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Micetoma
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MICETOMA
El micetoma es un pseudotumor inflamatorio crónico, localizado, no contagioso que afecta
progresivamente tejido cutáneo, subcutáneo y óseo, produciendo deformación y destrucción de los
tejidos invadidos, donde el agente causal forma micro colonias, que a simple vista tienen el aspecto
de gránulos de color blanco-amarillento, negro o rojo y que son eliminados por trayectos fistulosos.
El síndrome: tumefacción, presencia de fístulas y gránulos se considera patognomónico de un
micetoma.
Agentes etiológicos. Hay dos grupos fundamentales de microorganismos productores de
micetomas:
Eumycetes u hongos verdaderos.
Bacterias del orden de los Actinomycetales.
Actualmente se considera que 23 especies de hongos verdaderos y 10 especies de actinomicetos
pueden ser agentes causales de la enfermedad. La clasificación taxonómica de los agentes más
importantes de ambos grupos se describe a continuación:
División: Ascomycota
Clase: Euascomycetes
Orden: Dothidiales
Familia: Leptosphaeriaceae
Leptosphaeria senegalensis
Familia: Didymosphaeriaceae
Neostudina rosatti
Orden: Microascales
Familia: Microacaceae
Pseudoallescheria boydii (anam. Scedosporium apiospermium)
Clase: Hyphomycetes
Acremonium kiliensi
Acremonium recifei
Exophiala jeanselmei
Trematosphaeria grisea (Madurella grisea)
Madurella mycetomatis
Clase: Coelomycetes
Pyrenochaeta romeroi
También Aspergillus nidulans, especies de Fusarium y de Curvularia (vistos anteriormente como
productores de Aspergilosis, Hialo y Feohifomicosis, respectivamente) han sido descriptos como
agentes productores de micetomas.
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Dominio: Eubacteria
Reino: Monera
División: Schizomycota
Clase: Eubacter
Orden: Actinomycetales
Familia: Streptomycetaceae
Actinomadura madurae
Actinomadura pelletieri
Nocardia asteroides
Nocardia brasiliensis
Nocardia otitidiscaviarum
Familia: Streptomycetaceae
Streptomyces somaliensis
Los micetomas producidos por los eumycetes son llamados micetomas eumicóticos o también
micetomas maduromicóticos, al haber sido identificados por primera vez en la ciudad de Madura
(India). Los micetomas producidos por bacterias son llamados micetomas actinomicóticos.
En la tabla N° 1 se muestra la frecuencia y color de los gránulos de los agentes mencionados:
Tabla 1: AGENTES PRODUCTORES DE MICETOMAS
Agentes Color de los gránulos Frecuencia
Micetomas actinomicóticos
Nocardia asteroides Blanco Raro
Nocardia. brasiliensis Blanco Común
Nocardia otitidiscaviarum Blanco a amarillo Raro
Actinomadura madurae Blanco a amarillo Común
Actinomadura pelletieri Rojo Ocasional
Steptomyces somaliensis Amarillo a café Ocasional
Micetomas eumicóticos
Madurella mycetomatis Negro Común
Trematosphaeria grisea Negro Ocasional
Pseudoallescheria boydii Blanco Común
Acremonium kiliensi Blanco Raro
Acremonium recifei Blanco Raro
Exophiala jeanselmei Negro Raro
Pyrenochaeta romeroi Negro Raro
Leptosphaeria senegalensis Negro Raro
Neostudina rosatii Negro Raro
Fusarium solani Blanco Raro
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EPIDEMIOLOGÍA
Fuentes y vías de infección. Los microorganismos causales viven como saprófitos en la
naturaleza, en el suelo o en restos vegetales e ingresan al organismo a través de algún traumatismo,
habitualmente una espina, aunque también pueden hacerlo mediante astillas de madera, piedras,
instrumentos metálicos, picaduras de insectos o mordeduras de animales.
Distribución. Es una enfermedad que existe en todo el mundo. Su distribución depende del clima,
el relieve del suelo, la precipitación fluvial y otros factores ecológicos. Es más frecuente en países
de clima tropical y subtropical. La mayor casuística corresponde a África ecuatorial. Sudán registra
300-400 casos anuales. Los agentes más comunes son: M. mycetomatis, S. somaliensis y A.
pelletieri. México ocupa el segundo lugar de endemicidad, con condiciones climáticas similares a
la de África, pero difiere en los agentes etiológicos predominantes que son, N. brasiliensis (86%)
y A. madurae (10%). La tercera región endémica es en Madura, India, en donde el 65% de los
micetomas son actinomicóticos (A. madurae, N. brasiliensis y A. pelletieri) y el 35 % restante
corresponde a M. mycetomatis.
En la Argentina se han descrito muchos casos de micetomas, sobre todo en la zona Noroeste y
Centro de nuestro país (Salta, Jujuy, Tucumán, Santiago del Estero); N. brasiliensis y T. grisea
han sido los agentes más aislados.
Predomina en el sexo masculino, con proporción 4:1; se presenta en más del 60 % de los casos en
campesinos que andan descalzos, quienes están más expuestos a los traumatismos. La edad
promedio de presentación es entre los 20 y 50 años. El tiempo de evolución puede ser muy variable,
desde pocos meses hasta 50 años, siendo, en la mayoría de los casos, de 2 a 3 años. Se considera
que, si bien el estado nutricional, la higiene y el estado de salud influyen, la incidencia de esta
enfermedad depende más de la exposición al suelo y de los hábitos de trabajo del paciente, por lo
que puede considerarse como una enfermedad ocupacional.
En el Centro de Referencia de Micología (CEREMIC) en Rosario, en un período de 40 años (1959-
1998) se diagnosticaron 17 casos de micetomas: 10 eumicóticos (59 %) y 7 actinomicóticos (41
%). Las especies más aisladas fueron T. grisea (29,5 %) y N. asteroides (17,6 %). Otros agentes
aislados fueron: P. boydii, M. mycetomatis, F. solani, N. brasiliensis y A. madurae. En el 100 %
de los casos, la enfermedad fue observada exclusivamente en el pie y en pacientes del sexo
masculino. Es de destacar que la mayoría de éstos provenían de otras zonas del país, generalmente
de la región del norte argentino, que corresponde a la zona endémica de nuestro país.
CUADRO CLÍNICO
Las partes descubiertas del cuerpo son las localizaciones más frecuentemente involucradas;
predominan las infecciones en el pie aunque puede observarse esta enfermedad en rodilla, muslo,
mano, antebrazo, brazo, hombro, pared abdominal, región pre-esternal y más raramente cara o
cabeza. La localización del micetoma tiene relación directa con el sitio de inoculación. En la figura
1 se muestran las frecuencias de micetoma en distintas partes del cuerpo.
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Figura 1: Frecuencia de las localizaciones de micetoma.
Si bien pueden existir variaciones en el síndrome relacionadas con las diferentes etiologías, el sitio
anatómico afectado, el estado general del paciente y la duración de la lesión, las características
clínicas son, en forma esencial, las mismas. La lesión primaria se manifiesta por la inflamación
local, poco dolorosa del tejido subcutáneo en el lugar de inoculación. El cuadro evoluciona
lentamente hacia el reblandecimiento de la zona afectada donde posteriormente se abren una o más
fístulas a través de las cuales drena una secreción serosa, serosanguinolenta o seropurulenta, con
los gránulos característicos. Esta fístula puede curar de manera definitiva (aparecen cicatrices
fibrosas, hipo o hiperpigmentadas), puede dar una falsa cicatrización o puede permanecer
drenando. A medida que la enfermedad avanza se van abriendo nuevos trayectos fistulosos.
La evolución es lenta pero progresiva, sin regresión espontánea. La zona afectada aumenta de
volumen, se deforma, presenta un aspecto tumoral, con una consistencia dura de tipo leñoso. La
superficie está salpicada de muchas eminencias pequeñas, cada una de las cuales contiene el
orificio de una fístula. Muchas veces se advierte un borde mamelonado y carnosos en la boca de
las mismas (Fig 2). El microorganismo invade los tejidos más profundos destruyendo el tejido
conectivo subcutáneo, huesos (en algunos casos) y ligamentos, aunque más raramente afectan
tendones, músculos, y nervios.
A
B
Figura 2: Aspecto de micetomas. A) Micetoma actinomicótico producido por Actinomadura
madurae. B) Micetoma eumicótico producido por Trematosphaeria grisea
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Generalmente los micetomas actinomicóticos evolucionan más rápidamente que los eumicóticos
y los agentes actinomycetales son más osteofílicos, produciendo osteomielitis, osteoporosis e
hipertrofia con fusión de los huesos más pequeños. Puede haber discapacidad funcional del
miembro afectado por fibrosis de tejidos blandos, aumento de volumen o dolor, pero depende sobre
todo de la localización y es mayor cuando afecta a una articulación.
En la enfermedad eumicótica difícilmente haya diseminación hacia otras áreas cutáneas, en cambio
los agentes actinomicóticos (principalmente Nocardia brasiliensis) tienen gran tendencia a
diseminarse y provocar lesiones secundarias en otros sitios de la piel u órganos internos. Otras
diferencias entre los dos cuadros son los siguientes:
Los agentes actinomicóticos producen lesiones más extensas y obliterantes en hueso, con cambios
tanto líticos como hipertróficos; durante el curso de la infección eumicótica, se presenta lesión
tardía del hueso con efectos líticos, pero no hipertróficos. Además, los actinomicetos invaden el
músculo más rápidamente que los eumicetos y causan proliferación celular, que contribuye a que
los bordes sean elevados alrededor de las fístulas, abiertas en la superficie cutánea. (Figura 2A)
Diagnóstico diferencial. El micetoma presenta un cuadro típico que debe diagnosticarse
rápidamente. Se debe descartar la actinomicosis, producida principalmente por Actinomyces
israelii que presenta un cuadro semejante de induración firme, hinchazón y formación de trayectos
fistulosos con gránulos, pero el inicio de la enfermedad, la naturaleza endógena y el cuadro clínico
completo son característicos y forman una entidad clínica bien definida. La nocardiosis
generalizada con su infección primaria en pulmones y un curso clínico muy diferente, conforma
un cuadro clínico separado. Si el agente es Nocardia asteroides, no hay gránulos. N. brasiliensis
puede considerarse como agente de nocardiosis si el sitio primario afectado es el tórax o los
pulmones y la diseminación a otras áreas puede dar lugar a “micetomas” en una gran variedad de
órganos.
La botriomicosis (actinofitosis estafilocóccica) es una entidad que se parece fielmente al
micetoma, ya que produce hinchazón, granos y fístulas que drenan. Entre los agentes productores
se incluyen: Staphylococcus aureus, Pseudomona aeruginosa, Proteus spp., y posiblemente
Escherichia coli. El examen de los gránulos identifica rápidamente esta enfermedad.
DIAGNÓSTICO MICROBIOLÓGICO.
Se basa en la descripción macro y microscópica de los gránulos, cultivos del material e
identificación de la cepa aislada.
MATERIALES: Pueden ser: pus o exudado obtenido por drenaje espontáneo o por presión de las
fístulas, que se deben recoger en gasa o recipiente estéril; o material de biopsia del trayecto
fistuloso. Generalmente se observan en estos materiales la presencia de gránulos que varían de
tamaño, de 300 a 2 mm o más, según el agente productor.
ESTUDIO MACROSCÓPICO DE LOS GRÁNULOS. Se debe realizar el estudio de su morfología,
textura, color y aspecto (los más pequeños pueden observarse al microscopio o lupa) que en
algunos casos pueden contribuir a esclarecer la identidad del microorganismo causante.
Las características macroscópicas de los gránulos actino y eumicóticos correspondientes a los
distintos agentes etiológicos se resumen en la Tabla 1.
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EXAMEN MICROSCÓPICO DIRECTO DE LOS GRÁNULOS. Se realiza con KOH y colorante
Azul Cotton (Gueguén). En el caso de un micetoma actinomicótico se puede observar el gránulo
formado por filamentos flexuosos muy finos, de 0,5 a 1 de diámetro, no tabicados, así como
también elementos cocoides y bacilares (Figura 3). Si es un micetoma eumicótico, se observa el
gránulo formado por filamentos hialinos o pigmentados, de 2 a 5 y la presencia de células
grandes, de 15 o más, en la periferia (Figura 4).
COLORACIONES. Gram-Nicolle: es de utilidad para describir la micromorfología de los
elementos actinomicóticos que pueden aparecer como formas filamentosas flexuosas, bifurcadas
o ramificadas y microsifonadas, Gram (+) y rodeados de un matriz Gram (-). La coloración de
Kinyoun se utiliza para poner en evidencia la ácido-resistencia de los elementos actinomicóticos.
En un corte del material de biopsia que contenga los gránulos, coloreado con hematoxilina-eosina,
se observa el centro de los granos actinomicóticos un color claro, poco organizado, luego una zona
de basofilia y eosinofilia en la periferia. (Figura 3) Algunas especies pueden presentar mazas en la
periferia que es un material fuertemente eosinófilo que da lobulaciones.
Figura 3: Gránulo actinomicótico – HE-100x
En el corte de un grano eumicótico teñido con H-E se observa un entrelazado de hifas con
características propias de acuerdo a cada agente etiológico (Figura 4). En el caso de Madurella
mycetomatis y Trematosphaeria grisea los filamentos están incluidos en una sustancia amorfa y
pigmentada llamada cemento.
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Figura 4: Gránulo eumicótico – HE - 400x
CULTIVOS:
Para los cultivos el mejor material es una biopsia profunda, dado que está libre de bacterias y de
hongos contaminantes. El criterio a seguir con los cultivos de la muestra, depende de lo observado
en el examen directo.
MICETOMAS EUMICÓTICOS
Las muestras o gránulos que contienen eumicetos se pueden lavar en solución salina que contenga
antibiótico (excepto cicloheximida) y sembrar en medio Agar Sabouraud y Agar Sabouraud-
cloranfenicol, e incubar a 28 ºC. El crecimiento de los agentes eumicóticos puede ser lento por lo
que los cultivos no deben descartarse hasta las seis semanas. La identificación se realiza a través
de la macromorfología y la micromorfología de las colonias, principalmente por las características
del micelio vegetativo y la producción de conidios (que se puede estimular con la utilización de
medios naturales, como agar papa zanahoria y agar harina de maíz). En la Tabla 2 figuran las
principales características macro y micromorfológicas de los hongos productores de micetomas.
Tabla 2: Micetoma eumicótico. Características macro y micromorfológicas de gránulos y colonias.
Especie Gránulo Histología (H-E) Morfología de
la colonia
Morfología microscópica
Pseudoallescheria
boydii
Blanco, suave,
oval a lobulado,
< 2 mm
Hifas hialinas, 5 , cél.
hinchadas enormes, <
20 , sin cemento,
bordes rojos, periferia
rosada
Crecimiento rápido
a vellosa blancuzco
a gris
Hifas hialinas, finas, aneloconidios
unicelulares, grandes, en forma de
limón, sobre hifas o anelóforos
simples (Figura 5), cleistotecios
oscuros. Anam.: Scedosporium
apiospermum y Graphium
Trematosphaeria
grisea
Negro, suave a
firme, oval a
lobulado, < 1
mm
Poca sustancia
cementante oscura en
bordes, células
poligonales en
periferia, filamentos
hialinos en centro
Crecimiento muy
lento (Tº optima a
30ºC), canela a gris,
afelpada a vellosa,
pigmento oscuro
difusible a 30ºC
Micelio estéril, presencia aislada de
clamidoconidios.
(Figura 6)
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Madurella
mycetomatis
Negro, firme a
quebradizo, oval
a lobulado, < 1
m, pueden estar
agregados
1-Tipo compacto con
cemento pardo
2-Tipo compacto con
cemento pardo en el
borde, células < 15
Crecimiento muy
lento (Tº optima
37ºC), vellosa,
aterciopelada, crema
a ocre
En cultivos viejos se ven esclerotes
negros < 2mm, en AHM muy
aislados conidios, en fialides
pequeñas. (Figura 7)
Pyrenochaeta
romeroi
Negros, blandos
y de forma
tubular, de 0,5 a
1,5
Centro vacío, amorfo,
cubierta periférica de
células poligonales
Crecimiento rápido
a 30ºC, colonia
vellosa, lanosa,
negro grisácea,
periferia clara
Hifas hialinas y pardas, picnidios
ostiolados parduscos, conidios
elípticos hialinas a amarillo
oscuro, nacen en fialides dentro de
picnidios
Exophiala
jeanselmei
Negro, suave,
irregular a
vermicular, de
tamaño variable
Centro del gránulo
hueco sin sustancia
cementante, células
vesiculares < 10
Crecimiento lento,
negra, 1º húmeda
luego aterciopelada,
reverso negro
1º células levaduriformes, anelides
largas tubulares, conidias variables
en tamaño, alargadas.
Leptosphaeria
senegalensis
Negro, suave,
irregular, 1 a 2
mm
Hifas negras y
sustancia de cemento
en la periferia, centro
hialino.
Crecimiento rápido,
gris, velloso,
reverso negro,
pigmento difusible
En AHM se forma ascostroma
negro, < 300 , ascosporas
alargadas a ovales tabicadas.
Neotestudina
rosatti
Blanco a
pardusco, suave,
< 1 mm
Poliédricos con
filamentos encajados
en la sustancia
cementante en la
periferia. Algunas
vesículas en el centro
basófilo
Crecimiento lento,
plegada, compacta,
color canela a
pardo, reverso
dematiáceo, Tº
optima a 30ºC
No hay conidios. Se producen
ascos en ascostromas no ostiolados
esféricos a ovales (350 ),
ascosporas negras, curvilíneas, de
dos células
En la Figuras 5, 6 y 7 se muestran las características micromorfológicas de los 3 hongos más
importantes, productores de micetomas:
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Figura 5: Pseudoallescheria boydii
Figura 6: Trematosphaeria grisea Figura 7: Madurella mycetomatis
MICETOMAS ACTINOMICÓTICOS
Los gránulos actinomicóticos se deben lavar varias veces con solución fisiológica estéril y se
siembran en los medios apropiados como agar sangre o infusión cerebro–corazón, Lowestein-
Jensen, medio Czapek sin sacarosa con rifocina y anzuelo de parafina; las cepas de Nocardia
crecen bien en Agar Sabouraud-extracto de levadura sin antibióticos. Se deben sembrar varias
placas o tubos e incubarse a 37ºC. Las cepas de Nocardia son de crecimiento rápido, las de
Actinomadura a menudo desarrollan después de 4 semanas de incubación. En la Tabla 3 figuran
las características macro y micromorfológicas de los actinomicetales productores de micetomas.
Anelide
Aneloconidio
Clamidoconidios
Fialides
Micetoma
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Tabla 3: Micetoma Actinomicótico. Características macro y micromorfológicas de gránulos y colonias.
Especie Gránulo Histología (H-E) Morfología de la colonia Morfología microscópica
Nocardia asteroides
Blanco, blando suave,
amorfo, 1 mm
Grupos de filamentos homogéneos,
forman una malla laxa., mazas raras
Crecimiento rápido a 37 ºC,
plegada, no vellosa amarillo-
naranja
Microfilamentos no ramificados,
que se fragmentan en bastones
cortos y cocos, acidorresistentes
Nocardia brasiliensis
Blanco a amarillo,
lobulado, blando, suave, 1
mm
Igual al anterior, mazas comunes. Crecimiento rápido a 30 ºC,
plegadas, no vellosa amarillo-
naranja
Microfilamentos no ramificados,
que se fragmentan en bastones
cortos y cocos, acidorresistentes
Nocardia
otitidiscaviarum
Ídem que el anterior Igual al anterior, mazas comunes. Crecimiento rápido a 30 ºC,
plegadas, no vellosa amarillo-
naranja
Microfilamentos, no ramificados,
que se fragmentan en bastones
cortos y cocos, acidorresistentes
Actinomadura
madurae
Blanco a Rosado, oval a
lobulado suave, grande,
5mm
Centro vacío, amorfo, cubierta
periférica densa, basófila, amplio
borde rosado, margen laxo, con
flequillo de filamentos, mazas, sin
cemento
Crecimiento rápido a 37 ºC,
blanca a crema, rugosa, no
vellosa.
Microfilamentos delicados, largos
sinuosos que no se fragmentan,
ramificados, no acidorresistente
Actinomadura
pelletieri
Rojo, duro, pequeño, oval
a lobulado, 1 mm
Redondo, homogéneo, coloración
negra, banda periférica clara, no hay
mazas, sin cemento
Crecimiento lento a 37 ºC,
pequeña, seca, no vellosa,
adherente, clara a rojo granate
Microfilamentos delicados,
ramificados, sin fragmentar,
ramificados, no acidorresistentes
Streptomyces
somaliensis
Amarillo, duro, redondo a
oval, grande 2 mm
Tamaño variable, centro amorfo,
púrpura claro, con manchas rosadas,
filamentos negros en el borde entero
sin mazas, tiene cemento
Crecimiento rápido a 30 ºC,
crema a pardo, rugoso, no
vellosa
Microfilamentos delicados
ramificados sin fragmentar, produce
esporas, no acidorresistentes
Micetoma
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PRUEBAS DE IDENTIFICACIÓN DE ACTINOMYCETALES AERÓBICOS:
Las consideraciones para la identificación de los actinomicetos aeróbicos son en primer lugar, la
composición de la pared celular, en segundo lugar la morfología de la colonia y de sus filamentos,
y por último, las reacciones fisiológicas. La micromorfología de la colonia se usa para determinar
la presencia de micelio aéreo, su color, ramificación, fragmentación y si la hay, formación de
esporos.
1-Composición de la pared celular
El análisis de la pared celular es un requerimiento único en este misterioso grupo de
microorganismos. Muchas especies de Nocardia, Streptomyces, Actinomadura, etc., son muy
variables en su morfología y aún en su fisiología. Así que lo primero que se considera para su
clasificación es la composición química de su pared (Tabla 4). Son pruebas laboriosas que
requieren equipamiento especial y experiencia. En un principio los estudios se basaron en las
diferencias en la composición de aminoácidos de la pared celular, pero luego se encontró que la
composición de lípidos polares de la pared, podían distinguir los diferentes grupos de
actinomicetos. Las paredes celulares de todos los actinomicetos contienen glucosamina, ácido
murámico, alanina y ácido glutámico. Además, se encuentran como componentes importantes en
los grupos respectivos: (I) ácidos LL-diaminopimélico (DAP) y glicina; (III) meso-DAP; (IV)
meso-DAP, arabinosa y galactosa.
Tabla 4: Constituyentes de la pared celular en relación con la Taxonomía
Tipo de pared Componentes
principales en la pared
Tipo celular
completo Género
I LL-DAP, glicina Glicina Streptomyces
Nocardioides
II meso-DAP, glicina Xilosa
Arabinosa Micromonospora
III meso-DAP
Madurosa
Galactosa
Ninguno
Actinomadura
Dermatophilus
Microbispora
Nocardiopsis
Thermoactinomyces
Geodermatophilus
IV meso-DAP Arabinosa
Galactosa
Nocardia
Rhodococcus
Corynebacterium
Mycobacterium
V Lisina, Ornitina Ácido aspártico Actinomyces
VI Lisina, ac aspártico,
galactosa Oerskovia
2-Morfología
El estudio de la morfología se realiza preparando cultivos en portaobjetos (lámina gelosada) en
medios proteínicos o pobres. La incubación se extiende entre de 10 a 14 días a temperatura a 30-
37ºC. En un medio proteínico se ha observado: color del micelio aéreo, morfología del micelio
vegetativo (la ramificación y la fragmentación de los microfilamentos y las esporas), producción
de pigmento difusible y no difusible.
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3-Pruebas fisiológicas
La descomposición de los aminoácidos y de las proteínas, así como la utilización de los azúcares,
es un elemento importante en la identificación de actinomicetos aeróbicos. Después de haber
seleccionado una colonia aislada de la primera siembra, se hace un subcultivo en agar cerebro
corazón (sin añadir azúcares). Después que ha habido crecimiento suficiente, se hacen estrías en
un cuadrante de placa de Petri conteniendo medio con: tirosina, xantina, hipoxantina y caseína, en
estas placas se deben incorporar controles positivos y negativos. Dichas pruebas se incuban a
temperatura ambiente durante dos semanas (en caso de caseína), tres semanas (en caso de xantina)
y cuatro semanas (en caso de tirosina). Se pueden acelerar los resultados en algunos casos
incubando las pruebas a 35 ºC. Una combinación de estas y otras pruebas, permite separar las
diferentes especies de Nocardia, Actinomadura y Streptomyces. (Tabla 5).
En los últimos tiempos se han propuesto una serie de métodos de identificación de actinomicetales
aeróbicos fundamentados en la identificación de enzimas preformadas o en el uso de equipos
comerciales generados para otros fines, como lo son los equipos API para bacterias o levaduras;
pero que han demostrado tener aplicación a estos efectos, aunque hasta el momento estas pruebas
solo son de aplicación a un número reducido de especies, pero afortunadamente son las más
frecuentemente aisladas en muestras clínicas.
TRATAMIENTO
Dificultoso por la baja penetración de ATB en tejido fibrosado
MICETOMA EUMICÓTICOS
- Itraconazol: 400mg/dia- 6 a 18 meses
- Posaconazol: 800mg/día 18 a 32 meses (no disponible)
- Cirugía conservadora (si no tiene lesión ósea): se extrae todo el micetoma con margen de
seguridad que es reemplazado por tejido de granulación+transplante de piel
- Bajo índice de curación: solo el 30% de los pacientes se curan y el 33% presentan mejoría.
MICETOMA ACTINOMICÓTICO
- Trimetroprima-sulfametoxazol : 80-40 mg/ kg/día, meses a años
- Clotrimazol-ciprofloxacina (tiene mayor penetración ósea): 750mg/día por más de 1 año.
Tabla 5