 0,025

Fósforo Total SM 4500 P B, E /Digestión (Ácido Sulfúrico - Ácido Nítrico) / Ácido Ascórbico mg P/L No aplica 0,025

Coliformes Totales SM 9223 B / Sustrato definido NMP/100 mL No aplica 1,8

Coliformes Fecales SM 9221 E / Fermentación en tubos múltiples NMP/100 mL No aplica 1,8

*Límite de detección del método; es la menor cantidad del mensurando que puede ser detectada en la matriz sujeta a ensayo. **Límite de cuantificación del método; en la menor cantidad a partir de la cual se puede determinar el mensurando con exactitud y precisión aceptadas bajo las condiciónes del laboratorio, en la matriz sujeta a ensayo.

7. Información sobre la trazabilidad de lecturas de análisis fisicoquímicos e hidrobiológicos.

La trazabilidad de las lecturas de los análisis de laboratorio y los datos primarios y fechas en que se ejecutaron cada análisis se

encuentran registrados en el Laboratorio Ambiental Zonas Costeras S.A.S., Resolución de Acreditación No.0237 de 07 de marzo

de 2019.

7.1. Procedimiento de muestreo para ensayos fisicoquímicos y microbiológicos.

7.1.1. Tipo de Muestreo – Puntual (Es la muestra individual representativa en un determinado momento).

Las muestras de agua superficial se tomaron mediante un muestreo puntual de forma manual a una profundidad de 0,5 a 15 cm

de la superficie (muestra subsuperficial). Se midieron los parámetros de pH, temperatura, oxígeno disuelto y conductividad.

Adicionalmente, se midió la humedad relativa, temperatura ambiente y profundidad. Según el parámetro a analizar las muestras

se conservaron aplicándole el reactivo indicado. Cada recipiente se rotuló indicando la hora y fecha del muestreo, tipo de

conservación In situ, ensayos a realizar y persona responsable del muestreo.

Las muestras se embalaron y transportaron en neveras refrigerantes, siguiendo una cadena de custodia (Estándar Métodos 23

Ed. Tabla 1060: I).



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Figura 4. Medición de pH, Oxígeno disuelto, Temperatura, Profundidad, Humedad relativa e Intensidad lumínica.



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Figura 5. Toma de muestra de agua superficial.

8. Métodos matrices biótica.

Zooplancton y Fitoplancton.

Método y Análisis: Muestreo cualitativo y cuantitativo en cuerpos loticos y lenticos, SM 10200 B, Villafañe, V.E. & Reid, F.M.H. 1995. Métodos de

microscopia para la cuantificación del fitoplancton en: Alveal, K., Ferrairo, M.E., Oliveira, E. C. y Sar. E. (eds.) Manual de Métodos Ficológicos. Editorial Aníbal

Pinto S.A. Chile.

Tecnica: Filtración con red cónica

Unidad: Abundancia (Ind/L) y riqueza (Morfoespecies/L).

Figura 6. Obtención de muestra de fitoplancton y zooplancton.

Macroinvertebrados Método y Análisis: Muestreo y Análisis cualitativo y cuantitativo, SM 10500 B,C.

Tecnica: Dispositivo de dragado (Draga Peterson).

Unidad: Análisis cualitativo (Abundancia y Riqueza).



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Figura 7. Obtención de muestra de Macroinvertebrados bentónicos y acuáticos.



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9. DEFINICIONES.

9.1 Macroinvertebrados Bentónicos: Se entiende como macroinvertebrados a todos aquellos organismos invertebrados que en

algún momento de su ciclo vital, se encuentran en hábitats acuáticos y que al ser retenidos en una malla de 500 µm, se pueden

observar a simple vista. Dentro de esta definición se agrupan varios taxones de invertebrados como anellida, mollusca,

platelmintos, nematodo y artrópoda, los cuales generalmente se encuentran asociados a superficies del fondo de cuerpos de

aguas, por lo que comúnmente se les llama como macroinvertebrados bentónicos.

9.2 Plancton: Como plancton se conocen a todos aquellos organismos que por su baja capacidad locomotora son arrastrados

por las corrientes. De acuerdo con la forma de obtener su aliento, se clasifican en fitoplancton, organismos autótrofos y

zooplancton organismos heterótrofos. La distribución y abundancia de plancton son modulados por factores físicos, químicos y

biológicos de la columna de agua, como la temperatura, salinidad, disponibilidad de nutrientes, ciclos reproductivos y

depredación, los cuales cambian tanto espacial como temporalmente.

9.3 Fitoplancton: es un ensamble de organismos planctónicos en su mayoría de fotoautotróficos, adaptados a la suspensión en

las aguas abiertas de los ecosistemas lenticos, en la zona pelágica del mar, o en los ríos, sometido a movimiento pasivo por el

viento y las corrientes que comúnmente se presentan en la superficie del agua.

9.4 Zooplancton: grupo de animales que tienen como hábitat principal la columna de agua y cuya distribución y dispersión esta

modulada por las corrientes de agua. Está conformado por una variedad de taxas como copépodos, rotíferos, crustáceos e

isópodos, etc.

9.5 Ecosistemas acuáticos: Los ecosistemas acuáticos son todos aquellos ecosistemas que tienen por biotopo algún cuerpo de

agua, como pueden ser: mares, océanos, ríos, lagos, pantanos, riachuelos y lagunas, entre otros. Los dos tipos más destacados

son: los ecosistemas marinos y los ecosistemas de agua dulce.

9.6 Ecosistemas marinos: Lo conforman mares y océanos son sistemas altamente dinámicos y están interconectados por una

red de corrientes superficiales y profundas. La temperatura y salinidad del agua dan lugar a la formación de capas estratificadas y

corrientes.

9.7 Comunidad: grupo de población es naturales de organismos que ocupan un área determinada.

9.8 Especie o población: conjunto de individuos que descienden unos de otros, con características externas semejantes y

características genéticas iguales, las cuales en condición es normales, no se cruzan.



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10. RESULTADOS.

10.1 CARACTERIZACIÓN FISICOQUÍMICA Y MICROBIOLOGÍA DE AGUA SUPERFICIAL.

Los resultados de las condiciones fisicoquímicas y microbiológicas del agua superficial analizados en la ciénaga de Mallorquín se

presentan en la Tabla 5. Las estaciones de monitoreo registraron un pH con tendencia a la alcalinidad en un rango entre 7,79 y

7,84 U de pH y una temperatura cálida que no superan los 33°C. El oxígeno disuelto registró valores por encima de los 5,0 mg/L,

cabe destacar que para la estación 1 se registra una menor concentración, con un valor de oxígeno disuelto de 5,95 mg/L. La

salinidad del agua se reporta entre 35,3 y 35,5 UPS ideales para el desarrollo de la vida acuática.

La masa de agua marina registra valores de Nitratos, Nitrógeno amoniacal y Nitrógeno Total por debajo del límite de

cuantificación del método usado en el laboratorio, que desde el punto de vista ecológico es muy favorable para la biota estuarina.



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Sin embargo, los Sólidos Suspendidos totales se encuentran por encima del límite de cuantificación, sumado a esto, indicadores

de contaminación microbiológica reportan valores altos de Coliformes totales en los puntos de control, asociados a los aportes de

aguas residuales y material suspendido provenientes del arroyo León que desemboca en la zona noroccidental de la ciénaga, los

cuales pueden estar causando contaminación microbiológica y deterioro en la calidad del agua (Garcés-Ordóñez et al., 2016).

Tabla 5. Parámetros fisicoquímicos y microbiológicos registrados en el cuerpo de agua.

ENSAYO MÉTODO DE REFERENCIA UNIDAD LDM LCM Estación 1

Código: 4691-1

Estación 2

Código: 4691-2

pH (In situ) SM 4500-H+ B /Electrométrico U de pH No aplica No aplica 7,84 7,79

Temperatura (In situ) SM 2550 B /Electrométrico °C No aplica No aplica 29,4 27,6

Conductividad (In Situ) SM 2510 B /Electrométrico mS/cm No aplica No aplica 51,5 51,5

Oxígeno Disuelto (In situ) SM 4500-O G / Electrométrico mg/L No aplica 0,20 5,95 9,77

Salinidad SM 2520 B / Electrométrico UPS No aplica 0,004 35,3 35,5

DBO5 SM 5210 B, SM 4500-O G /Incubación a 5 días y Electrodo de Membrana. mg O2/L 0,20 2,00 < 2,00 < 2,00

Sólidos Suspendidos Totales SM 2540 D /Gravimétrico - Secado a 103ºC – 105ºC mg/L No aplica 6,0 11,8 82,0

Nitratos SM 4500-NO3-E /Reducción con Cadmio mg N-NO3/L 0,20 0,50 0,516 < 0,50

Nitrógeno Amoniacal SM 4500-NH3 B, C / Destilación - Volumétrico mg N- NH4/L No aplica 1,5 < 1,5 < 1,5

Nitrógeno Total SM 4500-NO2 B / Colorimétrico; SM 4500-NO3-E /Reducción con Cadmio; SM 4500-Norg C

y 4500-NH3 B, C /Semi Micro - Kjeldahl, Destilación y Volumétrico mg N/L 2,30 5,00 < 5,00 < 5,00

Ortofosfato SM 4500-P E /Ácido Ascórbico mg P-PO4/L No aplica 0,025 0,171 0,177

Fósforo Total SM 4500 P B, E /Digestión (Ácido Sulfúrico - Ácido Nítrico) / Ácido Ascórbico mg P/L No aplica 0,025 0,354 0,358

Coliformes Totales SM 9223 B / Sustrato definido NMP/100 mL No aplica 1,8 1 334 6 488

Coliformes Fecales SM 9221 E / Fermentación en tubos múltiples NMP/100 mL No aplica 1,8 < 1 < 1

ENSAYO MÉTODO DE

REFERENCIA UNIDAD LDM* LCM*

Estación 2

Código: 4691-3

Clorofila a

SM 10200 H, 1, 2 /Espectrofotométrico

mg/m3 No aplica 2,5 < 2,5

Clorofila b mg/m3 No aplica 2,5 < 2,5

Clorofila c mg/m3 No aplica 2,5 < 2,5



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10.2. Comunidades planctónicas. SM 10200 B.



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10.2.1 FITOPLANCTON

El fitoplancton agrupa los microorganismos autótrofos fotosintéticos compuestos por organismos unicelulares (procariotas y

eucariotas) que tienden a formar colonias ocasionalmente. Este grupo esta representados principalmente en ecosistemas

marinos por diatomeas (Bacillariophyta), dinoflagelados (Dinoflagellata), las Haptophyta y las algas verdes (Chlorophyta) que

constituyen aproximadamente el 40, 40, 10 y 6% de las especies presentes en este ecosistema, mientras que la suma de otros

grupos contribuye con un 2% (Simón et al., 2009). En los ecosistemas marinos la importancia ecológica del fitoplancton radica en

ser los productores primarios del océano (son responsable de más del 45% de la producción primaria neta del planeta) y proveer

la primera fuente de alimento para la vida marina (Falkowsky et al., 2004; Simón et al., 2009).

En cuanto a la dinámica, sus cambios relacionados con el tiempo, son inducidos por los procesos físicos, químicos y biológicos

que se llevan a cabo en el ecosistema. Factores como la disponibilidad y distribución de la luz solar, la temperatura, la salinidad,

la concentración de los nutrientes y los sistemas de corrientes en la columna de agua juega un papel esencial en su dinámica. La

capa eufótica, es decir aquella donde se efectúa la fotosíntesis, puede alcanzar hasta los primeros 100 m en la zona costera,

aunque usualmente no supera los 50 m y en épocas de alta productividad primaria puede estar restringida a los primeros 20 m.

El fitoplancton también requiere de nutrientes inorgánicos (nitrógeno, fósforo, silicio) y elementos traza (hierro), los cuales

transforma o sintetiza a compuestos orgánicos o moléculas complejas, tales como las proteínas, lípidos, materia orgánica que

terminan siendo el alimento para el resto de los organismos marinos (Raymont, 1963). Asimismo, el fitoplancton interviene en la

química del océano, durante la fotosíntesis remueven el dióxido de carbono disuelto en el agua de mar para producir azúcares y

otras moléculas orgánicas simples y liberar oxígeno como producto. Algunos organismos o grupos fitoplantónicas pueden ser

indicadores biológicos de cambios en las condiciones físicas y químicas durante los eventos cálidos y fríos, al ser organismos

estrictos en requerimiento de salinidad y temperatura, siendo así tipificadores de masas de agua (CCCP, 2002). De igual manera

existen especies productoras de toxinas transferibles a través de la ingesta de bivalvos, que afectan la salud humana, la

economía pesquera, el turismo y los ecosistemas acuáticos.



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HALLAZGOS - COMUNIDAD DE FITOPLANCTON

La comunidad Fitoplanctónica evaluada en el área de estudio, estuvo representada por 13 morfoespecies pertenecientes a los

Phyllum Bacillariophyta y Cyanobacteria, 3 clases, 8 órdenes y 9 familias (Tabla 6). Se presentó un total de 63 Ind/L para el área

de estudio, la morfoespecie que predominó fue Chaetoceros sp2 con 8 Ind/L, seguida de Skeletonema sp con 7 Ind/L, las

morfoespecies Nitzschia sp1 y Chaetoceros sp1 con 6 individuos respectivamente, las restantes morfoespecies presentaron

menores valores de 5 a 2 morfoespecies (Tabla 6 y Figura 8).

Tabla 6. Análisis cuantitativo de fitoplancton asociada a la masa de agua estuarina en un sector de la ciénaga de Mallorquín.

PHYLUM CLASE ORDEN FAMILIA MORFOESPECIES

Resultados

Estación 2 Cód: 4691-3

Bacillariophyta

Mediophyceae

Eupodiscales Odontellaceae Odontella sp 4

Chaetocerotales Chaetocerotaceae

Chaetoceros sp1 6

Chaetoceros sp2 8

Chaetoceros sp3 5

Thalassiosirales Skeletonemataceae Skeletonema sp 7

Bacillariophyceae

Naviculales Naviculaceae

Navicula sp 5

Gyrosigma sp 2

Pleurosigmataceae Pleurosigma sp 5

Bacillariales Bacillariaceae Nitzschia sp1 6

Nitzschia sp2 4

Surirellales Surirellaceae Surirella sp 4

Cocconeidales Cocconeidaceae Cocconeis sp 2

Cyanobacteria Cyanophyceae Oscillatoriales Oscillatoriaceae Lyngbya sp 5

RIQUEZA (s) 13

ABUNDANCIA (Ind/L) 63



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Figura 8. Abundancia general de la comunidad fitoplancton en la ciénaga de Mallorquín.

En términos de abundancia, el ensamblaje fitoplanctónica se observan una marcada diferencia entre los Phylum Bacillariophyta y

Cyanobacteria, quien aportó el 58 % de la abundancia total, mientras el otro tan solo un 5 %. En tanto, a las clases se registran

similares abundancias entre la clase Mediophyceae (30 Ind/L) y Bacillariophyceae (28 Ind/L), caso contrario ocurre con la clase

Cyanophyceae que obtuvo 5 Ind/L (Figura 9).

Figura 9. Abundancia y riqueza relativa de fitoplancton a nivel de Phylum y clase.

El análisis de los índices ecológicos evidencia que la estación 1 representa una población uniforme de microalgas, ya que el

índice de Pielou se encontró en valores muy cercanos a 1 (J’=0,975) lo que determina que las especies identificadas representan

un desarrollo equitativo dentro del cuerpo de agua evaluado. (Tabla 7).

0 1 2 3 4 5 6 7 8 9

Chaetoceros sp2

Skeletonema sp

Chaetoceros sp1

Nitzschia sp1

Chaetoceros sp3

Navicula sp

Pleurosigma sp

Lyngbya sp

Odontella sp

Nitzschia sp2

Surirella sp

Gyrosigma sp

Cocconeis sp

Abundancia (Ind/L)

Mo

rfo

esp

ecie

s

5

58

Cyanobacteria Bacillariophyta

30

28

5

Mediophyceae Bacillariophyceae Cyanophyceae



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A su vez, el índice de Margalef registra una riqueza variada de la comunidad fitoplanctónica evaluada para el punto de control

evaluado, donde el número de especies fue normal en función del número de individuos con un valor de 2,89 bits. Por su parte, el

índice de Shannon-Wiener, arrojó un valor de H’= 2,50 bits/ind, indicando diversidades normales para el punto de monitoreo.

Tabla 7. Índices de diversidad biológica de fitoplancton. Ciénaga de Mallorquin.

ÍNDICES DE DIVERSIDAD

Resultados


Taxa_S 13

Individuals 63

Dominance_D 0,08592

Simpson_1-D 0,9141

Shannon_H 2,503

Margalef 2,896

Equitability_J 0,9757



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. Figura 10. Láminas de Fitoplancton reportado en la ciénaga de Mallorquin. A: Chaetoceros sp1, B: Chaetoceros sp2, C: Chaetoceros sp3, D: Coconeis sp, E: Gyrosigma sp,

F: Lyngbya sp, G: Nitzschia sp1, H: Nitzschia sp2, I: Odontella sp .J: Pleurosigmasp K: LSkeletpnema sp, L. Surirella sp.



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10.2.2. ZOOPLANCTON

El zooplancton es un conjunto de organismos animales del plancton que tienen como hábitat principal la columna de agua.

Algunos de sus organismos son fitoplanctonófagos, carnívoros, omnívoros y otros, capaces de filtrar sin distinción o de capturar

en forma selectiva organismos de mayor tamaño (Riley, 1946). En lo que corresponde al zooplancton herbívoro es de suma

importancia al encargarse de canalizar y transferir el carbono fijado por el fitoplancton hacia los niveles tróficos superiores. En su

papel en la productividad local el zooplancton, delimita las rutas de transferencia energéticas y por ende la producción secundaria

potencial de un área (Frank et al., 2005).

Dentro de la división de este grupo se encuentran los que viven permanentemente en el plancton como los Copépodos,

Cladóceros, Apendicularios, Eufausiáceos, Quetognatos e Hidromedusas y algunos grupos en sus fases tempranas de desarrollo

(microplancton) como los rotíferos, (meroplanctónico), larvas de peces, moluscos, crustáceos y equinodermos, los cuales al

finalizar su fase larval se incorporan a sus respectivos hábitats bentónico, demersal o pelágico (Newell y Newell 1963, Wickstead

1965, Boltovkoy 1981, 1991 Lalli y Parsons 1993). Se calcula que los copépodos pueden representar entre el 35% y 50% de la

biomasa zooplanctónica, sin embargo, es poca su producción secundaria, por poseer ciclos de vida más largos que los rotíferos y

cladóceros (Margalef, 1983). Los Cladóceros superan en biomasa a los rotíferos, debido a que estos solo dominan bajo

condiciones muy eutróficas.

El zooplancton en los ecosistemas marinos varía con las condiciones hidrográficos del mar y con la cantidad de fitoplancton

disponible (Linquist, 1961). Suárez - Morales & Rivera-Arraiga (1998) consideran que las mareas son los principales mecanismos

transportadores de plancton en las zonas costeras. De igual manera, está comunidad de plancton está constituido por especies



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que tienen una alta tolerancia al estrés ambiental natural y antrópico (procesos de eutrofización y/o altas concentraciones de

sustancias tóxicas como metales pesados e hidrocarburos) y una rápida respuesta a los cambios (Gómez, 2011). Estas

características los convierten en excelentes indicadores del grado de deterioro del sistema. Además, su patrón de distribución

espacial y sucesión estación en cada ciclo anual son otros indicadores ecológicos que reflejan el estado de salud del ecosistema

y pueden llegar a caracterizar las zonas marinas.

HALLAZGOS - COMUNIDAD ZOOPLANCTÓNICA

Durante el análisis de las muestras colectadas en el área de estudio se evidencio una baja densidad de la comunidad

zooplanctónica en el punto de monitoreo, reportándose dos morfoespecies, incluyendo el estadio inmaduro de la clase

Malacostraca (Larva Nauplio) (Tabla 8).

Se recolectó en total 30 Ind/L, distribuidos en dos órdenes y dos clases pertenecientes al Phylum Arthropoda. La mayor

abundancia la presentó la morfoespecie Larva Nauplio con 19 Ind/L, mientras que Copépodo Cyclopoide presentó un valor de 11

Ind/L (Tabla 8).

Debido a la poca representatividad de individuos no se realizaron índices de diversidad en el punto de control evaluado.

Tabla 8. Análisis cuantitativo de zooplancton asociada a la masa de agua estuarina en un sector de la ciénaga de Mallorquín.

PHYLUM CLASE ORDEN FAMILIA GRUPO TAXONÓMICO

Resultados


Arthropoda Malacostraca Decapoda - Larva Nauplius 19

Hexanauplia

Cyclopoida - Copépoda - Cyclopoide 11

RIQUEZA (s) 3

ABUNDANCIA (Ind/L) 30

Figura 11. Comunidad Zooplanctónica encontrada en el área de muestreo. A. Larva Nauplio, B. Copépodo Cyclopoida.



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10.2.3 MACROINVERTEBRADOS SM 10500 B, C.

Los macroinvertebrados bentónicos agrupan a los organismos que presentan tamaños superiores a 0,5 mm y que viven en el

fondo del agua, sobre y debajo de las piedras, en la hojarasca, en las raíces y en la vegetación acuática. Estos organismos se

componen principalmente por moluscos, anélidos, artrópodos y platelmintos; siendo los artrópodos los más numerosos, los

cuales están conformados por larvas y ninfas de efemerópteros, odonatos, plecópteros, neurópteros, hemípteros, coleópteros,

tricópteros, lepidópteros y dípteros.

Estos organismos juegan un papel muy importante en el funcionamiento de los ecosistemas acuáticos, interviniendo en la

productividad primaria y en el flujo de nutrientes. Asimismo, son indicadores biológicos que permiten evaluar el grado de

contaminación, ocasionado por las actividades humanas en los ecosistemas fluviales (Muñoz et al 2001).

Cuando se habla de características ideales de un bioindicador, se observa que sólo unos pocos organismos pueden satisfacer

estos requerimientos. Muchos autores consideran a los macroinvertebrados acuáticos como los mejores bioindicadores de la

calidad del agua, destacándose por tener una amplia distribución geográfica, una gran riqueza de especies con capacidad de

adaptabilidad y tener ciclos de vida largo que posibilitan monitorear los gradientes de contaminación y los cambios ambientales

en el ecosistema (Giacometti 2006; Hahn 2009 y Roldan 2008).

Macoma sp



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10.2.3.1 MACROINVERTEBRADOS BENTÓNICOS

Se identificaron en total de 134 Ind/ cm3, pertenecientes a 3 clases, 5 órdenes y 5 familias de macroinvertebrados bentónicos, de

los Phylum Mollusca y Arthropoda. De manera general, la morfoespecie con mayor abundancia fue Anomalocardia sp, siendo las

más representativa al aportar el 90 % de la abundancia total relativa (Tabla 9 y Figura 12). El elevado número de individuos de

este bivalvo (Anomalocardia sp), posiblemente este relaconada con la capacidad para mantener una alta tasa de crecimiento en

condiciones de alta materia organica y su tolerancia a rangos amplios de salinidad por periodos prolongados (Quirós & Arias

2013).

Tabla 9. Macroinvertebrados bentónicos asociados al lecho marino del margen continental.


Resultados


Mollusca Bivalvia

Nuculanida Nuculanidae Adrana sp 8

Venerida Veneridae Anomalocardia sp 121

Cardiida Tellininae Tellina sp 1

Macoma 2

Gastropoda Neogastropoda Nassariidae Nassarius 1

Arthropoda Hexanauplia Sessilia Balanidae Balanus sp 1

RIQUEZA (s) 6

ABUNDANCIA (5574 cm3) 134

Figura 12. Abundancia general relativa de morfoespecies reportadas en la masa de agua.

0 20 40 60 80 100

Anomalocardia sp

Adrana sp

Macoma

Tellina sp

Nassarius

Balanus sp

Abundancia relativa (%)

Mo

rfo

esp

ecie

s



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Los valores obtenidos para los índices de Margalef (1,021) y de Shannon (0,432 bits), indicaron una comunidad de

Macroinvertebrados bentónicos poco variada y poco diversa en la Ciénaga de Mallorquín. Por otra parte, el índice de

equitabilidad de Pielou, registra valores muy bajos en la distribución de las abundancias dentro de las diferentes morfoespecies

identificadas, ya que se encontró poco uniforme, debido al notorio predominio Anomalocardia sp, sobre las demás especies

identificadas (Tabla 10).

Tabla 10. Índices de diversidad biológica de macroinvertebrados asociados al lecho marino.


Resultados


Taxa_S 6

Individuals 134

Dominance_D 0,8193

Simpson_1-D 0,1807

Shannon_H 0,4328

Margalef 1,021


Figura 13. Organismos más comunes de la comunidad bentónica. A. Anomalocardia sp, B. Macoma sp, C. Tellina sp, D. Adrana sp, E. Nassarius sp, F. Balanus sp.



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10.2.3.2 MACROINVERTEBRADOS ACUÁTICOS

La composición de la fauna acuática encontrada en la ciénaga de Mallorquín, estuvo constituida 11 morfoespecies,

pertenecientes a 8 familias, 8 órdenes, 5 clases del Phylum Arthropoda y Mollusca. Las morfoespecies más abundantes o

dominantes en términos generales fueron Balanus sp (35 %), Melampus coffea (34 %) y Anomalocardia sp (19,4 %)

representadas con el 88% de la abundancia total relativa (Tabla 11 y Figura 14).

Tabla 11. Macroinvertebrados acuáticos asociados a la ciénaga de Mallorquín.


Resultados


Arthropoda Malacostraca Decapoda Ocypodidae Uca sp 7

Arthropoda Hexanauplia Sessilia Balanidae Balanus sp 91

Mollusca

Bivalvia

Nuculanida Nuculanidae Adrana sp 1

Venerida Veneridae Anomalocardia sp 51

Leukoma sp 1

Cardiida Tellininae Tellina sp 4

Macoma sp 1

Gastropoda

Ellobiida Ellobiidae Melampus coffea 89

Melampus monile 2

Cycloneritida Neritidae Nerita sp 9

Neogastropoda Melongenidae Melongena sp 6

RIQUEZA (s) 11

ABUNDANCIA 262



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Figura 14. Abundancia general relativa de morfoespecies reportadas en la masa de agua.

Los análisis de los índices de diversidad indicaron una baja riqueza y abundancia en la estación de muestreo, dado los valores

menores a 3 obtenidos para los índices de Shannon-Wiener y Margalef (Tabla 12). Los valores de equidad, que reflejan la

distribución de los individuos entre las especies, mostraron valores relativamente bajos, ya que, se registra un predominio de las

especies Balanus sp y Melampus coffea sobre las demás morfoespecies identificadas.

Tabla 12. Índices de diversidad biológica de macroinvertebrados acuáticos en la ciénaga de Mallorquín.


Resultados


Taxa_S 11

Individuals 262

Dominance_D 0,2767

Simpson_1-D 0,7233

Shannon_H 1,517

Margalef 1,796


0 5 10 15 20 25 30 35 40

Balanus sp

Melampus coffea

Anomalocardia sp

Nerita sp

Uca sp

Melongena sp

Tellina sp

Melampus monile

Adrana sp

Leukoma sp

Macoma sp

Abundancia relativa (%)

Mo

rfo

esp

eci

es



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Figura 15. Organismos más comunes de la comunidad bentónica. A. Balanus sp, B. Melongena sp, C. Macoma sp, D. Leukoma sp, E. Tellina sp, F. Anomalocardia sp G.

Melampus coffea, H. Melampus monile, I. Neritina sp, J. Uca sp.



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11. CONCLUSIONES.

El análisis del componente fisicoquímico, microbiológico e hidrobiológico realizado en la ciénaga de Mallorquín, permitió

establecer los siguientes diagnósticos que surgen como conclusión.

Las variables pH y temperatura medidas en el agua superficial en las estaciones de control en la ciénaga Mallorquín, se

mantienen con valores dentro de los rangos aceptables, indicando condiciones fisicoquímicas adecuadas para el desarrollo de

especies. En cuanto a los resultados de laboratorio se reportan concentraciones no detectables de Nitratos, Nitrógeno amoniacal,

Nitrógeno Total y Coliformes Fecales para los puntos de control.

Se registra contaminación microbiológica por Coliformes Totales en el punto de control, poniendo de manifiesto la afectación por

vertimientos de las aguas residuales a la ciénaga Mallorquín.

En cuanto al componente hidrobiólogico, se encontraron diversidades normales en la mayoría de los grupos evaluados, cabe

resaltar las altas densidades y riqueza de géneros pertenecientes a grupos indicadores de buena calidad de agua, como son el

fitoplancton, zooplancton y los macroinvertebrados.

La fauna macroinvertebrada asociada al lecho, está representada principalmente por una comunidad de moluscos bivalvos y

gasterópodos, propios de este tipo de ecosistema estuarino.

La comunidad planctónica está constituida por una microflora y microfauna típica de las aguas del Caribe colombiano.



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12. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS. Arias de La Peña, C. M. 1991. Estudio Preliminar de algunos Grupos del Ictioplancton del Golfo de Nicoya, Costa Rica. Tesis para optar al grado de Magister Scientae. Universidad de Costa Rica. 367 pp. Beck, W. M., Heck, I. K., Able, W. K., Childers, I. D., Eggleston, B. D., Gillanders, M. B., Halpern, B., Hays, G. C., Hoshino, K., Minello, J. T., Orth, J. R., Sheridan, F. P. & M. P. Weinstein. 2001. The identification, conservation, and management of estuarine and marine nurseries for fish and invertebrates. BioScience 51 (8): 633-641. Ciechomski, J. 1981. Ictioplancton. En: D. Boltovskoy (ed.) Atlas del zooplancton del Atlántico sudoccidental y métodos de trabajo con zooplancton marino. Instituto de Investigación y Desarrollo Pesquero, Mar de Plata. 829-861 pp. Cowan, J. H. & SHAW, R. F. 2002. En: Fuiman and Werner (eds). Fishery Science. The unique contribution s of early life stages. Blackwell Science Ltd. 88-111 pp. Fernández-Leiva, S. 1996. Taxonomía del Ictioplancton en la Isla del Coco, Costa Rica. Tesis para optar al grado de Licenciatura en Biología con especialidad en recursos acuáticos. Universidad de Costa Rica. 175 pp. Fuiman, L. A. 2002. En: Fuiman and Werner (eds). Fishery Science. The unique contribution s of early life stages. Blackwell Science Ltd. 1-32 pp. Funes Rodríguez, R. y R. González Armas. 2002. Diversidad taxonómica de las larvas de peces de Bahía Magdalena y zona nerítica adyacente (área prioritaria costera No. 4). Instituto Politécnico Nación al. Centro Interdisciplinario de Ciencias Marinas. Informe final SNIB-CONABIO proyecto No. S102. México, D.F. Keckeis, H. & Schiemer, F. 2002. En: Fuiman and Werner (eds). Fishery Science. The unique contribution s of early life stages. Blackwell Science Ltd. 272-288pp. Kendall, A. W., E. H. Ahlstrom, & H. G. Moser. 1984. Early life history stages of fishes and their characters In: Ontogeny and Systematics of Fishes, H. G. Moser et al. (eds). Amer. Soc. Ichthy. Herpetol. Spec. Publ. No. 1, Allen Press, Lawrence, KS. 11-22 pp. Richards, W.J. y L. Vásquez Yeomans. 1996. Ictioplancton. In: R. Gasca y E. Suárez (EDS). Introducción al estudio del zooplancton marino. ECOSUR/CONACYT. México, D. F. p. 631-664. Silva-Segundo, C. A., R. Funes-Rodríguez, M. Hernández-Rivas, E. Rios-Jara, E.J Robles-Jarero Y A. Hinojosa-Medina. 2008. Asociación es de larvas de peces en relación a cambios ambientales en las bahías Chamela, Jalisco y Santiago-Manzanillo, Colima (2001-2002). Hidrobiológica 18(1): 89-103 pp. Muñoz E, G. Mendoza & C. Valdovinos. 2001. Evaluación rápida de la biodiversidad en cinco sistemas lénticos de Chile central: macroinvertebrados bentónicos. Gayana 65(2): 173-180. Giacometti J. & F. Bersosa. 2006. Macroinvertebrados acuáticos bioindicadores de calidad de agua en el río Alambi. Boletín Técnico 6, Serie Zoológica. Hahn Ch; D. Ricardo; A. Grajales; G. Duque & L. Serna. 2009. Determinación de la calidad del agua mediante indicadores biológicos y fisicoquímicos, en la estación piscícola, Universidad de Caldas, municipio de Palestina, Colombia. bol.cient.mus.hist.nat. 13 (2): 89 – 105. APHA. 2012. Standards Methods for the Examination of Water and Wastewater 22 Th Edition, section, 10500 B y C. Centro Control Contaminación del Pacífico – CCCP. (2002). Compilación oceanográfica de la Cuenca Pacífica colombiana. Imágenes de la Naturaleza. Tumaco. Falkowski, P. G., M. E. Katz, A. H. Knoll, A. Quigg, J. A. Raven, O. Schofield y F. J. R. Taylor. 2004. The evolution of modern eukaryotic phytoplankton. Science 305:354-360. Raymont, J.E.G. 1963. Plankton and productivity in the oceans. Pergamon Press, Oxford. 660 p. Simón, N. A. L. Cras, E. Foulon y R. Lemée. 2009. Diversity and evolution of marine phytoplankton. C. R. Biologies 332:159-170.



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Proyectó Revisó Aprobó

Elaboración de informes Director de Áreas Técnicas Gerente

-Fin del Informe- Informe válido solo para las muestras analizadas.

La reproducción total o parcial de este informe debe hacerse con autorización de Zonas Costeras S.A.S.

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