UNIVERSIDAD NACIONAL FEDERICO VILLARREAL FACULTAD DE CIENCIAS NATURALES Y MATEMATICA
ESCUELA PROFESIONAL DE BIOLOGÍA
Guía de Prácticas
BOTÁNICA I
Responsable:
Blgo. Mag. Giovana PatriciaVadillo Gálvez
Profesores de práctica:
Blgo. Karen del Carmen Ventura Zapata
Blgo. Jorge Luis López Bulnes
Lima, 2013
Guía actualizada a partir de La Rosa 2010 Vadillo y Ventura 2013
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INDICE
PRÁCTICA 1 CORTES HISTOLÓGICOS ................................................................................... 2
PRÁCTICA 2. COMPONENTES DE LA CÉLULA VEGETAL .................................................. 4
PRÁCTICA 3 CÉLULA VEGETAL: SUSTANCIAS ERGÁSTRICAS INCLUSIONES .......... 5
PRÁCTICA 4 CÉLULA VEGETAL: SUSTANCIAS ERGASTRICAS DE RESERVA ............ 7
PRÁCTICA 5 TEJIDO MERISTEMÁTICO ................................................................................. 9
PRÁCTICA 6 TEJIDO PARENQUIMÁTICO ........................................................................... 11
PRÁCTICA 7 TEJIDOS MECÁNICOS: COLENQUIMA Y ESCLERENQUIMA .................. 13
PRÁCTICA 8 TEJIDOS PROTECTORES ................................................................................. 14
PRÁCTICA 9 TEJIDOS CONDUCTORES ................................................................................ 16
PRÁCTICA 10 TEJIDO SECRETOR ........................................................................................... 18
PRÁCTICA 11 ESTRUCTURA INTERNA DE LA RAÍZ .......................................................... 19
PRÁCTICA 12 ESTRUCTURA INTERNA DEL TALLO .......................................................... 20
PRÁCTICA 13 ESTRUCTURA INTERNA DE LA HOJA ........................................................ 22
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PRÁCTICA 1 CORTES HISTOLÓGICOS
El estudio anatómico y morfológico del material vegetal requiere de su conservación en buen
estado para su posterior análisis en el laboratorio. Se deben conservar las estructuras internas y
externas de manera que sufran las menores alteraciones posibles.
Cuando se va a estudiar la estructura interna se requieren cortes del material, los cuales
posteriormente pueden ser coloreados o teñidos. La preparación de los cortes se podrá hacer de
forma permanente o semipermanente. Se deben realizar registros de las observaciones bien sea
mediante fotos o dibujos.
En principio, con el material vegetal se pueden realizar cortes a mano (conocido como mano alzada
o mano libre) del material fresco, sin que hayan recibido ningún tratamiento previo, para ser
observados al microscopio de luz; sin embargo, a medida que se requieran más detalles
estructurales se deben utilizar técnicas y aparatos cada vez más complicados para la preparación de
las muestras, como el micrótomo.
OBJETIVOS:
1. Conocer y practicar los diferentes cortes anatómicos y familiarizarse con los términos.
2. Preparar material vegetal para su observación al microscopio óptico
MATERIALES
- Biológico: hojas tallos, raíces de cualquier especie vegetal.
- Hojas de afeitar ó bisturí
- Porta y cubre objetos,
- Pinzas de punta fina, estiletes
- Gotero
- Papel toalla
- Placas petri
PROCEDIMIENTO:
Cortes en Tallos y raíces. Los cortes anatómicos en este tipo de órganos pueden realizarse en
sentido transversal (en un plano perpendicular al eje mayor del órgano, figura a) o longitudinal (en
un plano paralelo al eje mayor del órgano) este último puede ser corte longitudinal radial (figura b)
o tangencial (figura c) dependiendo si incluye o no el eje de simetría. En caso de hojas o cualquier
estructura laminar se recomienda enrollarlo o doblarlo para darle mayor consistencia y facilite el
corte. Se recomienda el uso de hojas de afeitar nuevas,
A B C
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PROCEDIMIENTO
- La preparación del material vegetal consisten varios pasos entre ellos el corte y el montaje.
- Coloque agua en las placas petri, limpie el órgano a trabajar.
- Realice los diferentes cortes a mano libre como se ve en las figuras de cada uno de los
órganos, procure realizar varios cortes e inmediatamente colocarlos en agua. - Con ayuda de pinzas estilete o agujas saque el corte más fino y proceda al montaje - Para el montaje, coloque cuidadosamente la muestra sobre el cubreobjetos, agregando una
gota de agua, seguidamente coloque el cubreobjetos formando un ángulo y suelte
suavemente, procure evitar la formación de burbujas en el medio ya que estos distorsionan
la observación de la muestra. - Coloque la muestra preparada, en la platina del microscopio para su observación, con
anterioridad debe limpiar los lentes del revólver y los oculares del microscopio; la
observación de toda lámina debe iniciarse con el menor aumento, esquematice sus
observaciones. - Recuerde que cuando más delgada es la muestra podrá observar con mayor detalle las
estructuras en el microscopio con mayores aumentos.
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PRÁCTICA 2. COMPONENTES DE LA CÉLULA VEGETAL
Las plantas son organismos multicelulares compuesto por millones de células con funciones
especializadas, al madurar estas células especializadas pueden diferenciarse entre sí en sus
estructuras. Recordemos además que cada célula es una unidad fisiológica estructural y anatómica
de los organismos.
Las células vegetales al igual que las células animales poseen las mismas características básicas de
las células eucariotas: el citoplasma, en donde se encuentra inmerso el núcleo, redondeado limitado
por la membrana nuclear o carioteca y en su interior se encuentra el material genético así como
proteínas y los nucleolos que son las “fábricas” de ribosomas; también están presentes algunas
organelas propias de los vegetales como son los plastidios, en general, y especialmente los
cloroplastos que son los encargados de realizar la fotosíntesis; otro componente importante es la
vacuola, las cuales pueden almacenar grandes cantidades de agua, llegando a ocupar casi la
totalidad del volumen celular.
Otra particularidad de la célula vegetal, y que la diferencia enormemente de la célula animal, es la
presencia de la pared celular o matriz extracelular, que representa una especie de exoesqueleto que
protege y le da sostén mecánico a la célula y a la par que sirve para mantener el balance con la
presión osmótica. Ésta comprende un retículo fibrilar de celulosa y una matriz gelatinosa que
contiene pectina y hemicelulosa.
OBJETIVO:
Dar a conocer los componentes que intervienen de manera activa en la vida de la célula vegetal
MATERIALES
- Biológicos: Catafilos de Allium cepa (cebolla), Hojas de Elodea sp, Tallos de
Opuntia ficus-indica (Tuna), Frutos de Capsicum frutescens (ají).
- Lugol
- Porta y cubreobjetos
- Hojas de afeitar nuevo
- Pinzas y goteros
- Papel lente
- Papel toalla
PROCEDIMIENTO:
- Montar los catafilos de Alliun cepa sobre el portaobjetos y añadir una gota de lugol, cubrir y
observar los núcleos y nucleólos, vacuola, pared celular primaria.
- Extraer una hoja de Elodea sp. y ponerla sobre el portaobjeto, añadir una gota de agua y
observar los cloroplastos. Si no se tiene la anterior muestra, hacer cortes finos del tallo de
Opuntia ficus-indica y observar los cloroplastos y las grandes vacuolas en el tejido acuífero
- Hacer cortes superficiales de la epidermis interna del fruto de Capsicum frutescens, montar
la muestra con agua y observar células con las paredes celulares muy grandes y diferenciar
la lamina media y pared celular secundaria y plasmodesmos.
- Esquematice y nomine sus observaciones, mencionando el total de aumentos.
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PRÁCTICA 3 CÉLULA VEGETAL: SUSTANCIAS ERGÁSTRICAS
INCLUSIONES
Son sustancias inertes hidrófobas que se encuentran en el citoplasma, entre ellos el más abundante
en los vegetales es el oxalato de calcio que se encuentra en forma de cristales.
Los cristales asumen muchas formas diferentes. Ellos aparecen como rafidios, paquetes de
agujillas; maclas, prismas rectangulares o piramidales; drusas, agregados esferoidales de cristales
prismáticos; arenilla cristalífera, cristales muy pequeños, usualmente en masa. La apariencia y
localización de los cristales puede ser específica y útil en la clasificación taxonómica.
Los cristales de carbonato de calcio son poco comunes en plantas superiores. Este compuesto está
muchas veces asociado con la pared celular en la forma de cistolitos. Estos cristales usualmente se
desarrollan en las vacuolas.
Se supone que la formación de los cristales es llevada a cabo por la célula como un artificio para
aislar ciertos desechos metabólicos, los cuales, si se acumularan en el citoplasma, podrían ser
tóxicos para la célula o tejido.
maclas
OBJETIVO:
Ubicar y diferenciar los cristales de oxalato y carbonato de Calcio en el interior de las células.
MATERIALES
- Bulbo de Allium sativum (ajo).
- peciolo de Begonia sp. (begonia), o
- cladodio de Opuntia ficus-indica (tuna)
- peciolo de Brugmansia arbórea (floripondio)
- hojas de Lemna sp., o
- tallo de Impatiens balsamina (balsamina),ó
- hojas de Sanseviera sp. (lengua de vaca)
- hojas de Ficus sp. (caucho)
- Hojas de afeitar ó bisturí
- Porta y cubre objetos,
- Pinzas de punta fina, estiletes, gotero, papel toalla, placas petri
[Escriba una cita del documento o
del resumen de un punto interesante.
Puede situar el cuadro de texto en
cualquier lugar del documento.
Utilice la ficha Herramientas de
cuadro de texto para cambiar el
formato del cuadro de texto de la
cita.]
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Pedúnculo de celulosa
Cistolito
Litocisto
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PROCEDIMIENTO:
- Montar un catafilo de Allium sativum en agua y observar unos cristales poliédricos, formas
rectangulares muchas veces, aislados o en grupos, llamados MACLAS.
- Hacer cortes transversales del peciolo de Begonia sp. o del cladodio de Opuntia ficus-
indica; montar los cortes en una gota de agua; observar unos cristales con muchas salientes
agudas que asemeja a la rosa náutica, llamadas DRUSAS.
- Hacer cortes transversales del peciolo de Brugmancia arborea; montar en una gota de agua
y observar numerosos cristales pequeños en el interior de las células, llamados ARENILLA
CRISTALIFERA.
- Hacer cortes del tallo de Impatiens balsamina, o de la hoja de Sanseviera sp., u observar
directamente las hojas de Lemna sp. unos cristales en forma de agujas llamados RAFIDIOS.
- Hacer cortes transversales de la hoja de Ficus sp, hacer el montaje en agua y observar en la
hipodermis unas células de mayor tamaño (litocisto), las cuales contienen el cristal de
carbonato de calcio (cistolito), éste cristal está alrededor de un soporte (columela) de
naturaleza celulósica.
- Esquematice y nomine sus observaciones, mencionando el total de aumentos
PREGUNTA
- Agregue a las inclusiones de oxalato de Ca y carbonato de Ca una gota de HCl 1N a las
muestras, que ocurre? Escriba la reacción química e interprete
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PRÁCTICA 4 CÉLULA VEGETAL: SUSTANCIAS ERGASTRICAS DE
RESERVA
La glucosa, formada durante la fotosíntesis foliar, forma todos los glúcidos en las plantas. Circulan
de célula en célula bajo la forma de glucosa o sacarosa. La glucosa no alcanza jamás una
concentración elevada en la vacuola, debido a que es empleada en procesos metabólicos de la
célula, como la respiración celular o se transforma en almidón.
Sobre un leucoplasto alargado se ve aparecer una o más vesículas de almidón. A partir de un
leucoplasto circular, por lo general se forma un solo grano de almidón, pero de un leucoplasto
alargado se pueden formar varios gránulos o los llamados gránulos compuestos.
OBJETIVOS:
Observar y diferenciar los granos de almidón, reserva de inulina y proteínas de reserva presentes
en los diferentes órganos de las plantas.
MATERIALES
- Tubérculos de Solanum tuberosum (papa)
- Semillas de Zea mays (maíz)
- Semillas de Phaseolus vulgaris (frijol)
- Semillas de Oriza sativa (arroz)
- Raíz de Dahlia sp (dalia); o raíz de Polymnia sonchifolia (yacón)
- Semillas de Hordeum vulgare (cebada); o Triticum aestivum (trigo)
- Semillas de Ricinus communis (higuerilla)
- Hojas de afeitar ó bisturí
- Porta y cubre objetos,
- Pinzas de punta fina, estiletes, gotero, papel toalla, placas petri
Cristaloide
Globoide
Hilo
Estratificaciones
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PROCEDIMIENTO:
- Realizar cortes transversales del tubérculo de Solanum tuberosum; hacer el montaje con una
gota de agua; observar a menor aumento los granos de almidón en el interior de las células;
a mayor aumento, observar la forma del grano, el hilo y las estratificaciones; reconocer la
presencia de granos simples, semicompuestos y compuestos.
- Realizar raspados de las semillas de Zea mays, Phaseolus vulgaris y Oriza sativa; hacer el
montaje de cada una con una gota de agua; a mayor aumento, observar la forma del grano y
el hilo; reconocer la presencia de granos simples y compuestos.
- A cualquiera de los dos preparados anteriores agregar una gota de lugol y observar el viraje
de color.
- Trozar la raíz de Dahlia sp o de Polymnia sonchifolia, y ponerlos en alcohol 70º por lo
menos 24 horas antes de la práctica; hacer cortes finos y montarlos con una gota de lugol;
observar la presencia de los esferocristales de inulina, en forma de medias naranjas en el
interior de las células.
- Cortar transversalmente las semillas de Hordeum vulgare; agregar una gota de lugol y
diferenciar la capa de aleurona del tejido del endospermo.
- En la semilla de Ricinus communis, retirar la cubierta dura; hacer cortes finos o raspado de
la parte más blanda; agregar una gota de lugol y una de glicerina; reconocer en los gránulos
de aleurona: el globoide (fitina), el cristaloide (proteina) y la pseudo membrana que
envuelve a ambos.
- Esquematice y nomine sus observaciones, mencionando el total de aumentos
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PRÁCTICA 5 TEJIDO MERISTEMÁTICO
La palabra meristema deriva de dos voces griegas meris = parte y stema = filamento. Los
meristemas son tejidos embrionales de rápida y continua división celular. Estas son de tamaño
pequeño en el momento de su formación, se alargan enseguida y luego se diferencian para dar lugar
al nacimiento de los diversos tejidos de la planta. Mantiene sus paredes celulares primarias poco
desarrolladas.
Los meristemas se dividen en:
meristemas primarios o apicales, en donde tiene lugar el crecimiento en longitud de los órganos y
corresponden a los puntos vegetativos de la planta.
Meristemas secundarios o cambiums, que determinan el crecimiento en espesor o grosor de los
tallos y raíces.
Cambium vascular
Xilema
Floema
OBJETIVO:
Diferenciar los tipos de meristemas, tanto primarios como secundarios
MATERIALES:
- Raíces de Allium cepa (cebolla)
- Ápice caulinar de Ricinus communis (higerilla)
- Rama joven de Sambucus peruvianus (sauco), o ramas de cualquier otro árbol
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- Hojas de afeitar ó bisturí
- Porta y cubre objetos,
- Pinzas de punta fina, estiletes, gotero, papel toalla, placas petri
PROCEDIMIENTO:
- Cortar el ápice radical de Allium cepa y ponerlo en un portaobjetos con una gota de carmín
acético. Calentar un poco. Cubrir con la laminilla y observar al microscopio. Diferenciar, de
afuera hacia adentro y por su diferente coloración, la protodermis, el periblema y el
pleroma.
- Cortar el ápice caulinar de higuerilla, separar las brácteas y primordios foliares que protegen
el meristema apical, y realizar la coloración con carmín acético de la misma forma que la
muestra anterior. Diferenciar, de afuera hacia adentro y por su diferente coloración, la
túnica y el corpus.
- Hacer cortes transversales de las ramas de Sambucus peruvianus. Agregar una gota de
safranina y observar al microscopio el meristema secundario (felógeno o cambium
suberógeno) que va a dar origen a la peridermis y se encuentra ubicado en la zona periférica
del tallo; también, observar el meristema secundario (cambium vascular) que va a dar
origen al xilema y al floema, por lo que se le ubica entre ambos.
- Esquematice y nomine sus observaciones, mencionando el total de aumentos
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PRÁCTICA 6 TEJIDO PARENQUIMÁTICO
Este tejido tiene como principal función la nutrición de la planta. Las partes periféricas que tienen
acceso a la luz son clorofilianas y sirven para la fotosíntesis. Las regiones más profundas, sirven
para el almacenamiento de las reservas nutricias del vegetal.
Las células de los parénquimas son relativamente poco diferenciadas, en relación a las células de
los meristemos de donde provienen. Son además, células vivas, que no han perdido totalmente la
facultad de multiplicarse, lo cual hace que pueda recuperarse en determinadas condiciones y bajo
ciertas influencias. Su contenido celular se halla cruzado a menudo por numerosas vacuolas que
contienen o almacenan productos de su propio metabolismo. Sus plastidios son funcionales: unos
contienen clorofila, especialmente las regiones asimiladoras, y otros almidón o amiloplastos.
Parénquima acuifero Aerénquima
Parénquima de reserva
OBJETIVO:
Reconocer los distintos tipos de parénquima, los que se diferencian por la función que cumplen.
MATERIALES:
- cladodios de Opuntia ficus-indica (tuna)
- peciolo de Canna edulis (achira)
- tubérculo de Solanum tuberosum (papa)
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PROCEDIMIENTO:
- Realice cortes transversales del cladodio de la Opuntia ficus-indica, montar en agua.
Observe el parénquima clorofiliano (clorénquima), se diferencia fácilmente por la presencia
de cloroplastos; además, observar el parénquima acuífero, el cual se reconoce por que sus
células son más grandes, redondeadas y sin cloroplastos.
- Hacer cortes transversales del tubérculo de Solanum tuberosum, montar en agua. Observe el
parénquima de reserva, se diferencia fácilmente por la presencia de amiloplastos.
- Hacer cortes transversales del peciolo de Canna edulis, montar en agua. Observar el
parénquima aerífero (aerénquima), se diferencia fácilmente por la presencia de células con
ramificaciones lo que crea grandes espacios intercelulares donde se reserva aire.
Esquematizar y nominar sus observaciones.
- Esquematice y nomine sus observaciones, mencionando el total de aumentos
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PRÁCTICA 7 TEJIDOS MECÁNICOS: COLENQUIMA Y ESCLERENQUIMA
Convencionalmente se denomina con el nombre de aparato de sostén a un grupo de tejidos cuyo rol
es contribuir a la solidez de la planta.
En realidad todos los tejidos de la planta contribuyen a su solidez, como por ejemplo el tejido
parenquimático, que da solidez por el estado de turgencia en que se encuentran sus células. La
verdadera función de sostén de la planta se inicia con el espesamiento y la lignificación de las
paredes celulares.
Colénquima angular, laminar y lagunar
De esta manera tenemos dos tipos de tejidos mecánicos:
a) Colénquima: formado por células que continúan viviendo y cuya pared es enteramente
celulósica, pero engrosadas irregularmente. b) Esclerénquima: formado por células muertas y en las cuales la pared celular se ha lignificado
uniformemente.
c) Esquematice y nomine sus observaciones, mencionando el total de aumentos
OBJETIVO:
Diferenciar los tejidos colénquimáticos y esclerénquimáticos, por el engrosamiento de la pared celular.
MATERIALES:
- Tallo de Cucurbita pepo (zapallo), o tallo de Foeniculum vulgare (hinojo), Phaseolus vulgare y
tallo de Ricinus communis (higuerilla).
- Tallo de Populus sp. (álamo)
- Tallo de Sambucus peruvianus (sauco)
PROCEDIMIENTO:
- Hacer cortes transversales del tallo de zapallo, Foeniculum vulgare o Ricinus comuni, agregar
safranina. Observar justo debajo de la epidermis un grupo de células con engrosamientos en los
ángulos de sus paredes celulares (colénquima angular)
- Hacer cortes transversales del tallo de Populus sp, agregar safranina. Observar justo debajo de la
peridermis un grupo de células con engrosamientos de sus paredes celulares en la zonas que
colindan con espacios intercelulares (colénquima lagunar)
- Hacer cortes transversales del tallo de Sambucus peruvianus, agregar safranina. Observar justo
debajo de la peridermis un grupo de células con engrosamientos de sus paredes celulares
tangenciales al tallo, en forma laminar (colénquima laminar)
- En las muestras anteriores observar células con paredes celulares engrosadas homogeneamente, y
teñidas intensamente con safranina, son células del tejido esclerénquimático.
- Esquematice y nomine sus observaciones, mencionando el total de aumentos
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PRÁCTICA 8 TEJIDOS PROTECTORES
Todos los organismos multicelulares poseen tejidos que aíslan y protegen al individuo del medio
externo, en plantas jóvenes y de crecimiento herbáceo se denomina epidermis, y en organismos
vegetales de mayor crecimiento como arbustos y árboles se desarrolla una estructura secundaria
denominada peridermis que en plantas con mucho mayor desarrollo y crecimiento forma varias
capas de peridermis que se compactan formando una capa denominada ritidoma. Tanto la epidermis
y la peridermis poseen además otras estructuras como tricomas, lenticelas, estomas, células
oclusivas e idioblastos.
** *Tricomas mixtos escamosos
* fotografía: K. Oviedo A., J. Uscamaita R., B. Samaniego M., R. Vicente C., L Toribio S.
**fotografías: C. Alberto A.; B França D.; F. Rodrigo G. B. Tricomas Foliares Em Tomateiro Com Teores Contrastantes Do Aleloquímico 2-Tridecanona
OBJETIVO:
Estudiar los tejidos protectores caracterizándolos y diferenciándolos
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MATERIALES:
- Hojas de Pelargonium hortorum (Geranio)
- Hojas de Iris florentina (lirio) ó cualquier monocotiledonea.
- Hojas de Althea rosea (malvarosa)
- Hojas de Urtica urens (ortiga)
- Hojas e Tillandsia sp.
- Ramas de Populus sp. (alamo)
- Corteza de tallo de un árbol
PROCEDIMIENTO:
Plantas monocotiledoneas:
- Realice cortes superficiales de la hoja de Iris florentina, realice el montaje con una gota de
agua. A menor aumento reconozca las células de contorno poligonal, sin espacios
intercelulares, sin cloroplastos. Entre ellas células ariñonadas con cloroplastos los estomas
- Realice cortes transversales de la hoja de Iris flrentina o Zea mays; distinga las células
rectangulares cuya pared externa se encuentra engrosada por la cutina o cutícula, reconozca
el aparato estomático (células oclusivas, ostiolo y cámara sub estomática
Plantas dicotiledóneas
- Realice cortes superficiales de la hoja de Pelargonium ortorum, realice el montaje con una
gota de agua. A menor aumento reconozca las células de contorno sinuoso, además observe
los diferentes tipos de tricomas pluricelulares.
- Realice corte superficial en la hoja de Urtica urens y observe el tricoma urticante unicelular
con base pluricelular, además de pelos cónicos.
- Realice corte superficial en la hoja de Althea rosea y observe los tricomas pluricelulares de
forma estrellada t tricomas capitados simples
- corte superficial en la hoja de Tillandsia sp y observe los tricomas mixtos o escamosos
pluricelulares, donde la parte central formada por células vivas de color amarillo rodeada de
células muertas que se disponen radialmente
Peridermis, lenticelas y ritidoma
- Realice cortes transversales del tallo de Sambucus peruviano a nivel de las protuberancias, montar
con una gota de safrnina; identifique en la zona externa tres capas de células de la peridermis
diferentes: el suber o corcho, el cabium suberogeno o felógeno y la felodermis, de trecho en trecho
observe una protuberancias llamadas lenticelas
- Realice el corte transversales de la corteza del árbol y monte con una gota de agua, observe los
diferente estratos repetidos formando el ritidoma , formando por células muertas , células del
parénquima y fibras aisladas
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PRÁCTICA 9 TEJIDOS CONDUCTORES
Este tejido también es conocido como tejido compuesto debido a que está formado por varios
tejidos a la vez, como parénquima y esclerénquima.
Dos son los vasos diferenciados: gracias al primero, el xilema, la raíz puede enviar el agua y sales
que fueron absorbidas del suelo hacia el follaje, distribuyendo por todo el cuerpo de la planta. El
segundo, el floema, se encarga de transportar los productos del anabolismo vegetal, lo que se
conoce como savia elaborada, a todos los órganos de la planta, especialmente a los de reserva.
OBJETIVO:
Reconocer las elementos componentes del xilema y del floema; así como los tipos de haces
vasculares que se forman por la disposición del xilema y floema.
MATERIALES:
- Raquis o eje del fronde de helecho
- Tallo de Cucurbita pepo (zapallo),
- Talle de Ricinus communis (higuerilla)
- Rizoma de Iris florentina (lirio)
- Tallo de Zea mays (maíz)
- Madera de cualquier Gimnosperma
PROCEDIMIENTO:
- Realizar un corte longitudinal del tallo de Cucurbita pepo, teñir con safranina y observar;
reconocer el xilema, y diferenciar los tipos protoxilemáticos (espiralado, anillado) y
metaxilemáticos (reticular, escaleriforme) de acuerdo a la deposición de la lignina sobre sus
paredes.
- En el mismo corte, observar los vasos floemáticos, las placas cribosas de estos vasos, las
células acompañantes, parénquima floemático.
- Para observar los tipos de haces vasculares: primero, del tipo concéntrico; hacer cortes
transversales del raquis del fronde del helecho, agregar safranina y observar que el tejido
floemático rodea al xilemático (perifloemático o hadrocéntrico) y todo este conjunto
rodeado por la vaina amilífera.
- Realizar cortes transversales del rizoma de Iris florentina, agregar safranina y observar que
el tejido xilemático rodea al floemático (perixilemático o leptocéntrico).
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- Segundo, del tipo lateral; realizar cortes transversales del tallo de Zea mays, agregar
safranina y observar los haces vasculares dispersos, rodeados por esclerénquima y sin la
presencia de cambium, por lo que se les denomina haz vascular colateral cerrado.
- Hacer cortes transversales del tallo de Ricinus comunis, agregar safranina y observar la
presencia del cambium entre el xilema y floema, por lo que se les denomina haz colateral
abierto.
- Hacer cortes transversales del tallo de Cucurbita pepo, agregar safranina y observar la
presencia de dos tejidos floemáticos (a cada lado del xilema), también la presencia de
cambium entre el floema externo y el xilema, por lo que se les denomina haz bicolateral
abierto.
- Hacer un corte longitudinal de la madera de una Gimnosperma (puede ser un lápiz), agregar
agua y observar las traqueidas que se caracterizan por presentar las punteaduras rebordeadas
y en el interior de estas punteaduras, una membrana llamada torus.
- Esquematice y nomine sus observaciones, mencionando el total de aumentos
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PRÁCTICA 10 TEJIDO SECRETOR
Las células que constituyen este tejido son siempre vivas, de pared celulósica, emparentadas
visiblemente con el parénquima y con la epidermis. Elaboran en el interior de su citoplasma los
productos característicos de su actividad: esencias, resinas, látex, etc.; por lo que predominaran los
dictiosomas en este tipo de células.
Existen varios tipos de estructuras secretoras, así tenemos las de secreción externa, como las
glándulas, pelos glandulares, nectarios, hidatodos, y las de secreción interna, como los espacios
lisígenos, espacios y canales esquizógenos, los canales resiniferos y los laticíferos articulados y no
articulados.
OBJETIVO:
Reconocer las características de los elementos integrantes del tejido de secreción interna
MATERIALES:
- hoja de Foeniculum vulgare (hinojo)
- hoja de Ruta graveolens (ruda)
- fruto de Citrus aurantium (naranja) u otro cítrico
- bulbo de Allium cepa (cebolla)
- hoja de Ficus elastica (caucho)
- hoja de Pinus sp (pino)
PROCEDIMIENTO:
- Realizar cortes transversales de la hoja de Foeniculum vulgare, Realizar el montaje con
safranina. Ubicar debajo del tejido colenquimático un espacio rodeado por células, es un
canal esquizógeno.
- Realizar cortes superficiales de la hoja de Ruta graveolens, Realizar el montaje con agua.
Observar unos espacios limitados por células y llenos de una sustancia amarillenta, son
cavidades esquizógenas.
- Realizar cortes superficiales del epicarpio del fruto de Citrus aurantium, Realizar montaje
con agua. Observar unos espacios rodeados por células lisadas y en su interior pequeñas
gotas de aceites esenciales, son cavidades lisígenas.
- Realizar cortes longitudinales de la catáfila del bulbo de Allium cepa, Realizar el montaje
con agua. Observar unos canales formado por varias células y con látex de color oscuro en
su interior, es un laticífero articulado.
- Hacer cortes longitudinales del peciolo de la hoja de Ficus elastica, hacer montaje con agua.
Observar dentro del tejido parenquimático unas células muy alargadas con látex en su
interior, son laticíferos no articulados.
- Hacer cortes transversales de la hoja del pino, hacer montaje con agua. Observar en el
mesófilo de la hoja unas células que rodean un espacio y presentan una coloración marrón.
- Esquematice y nomine sus observaciones, mencionando el total de aumentos
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PRÁCTICA 11 ESTRUCTURA INTERNA DE LA RAÍZ
La estructura primaria de las raíces se caracteriza por la gran homogeneidad anatómica que
presentan los dos grupos de Angiospermas. Esto debido a que en el suelo no ocurre cambios tan
radicales como los que ocurren en la zona aérea. Aunque sí se puede diferenciarlos si se tiene en
cuenta el número de paquetes de haces vasculares (arcas) que presenta cada grupo, así tenemos que
las dicotiledoneas presentaran entre 2 a 7 arcas, pero las monocotiledoneas presentaran más de 10.
Otra característica de este tipo de estructura es que el xilema y floema primarios se alternan uno al
lado del otro; otro rasgo característico es también la presencia de la endodermis, que tiene su
principal función en el paso del agua y sales minerales hacia el xilema, y del periciclo, que por ser
un meristema remanente origina las raíces secundarias.
En la estructura secundaria, que se presenta tanto en dicotiledoneas como en Gimnospermas, se
distingue la actividad del cambium vascular y del felógeno, guardando una relación estrecha con la
estructura secundaria de los tallos, llegando a presentar, como los tallos de los árboles, anillos de
crecimiento y ritidoma.
OBJETIVO:
Reconocer las diferencias que existen entre la estructura primaria y secundaria de las raíces de
monocotiledóneas y dicotiledóneas.
MATERIALES:
- Raíces de Iris florentina (lirio) u otra monocotiledónea
- Raíces de Medicago sativa (alfalfa) u otra dicotiledónea
PROCEDIMIENTO:
- Hacer cortes transversales de la raíz de Iris florentina; agregar safranina. Observar al
microscopio rizodermis, parénquima cortical, endodermis que se caracteriza por presentar
las bandas de caspary, periciclo, xilema y floema en disposición radial, y el parénquima
medular que puede estar esclerosado o no.
- Hacer cortes transversales de la raíz de alfalfa; agregar safranina. Observar al microscopio
peridermis, parénquima cortical, floema secundario, cambium vascular, xilema secundario,
radios medulares, parénquima medular.
- Esquematice y nomine sus observaciones, mencionando el total de aumentos
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PRÁCTICA 12 ESTRUCTURA INTERNA DEL TALLO
Al igual que en la raíz, se pueden distinguir dos estructuras:
La estructura primaria, que es la que se encuentra en los tallos más jóvenes, tales como los que se
desarrollan a partir del embrión. Esta estructura persiste indefinidamente sin mayores alteraciones
en numerosas plantas: pteridofitas actuales, monocotiledoneas y muchas dicotiledoneas herbáceas.
La estructura secundaria, esta estructura se superpone a la primaria, cuando la planta alcanza un
estado de desarrollo mayor. Este es el caso de numerosas pteridofitas fósiles, de todas las
gimnospermas y de numerosas dicotiledoneas leñosas.
OBJETIVO:
Reconocer y diferenciar los distintos tipos de tejidos que se presentan tanto en la estructura
primaria como secundaria de los tallos.
MATERIALES:
- Tallo de maíz (Zea mays) o cualquier otra gramínea
- Tallo de alfalfa (Medicago sativa) o cualquier otra dicotiledónea herbácea
- Rama de álamo (Populus sp.) o cualquier rama de árbol
PROCEDIMIENTO:
- Hacer cortes transversales del tallo de maíz, agregar safranina y observar al microscopio.
Observar el tejido epidérmico, debajo un parénquima lignificado, luego parénquima de
relleno y entre este parénquima los haces vasculares.
- Hacer cortes transversales del tallo de alfalfa, agregar safranina y observar al microscopio.
Observar el tejido epidérmico, en los ángulos del tallo colénquima, luego parénquima
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cortical clorofiliano, luego floema primario, procambium y xilema primario, y por último
parénquima medular.
- Hacer cortes transversales de la rama de álamo, agregar safranina y observar al
microscopio. Observar la peridermis, debajo el tejido colenquimático, luego parénquima
cortical y dentro de este tejido fibras esclerenquimáticas de floema primario, luego el
floema secundario, el cambium y el xilema primario, debajo el xilema primario y el
parénquima medular.
- Esquematice y nomine sus observaciones, mencionando el total de aumentos
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PRÁCTICA 13 ESTRUCTURA INTERNA DE LA HOJA
La hoja, expansión lateral del tallo, presenta continuidad de tejidos con el eje de donde procede. La
epidermis continúa a la del tallo, presentando todos sus caracteres. El paréquima cortical del tallo
se prolonga en la hoja y constituye el parénquima general. Finalmente los haces vasculares del
tallo, emiten a nivel de los nudos, las ramas destinadas a servir a la hoja, de modo que estos haces
atraviesan la corteza, penetran el peciolo y luego se multiplican para originar la nervadura
principal, cuyas ramificaciones en el limbo de la hoja constituyen las nervaduras secundarias,
terciarias, etc.
OBJETIVO: Reconocer y diferenciar los tejidos que forman el mesófilo de las hojas.
MATERIALES:
- Hojas de Saccharun officinarum (caña de azúcar) u otra gramínea
- Hojas de Schefflera sp (cheflera.) u otra dicotiledónea
- Hojas de Crassula sp.
PROCEDIMIENTO:
- Hacer cortes transversales de la hoja de caña de Saccharun officinarum, agregar lugol y
observar al microscopio. Observar las epidermis del haz que de trecho en trecho presenta
unas células más grandes llamadas “células bulliformes”, el mesófilo formado por
parénquima clorofiliano en donde no se observan diferencias entre las células de este tejido
(morfología equifacial), observar la distribución de los haces vasculares, observe que el
xilema está hacia el haz y el floema hacia el envés y ambos rodeados por una fila de células
llamadas células de la vaina envolvente que se van a teñir de azul con el lugol, esta
característica es propia de las plantas con fotosíntesis C4.
- Hacer cortes transversales de la hoja de Schefflera sp, agregar lugol y observar al
microscopio. Observar las células epidémicas, el mesófilo divido en dos partes, una con las
células parenquimáticas alargadas con pocos espacios intercelulares y ubicadas hacia el haz
llamada parénquima en empalizada, la otra con células redondeadas con grandes espacios
intercelulares ubicadas hacia el envés llamada parénquima esponjoso (morfología bifacial).
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Con el lugol todo el mesófilo se va a teñir de azul, esta característica es propia de las plantas
con fotosíntesis C3.
- Hacer cortes transversales de la hoja de Crassula, agregar lugol y observar al microscopio.
Observar las epidermis, un mesófilo en donde no hay diferencias entre sus células
(morfología isofacial). Con el lugol se teñirá de azul de acuerdo a la hora en que se colectó,
si fue en la mañana dará coloración azul y si fue en la noche no reaccionará con el lugol,
esto característico de plantas con fotosíntesis MAC.
- Esquematice y nomine sus observaciones, mencionando el total de aumentos
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REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICA
- GONZÁLEZ ANA MARÍA. 2001- 2008 Morfología de Plantas Vasculares Facultad de
Ciencias Agrarias, Sgto. Cabral 2131 Universidad Nacional del Nordeste, Corrientes,
Argentina. http://www.biologia.edu.ar/plantas/planta2.htm
- LA ROSA, RAFAEL 2010. Manual de prácticas de laboratorio de Botánica General.
UNFV. Facultad de ciencias Naturales y Matemáticas. Departamento de Biología.
- MARTINEZ, JUAN LUIS, 2006. Técnicas de Microscopía Electrónica, Curso Internacional
Teórico Práctico. Universidad de Oviedo España. Universidad Nacional Mayor de San
Marcos.
- PEREZ TUESTA, ELEUCY; MILLAN SALAZAR, BETTY; IPARRAGUIRRE LEON,
DOMINGO; COX RAMOS, ESTHER. 1997. Guía de Prácticas del Curso de Botánica
General. UNMSM. Facultad de Ciencias Biológicas, Departamento de Botánica.
- TORMO MOLINA RAFAEL. Ediciones Hipertextuales de Botánica. Universidad de
Extremadura. España. http://www.unex.es/botanica/LHB/index.htm
- ROMAN, PALOMA. 2008. Ámbito científico Biología. Tema 2: Tejidos Vegetales.
http://actbiologia.blogspot.com/2008/10/tema2-los-tejidos.html
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