INFORME DE PRACTICAS Kike (Reparado).docx

OUNIVERSIDAD NACIONAL PEDRO RUIZ GALLOFACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS

DECANATO

CIUDAD UNIVERSITARIA – LAMBAYEQUE – PERÚTELÉFONO: 283610 – FAX: 074-283146

INFORME DE PRÁCTICAS PRE - PROFESIONALES

PRACTICANTE:

SANDOVAL ZABARBURÚ, Rubén Enrique

CARRERA PROFESIONAL Y ESPECIALIDAD:

MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA

LUGAR DE PRÁCTICAS:

HOSPITAL REGIONAL LAMBAYEQUE

Av. El Progreso y Vía de evitamiento - Chiclayo - Teléfono: (074) 437529

PERIODO DE PRÁCTICAS:

14 DE ENERO – 14 DE MARZO DE 2013

Lambayeque, Mayo de 2013

UNIVERSIDAD NACIONAL PEDRO RUIZ GALLO

FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS

DECANATO

INFORME DE PRÁCTICAS PRE - PROFESIONALES

I. DATOS INFORMATIVOS

I.1. PRACTICANTE :

Sandoval Zabarburú Rubén Enrique

1.2 LUGAR DE PRÁCTICAS:

HOSPITAL REGIONAL LAMBAYEQUE

Av. El Progreso y Vía de evitamiento - Chiclayo - Teléfono: (074) 437529

1.3. DIRECTOR DE LA INSTITUCIÓN:

Dr. Victor Daniel Linares Baca

1.4. JEFE DE LABORATORIO:

Dra. Verónica Yupton Chávez

1.5. DURACIÓN DE LA PRÁCTICA:

2 Meses

1.6. FECHA DE INICIO Y TERMINACIÓN :

Inicio: 14 de Enero de 2013

Termino: 14 de Marzo de 2013

2. PLAN DE PRÁCTICAS

2.1. PRESENTACIÓN:

Al terminar su carrera profesional, un estudiante necesita poner en práctica los conocimientos adquiridos en sus aulas y transmitidos por sus mentores, es por ello que recurre a la realización de las Prácticas Pre-profesionales. Estas cumplen un rol muy importante, por lo que son de carácter obligatorio, ya que tienen por finalidad ampliar los conocimientos que el estudiante obtiene durante sus estudios y lograr que el estudiante adquiera habilidades y destrezas que solo pueden cultivarse en el ejercicio de la profesión, así como también desarrollar la sensibilidad del estudiante con respecto a la sociedad, dándole la oportunidad de conocer las necesidades y problemas de la comunidad.

Otro de los objetivos de las prácticas Pre- profesionales es brindar orientación, capacitación y completar su formación profesional, a través de un contacto con el mundo laboral.

El Hospital Regional Lambayeque brinda servicios integrales accesibles de salud individual y colectiva, en el proceso de salud – enfermedad de la población de la Región Norte Oriente del Perú, con calidad, equidad y eficiencia, contando con un equipo multidisciplinario calificado, competente y en proceso de capacitación permanente, desarrollando investigación y docencia.

El Hospital Regional Lambayeque brinda atención integral especializada, que encabeza la red de servicios en la región norte y oriente del país, comprometidos con las necesidades sanitarias de la comunidad, la calidad asistencial, la mejora continua de sus resultados, la satisfacción de usuarios y el respeto al medio ambiente. Así como el desarrollo de la investigación, docencia en pre y post grado y que contribuye al bienestar y desarrollo de la población de la Región Lambayecana.

COMITÉ DE GESTIÓN

2.2. DESCRIPCIÓN DE LA INSTITUCION O LABORATORIO

2.2.1. ORGANIGRAMA ORGANIZACIONAL DEL LABORATORIO

DIRECCIÓN REGIONAL DE SALUD

SECRETARIA

DIRECCIÓN DE LABORATORIO

ÁREA

DE

PARA

SITO

LOG

ÍA

ÁREA

DE

ENFE

RMED

ADES

M

ETAX

ÉNIC

AS

ÁREA

DE

BACT

ERIO

LOG

ÍA E

N

ENTE

ROPA

TÓG

ENO

S

ÁREA

DE

ETS/

SID

A

ÁREA

DE

PATO

LOG

ÍA

ÁREA

DE

BRO

MAT

OLO

GÍA

ÁREA

DE

ANÁL

ISIS

CLÍ

NIC

OS

Y M

ICO

LOG

ÍA

ÁREA

DE

TBC

ÁREA

DE

RECE

PCIÓ

N Y

TO

MA

DE

MU

ESTR

AS

ÁREA

DE

VIR

US

RESP

IRAT

ORI

O

ÁREA

DE

ZOO

NO

SIS

YEN

TOM

OLO

GÍA

2.2.2. PERSONAL:

Cargo: Responsable del área de Análisis Clínico y Micología. Blga. Rosa Arboleda.

Funciones:1. Procesamiento de muestras para diagnostico hematológico, bioquímica,

inmunológico, parasitológico, y microbiológico de pacientes de establecimientos de Salud y particulares.

2. Preparación de insumos, materiales y reactivos para el procesamiento de muestras.

3. Elaboración de plan de trabajo para el área de análisis clínico.4. Supervisar al personal técnico y auxiliar de su área.5. Reporte oportuno de resultados, así como de las actividades propias del área.6. Mantener al día la información de referencia y contrarreferencia de su área. 7. Elaborar procedimientos, instructivas y otros documentos de uso de área.

Cargo: Responsable de la dirección del laboratorio y del área de Zoonosis - Blgo. Wilmer Natividad Carpio Montenegro.

Funciones:1. Participar con el equipo de salud en las líneas de investigación.2. Participar en la elaboración y actualización de documentos de gestión (anuales,

protocolos, POA) 3. Realizar pruebas según su competencia (bioquímica, hematológicas e

inmunológicas), provenientes de la referencia y la contrarreferencia, control de calidad o para la realización de pruebas confirmatorias.

4. Preparar medios, reactivos y colorantes para el correcto funcionamiento del laboratorio.

5. Cumplir con las normas de bioseguridad.

Cargo: Responsable del área de Bromatología - Blga. Reina Epifanía Pérez Cubas

Funciones:1. Realizar el control cualitativo del yodo en la sal mediante el uso de yodites por lo

menos 50% de las muestras recibidas. 2. Realizar el control cualitativo del yodo en la sal a nivel de plantas procesadoras de

Chiclayo y Mórrope.3. Realizar el control cuantitativo de yodo y sal.4. Capacitar sobre objetivos y metas del PREDEMI, dirigido tanto a trabajadores de

salud como a trabajadores de empresas procesadoras de sal.5. Elaborar cronograma trimestral de actividades del área de bromatología.6. Garantizar la permanente actualización de documentos del área de bromatología.7. Supervisar al personal profesional y técnico del área.8. Supervisar el recojo y envío de muestras.9. Velar por la seguridad y mantenimiento de los equipos de su área.10. Otras que se le asigne y que corresponda.

Cargo: Responsable del área de Malaria y OEM. Mlga. Dora E. Valencia Manosalva.

Funciones:1. Participar con el equipo de salud en las líneas de investigación de brotes.2. Participar en la elaboración y actualización de documentos de gestión ( manuales,

protocolos, POA) 3. Realizar el diagnostico de laboratorio con el área de su competencia microbiológico

y parasitologico, control de calidad, conformación diagnostica de las muestras decepcionadas por el laboratorio y de la referencia.

4. Desarrollar adecuadamente el programa sanitario según competencia (diagnostico vectorial, búsqueda de reservorios, calidad de agua.

5. Participar en las actividades de prevención y control de las enfermedades en salud pública.

6. Participar en el análisis de las tendencias de agentes etiológicos.

Cargo: Responsable del área de Patología- T.M. Claudia Guerrero Usquiano.

Funciones:1. Procesamiento de muestras para diagnostico de pacientes de establecimientos de

salud y particulares.2. Elaboración de plan de trabajo para el área.3. Supervisar al personal técnico y auxiliar de su área.4. Reporte oportuno de resultados, así como de las actividades propias del área.

Cargo: Responsable del área de TBC y Lepra.- Mlga. Liliana Alvarado Pineda.

Funciones:1. Dirigir y participar con el equipo de salud en la investigación de brotes y en la línea

de investigación.2. Participar en la elaboración y actualización de manuales y protocolos.3. Conformar el equipo técnico operativo por los profesionales del servicio y su red.4. Asegurar la provisión de insumos, mantenimiento de equipos y bioseguridad en el

laboratorio.5. Programar la adecuada realización de programas de control de calidad y la

capacitación de equipos de salud de los laboratorios.6. Participar en las actividades de la prevención y control de las enfermedades

transmisibles y no transmisibles.

Cargo: Responsable del Área de Recepción y toma de muestras – Mlga. Bertha Becerra

Funciones:1. Realizar la recepción de contenedor para la verificación de integridad del

contenido, registro y transporte de muestra a los ambientes de trabajo.2. Extracción de muestras de sangre según el protocolo establecido para cada prueba

y preparación para las muestras de trabajo (codificación, centrifugación y transbase)

3. Realizar la limpieza y preparación de material de laboratorio.4. Cumplir las normas de bioseguridad.

Cargo: Responsable del área de Entero patógenos. Mlga. Liliana Alvarado Pineda.

Funciones:1. Conformar el equipo técnico operativo por los profesionales del servicio y su red.2. Asegurar la provisión de insumos, mantenimiento de equipos y bioseguridad en el

laboratorio.3. Participar en las actividades de la prevención y control de las enfermedades

transmisibles y no transmisibles.

Cargo: Responsable del área de ETS SIDA. T.L Wilson Peralta Silva Área de ETS/ SIDA.

Funciones:1. Supervisar al personal profesional y técnico del área.2. Supervisar el recojo y envío de muestras.3. Velar por la seguridad y mantenimiento de los equipos de su área4. Elaboración de plan de trabajo para el área de análisis clínico.5. Supervisar al personal técnico y auxiliar de su área.6. Reporte oportuno de resultados, así como de las actividades propias del área.7. Participar en las actividades de prevención y control de las enfermedades en salud

pública.

Cargo: Responsable del área de Enteroparásitos. Blgo. Halder Isla Peche.

Funciones:1. Procesamiento de muestras para diagnóstico de pacientes de establecimientos de

salud y particulares.2. Elaboración de plan de trabajo para el área de análisis clínico.3. Supervisar al personal técnico y auxiliar de su área.4. Reporte oportuno de resultados, así como de las actividades propias del área.5. Realizar la limpieza y preparación de material de laboratorio.6. Cumplir las normas de bioseguridad.

Secretaria: Liz Bernabe

Funciones:1. Recibir, clasificar y distribuir la documentación que ingresa a la oficina.2. Organizar las actividades de apoyo administrativo y secretarial.3. Recepcionar, clasificar y distribuir la documentación que ingresa a la oficina.4. Ejecutar actividades secretariales. administrar el archivo y las acciones de trámites

documentarios.5. Ejecutar y adecuar las normas y otros dispositivos técnicos administrativos.6. Evaluar las actividades del personal a su cargo y el control de calidad.7. Consolidar. enviar información al INS, epidemiológica y al programa de salud. 8. Solicitar información actualizada a la red referente a enfermedades transmisibles.9. Remitir muestras para pruebas especiales por el INS.

2.2.3. FUNCIONES O FINES:

Del Laboratorio Referencial Regional de salud de Lambayeque:

1. Dirigir, supervisar y ejecutar las políticas del sector y normas del instituto nacional de salud, de acuerdo al grado de complejidad.

2. Programar y gestionar las acciones de la red de laboratorios, a fin de lograr una atención eficiente, oportuna y permanente en los establecimientos y servicios de salud en apoyo al diagnostico brindando atención a los usuarios.

3. Aplicar y controlar el cumplimiento de las normas técnicas y/o administrativas que emita el ministerio de salud, y el instituto nacional de salud y la dirección regional de salud.

4. Administrar y controlar el patrimonio asignado y los que le fueran dados por encargo; así como evaluar y determinar su uso y destino final, en aplicación a los dispositivos legales vigentes.

5. Fomentar la participación de los agentes sociales para lograr la operativización efectiva del laboratorio referencial.

6. Garantizar la capacitación permanente del personal para dinamizar el modelo del laboratorio referencial.

7. Generar el proceso de comunicación interna y externa que permita al servicio mantener la conexión y direccionalidad efectiva del laboratorio.

8. Cumplir con las demás funciones que le asigne la dirección regional de salud Lambayeque.

De la Dirección del Laboratorio

1. Dirigir la gestión del laboratorio referencia en los aspectos técnico y administrativo.

2. Presidir el comité de coordinación de la institución.3. Orientar y supervisar las actividades que ejecutan las áreas de trabajo de

institución.4. Cumplir y hacer cumplir las normas legales relacionadas con el laboratorio

referencial.5. Ejecutar y adecuar las normas legales, procedimientos y otros dispositivos

técnicos del instituto nacional de salud y evaluar su impacto, e informar sobre los resultados a la Dirección Regional de Salud, proponiendo cuando sea el caso, su modificación o sustitución.

6. Controlar y supervisar el potencia] humano y los recursos materiales, financieros y otros que hayan sido asignados.

7. Proponer y presentar el plan operativo institucional, estableciendo acciones y metas mínimas susceptibles de ser alcanzadas y evaluadas, distribuyendo racionalmente las tareas y responsabilidades, del laboratorio referencial.

8. Formular estrategias y programas de investigación de las enfermedades transmisibles y no transmisibles de la región.

9. Cumplir con los demás funciones que la Dirección Regional de Salud Lambayeque.

Del Comité de Coordinación

1. Participar, en la formulación del plan de capacitación para el personal de laboratorio referencial.

2. Proponer estrategias de difusión y educación masiva en el campo del laboratorio de salud integral en coordinación con los establecimientos de la red.

3. Proponer planes y programas que deba desarrollar el laboratorio, así como proyectos de documentos de gestión.

4. Opinar sobre las propuestas de tarifas se servicio previstos al interior del laboratorio referencial, de acuerdo a la naturaleza del mismo.

5. Otras funciones asignadas que le corresponda.

De las Áreas

Cada área de trabajo de línea del laboratorio referencial se encarga de brindar atención especializada en los análisis de su competencia, acorde con los lineamientos del laboratorio referencial y se constituye de un grupo polifuncional de servidores, y está a cargo de un profesional asignado por el director del laboratorio referencial. Sus funciones son las siguientes:

1. Ejecutar todas las acciones relativas al área técnica, brindando las atenciones prioritarias en los análisis de apoyo al diagnostico de los servicios de salud.

2. Desarrollar actividades de coordinación con los componentes de los programas de salud del ámbito departamental.

3. Desarrollar el diagnostico oportuno y el control de calidad.4. Realizar el diagnostico de la situación de salud de la población en lo que

corresponde.5. Realizar actividades y acciones de capacitación y supervisión a la red de

laboratorios de la Dirección de Salud.6. Otras funciones que sean asignadas por el director del laboratorio referencial.

Del Área Administrativa

1. Ejecutar y cumplir con las actividades de apoyo administrativo controlando el movimiento interno de documentos y proporcionando la información requerida del Laboratorio referencial.

2. Ejecutar los procesos o estadísticos, en el Laboratorio Referencial.3. Mantener actualizada la información estadística para la toma de decisiones de

las enfermedades transmisibles y no transmisibles.4. Diseñar y desarrollar aplicaciones conducentes a automatizar los procesos de

información técnicas y administrativa.5. Organizar y administrar el banco de datos estadístico y mantenerlo actualizado.6. Cumplir con las demás funciones que se le asigne la dirección del laboratorio.

2.3. ACTIVIDADES DESARROLLADAS

2.3.1. CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES

2.4. DESCRIPCIÓN DE ACTIVIDADES

ACTIVIDAD Nº 01: ANÁLISIS COPROPARASITOLOGICO

I. OBJETIVOS: Determinar la presencia de entero parásitos presentes en la muestras de heces. Conocer la correcta preparación del material usado. Reportar los parásitos encontrados Determinar el nivel de inflamación u otros componentes

II. MATERIALES Y PROCEDIMIENTO:

MATERIALES Láminas Laminillas Suero fisiológico Lugol Guantes desechables

EQUIPOS Microscopio binocular

MATERIAL BIOLÓGICO Muestra de heces

III. PROCEDIMIENTO:

a. Homogenizar la muestra contenida en un frasco de tapa rosca con un baja lengua.b. Colocar en un extremo de la lámina portaobjeto una gota de suero fisiológico y, con

ayuda de un aplicador, agregar 1 a 2 mg de materia fecal.c. Colocar en el otro extremo de la lámina portaobjeto, una gota de lugol y proceder a la

aplicación de la muestra fecal como en el paso anterior.d. Observar al microscopio a 10X ó 40X. e. Recorrer la lámina siguiendo un sentido direccional, ejemplo: de derecha a izquierda, o

de arriba a abajo.IV. RESULTADOS

ACTIVIDADESJULIO 2011 ENERO 2012 FEBRERO 2012

MARZO 2012

1ª 2ª 3ª 4ª 1ª 2ª 3ª 4ª 1ª 2ª 3ª 4ª

ACTIVIDAD Nº 01Análisis

Coproparasitológico

X X X X X X X X X X X X

ACTIVIDAD Nº 02Técnica de

Graham

X X X X X X X X X X X

ACTIVIDAD Nº 03Inmunoflorescencia

indirecta

X X

OTRAS ACTIVIDADES X

Entero parásitos Observados Julio Enero Febrero %

Entamoeba coli 15 8 10 23,7Hymenolepis nana 2 4 2 5,59

Blastocystis hominis 16 9 11 25,17Giardia lamblia 11 8 5 16,2

Iodamoeba butschlii 0 0 1 0,69Taenia sp 1 0 3 2,79

Hymenolepis diminuta 0 0 0 0Ascaris lumbricoides 15 8 5 19,58

Ancylostoma 0 0 0 0Trichuris trichiura 3 1 4 5,59

Strongyloides stercoralis 1 0 0 0,69TOTAL 64 38 41 100

JULIO- 2011

ENTERO PARÁSITOS OBSERVADOSMES JULIO

PORCENTAJE CANTIDADAncylostoma 0 0

Ascaris lumbricoides 23,43 15Blastocystis hominis 25 16

Entamoeba coli 23,43 15Giardia lamblia 17,18 11

Hymenolepis diminuta 0 0Hymenolepis nana 3,14 2

Iodamoeba butschlii 0 0Strongyloides stercoralis 1,56 1

Taenia sp 1,56 1Trichuris trichiura 4,7 3

TOTAL 100 64

ENTEROPARÁSITOS OBSERVADOS

Ancylostoma

Ascaris lumbricoides

Blastocystis hominis

Entamoeba coli

Giardia lamblia

Hymenolepis diminuta

Hymenolepis nana

Iodamoeba butschlii

Strongyloides stercoralis

Taenia sp

Trichuris trichiura

0

5

10

15

20

25

%

1

PORCENTAJE - JULIO Ancylostoma



Entamoeba coli

Giardia lamblia


Hymenolepis nana

Iodamoeba butschlii


Taenia sp

Trichuris trichiuraEnteroparásitos

ENERO - 2012

ENTERO PARÁSITOS OBSERVADOSMES ENERO

PORCENTAJES CANTIDADEntamoeba coli 21,2 8

Hymenolepis nana 10,52 4Blastocystis hominis 23,68 9

Giardia lamblia 21,2 8Iodamoeba butschlii 0 0

Taenia sp 0 0Hymenolepis diminuta 0 0Ascaris lumbricoides 21,2 8

Ancylostoma 0 0Trichuris trichiura 2,2 1

Strongyloides stercoralis 0 0TOTAL 100 38

ENTEROPARASITOS OBSERVADOS

Entamoeba coli

Hymenolepis nana


Giardia lamblia

Iodamoeba butschlii

Taenia sp



Ancylostoma

Trichuris trichiura


0

5

10

15

20

25

1

%

PORCENTAJE - ENEROEntamoeba coli

Hymenolepis nana


Giardia lamblia

Iodamoeba butschlii

Taenia sp



Ancylostoma

Trichuris trichiura

Strongyloides stercoralisEnteroparásitos

FEBRERO- 2012

ENTEROPARÁSITOS OBSERVADOS

Entamoeba coli

Hymenolepis nana


Giardia lamblia

Iodamoeba butschlii

Taenia sp



Ancylostoma

Trichuris trichiura


0

5

10

15

20

25

30

%

1

PORCENTAJE FEBREROEntamoeba coli

Hymenolepis nana


Giardia lamblia

Iodamoeba butschlii

Taenia sp



Ancylostoma

Trichuris trichiura

Strongyloidesstercoralis

Enteroparásitos

ENTERO PARÁSITOS OBSERVADOSFEBRERO

PORCENTAJE

CANTIDAD

Entamoeba coli 24,3 10Hymenolepis nana 4,8 2

Blastocystis hominis 26,8 11Giardia lamblia 12,19 5

Iodamoeba butschlii 2,43 1Taenia sp 7,31 3

Hymenolepis diminuta 0 0Ascaris lumbricoides 12,19 5

Ancylostoma 0 0Trichuris trichiura 9,98 4

Strongyloides stercoralis 0 0TOTAL 100 41

V. CONCLUSIONES

Durante los meses de Enero, Febrero; las estructuras parasitarias que se registraron con mayor incidencia fueron Blastocystis hominis, Entamoebacoli y Ascaris lumbricoides.

Huevo embrionado de Hymenolepis nana

Huevos de Trichuris trichura

Trofozoito de Blastocystis hominis

Huevos de Enterobius vermicularis

Huevo de Ascaris lumbricoides

Huevo de Taenia sp

Mientras que en el mes de Julio se observó una mayor prevalencia parasitaria de Ascaris lumbricoides y Entamoeba coli.

La estructura parasitaria que prevaleció durante los 3 meses fue Blastocystis hominis.

ACTIVIDAD Nº 02: TEST DE GRAHAM

I. OBJETIVO: Identificar huevos de Enterobius vermicularis en la muestra de heces.

II. MATERIALES

M. de vidrio Cinta adhesiva. Laminas

Equipos Microscopio

Otros Guantes descartables

III. PROCEDIMIENTO

Toma de Muestra:1. Extender la cinta adhesiva transparente sobre la superficie de la lámina portaobjeto,

adhiriendo una porción pequeña a ambos extremos, dejando una lengüeta separar la cinta de la lámina portaobjeto cuando se va a tomar la muestra.

2. Se coloca la cinta de papel adhesivo transparente con la cara engomada hacia fuera, contraria al depresor.

3. La obtención de la muestra se realiza en la noche, 2 a 3 horas después que el paciente (generalmente niños) está dormido, o a la mañana siguiente y sin que se haya realizado el aseo de la región perianal.

4. El paciente debe estar inclinado exponiendo la región glútea, se despega la cinta adhesiva levantando la lengüeta hasta que quede expuesta la parte adherente y, con ayuda de una bajalengua, se aplica el lado adhesivo.

5. Se adhiere la cinta haciendo toques en la región perianal en sentido horario o antihorario. 6. Terminada la aplicación, extender la cinta adhesiva y volverla a pegar en la lámina portaobjeto,

envolver con el papel y colocar el nombre del paciente.

Microscopía de las láminas:

1. En el laboratorio, se desprende la cinta engomada del frotis perianal por un extremo, se agrega solución de tolueno, hidróxido de sodio 2% o solución salina, aplicando 1 ó 2 gotas de la sustancia elegida que clarificará la muestra y que

permitirá una mejor observación de los huevos y/o adultos de E .vermicularis. Es necesario observar la lámina en su totalidad.

2. En ocasiones, se pueden observar al microscopio, huevos de otros helmintos, principalmente huevos de Taeniasp., Ascarislumbricoides, Trichuristrichiuraentre otros.

3. Observar los huevos embrionados o hembra adulta de E. vermicularis.

IV. RESULTADOS

TEST DE GRAHAM JULIO ENERO FEBRERO TOTALEnterobius vermicularis 5 0 8 13

Taenia sp 0 0 0 0Áscaris lumbricoides 0 0 0 0

Trichuris trichiura 0 0 0 0TOTAL 5 0 8 13

JULIO - 2011

FEBRERO- 2012

TEST DE GRAHAM TOTAL JULIO

Enterobius vermicularis 100% 8

0%

20%

40%

60%

80%

100%

Enterobiusvermicularis

Taenia sp Áscarislumbricoides

Trichuristrichiura

PORCENTAJE - JULIO

TEST DE GRAHAM TOTAL JULIO

Enterobius vermicularis 100% 5Taenia sp 0% 0

Áscaris lumbricoides 0% 0Trichuris trichiura 0% 0

TOTAL 100% 5

0%

20%

40%

60%

80%

100%

Enterobiusvermicularis

Taenia sp Áscarislumbricoides

Trichuristrichiura

PORCENTAJE - FEBRERO

Taenia sp 0% 0

Áscaris lumbricoides 0% 0

Trichuris trichiura 0% 0

TOTAL 100% 8

V. CONCLUSIONES

Se observó la presencia de Enterobius vermiculares en las láminas con cinta engomada al microscopio.

ACTIVIDAD Nº 03: INMUNOFLUORESCENCIA INDIRECTA

1. OBJETIVOS:Detectar la presencia de virus respiratorios: adenovirus, influenza A, influenza B, parainfluenza I, parainfluenza II, parainfluenza III, virus sincitial respiratorio.

2. MATERIALES Y PROCEDIMIENTO

Huevos de Enterobius vermicularis

MATERIALES Cámara de flujo laminar Vortex Centrifuga PBS Pipeta de transferencia Crioviales Lamina screening Micropipeta Acetona DFA ScreeningReagent

PROCEDIMIENTO Preparación de muestras

Agitar la muestra en un vortex de 0.5 a 1 minuto para separar las células del moco.

Presionar los hisopos contra las paredes del tubo para escurrir el líquido. Descartar los hisopos en una solución de hipoclorito de sodio. Centrifugar a 1700 rpm por 10 minutos. Separar el sobrenadante en un vial estéril de 2.0 ml y conservarla a -70ºC. Agregar al sedimento de células 2 a 5 ml de PBS 1X ( pH: 7.2). Homogenizar en un vortex. Centrifugar a 1700 rpm por 10 minutos. Descartar el sobrenadante (eliminar moco) y resuspender el sedimento de células

en PBS 1X. Homogenizar en un vortex. Centrifugar a 1700 rpm por 10 minutos. Descartar el sobrenadante y resuspender el sedimento celular con 0.1 a 0.5 ml de

PBS 1X. Mezclar con la pipeta hasta lograr una suspensión homogénea. Colocar 25ul de suspensión celular, en cada uno de los dos pozos de una lámina

(Screening) y en ocho pozos de otra (tipificación). Comprobar por una observación al M/O/C que la concentración de células sea la adecuada sin que exista sobre posición.

Secar los pozos completamente. Fijar con acetona fría durante 10 minutos. Dejar secar las láminas al medio ambiente.

Ejecución del métodoPara este método se debe utilizar DFA ScreeningReagent para confirmar la presencia de virus respiratorios.

Adicionar una gota de DFA screeningReagent en un pozo y Normal Mouse Gamma Globulin DFA Reagent en otro pozo de la lámina (Screening)

También considerar una lámina patrón del kit. Se adiciona una gota DFA ScreeningReagent en cada pozo. Esta lámina debe ser coloreada una sola vez.

Incubar en cámara húmeda de 35 a37 ºC por 30 minutos. La cámara debe estar suficientemente húmeda y cerrada.

Lavar la lámina con 1X washsolution, primero agregando en forma de chorro y luego sumergir las láminas en un coplin cuatro veces como mínimo.

Descartar la solución de lavado usada y repetir con un nuevo washsolution. Eliminar el exceso del líquido y dejar secar al medio ambiente, protegido de la luz. Agregar a la lámina la solución de montaje. Colocar la laminilla cubreobjetos evitando se formen burbujas de aire. Leer con un microscopio de Epifluorescencia con un aumento de 400x. la

observación de las láminas deberá realizarse inmediatamente después de agregar la solución de montaje, en caso contrario guardarlas refrigeradas y protegidas de la luz de 2 a8 ºC.

Si el resultado del screening es positivo, usar la lámina de ocho pozos (tipificacion) y cubrir el pocillo correspondiente con una gota de cada virus DFA Reagent individual ( anticuerpo monoclonal especifico) para determinar cual virus respiratorio puede estar presente. Dejar un pozo como control negativo (adicionar Normal Mouse Gamma Globulin DFA Reagent). Se debe evitar la contaminación entre pozos continuos.

Considerar una lámina control del kit. Se adiciona una gota de cada virus DFA Reagent individual al pozo correspondiente.

Continuar con los pasos c hasta i.

3. RESULTADOS

4.

CONCLUSIONES

La prueba de inmunofluorescencia indirecta es utilizada para detectar la presencia de los virus respiratorios: adenovirus, influenza A, influenza B, parainfluenza I, parainfluenza II, parainfluenza III, virus sincitial respiratorio. De las muestras de hisopado nasofaríngeo, que fueron procesadas por esta técnica, el virus que más prevaleció fue el virus parainfluenza II.

PORCENTAJE TOTAL

ADENOVIRUS

INFLUENZA A

INFLUENZA B

PARAINFLUENZA I

PARAINFLUENZA II

PARAINFLUENZA III

VSR

0%

10%

20%

30%

40%

50%

1

PORCENTAJE TOTAL

ADENOVIRUS

INFLUENZA A

INFLUENZA B

PARAINFLUENZA I

PARAINFLUENZA II

PARAINFLUENZA III

VSR

Virus Respiratorios

VIRUS RESPIRATORIOS JULIO ENERO FEBRERO MARZO TOTAL %

ADENOVIRUS 1 0 1 0 2 20%

INFLUENZA A 0 0 0 0 0 0%

INFLUENZA B 0 0 0 0 0 0%

PARAINFLUENZA I 0 0 0 0 0 0%

PARAINFLUENZA II 0 1 0 4 5 50%

PARAINFLUENZA III 0 2 0 0 2 20%

VSR 0 0 0 1 1 10%

TOTAL 1 3 1 5 10 100%

ACTIVIDADES REALIZADAS EN APOYO AL ÁREA DE ENTOMOLOGÍA

ACTIVIDAD Nº 01: INVESTIGACIÓN ENTOMOLÓGICA DE Aedes aegypti EN PUNTOS CRÍTICOS: CEMENTERIO EL CARMEN DEL DISTRITO DE CHICLAYO.

1. Objetivo

- Detectar la presencia del vector del Dengue en puntos críticos de Chiclayo: Cementerio “El Carmen” mediante la vigilancia entomológica de Aedes aegypti en su estadio larvario.

2. Materiales

- 01 cucharón sopero de mango largo color blanco (plástico).

- 01 bandeja de plástico

- 01 gotero o succionador de boca ancha (mínimo 4 mm.)

Materiales para procesar muestras de Virus RespiratoriosCabina y traje de bioseguridad para procesar muestras

- 01 linterna de mano de 2 pilas grandes

- 01 vaso o frasco de boca ancha con tapa de rosca

- 50 ml. De alcohol al 70%

- 01 lupa mínimo 4x de 5-10 cm. de diámetro

- 10 - 15 viales o tubos vacíos de anestesia dental.

3. Metodología

Método de Vigilancia Entomológica mediante Encuestas Larvarias

Se realizó teniendo en cuenta a los nichos y “noques” como la unidad básica de muestreo, los cuales se registraron sistemáticamente, para encontrar recipientes o depósitos que contengan agua, en busca de larvas, pupas o exubias de mosquitos.

La vigilancia se realizó diariamente en el 100% de los pabellones nuevos (mano izquierda del cementerio) durante tres días consecutivos y fue ejecutada por tres equipos de trabajo, conformado por profesionales biólogos debidamente capacitados y equipados con materiales de campo provistos por la Oficina de Epidemiología de la DISA Lambayeque.

4. Procedimiento

- Al iniciar la labor el encuestador empezó a trabajar en una esquina de cada pabellón de dicha área y continúa el trabajo de modo que cada nicho a visitar queda a su derecha, completando la vuelta al pabellón, el visitador pasó al pabellón siguiente según el orden establecido en el itinerario hasta que estén trabajadas todos los pabellones asignados a los equipos. La tarea del siguiente día comienza en el punto en que el trabajo fue suspendido el día anterior.

- Las larvas del Aedes aegypti se mueven mucho y tarda en ir de un punto a otro del depósito; presenta fotofobia es decir huye de la luz; así mismo se asusta con facilidad y huye permaneciendo sumergida en el fondo del depósito, cuando se le aproxima cualquier agente o se mueve el depósito en que se encuentra.

Búsqueda de estadíos larvarios de Aedes aegypti en los fosas – nichos.

Desarrollo de estadios larvarios L1, L2 y L3

Larvas de Aedes aegypti

5. Resultados

Se hallaron 28 focos de infestación, pero no se identificó larvas de Aedes aegypti.

ACTIVIDAD Nº 02: DIAGNOSTICO DE DENGUE POR PUNCIÓN VENOSA A POBLADORES DE SALAS

1. OBJETIVO

Acceder al torrente sanguíneo, mediante una punción, para extraer una muestra de sangre para diagnóstico de Dengue en pobladores de Salas.

2. MATERIALES

- Bandeja.

- Algodón.

- Antiséptico.

- sistema Vacutainer.

- Ligadura.

- Guantes.

- Tubos de recogida de muestras.

- Impreso de petición de analítica.

- Etiquetas identificativas.

- Hoja de registro.

- Contenedor de objetos punzantes.

3. PROCEDIMIENTO

- Verificar que en el sitio a puncionar se encuentra indemne y lejos de focos de infección. Identificación positiva del paciente. Se le preguntará ¿cómo se llama?

- Anotar datos del paciente

- Explicar el procedimiento al paciente.

- Sentar o tumbar al paciente.

- Reunir todo el material necesario en la bandeja y llevarlo al lado del paciente.

- Lavado de manos.

- Colocarse los guantes.

- Colocar la ligadura entre 7,5 cm o 10 cm por encima del punto de punción.

- Colocar el brazo hiperextendido, de manera que la mano esté más baja que el codo.

- La palpación se hará con el dedo índice, palpando con suavidad y firmeza.

- Desinfectar la zona elegida, con alcohol u otro antiséptico para evitar la contaminación bacteriana o química, haciendo con una torunda en forma circular, desde dentro hacia fuera. Dejar secar el alcohol o secarlo antes de puncionar; ya que si se deja húmeda el paciente sentirá quemazón durante la punción y si el alcohol penetra en el sistema de extracción de sangre se producirá una hemólisis que alterará los resultados.

- Rompa el sello de la funda de la aguja e insértela con un giro en el receptáculo hasta el tope.

- Inmovilice la vena seleccionada colocando el pulgar debajo de la zona de punción y tense la piel; así se impide que la vena se escurra en el momento de la punción, el resto de los dedos se ponen detrás del codo para evitar que éste se doble o prevenir cualquier movimiento.

- Con el bisel hacia arriba puncione la piel con un suave y rápido movimiento. La pared superior de la vena debe ser puncionada y el bisel debe quedar en el interior de la vena; cuando la aguja está asegurada se conecta el primer tubo o se aspira para que la sangre fluya; una vez que empiece a salir soltar el torniquete.

- Si se usa sistema de vacío se encajará el tubo en el extremo y éste se llenará inmediatamente de sangre con un volumen hasta agotar el vacío del tubo .El tubo no se llenará nunca en su totalidad. Mientras se llena el tubo coloque el conjunto del receptáculo entre su dedo pulgar e índice para, apoyando sus dedos libres en el brazo del paciente para evitar que se movilice.

- Una vez llenado todos los tubos (sistema de vacío) retiraremos la aguja, con un movimiento rápido y suave hacia atrás y se aprieta la zona con el fin de evitar la formación de un hematoma. La presión en la zona se hará durante más de cinco minutos o el tiempo necesario según el tipo de paciente, manteniendo recto el brazo.

- Se retira todo el material, colocando cada uno en el contenedor correspondiente.

- Se despide al paciente.

En Laboratorio

- Procesar las muestras por el método rápido de descarte de dengue.

Casos reportados en el distrito de Salas en el año 2012-GERESA LAMBAYEQUE

LA CRIA HUANAMA HOSP. BELEN DENGUE SIN SEÑAL DE ALARMA 2 2

POLVADERA C.S. SALAS DENGUE SIN SEÑAL DE ALARMA 1 1

SALAS C.S. JAYANCA DENGUE SIN SEÑAL DE ALARMA 1 1

SALAS C.S. JOSE LEONARDO ORTIZ DENGUE SIN SEÑAL DE ALARMA 1 1

SALAS C.S. MOTUPE DENGUE SIN SEÑAL DE ALARMA 2 2

SALAS C.S. SALAS DENGUE SIN SEÑAL DE ALARMA 46 47 57 150

SALAS C.S. SALAS DENGUE CON SEÑAL DE ALARMA 4 4

SALASESSALUD ALMANZOR AGUINAGA ASENJO DENGUE SIN SEÑAL DE ALARMA 1 1

SALASESSALUD ALMANZOR AGUINAGA ASENJO DENGUE CON SEÑAL DE ALARMA 1 1

SALAS HOSP. BELEN DENGUE SIN SEÑAL DE ALARMA 2 1 3

SALAS HOSP. BELEN DENGUE CON SEÑAL DE ALARMA 2 2

SALAS HOSP. LAS MERCEDES DENGUE SIN SEÑAL DE ALARMA 1 1 2

SALAS HOSP. LAS MERCEDES DENGUE CON SEÑAL DE ALARMA 3 1 4

SALAS HOSP. LAS MERCEDES DENGUE GRAVE 1 1

En total se reportaron 175 casos en los meses de Febrero y Marzo

Determinantes de riesgo de dengue en Lambayeque

Determinantes Valor

Distritos infestados con Aedes * 13 / 76

Índice aédico Enero 2012

Distrito Pátapo0 – 0,32%

Distrito Motupe0-1,69%

Distrito Pomalca0,31%

Distritos Cayaltí. Illimo y Chiclayo0%

Distrito de Salas Febrero 20122,1%

Distrito La Victoria- Chiclayo Marzo 20120-0.469%

% de viviendas sin acceso agua potable** 65,90%

Serotipos circulantes*** 2

Fuente: * DIGESA, *** INS

4. RESULTADOS

Se logró obtener las muestras de las personas que presentaban los síntomas, durante un periodo de trabajo de 4 días, con la ayuda del personal del Centro Médico de la respectiva localidad.

Inicialmente se logró detectar en el laboratorio a 52 personas infectadas con este virus del total de las muestras recolectadas. Al final se dio a conocer que fueron 415 las personas que fueron infectadas en esta localidad.

Se logró controlar el brote que había en dicha localidad, luego de prevenir a los pobladores con información sobre el control del vector y también por las fumigaciones que se realizaron.

ACTIVIDAD Nº 03: VIGILANCIA LARVARIA EN LA LOCALIDADES DE MOTUPE-OLMOS

RECOMENDACIONES

Se recomienda la realización de una buena toma de muestra para poder realizar un buen diagnostico de laboratorio y así obtener buenos resultados.

Capacitar en Bioseguridad al personal que se incorpora por primera vez al laboratorio tratando de proteger la salud de todos aquellos que laboran en el laboratorio o pueden estar expuestos por ciertas circunstancias a la contaminación con los agentes biológicos, químicos, físicos o mecánicos.

Usar guantes de látex de buena calidad para todo manejo de material biológico y cambiar los guantes toda vez que hayan sido contaminados, lavarse las manos y ponerse guantes limpios.

Implantar procedimientos de emergencia, particulares y generales, para casos de accidentes laborales de cualquier tipo.

Al Laboratorio de Referencia Regional en Salud Publica de Lambayeque se le debe asignar un presupuesto para así poder solucionar los diferentes problemas económicos con que presenta.

Criaderos de larva Aedes aegypti en depósitos de viviendas

Ubicación de ovitrampas

Implementar el laboratorio con los materiales necesarios para realizar un buen diagnóstico.

Fecha de Presentación Practicante

INFORME DE PRACTICAS Kike (Reparado).docx

Documents

Transcript of INFORME DE PRACTICAS Kike (Reparado).docx