Producción de post-larvas de Litopenaues
vannamei en diferentes estrategias de alimentación en sistemas de biofloc y
aguas claras
Alessandro Pereira Cardozo
Universidade Federal do Rio Grande
Es posible hacer larvicultura conmínimo recambio de agua?
•Sí
Calidad del agua en la Larvicultura
• Mantenimiento de la calidad de agua
• Altas tasas de renovación
• Larvas sensibles a compuestos tóxicos
• Generación de efluentes
• Posible introducción de patógenos
De dónde surgió la idea de trabajar sin renovación de agua
en la larvicultura?
Problema!
Salinidad
Cúal es la opción?
•Evaporar el agua?
Mas .......•Sal artificial!
➢MICROALGAS
✓ Mantenimiento de la calidad del agua(Thompson et al. 2002).
✓ Primera alimentación
✓ %PB
✓ Bajo contenido de fibras
✓ Digestibilidad (Chaetoceros 94%)(Jaime & Ceballos et al. 2006).
➢ En Sistemas de Bioflocs...
✓ SST en exceso generan colapso en la fotosíntesis (Godoy et al. 2012).
➢ El uso de la dextrosa puede mantener densidades elevadas de microalgas,
mismo en sistemas de bioflóculos
✓ Conteos y reposición diário (Godoy et al. 2012).
✓ Son eliminadas con la renovación de agua (FAO 2004).
➢ En Sistemas Tradicionales...
➢ Dextrosa x Melaza
✓ Estudios realizados después de PL15
Sistemas tradicionales de cultivo: PL1- PL15 Renovación de agua
~100%dia (FAO 2004)
➢ SISTEMAS DE BIOFLOCULOS
✓ Ofrece mayor bioseguridad
✓ Limita recambios de agua
Fonte: Banco de dados EMA
PL’s: Interacciones com el biofilm (biopelícula).
✓ Camarones adultos: Consumo de alimento proveniente de los bioflóculos(Burford et al. 2004)
➢BIOFILM OU BIOPELÍCULA
✓ Consórcio de microrganismos colonizando substrato sumergido
✓ Alimento (Thompson et al., 2002; Moss & Moss 2004, Ballester 2003,
2007; Abreu et al., 2007)
✓ Nitrificación (Bratvold & Browdy 2001; Moss & Moss 2004)
➢METODOLOGÍA
➢TB
Fertilización Orgánica
➢TC
Renovación de agua
Thalassiosira weissflogii (2x104 cél/mL)
✓ EXP. I: PL1-PL15
✓ EXP. II: PL16-PL30
75 PL’s/L
**n.d. No detectado
➢ RESULTADOS
Parámetros Físico-químicos de calidad del agua
Exp I
TC TB TC TB
Temperatura (oC) 30,5±0,22 30,66±0,81 30±1,05 30±1,07
Oxigênio (mg/L) 5,49±1,72 a 5,17±1,46 b 5,08±0,82 4,87±0,98
pH 8±0,01 7,92±0,11 7,97±0,059 a 7,92±0,086 b
Alcalinidade (CaCO3) 188,33±9,3 175,83±13,93 175±9,35 163±5,7
Salinidade 31,66±1,03 31,83±1,17 29±1,2 a 31±1,7b
Sólidos em suspensão (mg/L) 735,62±443,92 1080,75±643,2 806,33±145,35a 1252,66±361,76b
Amônia Total (mg/L) 2,45±3,04 2,21±2,25 1,32±1,64 1,74±2
Nitrito (mg/L) 0,048±0,075 a 0,07±0,095 b 0,021±0,03a 0,01±0,01b
Nitrato (mg/L) n.d n.d n.d n.d**
Fosfato (mg/L) 1,26±1,48 1,75±1,75 0,34±0,31 0,57±0,73
Exp II
ba
Exp I
TC TB TC TB
Temperatura (oC) 30,5±0,22 30,66±0,81 30±1,05 30±1,07
Oxigênio (mg/L) 5,49±1,72 a 5,17±1,46 b 5,08±0,82 4,87±0,98
pH 8±0,01 7,92±0,11 7,97±0,059 a 7,92±0,086 b
Alcalinidade (CaCO3) 188,33±9,3 175,83±13,93 175±9,35 163±5,7
Salinidade 31,66±1,03 31,83±1,17 29±1,2 a 31±1,7b
Sólidos em suspensão (mg/L) 735,62±443,92 1080,75±643,2 806,33±145,35a 1252,66±361,76b
Amônia Total (mg/L) 2,45±3,04 2,21±2,25 1,32±1,64 1,74±2
Nitrito (mg/L) 0,048±0,075 a 0,07±0,095 b 0,021±0,03a 0,01±0,01b
Nitrato (mg/L) n.d n.d n.d n.d**
Fosfato (mg/L) 1,26±1,48 1,75±1,75 0,34±0,31 0,57±0,73
Exp II Exp I
TC TB TC TB
Temperatura (oC) 30,5±0,22 30,66±0,81 30±1,05 30±1,07
Oxigênio (mg/L) 5,49±1,72 a 5,17±1,46 b 5,08±0,82 4,87±0,98
pH 8±0,01 7,92±0,11 7,97±0,059 a 7,92±0,086 b
Alcalinidade (CaCO3) 188,33±9,3 175,83±13,93 175±9,35 163±5,7
Salinidade 31,66±1,03 31,83±1,17 29±1,2 a 31±1,7b
Sólidos em suspensão (mg/L) 735,62±443,92 1080,75±643,2 806,33±145,35a 1252,66±361,76b
Amônia Total (mg/L) 2,45±3,04 2,21±2,25 1,32±1,64 1,74±2
Nitrito (mg/L) 0,048±0,075 a 0,07±0,095 b 0,021±0,03a 0,01±0,01b
Nitrato (mg/L) n.d n.d n.d n.d**
Fosfato (mg/L) 1,26±1,48 1,75±1,75 0,34±0,31 0,57±0,73
Exp II
**n.d. No detectado
Exp I
TC TB TC
Sobrevivência (%) 70,81±2,25a 88,76±5,8b 80,62±13,36
Teste stress (%) 98±4,47 100±0 100±0
Peso Inicial (mg) 0.5±0.1 0.5±0.1 10±2
Peso Final (mg) 9,4± 2,8 13±3 19±5
Comprimento Inicial (mm) 7±1,3 7±1,3 12,7±0,98
Comprimento Final (mm) 12,6±1,19 13,02±1 14,22±1,49 a
Biomassa Final (g) 1,81±1,16 a 4,4±1,6 b 8,28±3,55
Exp II
Desempeño de las pós-larvas
Exp I
TC TB TC TB
Sobrevivência (%) 70,81±2,25a 88,76±5,8b 80,62±13,36 95,75±2,22
Teste stress (%) 98±4,47 100±0 100±0 100±0
Peso Inicial (mg) 5±1 5±1 10±2 10±2
Peso Final (mg) 9,4± 2,8 13±3 19±5 23±3
Comprimento Inicial (mm) 7±1,3 7±1,3 12,7±0,98 12,7±0,98
Comprimento Final (mm) 12,6±1,19 13,02±1 14,22±1,49 a 19,4±0,8b
Biomassa Final (g) 1,81±1,16 a 4,4±1,6 b 8,28±3,55 11,62±2,17
Exp II Exp I
TC TB TC TB
Sobrevivência (%) 70,81±2,25a 88,76±5,8b 80,62±13,36 95,75±2,22
Teste stress (%) 98±4,47 100±0 100±0 100±0
Peso Inicial (mg) 5±1 5±1 10±2 10±2
Peso Final (mg) 9,4± 2,8 13±3 19±5 23±3
Comprimento Inicial (mm) 7±1,3 7±1,3 12,7±0,98 12,7±0,98
Comprimento Final (mm) 12,6±1,19 13,02±1 14,22±1,49 a 19,4±0,8b
Biomassa Final (g) 1,81±1,16 a 4,4±1,6 b 8,28±3,55 11,62±2,17
Exp II
Pontuação
0= Ruim 1=Bom 2=Excelente 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15
Opaco Trnslúcido
Transparente Palido Escuro
Ausente Reduzido Intenso
Presente Ausente
≠ 3:1 3:01
51-100% 1-50% 0%
51-100% 1-50% 0%
51-100% 26-50% 0-25%
0-25% 26-75% 76-100%
51-100% 1-50% 0%Presença de epibiontes
Pontuação Total
Média Final
Deformidades no corpo
Proporção Músculo:Intestino
Melanização no corpo
Necroses em apêndices
Deformidades hepatopâncreas
Preenchimento Hepatopâncreas
Data:________ Tanque:_________Tratamento:_______
Critérios avaliados
Número de PL's
Coloração abdominal
Coloração Hepatopâncreas
Peristaltismo intestinal
➢ Excelente
➢ Bueno
➢ Malo✓ Adaptado de Lopes et al. 2012
TC TB TC TB
Opacidade Abdominal 1,25±0,7a
1,9±0,11b 1,28±0,7 1,6±0,28
Cor do Hepatopâncreas 2±0 1,98±0,05 1,93±0,09 1,95±0,1
Peristaltismo Intestinal 1,78±0,09 1,83±0,15 1,65±0,25a
2±0b
Deforidades no corpo 1,75±0,17 1,85±0,19 1,7±0,11 1,9±0,11
Musculo:Intestino 1,25±0,68 1,6±0,43 1,7±0,25 1,95±0,1
Melanização no corpo 1,07±0,47a
1,55±0,24b 1,85±0,1 1,7±0,4
Necrose nos apêndices 1,55±0,52a
1,98±0,05b 1,68±0,09 1,85±0,24
Deformidades no Hepatopâncreas 1,97±0,05 1,98±0,05 1,7±0,09 1,95±0,1
Preeenchimento do Hepatopâncreas 1,95±0,05 2±0 2±0 2±0
Epibiontes 1,28±0,3 1,3±0,14 1,28±0,43 1,43±0,38
Score Total 16±1,58 17,95±0,52 16,8±1,22 18,31±0,72
Avaliação Final de Qualidade Bom Excelente Bom Excelente
Qualidade Pós-Larvas
Exp I Exp II
Análisis de la calidad de las pós-larvas
Figura 1- Hepatopáncreas de pós-larvas Exp I, onde (a) TC e (b) TB.
Lúm
Cél B
Lúm
Cél B
TC TB
Figura 2- Hepatopáncreas de pós-larvas Exp II, onde (a) TC e (b) TB.
Lúm
Cél B
Lúm
Cél B
TC TB
➢ CONCLUSION
➢PL’s producidas sin recambio de agua desde el primer dia como PL
presentan mejor condición nutricional, excelentes modelos de
calidad y desempeño.
CONTRIBUCIÓN DE LOS BIOFLÓCULOS EN PÓS-LARVAS
DE Litopenaeus vannamei DETERMINADA POR ISÓTOPOS
ESTABLES
✓ Verificar la incorporación de los bioflóculos en los tejidos de
pós-larvas de Litopenaeus vannamei y la influencia sobre la
calidad de las mismas.
➢OBJETIVO
➢ Incorporación de nutrientes de la dieta en los tejidos del consumidor (Gamboa-
Delgado et al., 2008)
➢ Perfil isotópico
✓ Estiman la contribución de diferentes fuentes para un indivíduo (Philips 2012).
✓ Conociendo los valores isotópicos de las fuentes y consumidores, se utilizan
modelos de mezcla
➢METODOLOGIA
✓ PL1-PL30
✓ 83 PL’s/L
➢TB
Fertilización Orgánica
➢TC
Renovación de agua
➢ PL1-PL10:(4x/dia)
2x/dia1x/dia 1x/dia
➢ PL11-PL20(5x/dia)
1x/dia2x/dia 2x/dia
➢ PL21-PL30(5x/dia)
1x/dia4x/dia
➢Alimentación
➢ Chaetoceros muelleri
✓ 5 x 104 cél/mL
Tratamentos TC TB
Temperatura (0C) 27,8±1,14 28,13±1,33
Oxigênio (mg/L) 5,72±0,4 5,73±0,49
pH 8,05±0,24 8,04±0,23
Salinidade 30,16±0,98a
31,33±0,52b
Alcalinidade (mg/L como CaCO3) 248,75±2,5a
112,5±14,43b
Fosfato (mg/L) 0,99±0,6 1,93±1,21
Amônia (mg/L) 0,65±0,15 0,65±0,1
Nitrito (mg/L) 0,7±0,15a
1,34±0,3b
Nitrato (mg/L) 1,32±1,17 1,9±2
➢ RESULTADOS
PARÁMETROS FÍSICO-QUÍMICOS DE CALIDAD DEL AGUA
DESEMPEÑO ZOOTÉCNICO DE LAS PÓS- LARVAS.
Tratamentos TC TB
Sobrevivência (%) 93.2±7.11 91.2±8.53
Peso Inicial (mg) 0.65±0.2 0.65±0.2
Peso Final(mg) 35±10 36±16
Comprimento Inicial (mm) 5.75±2.59 5.75±2.59
Comprimento Final(mm) 16.81±1.82 16.39±2.54
Biomassa Final (g) 3.16±0.7 3.14±0.44
Desempenho
Tratamentos TC TB
Cor do abdomen 1.9± 0.11 2±0
Cor do hepatopâncreas 2±0 2±0
Peristaltismo intestinal 2±0 2±0
Músulo: Intestino 2±0 2±0
Melanização no corpo 1.8±0.05a 1.93±0.12b
Necroses 1.9±0.11 1.93±0.12
Deformidades no hepatopâncreas 1.43±0.32 1.57±0.32
Preenchimento Hepatopâncreas 1±0 1.33±0.23
Epibiontes 1.17±0.29 1.3±0.17
Escore Final 15.2±0.26 16.06±0.58
Avaliação Final Bom Excelente
Qualidade das pós-larvas
ANÁLISIS DE CALIDAD DE LAS PÓS- LARVAS
A
C
PL40
TC Dia 30
➢ ISÓTOPOS ESTÁBLES
A
S
F
C
TC Dia 10 TC Dia 20
A
F
C
PL40
AC
PL40
BFT
TB Dia 30
TB Dia 10
A
S
F
CBFT
TB Dia 20A
F
C
BFT
PL40
➢ Artemia sp.:
➢ Incorporación menor que las demás fuentes
✓ Esencial para las fases iniciales de vida.(Gamboa-Delgado & Le Vay (2009)
✓ Reducción de la oferta tiene efectos desconocidos
✓ Contribuyen a la mejor calidad de PL’s
✓ Fuente de nutrientes para de L. vannamei(Silva et al 2008, Burford et al 2004, Thompson et al. 2002, Ballester et al., 2003)
BIOFLOCS
➢ CONCLUSIONES
✓ Bioflocs:
✓ Viabilidad de lotes de excelente calidad
✓ Consumidos e incorporados en los tejidos de las PL’s
✓ Posibilidad de reducir la Artemia sp. como fuente esencial de
alimento.
✓ Dextrose viabiliza mantenimiento de microalgas durante el ciclo de
producción
PRODUCCIÓN DE POST-LARVAS DE Litopenaeus vannamei EN SISTEMAS
DE BIOFLOCS CON DIFERENTES REGÍMENES DE ALIMENTACIÓN
✓ Verificar la contribución de diferentes fuentes de alimento para
el crecimiento y condición nutricional de pós-larvas de Litopenaeus
vannamei cultivadas con bioflóculos y agua clara.
➢OBJETIVO
➢METODOLOGIA
➢RA: Balanceado +Artemia sp.
➢R: balanceado
➢RM: Balanceado+ C. muelleri
➢RAM: Balanceado +Artemia sp.+ C. muelleri
✓ 75 PL’s/L
✓ Inóculo 5% BFT
DESEMPEÑO ZOOTÉCNICO DE PÓS-LARVAS (Bioflocs)
Parâmetros R RAM RA RM
Tamanho inicial (mm) 5±0.5 5±0.5 5±0.5 5±0.5
Peso Inicial (mg) 0.51±0.4 0.51±0.4 0.51±0.4 0.51±0.4
Tamanho Final (mm) 20.14±0.5a 19.24±0.95ab 17.19±0.41b 19.05±1.58ab
Peso Final (mg) 41±8a 30±2b 20±4c 30±3ab
Sobrevivencia (%) 49.38±11.35a 92.86±4.95b 89.99±6.83b 77.38±13.76b
Biomassa Final (g) 13.72±0.7a 18.66±2.17b 14.19±2.09ab 16.96±3.34ab
DESEMPEÑO ZOOTÉCNICO DE LAS PL’s (Agua Clara)
Parâmetros R RAM RA RM
Tamanho inicial (mm) 5±0,5 5±0,5 5±0,5 5±0,5
Peso Inicial (mg) 0,51±0,4 0,51±0,4 0,51±0,4 0,51±0,4
Tamanho Final (mm) 17,67±0,73 18,81±3,15 18,33±1,37 18,1±0,92
Peso Final (mg) 20±8 30±18 30±5 30±9
Sobrevivência (%) 54,11±4,58a
90±6,81b
76,94±11,72bc
67,66±9,3ac
Biomassa final (g) 5,29±2,45a
16,87±7,57b
15,6±0,58b
13,2±2,2b
MORFOMETRIA DEL HEPATOPÁNCREAS (Bioflóculos)
(a)
R RAM
RA RM
➢ MORFOMETRIA DEL HEPATOPÁNCREAS (Agua clara)
R RAM
RA RM
➢ ISÓTOPOS ESTÁBLES
Intervalo de contribuición (IC) de las diferentes fuentes alimenticias
Tratamentos Artemia sp. C. muelleri Flake 40J Biofilme Bioflocos
R N.A. N.A. 0-43% 0-57% 0-51% 0-57%
RAM 0-30% 0-33% 0-35% 8-42% 0-30% 0-45%
RA 0-27% N.A. 0-36% 17-50% 0-27% 0-50%
RM N.A. 0-35% 0-37% 4-64% 0-34% 2-57%
➢ ISÓTOPOS ESTÁBLES
INTERVALO DE CONTRIBUCIÓN (IC) DE LAS DIFERENTES FUENTES ALIMENTICIAS
*N.O. No Ofrecido
Tratamentos Artemia sp. C. muelleri Flake 40J Biofilme
R N.O N.O 1-43% 18-74% 5-55%
RA 0-38% N.O 0-50% 4-43% 13-47%
RM N.O 0-33% 0-41% 11-79% 2-50%
RAM 0-31% 0-35% 0-38% 6-41% 5-67%
➢CONCLUSIONES
✓ La substitución de Artemia sp. por C. muelleri puede ser realizada
en sistemas de bioflóculos
✓ C. muelleri ofrece nutrientes suficientes para el buen desempeño
de las PL’s
✓ Ofrecer solo alimento balanceado compromete el desempeño de
las PL’s aún en presencia de biofilm y bioflóculos
➢CONCLUSIONES
✓ La exclusión de Artemia sp. compromete la sobrevivencia
✓ En sistemas de agua clara la Artemia sp. no debe ser descartada,
ni substituída por C. muelleri.
✓ Alimento balanceado + Microalgas no garantizan um estado
nutricional adecuado en sistemas de agua clara
➢CONCLUSIONES FINALES
✓ La suspensión de los recambios de agua es benéfica para PL’s de
Litopenaeus vannamei desde PL1
➢ La producción en sistemas de bioflóculos garantiza:
✓ Excelente desempeño zootécnico y calidad
✓ Buena calidad del agua
✓ Ventajas en la substitución de Artemia sp. por C. muelleri
➢ Técnicas histológicas y de isótopos estábles permiten verificar la
influência que el alimento natural posee sobre el desempeño de
las PL’s desde la fase de PL1.
➢ Sin embargo, en sistemas tradicionales:
✓ La Artemia sp. no debe ser descartada o substituída
AGRADECIMENTOS
APOIADORES
FINANCIADORES
MUCHAS GRACIAS POR SU ATENCIÓN
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