Biología de la reproducción
Neil Duncan
Instituto de Recerca y Tecnologia Agroalimentarias
(IRTA) Sant Carles de la Rapita, Spain
Capacitación en el Cultivo
de Corvina (Argyrosomus regius)
2-17 de junio, 2021
El mundo tiene muchas diferentes hábitats de agua.
Todos poblados por peces resultando en la evaluación de mas que 30,000 especies.
La evolución de una diversidad de estrategias de reproducción
Determinación de sexo - genética a ambiental
Diferenciación sexual – sexo fijo, hermafrodismo
Talla a pubertad
Época de puesta, numero de puestas
Fecundidad
Fertilización Interna o externa
Tamaño de huevo y características
Cuidado parental
Introducción general
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
La reproducción es energéticamente exigente.
La maduración requiere de un período considerable para desarrollarse.
La meta es producir progenie que maduran y participan en la puesta. Estrategias para aumentar supervivencia durante periodos críticos en muchas ambientes diferentes.
Introducción general
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Tipo de desarrollo gonadal
• Síncrono
• Síncrono en grupos
•Asíncrono
Tamaño de huevo
• Huevo grande - fecundidad baja
• Huevo pequeño - fecundidad alta
Desarrollo ovárico
Introducción general
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Periodisidad de desoves
Estacionalidad de desoves y frecuencia
Relacionado con los cambios ambientales y sobrevivencia de la progenie.
Ultimate factors (las factores definitivos).
Programación del proceso de maduración
Tiempo para gametogénesis y estados finales coinciden con el ambiente óptima para la sobrevivencia de la progenie.
Proximate factors (las factores proximales).
Introducción general
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Determinación Sexual
y
Diferenciación Sexual
Determinación Sexual
Serie compleja de procesos que interactúan.
Genético
Ambiental (por ejemplo, temperatura),
Comportamental
Factores fisiológicos
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Diferenciación Sexual
Lábil, flexible.
Gonochoristic
Hermafroditas
Protandrous (machos).
Protogynous (hembras).
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Corvina (Agyrosomus regius) 10-15 días - aumento de las células germinales en el
ovario. 23-26 días - conducto de espermatozoides y cavidad
ovárica presente. 40 días - oogénesis, meiosis. 60-70 días - espermatogénesis, meiosis. Actividad de los esteroides medida antes y durante
estos períodos en poblaciones de un solo sexo. Hormona determinante del sexo estradiol.Nagahama, 2000. Proceedings of the 6th International Symposium on the Reproductive Physiology of Fish.
Diferenciación Sexual
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Diferenciación Sexual - corvina
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Cavidad
Espermatocyte Ovocito
Desarrollo ovárico
11 04/06/2021
Mugil cephalus
Ramos et al., 2021
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Bromage and
Cumaranatunga
1988
Mañanós et al.,
2008
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Mañanós et al., 2008
Maduración: Oogénesis
Tyler and Sumpter 1996
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Desarrollo ovárico Diferenciación Sexual Crecimiento primario
Basofilic (Haematoxylin and Eosin H&E)
Fase Cortical Alveolus Basofilic
Vitelogénesis Acidofilic
Maduración final Ovulación Atresia
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Ovogénesis El proceso de ovogénesis
Etapa de proliferación oogonial
Transformándose en oocitos primarios.
Células epiteliales que forman el folículo ovárico
(Harvey y Hoar, 1979; Nagahama, 1983; Zohar, 1989).
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Etapa II
Etapa III
Etapa I
Nucleolos
Zona Radiada
Citoplasma
Núcleo Basofilico
Formación de las
Capas Foliculares
Alveolo Cortical
En ésta fase los oocitos se caracterizan por un gran núcleo rodeado por numerosos nucleolos, además de la presencia en el citoplasma de una estructura denominada corpúsculo de Balbiani formado por varios organelos celulares tales como mitocondrias, cuerpos de Golgi, retículo endoplásmico granuloso, cuerpos multivesiculares, y gránulos de lípidos. En conjunto tienen la función de servir de centro metabólico y de formación de organelos dentro del oocito. Durante la previtelogénesis, las células del epitelio folicular se diferencian para formar dos capas. La capa interna es la granulosa y la externa es la teca Además una membrana gruesa se forma entre el oocito y la capa granulosa, la zona pelúcida que se caracteriza por tener una apariencia estriada, debido a que se encuentra atravesada por microvellosidades, que actúan en el transporte de nutrientes hacia el oocito por falta de irrigación sanguínea (Nagahama, 1983; Zohar, 1989).
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Vitelogénesis
Comprende la incorporación de vitelo a su citoplasma, material conformado por: proteínas, carbohidratos, ácidos nucleicos y lípidos que sirven como fuente de energía durante el desarrollo embrionario (Hopson y Wessells, 1990)
El vitelo se deposita bajo la forma de: gotas de aceite, vesículas y gránulos de vitelo (Harvey y Hoar, 1979; Piper et al., 1992)
La vitelogénesis es exógena los gránulos de vitelo se producen a partir de la vitelogenina, fosfolipoproteínaproducida y secretada por el hígado (Nagahama, 1983; NgeIdler, 1983; Zohar, 1989).
NúcleoGlóbulos de Vítelo
Primer crecimiento y estado 4
Desarrollo ovárico
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Vitelogenesis
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Vitelogenesis
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Desarrollo ovárico
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Espermatogénesis
Formación de la estructura del lóbulo. Epitelio germinal y células epiteliales secretoras de Sertoli.
Células germinales aisladas.
Células germinales en quistes.
Las células germinales se dividen y forman espermatozoides.
Los espermatozoides se liberan en el lúmen.
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Espermatogénesis
BillardCapacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Billard
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Espermatogénesis
Espermatogonia A
Espermatogonia B
Espermatozoa
Espermatid
Espermatocyte
Endocrinología Hormonas relacionadas
Liberadora de gonadotropina (GnRH).
Gonadotropina (GtH), FSH, LH
Esteroides - estrógeno, testosterona y progestágenos
Dopamina
Prosteglandinas
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Endocrinología
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Endocrinología
Eje Hipotálamo-Hipófisis-gónada
Hipotálamo produce la hormona liberadora de gonadotropina (GnRH) que controla la liberación de gonadotropinas (GtHs).
Hipófisis produce dos gonadotropinas (GtH), FSH y LH
FSH controla gametogénesis
LH controla maduración final y ovulación
Ambiente
externa
Ambiente
interna
Celebro
Hipotálamos
Hormonas liberadoras
Pituitaria
o
Hipófisis
Gonadotropina
Hormona(s)
Ovario Testes
Huevos Esperma
Progestágenos
estrógenos Andrógenas
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Machos Solea senegalensis
T – ng / mL x20
LH – ng / mL x1
FSH – ng / mL x2
KT – ng/mL x1
Hembras Solea senegalensis
T – ng / mL x150
LH – ng / mL x1
FSH – ng / mL x3
E2 – ng/mL x10
VTG – mg / mL x20
Control Ambiental Meta es reproducirse en el momento que da la máxima
oportunidad de supervivencia del progenie.
Reproducción para logar que periodos critico coinciden con alto producción de alimento y baja predación.
La maduración requiere de un período considerable para desarrollarse.
Control endógeno
Encadenado por cambios ambientales
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Factores Definitivos Disponibilidad de alimento adecuado.
Riesgo de predación.
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Factores Proximate Cambio estacional del fotoperiodo.
Cambio estacional en temperatura.
Ciclos de la luna.
Cambios climáticos, particularmente lluvias.
Disponibilidad de alimento.
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Fig. Diagram of environmental factors affecting a fish.
Sea
sonal
Food
avai
labil
ity
Cycl
es o
f
Envir
onm
enta
l fa
ctors
Adequate
Nutrition
Protein
Lipids
Vitamins
Spawning
timed with
maximum food availability
and survival of offspring
Maturation entrained
Maturation entrained
Environmental factors
Weather cycles – Ocean currents – PHOTOPERIOD – TEMPERATURE – Lunar cycles
Size threshold.
Cycl
es o
f
Envir
onm
enta
l fa
ctors
Sea
sonal
Food a
vai
labil
ity
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
THE END
GRACIAS
Familia Sciaenidae
Producción Mundial y Especies Emergentes de América Latina
Jonathan Chacón Guzmán
Parque Marino del Pacifico - Universidad Nacional de Costa Rica
Larimichthys crocea
Aspectos Generales
Presenta aproximadamente 70 géneros con 280 especies. Son especies donde
predominan tonos blancos, plateados y amarillos. La familia presenta una
marcada variedad de tallas.
Totoaba macdonaldi
2 m
100 kg.
2,3 m
150 kg.
https://www.biolib.cz/en/image/id324278/
Argyrosomus regius
https://centrosconacyt.mx/objeto/cultivo-la-totoaba/
Larimichthys crocea
80 cm
5 kg.
http://www.fishtedb.org/project/species-
detail?species=Larimichthys+crocea&page=2&per-page=30
Alimento predominante:
• Crustáceos
• Moluscos
• Peces
Roncadores o Tambores
Ramcharitar, J., Gannon, D. P., & Popper, A. N. (2006). Bioacoustics of fishes of the family Sciaenidae (croakers and drums).
Transactions of the American Fisheries Society, 135(5), 1409-1431.
Los sonidos permiten su localización
Ubicación por sonido :
• Ubicación del cardumen
• Encierro con redes de enmalle
• Golpes o explosivos para asustarlas
• Sobreexplotación
Vejiga fresca $100-200 en Costa Rica
$8.000 a $16.000 / Kilo
FAO. 2020b. Fishery and Aquaculture Statistics. Global aquaculture production 1950-2018 (FishstatJ). In: FAO Fisheries and Aquaculture Department [online]. Rome. Updated 2020.
www.fao.org/fishery/statistics/software/fishstatj/en
Disminución del recurso corvina en el mundo
FAO. 2020b. Fishery and Aquaculture Statistics. Global aquaculture production 1950-2018 (FishstatJ). In: FAO Fisheries and
Aquaculture Department [online]. Rome. Updated 2020. www.fao.org/fishery/statistics/software/fishstatj/en
Tomado de: Chacón-Guzmán et al., (2021) (en preparación)
Hábitat
Estuarios, bocas de río, aguas salobre y
dulces
Habitan fondos lodosos, arenosos y
rocosos
Son especies euritermas 2 a 38 °C y
eurihalinas 0 a 39 ppt
Reproducción
Iteróparas: múltiples ciclos reproductivos en el curso de su vida
Gonocóricas: tienen solo uno de al menos dos posibles sexos
Asincrónicas: Contiene oocitos en todos los estados (madura por partes)
Primera madurez sexual: varía según la especie
Especies pequeñas: 2-4 años, aprox. 15-30 cm LT
Especies grandes: 4-6 años, aprox. 60-120 cm LT
Época reproductiva: Varía según especie y ubicación geográfica (trópico,
zonas templadas y frías). Temperatura el detonante principal.
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
1. Especies con mercado (valor: $ 3 – $15 Kg.)
2. Carne blanca de buena calidad y aceptación
3. Valor agregado por venta de vejiga gaseosa (en algunas especies)
Potencial de Acuicultura
Porque pagan tanto los chinos por la sopa de vejiga ?
4. Adaptabilidad a diferentes salinidades de cultivo (rangos óptimos
menores) ej. L. crocea (6.5-34 ppt natural, pero rango ideal de
cultivo (24,5-30 ppt)
5. Tasas elevadas de crecimiento (2.4 g/día) ej. A. regius
6. Aceptables factores de conversión (1- 2)
7. Comprobadas: altas tasas de sobrevivencia larval (25-75%
especies con mayor dominio) L. crocea y S. ocellatus (China).
8. Biometría larvaria aceptable: Huevos (800-1000 µm) larvas
iniciales (2.4-2.9 cm (LT))
Producción Mundial 2016 – 2019
253 597,0 281 258,8 305 743,2 340 273,3
2016 2017 2018 2019
Tomado de: FishStatJ - Programa informático para
series cronológicas de estadísticas de pesca y
acuicultura, FAO 2021.
https://www.aquaculturealliance.org/advocate/goal-
2019-revision-y-pronostico-de-la-produccion-mundial-
de-peces/
1. Salmon Atlántico )S. salar): 2 423 000
2. Dorada (S. aurata): 228 576
3. Lubina (D. labrax): 210 623
4. Corvina Amarilla (L. crocea): 197 980
5. Salmon cocho (O. kisutch) 187 000
6. Pampano (T. blochii): 125 000
7. Seriola (S. quiqueradiata) : 138 900
2018
1. Larimichthys crocea
2. Sciaenops ocellatus
3. Argyrosomus regius
4. Umbrina cirrosa
5. Miichthys miiuy
6. Argyrosomus japonicus
Especies con producción Mundial registrada en FAO
Tomado de: FishStatJ - Programa informático para series cronológicas de
estadísticas de pesca y acuicultura, FAO 2021
2019 Ton.
225 549
77 008
37 526
132,6
47
10
Distribución
88.5%
L. Crocea
S. Ocellatus
M. miiuy
8.4%
A. regius*
A. japonicus
S. ocellatus
2.3%
A. Regius
U. cirrosa
S.ocellatus
China-88%
295.736 ton
0,8 %
S. ocellatus
Principales productores mundiales (FAO 2021)
Egipto-7.9%
25.320 ton
U.S.-0.73%
3.244 ton
Martinica
Guadalupe
México
Producciones menores no
registradas en FAO:
T. macdonaldi Mexico
C. gilberti Chile – Peru?
España-1.16%
4.535 ton
https://www.etapainfantil.com/mapamundi-para-imprimir
Factores de Éxito
Tomado de: Chacón-Guzmán et al., (2021) (en preparación)
Success factors L. crocea S. ocellatus A. regius
Alta fecundidad x x x
Control reproducivo con hormonas x x x
Altas tasas de sobrevivencia larval x x x
Copépodos naturales disponibles x x -
Factores de conversión alimenticia aceptables x x x
Capacidad de cultivo en alta densidad x x x
Especies eurihalinas x x x
Se adaptan a tecnologías de otras especies x x x
Alta rentabilidad de los cultivos x x x
Bienes y servicios de la industria consolidados x x x
Soporte de gobiernos locales y nacionales x x x
Principales Problemas
Tomado de: Chacón-Guzmán et al., (2021) (en preparación)
Principal problems
x - x
x - -
x x (China) -
x - -Especies suceptibles a la manipulación y estrés
Uso de desechos de pescado para alimentación
Acelerado desarrollo no planeado y no controlado
L. crocea S. ocellatus
Baja diversidad genética en los reproductores
A. regius
https://www.remoteasiaphoto.com/photo/oyster-farms-amp-floating-houses/
Acuicultura de la Familia Sciaenidae en América Latina ?
V.G.
V.G.
V.G.
Tomado de: Chacón-Guzmán et al., (2021) (en preparación)
• “OPTIMIZACIÓN DEL CULTIVO DE LARVAS Y JUVENILES DE CORVINA REINA
(Cynoscion albus, Günther 1864) EN CONDICIONES DE LABORATORIO”
Inicio 2020
Madurez ideal para inducción 4-6 Kg
900 UI HCG
Principales conclusiones
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
1. La familias Scianidae es una de las familias más productivas y con
mayor potencial para acuicultura en mundo
2. Existe un importante desarrollo tecnológico en algunas especies
consolidadas que puede ser adaptado a las condiciones y especies
emergentes de cada país
3. Se debe hacer un análisis exhaustivo (mercado, zootecnia, bienes
y servicios presentes, entre otros) para determinar la factibilidad de
desarrollo de cada especie.
4. América Latina requiere de planes integrales de desarrollo
tecnológico continuo con las especies seleccionadas
Programa de Acuicultura y Biotecnología Marina
(506) 26 61 52 75 (506) 88 17 28 61
www.parquemarino.org
GRACIAS
Gestión de Reproductores
Centrado en la corvina (Argyrosomus regius)
Neil Duncan
Instituto de Recerca y Tecnologia Agroalimentarias
(IRTA) Sant Carles de la Rapita, Spain
Capacitación en el Cultivo
de Corvina (Argyrosomus regius)
2-17 de junio, 2021
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Salvaje Cautiverio
Maduración: Control
El pre - acondicionamiento de reproductores implica proporcionar la nutrición y el ambiente correctos (físicos y sociales) para permitir que la maduración continúe hasta las etapas finales con la producción de gametos viables y el desove.
Acondicionamiento de reproductores
Ibarra-Zatarain and Duncan 2015
Ref: Mañanos, Duncan y
Mylonas 2008
Reproduction and control
of ovulation, spermiation
and spawning in cultured
fish. In: Methods in
Reproductive Aquaculture.
Maduración: Control
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Pasos: Puntos críticos
1. Planificación y conocimientos
– Formación de protocolo
2. Obtención de reproductores
3. Estabulación de reproductores
4. Nutrición
5. Ambiente durante gametogénesis
6. Ambiente para espermiación / maduración final de ovocito –ovulación y la puesta
Pool of potential brood fish
Spawning
Optimal environment for final
maturation and ovulation /
spermiation
Optimal environment
for gametogenesis
Adequate
Nutrition
Yes
Yes
Yes
Yes
Fig. Flow diagram of critical points in the induction of spawning in captivity.
Ref: Mañanos, Duncan y Mylonas 2008 Reproduction
and control of ovulation, spermiation and spawning in
cultured fish. In: Methods in Reproductive Aquaculture.
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Pasos: Puntos críticos
1. Planificación y conocimientos
– Formación de protocolo
2. Obtención de reproductores
3. Estabulación de reproductores
4. Nutrición
5. Ambiente durante gametogénesis
6. Ambiente para espermiación / maduración final de ovocito –ovulación y la puesta
Pool of potential brood fish
Spawning
Optimal environment for final
maturation and ovulation /
spermiation
Optimal environment
for gametogenesis
Adequate
Nutrition
Yes
Yes
Yes
Yes
Fig. Flow diagram of critical points in the induction of spawning in captivity.
Ref: Mañanos, Duncan y Mylonas 2008 Reproduction
and control of ovulation, spermiation and spawning in
cultured fish. In: Methods in Reproductive Aquaculture.
01.1 QUÈ ÉS?
Planificación y
conocimientos
Formación de protocolo
Protocolo para obtención de puesta:
• Estrategia de diferenciación del sexo
Ref: Mañanos, Duncan y Mylonas 2008 Reproduction and control of ovulation, spermiation and spawning in cultured fish. In: Methods in Reproductive Aquaculture.
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?
Planificación y
conocimientos
Formación de protocolo
Protocolo para obtención de puesta:
• Estrategia de diferenciación del sexo
• Talla o edad de primero madurez y talla optima
Ref: Mañanos, Duncan y Mylonas 2008 Reproduction and control of ovulation, spermiation and spawning in cultured fish. In: Methods in Reproductive Aquaculture.
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?
Planificación y
conocimientos
Formación de protocolo
Protocolo para obtención de puesta:
• Estrategia de diferenciación del sexo
• Talla o edad de primero madurez y talla optima
• El periodo de gametogénesis, y las condiciones ambientales durante el periodo
• El periodo de puestas, y las condiciones ambientales durante el periodo
Ref: Mañanos, Duncan y Mylonas 2008 Reproduction and control of ovulation, spermiation and spawning in cultured fish. In: Methods in Reproductive Aquaculture.
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?
Planificación y
conocimientos
Formación de protocolo
Protocolo para obtención de puesta:
• Estrategia de diferenciación del sexo
• Talla o edad de primero madurez y talla optima
• El periodo de gametogénesis, y las condiciones ambientales durante el periodo
• El periodo de puestas, y las condiciones ambientales durante el periodo
• Información de la endocrinología de la reproducción de la especie.
• Información de inducción hormonal de la puesta.
– Fechas de inducción.
– Características de los peces, peso etc.
– Tamaño de oocito
– Hormona y dosis que aplicó.
– Datos de las puestas y calidad de huevo: i.e. numero de puestas, latencia periodo, numero de huevos, tamaño de huevos, tasa de fertilización / eclosión.
Ref: Mañanos, Duncan y Mylonas 2008 Reproduction and control of ovulation, spermiation and spawning in cultured fish. In: Methods in Reproductive Aquaculture.
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?
Planificación y
conocimientos
Formación de protocolo
Protocolo para obtención de puesta:
• Estrategia de diferenciación del sexo
• Talla o edad de primero madurez y talla optima
• El periodo de gametogénesis, y las condiciones ambientales durante el periodo
• El periodo de puestas, y las condiciones ambientales durante el periodo
• Información de la endocrinología de la reproducción de la especie.
• Información de inducción hormonal de la puesta.
– Fechas de inducción.
– Características de los peces, peso etc.
– Tamaño de oocito
– Hormona y dosis que aplicó.
– Datos de las puestas y calidad de huevo: i.e. numero de puestas, latencia periodo, numero de huevos, tamaño de huevos, tasa de fertilización / eclosión.
• Información de comportamiento de la puesta, forman grupos, parejas?
• Tipos de huevos, son pelágicos, tamaño, periodo de incubación.
Ref: Mañanos, Duncan y Mylonas 2008 Reproduction and control of ovulation, spermiation and spawning in cultured fish. In: Methods in Reproductive Aquaculture.
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?
Planificación y
conocimientos
Formación de protocolo
Protocolo para obtención de puesta:
• Estrategia de diferenciación del sexo
• Talla o edad de primero madurez y talla optima
• El periodo de gametogénesis, y las condiciones ambientales durante el periodo
• El periodo de puestas, y las condiciones ambientales durante el periodo
• Información de la endocrinología de la reproducción de la especie.
• Información de inducción hormonal de la puesta.
– Fechas de inducción.
– Características de los peces, peso etc.
– Tamaño de oocito
– Hormona y dosis que aplicó.
– Datos de las puestas y calidad de huevo: i.e. numero de puestas, latencia periodo, numero de huevos, tamaño de huevos, tasa de fertilización / eclosión.
• Información de comportamiento de la puesta, forman grupos, parejas?
• Tipos de huevos, son pelágicos, tamaño, periodo de incubación.
• Datos de fecundidad
Ref: Mañanos, Duncan y Mylonas 2008 Reproduction and control of ovulation, spermiation and spawning in cultured fish. In: Methods in Reproductive Aquaculture.
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Pasos: Puntos críticos
1. Planificación y conocimientos
– Formación de protocolo
2. Obtención de reproductores
3. Estabulación de reproductores
4. Nutrición
5. Ambiente durante gametogénesis
6. Ambiente para espermiación / maduración final de ovocito –ovulación y la puesta
Pool of potential brood fish
Spawning
Optimal environment for final
maturation and ovulation /
spermiation
Optimal environment
for gametogenesis
Adequate
Nutrition
Yes
Yes
Yes
Yes
Fig. Flow diagram of critical points in the induction of spawning in captivity.
Ref: Mañanos, Duncan y Mylonas 2008 Reproduction
and control of ovulation, spermiation and spawning in
cultured fish. In: Methods in Reproductive Aquaculture.
01.1 QUÈ ÉS?
Obtención de reproductores
Planificación e información
Pesca
Selección madurez / sexo
Mantener peces a bordo del barco
Muestreo de los peces
Ambiente y bienestar de la cultura
Enfermedades
Parásitos
Bacteria
virus
Consideraciones para formar un grupo de reproductores
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Pasos: Puntos críticos
1. Planificación y conocimientos
– Formación de protocolo
2. Obtención de reproductores
3. Estabulación de reproductores
4. Nutrición
5. Ambiente durante gametogénesis
6. Ambiente para espermiación / maduración final de ovocito –ovulación y la puesta
Pool of potential brood fish
Spawning
Optimal environment for final
maturation and ovulation /
spermiation
Optimal environment
for gametogenesis
Adequate
Nutrition
Yes
Yes
Yes
Yes
Fig. Flow diagram of critical points in the induction of spawning in captivity.
Ref: Mañanos, Duncan y Mylonas 2008 Reproduction
and control of ovulation, spermiation and spawning in
cultured fish. In: Methods in Reproductive Aquaculture.
01.1 QUÈ ÉS?
1. Libertad de sed, hambre y desnutrición, mediante el acceso a una dieta adecuada de alta calidad y un entorno en el que se pueda mantener el equilibrio de líquidos y electrolitos.
2. Libre de molestias, manteniendo el agua a una temperatura y composición química adecuadas y proporcionando recintos o tanques bien diseñados, con sombreado si es necesario.
3. Libertad de dolor, lesiones y enfermedades, evitando situaciones que puedan causar dolor, lesiones o enfermedades, mediante un diagnóstico y tratamiento rápidos de la enfermedad y la muerte humana.
4. Libertad para ejercer un comportamiento normal, proporcionando el espacio y el entorno adecuados para la especie.
5. Libertad de miedo y angustia, minimizando en la medida de lo posible situaciones estresantes como la manipulación o el ataque de depredadores, realizando cambios graduales en la calidad de la cría y el agua, y mediante el sacrificio humano.
Medio ambiente
en cautiverio y
bienestar
RSPCA; Huntingford 2006
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?
• Calidad del agua - mejor disponible, niveles de oxígeno, pH y contaminantes (amoníaco, nitratos y contaminantes como fertilizantes, herbicidas y pesticidas) SENTIDO COMÚN
• Un suministro de agua limpia con
• flujo abierto de 5-6 volúmenes de tanque / día
• recirculación con 50% de renovación / día
• La temperatura debe ser óptima
• El tanque debe ser autolimpiante bien diseñado
• Las densidades de siembra deben ser bajas, por debajo de 5kg / m3
• Alimentación de dietas de alta calidad
• Un mínima de intervenciones de zootecnia y molestias
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Medio ambiente
en cautiverio y
bienestar
01.1 QUÈ ÉS?
Semana 1: Dejar los peces sin molestias, incluida la no alimentación.
Semana 2: Un baño de formol, un baño de H2O2 y ofrecer alimento de la dieta natural de los peces
Semana 3: Un baño de formol, un baño de H2O2 y ofrecer alimento de la dieta natural de los peces.
Semana 4: Un baño de formol, un baño de H2O2 y ofrecer alimento de la dieta natural de los peces.
Semana 5 o cuando los peces se están alimentando: un tratamiento oral para parásitos internos y externos como prazinquantel
Pathogen to be controlled Chemical* Spacies Dosing Administration
External parasites, protozoa, monogenea, copepods.
Also external bacteria.Formalin Fish 100 µL/L 1 hour bath
External bacteria and protozoa, (Amylodinium) H2O2 Fish 150 µL/L 1 hour bath
Internal and external parasites Praziquantel Fish 5 mg/kg In feed or orally with a canula
Internal bacteria Enrofloxicina Fish 10 mg/kgInjection every other day for
minimum period of 10 days.
Internal bacteria Oxytetracycline Fish 10 mg/kgInjection every other day for
minimum period of 10 days.
External bacteria, fungus and protozoa H2O2 Fish eggs 500 µL/L 15 minute bath
External bacteria and protozoa active iodine Fish eggs 50 mg/L 10-60 minute bath
*The authors do not recommend the use of unapproved chemicals to treat fish. All treatments should be previously tested on
a small number of organisms that will not cause a finacial loss to the farm.
Medio ambiente
en cautiverio y
bienestar
Diseases
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Pasos: Puntos críticos
1. Planificación y conocimientos
– Formación de protocolo
2. Obtención de reproductores
3. Estabulación de reproductores
4. Nutrición
5. Ambiente durante gametogénesis
6. Ambiente para espermiación / maduración final de ovocito –ovulación y la puesta
Pool of potential brood fish
Spawning
Optimal environment for final
maturation and ovulation /
spermiation
Optimal environment
for gametogenesis
Adequate
Nutrition
Yes
Yes
Yes
Yes
Fig. Flow diagram of critical points in the induction of spawning in captivity.
Ref: Mañanos, Duncan y Mylonas 2008 Reproduction
and control of ovulation, spermiation and spawning in
cultured fish. In: Methods in Reproductive Aquaculture.
01.1 QUÈ ÉS?
Ácidos grasos esenciales, en particular el ácido araquidónico (ARA), el ácido docosahexaenoico (DHA) y el ácido eicosapentaenoico (EPA),
Niveles de vitamina E
Nivel de proteína y perfil de aminoácidos,
Carotenoides
Vitaminas C, A y B6
Estrategia
Dieta en base de la dieta natural con artículos de alta calidad, sardina, calamares, políquetos, camarones
Incluir una dieta de reproductores de una especie de un nivel trófico similar
Pellets
Massas
Incorporación a la dieta natural
Skretting.com Repro Vitalis Cal
Nutrición
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Pasos: Puntos críticos
1. Planificación y conocimientos
– Formación de protocolo
2. Obtención de reproductores
3. Estabulación de reproductores
4. Nutrición
5. Ambiente durante gametogénesis
6. Ambiente para espermiación / maduración final de ovocito –ovulación y la puesta
Pool of potential brood fish
Spawning
Optimal environment for final
maturation and ovulation /
spermiation
Optimal environment
for gametogenesis
Adequate
Nutrition
Yes
Yes
Yes
Yes
Fig. Flow diagram of critical points in the induction of spawning in captivity.
Ref: Mañanos, Duncan y Mylonas 2008 Reproduction
and control of ovulation, spermiation and spawning in
cultured fish. In: Methods in Reproductive Aquaculture.
01.1 QUÈ ÉS?
Control ambiental
• Fotoperíodo
• Temperatura
• Disponibilidad de alimentos
• Lunar
• Ciclos de marea
• Ciclos meteorológicos
• Precipitación
• Corrientes y presión oceánicas
• Interacciones sociales y espacio para el comportamiento
• Sustratos
La gametogénesis suele ser más flexible ambientalmente que la maduración final, la espermación y el desove.
Spawning bream
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Pasos: Puntos críticos
1. Planificación y conocimientos
– Formación de protocolo
2. Obtención de reproductores
3. Estabulación de reproductores
4. Nutrición
5. Ambiente durante gametogénesis
6. Ambiente para espermiación / maduración final de ovocito –ovulación y la puesta
Pool of potential brood fish
Optimal environment
for final maturation
and ovulation /
spermiation
Successful hormone induction
of final maturation
and ovulation /
spermiation
Optimal
environment
for gametogenesis
Successful hormone
induction of gametogenesis
Adequate
Nutrition
Spawning
Yes
No maturation, no
spawning or spawning of
poor egg quality.
Recondition fish for next
reproductive cycle.
Yes
Yes
Yes
Yes
No
No
No
No
01.1 QUÈ ÉS?
Corvina Argyrosomus regius
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?
Obtención de reproductores
Planificación e información
Pesca
Selección madurez / sexo
Mantener peces a bordo del barco
Muestreo de los peces
Ambiente y bienestar de la cultura
Enfermedades
Parásitos
Bacteria
virus
Consideraciones para formar un grupo de reproductores
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?
Obtención de reproductores
Planificación e información
Pesca
Selección madurez / sexo
Mantener peces a bordo del barco
Muestreo de los peces
Ambiente y bienestar de la cultura
Enfermedades
Parásitos
Bacteria
virus
Consideraciones para formar un grupo de reproductores
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?
Planificación y
conocimientos
Formación de protocolo
Protocolo para obtención de puesta:
• Estrategia de diferenciación del sexo gonochoristic?
• Talla o edad de primero madurez y talla optima >8kg (Nuno Prista)
• El periodo de gametogénesis, y las condiciones ambientales durante el periodo – Winter to spring 15-20ºC
• El periodo de puestas, y las condiciones ambientales durante el periodo – Winter to spring 15-20ºC
• Información de la endocrinología de la reproducción de la especie. no information
• Información de inducción hormonal de la puesta. no information
– Red drum – injection of 20 micrograms / kg
– Orange corvina. - injection de 100 micrograms / kg
– Seriola – Implant of 40 micrograms / kg
– Meagre – 15 microgramos ovaprim
• Información de comportamiento de la puesta, forman grupos, parejas? no information
• Tipos de huevos, son pelágicos, tamaño, periodo de incubación. Pelagic 1mm
• Datos de fecundidad no information
Ref: Mañanos, Duncan y Mylonas 2008 Reproduction and control of ovulation, spermiation and spawning in cultured fish. In: Methods in Reproductive Aquaculture.
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?
Obtención de reproductores
Planificación e información
Pesca
Selección madurez / sexo
Mantener peces a bordo del barco
Muestreo de los peces
Ambiente y bienestar de la cultura
Enfermedades
Parásitos
Bacteria
virus
Consideraciones para formar un grupo de reproductores
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?
Reproducción y aclimatación.
Formación de estocks
Captura y transporte
Se consiguió doce corvinas (suministrados como 6
hembras y 6 machos) de los asesores de la captura
de peces vivos Flying Sharks
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?
Obtención de reproductores
Planificación e información
Pesca
Selección madurez / sexo
Mantener peces a bordo del barco
Muestreo de los peces
Ambiente y bienestar de la cultura
Enfermedades
Parásitos
Bacteria
virus
Consideraciones para formar un grupo de reproductores
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?
Reproducción y aclimatación.
Formación de stocks
Muestreo
• Anestesiados: 2-fenoxietanol, concentración de 167
ppmillion
• Pesados, marcados con una chip (PIT tag), examinados para
parásitos, muestreados por sangre y dados una inyección
antibiótica (10mg/Kg Enrofloxin).
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?
Reproducción y domesticación.
Formación de estocks
Parásitos
• Para controlar parásitos:
• Baños diarios de formalina (100ppmilion / una hora) para tres
dias consecutivos, semanalmente para las primeras tres
semanas,
•Tratamiento de de-parasitismo del praziquantel oral (5mg/Kg
peso corporal PC).
• Parásitos identificados como monogenea, dos especies sin
descripción del genero Calceostoma.
Karl Andree
Karl Andree
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?
Obtención de reproductores
Planificación e información
Pesca
Selección madurez / sexo
Mantener peces a bordo del barco
Muestreo de los peces
Ambiente y bienestar de los peces
Enfermedades
Parásitos
Bacteria
virus
Consideraciones para formar un grupo de reproductores
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?
Aclimatación de reproductores salvajes
• Planificación de sistemas
– Diseño de tanques
– Temperaturas y fotoperiodo natural
• Programa de aclimatación
– Un periodo de ajuste (1 semana)
– Tratamientos ante-parásitos
– Alimentación
01.1 QUÈ ÉS?
Reproducción y aclimatación.
Formación de estocks
Alimentación
Condiciones de cultivo.
Se alimentaron sardina y calamar en el ratio de 3:1.
A temperaturas de 18-21°C los corvinas comieron 2.5%PC.
A temperaturas de 14-16°C los corvinas comieron 0.8%PC
Repro vitalis 0.1% biomasa
Fotoperiodo: luz natural, aproximadamente 50 lux
Temperatura fue un perfil natural amortiguo para mantener la
temperatura entre 14-25°C. (bajada a 8°C)
Recirculación un pico del amoníaco de 1.2mg/L y a una semana en
0.5mg/L. se estabilizo con 1-2mg/L del amoníaco.
01.1 QUÈ ÉS?
Objetivo parcial
1) Formar stocks
Caso 1: Calamares y
pecado de la 3 ª semana
de cautiverio a 0,8-2,5%
del peso corporal.
Temperatura de 16-22
ºC, importante para la
alimentación. Febrero-
Marzo, presente los
ejemplares maduros.
Caso 2: No se
alimentaron durante el
invierno, no maduraron
durante la primavera.
Maduraron en el
segundo año. 0
5
10
15
20
25
24-O
ct
7-N
ov
21-N
ov
5-D
ec
19-D
ec
2-J
an
16-J
an
30-J
an
13-F
eb
27-F
eb
13-M
ar
27-M
ar
10-A
pr
24-A
pr
8-M
ay
22-M
ay
Tem
pera
ture
ºC
Case 2
Case 1
Aqua Solutions
Biotech
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Pasos: Puntos críticos
1. Planificación y conocimientos
– Formación de protocolo
2. Obtención de reproductores
3. Estabulación de reproductores
4. Nutrición
5. Ambiente durante gametogénesis
6. Ambiente para espermiación / maduración final de ovocito –ovulación y la puesta
Pool of potential brood fish
Optimal environment
for final maturation
and ovulation /
spermiation
Successful hormone induction
of final maturation
and ovulation /
spermiation
Optimal
environment
for gametogenesis
Successful hormone
induction of gametogenesis
Adequate
Nutrition
Spawning
Yes
No maturation, no
spawning or spawning of
poor egg quality.
Recondition fish for next
reproductive cycle.
Yes
Yes
Yes
Yes
No
No
No
No
01.1 QUÈ ÉS?Época de reproducción
¿Hay puestas espontaneas?
Revisión de madurez
Inducción de la puesta
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?Protocolo de desove inducido
Dos aspectos importantes:
1. Etapa de desarrollo del ovario: diámetro del
ovocito.
2. Dosis de hormonasInduced spawning
protocol
Ibarra-Castro, L., Duncan, N.J., 2007. GnRHa-induced
spawning of wild-caught spotted rose snapper Lutjanus
guttatus. Aquaculture 272, 737–746
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?
Obtener una muestra de ovario
Pasos
Obtener una biopsia usando una cánula
1) Anestésis el pez
2) Obtener una muestra de ovario insertando la
cánula en el ovario
3) Mantener los peces anestesiados
Examinar la muestra
4) Poner la muestra de tejido ovárico en un
portaobjetos de microscopio. Romper el tejido con dos
agujas y bañar la muestra con solución de limpieza (6 mL de
etanol absoluto, 3 mL de formol, 2 mL de glicerol y 1 mL de
ácido acético)
5) Estimar el % por área que es de ovocitos grandes
6) Medida 20 de los ovocitos más grandes
7) Administrar la hormona
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?
Obtener una muestra de ovario, una biopsia de tejido ovárico
El oviducto suele estar entre el ano y el poro urinario.
El ano está más cerca de la cabeza y el poro urinario más cercano a la cola.
Introduzca la cánula al oviducto
Entra la mitad de la distancia entre la aleta pélvica y el oviducto.
Haga una succión.
Retira la cánula manteniendo la succión.
Cierra la cánula con la lengua.
Retire la cánula y retire la muestra de la cánula
Anus - oviduct - urinary pore
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?
Obtain a biopsy of ovarian tissue from seabass
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?
Examen de ovocitos, solución de limpieza
• Ovocitos
<650μm
•(0,65 mm)
• Bajo
porcentaje de
ovocitos
grandes <60%
• Este pez
debe dejarse
madurar y no
se debe
aplicar
hormona
01.1 QUÈ ÉS?
Examen de ovocitos, solución de limpieza
• Ovocitos
grandes >
650μm
(0.65mm)
• Alto
porcentaje de
oocitos grandes
>60%
• Este pez debe
ser inducido a
desovar con
GnRHa
•
01.1 QUÈ ÉS?
Examen de ovocitos, solución de limpieza
• Ovocitos
grandes >
650um.
• Alto
porcentaje de
oocitos grandes
>60%
• Este pez debe
ser inducido a
desovar con
GnRHa
•
01.1 QUÈ ÉS?
Examen de ovocitos, solución de limpieza• Este pez ha
terminado de
desovar y está
entrando en atresia,
regresión del ovario
• A = ovocitos en
atresia
• O = buen ovocito
• Po = óvulos post
ovulados que no
fueron desovados y
están en atresia
• 1ºO = ovocitos en
1º fase de
crecimiento
• Este pez
probablemente no
responderá a la
inducción hormonal
O
Po
A
A
A
A
1ºO
1ºO
01.1 QUÈ ÉS?
Examen de ovocitos, solución de limpieza• Este pez ha
terminado de
desovar y se
encuentra en etapas
avanzadas de
atresia, regresión del
ovario
• A = ovocitos en
atresia
•Po = óvulos post
ovulados que no
fueron desovados y
están en atresia
• 1ºO = ovocitos en
1º fase de
crecimiento
• Este pez no
responderá a la
inducción hormonal
PoA
A
A
A
1ºO
1ºO A
AAA
01.1 QUÈ ÉS?
Reproducción y domesticación.
Formación de stocks
Época de maduración ?
EPOCA DE MADUREZMuestreos de madurez se encontró hebras que tenían ovocitos de
promedio de 566±9 um con ovocitos con núcleo migrando
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?
Disfunción Reproductiva
Disfunción Reproductiva
• No hay vitelogenesis– ?
• Detenidos en vitelogenesis– Inducción hormonal
• No hay liberación de huevos– Liberación por mano con presión
abdominal
• Revisiones por Zohar y Mylonas
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Eje
Cerebro
→
Pituitaria
→
Gonadas
externo
medio ambiente
interno
medio ambiente
cerebro
hipotálamo
Liberación de hormonas
glándula pituitaria
o
pituitaria
Gonadotrópico
Hormona(s)
ovario testículo
huevos esperma
Progestágenos
Estrógenos andrógenos
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Eje
Cerebro
→
Pituitaria
→
Gonadas
externo
medio ambiente
interno
medio ambiente
cerebro
hipotálamo
Liberación de hormonas
glándula pituitaria
o
pituitaria
Gonadotrópico
Hormona(s)
ovario testículo
huevos esperma
Progestágenos
Estrógenos andrógenos
GnRHa o LHRHa
Extractos de
hipófisis o hCG
Aplicación de hormonas exógenos
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Aplicación de hormonas exógenos – Qué hormona?
Zohar 1995 Gilthead seabream In: Broodstock management and egg and larval quality.
Vida media corta
Gonadotropin
releasing hormones
GnRHa o LHRHa
External
Environment
Internal
Environment
Brain
Hypothalamus
Releasing Hormones
Pituitary Gland
or
Hipofisis
Gonadotropic
Hormone(s)
Ovary Testis
Eggs Sperm
Progestagens
Oestrogens Androgens
GnRHa o LHRHa
Gonadotropin releasing hormones
GnRHa o LHRHa
Zohar 1995 Gilthead seabream In: Broodstock management and egg and larval quality.
Aplicación de hormonas exógenos – Qué hormona?
Vida media
corta
Solución de
implante
Agonistas del receptor de LH
Extractos pituitarios – extracto pituitario
de la carpa
gonadotropina coriónica humana
Ventajas: Directo, sin efecto dopamina
Inconvenientes: Inmunidad, patógenos
hormona luteinizante recombinante
externo
medio ambiente
interno
medio ambiente
cerebro
hipotálamo
Liberación de hormonas
glándula pituitaria
o
pituitaria
Gonadotrópico
Hormona(s)
ovario testículo
huevos esperma
Progestágenos
Estrógenos andrógenos
Extractos de
hipófisis o hCG
Aplicación de hormonas exógenos
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Aplicación de hormonas exógenos – Qué dosis?
Gonadotropin releasing hormones
GnRHa o LHRHa
01.1 QUÈ ÉS?
500 600 700 800 900 1000 1100 1200 1300 1400
150
250
350
450
550
650
750
850
Egg size
Oo
cyte
siz
e
y = -95.9872 + 0.623725 x
r2 = 61.7 %
95% Confidence interval
Huevo = 1mm, Ovocito = 0.53mm
Aplicación de hormonas exógenos – Qué dosis?
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Ref: Mañanos, Duncan y Mylonas 2008 Reproduction and control of ovulation, spermiation and spawning in cultured fish. In: Methods in Reproductive Aquaculture.
Family Species Similar hormone therapies Hormone tharpies (µg kg-1 body weight)
Percichthyidae Dicentrarchus labrax GnRHa affective for
inducing spawning.
Doses required:
Implants: 25-100 µg kg-1
Injections: 1-40 µg kg-1
10 µg kg-1 GnRHa repeated inj. (Mylonas et al 2003)
Moronidae
Morone saxatilis x
M. chrysops 62 µg kg-1 GnRHa EVAc imp (Mylonas 1996)
Centropomidae Lates calcarifer 37.5–75 µg kg-1 GnRHa imp (Garcia 1989)
Sparidae Sparus aurata 100 µg kg-1 GnRHa EVAc imp (Zohar et al 1995)
Sciaenidae Sciaenops ocellatus 20 µg kg-1 GnRHa inj. (Thomas et al 1995)
Carangidae Seriola dumerili 2 x 40 µg kg-1 GnRHa EVAc imp (Mylonas 2004)
Scombridae Thunnus thynnus 40-100 µg kg-1 GnRHa EVAc imp (Corriero 2007)
Paralichthyidae Paralichthys lethostigma 100 µg kg-1 GnRHa imp (Smith et al 1999)
Scophthalmida
e Psetta maxima 25 µg kg-1 GnRHa imp (Mugnier et al 2000)
Tetraodontidae Sphoeroides annulatus 40 µg kg-1 GnRHa inj. (Duncan et al 2003)
Chanidae Chanos chanos 10-33 µg kg-1 inj. (Marte et al 1987, 1988)
Salmonidae Salmo salar 50 µg kg-1 EVAc imp. (Tarranger et al 2003)
Acipenseridae Huso huso 1 µg kg-1 inj. (Dettlaff et al 1993)
Lutjanidae Lutjanus argentimaculatus
GtH or higher doses of
GnRHa required:
hCG: 1000-1760 IU kg-1
GnRH: 100 µg kg-1 (inj.)
1000 IU kg-1 hCG inj.
100 µg kg-1 GnRHa inj. (Emata 2003)
Ictaluridae Ictalurus punctatus
1000-1760 IU kg-1 hCG inj.
1º = 10; 2º = 90 µg kg-1 GnRHa inj. (Legendre et al 1996)
Clariidae Clarias gariepimus
Dopermine inhibition of
GnRH described.
GtH or GnRHa +
dompamine antagonist
required:
hCG: 44-4000 IU kg-1
cGtH: 300-600 µg kg-1
GnRH: 20-50 µg kg-1+
antagonist (PIM, MET)
4000 IU kg-1 hCG inj
50 µg kg-1 GnRHa + 500 µg kg-1 PIM inj. (Richter et al 1995)
Mugilidae Mugil Cephalus
1º = 14-21, 2º= 30-48 IU g-1 of hCG (Kuo 1995)
1º = 10 µg kg-1 GnRHa + 15 mg kg-1 of MET 2º = 20 µg kg-1 GnRHa +
15 mg kg-1 MET (Aizan et al 2005)
Cyprinidae Cyprinus carpio
1º = 50-100 µg.kg-1 cGtH; 2º = 250-500 µg kg-1 cGtH (Rothbard and
Yaron 1995)
1º = 2 µg.kg-1 GnRHa + 0.5 µg.kg-1 PIM; 2º = 18 µg.kg-1 GnRHa + 4.5
µg.kg-1 PIM (Mikolajczyk et al 2004)
01.1 QUÈ ÉS?
Reproducción y domesticación.
Formación de stocks
Inducción de la puesta.
Inducción de la puesta 26 Marzo 2007
2 hembras tratadas con inyección única 20 µg.kg-1 = 3 puestas y un
total de 7,221,000 huevos flotando, 160,370 huevos/kg
2 hembras tratadas con implante de 50 µg.kg-1 = 9 puestas y un total de
9,515,000 huevos flotando, 216,250 huevos/kg
0
500000
1000000
1500000
2000000
2500000
3000000
3500000
4000000
Imp
Iny
Imp
Iny
Imp
Iny
Imp
Iny
Imp
Iny
Imp
Iny
Imp
Iny
Imp
Iny
Imp
Iny
Imp
Iny
Imp
Iny
Imp
Iny
Imp
Iny
Imp
Iny
Imp
Iny
29
Mar
30
Mar
31
Mar
1
Abril
2
Abril
3
Abril
4
Abril
5
Abril
6
Abril
7
Abril
8
Abril
9
Abril
10
Abril
11
Abril
12
AbrilNum
ero
de h
uevos
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?
Reproducción y domesticación.
Formación de stocks
Inducción de la puesta.
Spawning0
500000
1000000
1500000
2000000
2500000
3000000
3500000
4000000
Imp Iny Imp Iny Imp Iny Imp Iny Imp Iny Imp Iny Imp Iny Imp Iny Imp Iny
6 May 7 May 8 May 9 May 10 May 11 May 12 May 13 May 14 May
Total flotando + no flotando
Flotando
Fertilisación
Eclosión
Inducción de la puesta 4 Mayo 2007
2 hembras tratadas con inyección única 20 µg.kg-1 = 2 puestas y un
total de 1,798,300 de huevos flotando
2 hembras tratadas con implante de 50 µg.kg-1 = 4 puestas y un total
de 2,915,000 huevos flotando.
Revisión en Junio, atresia y esperma de calidad reducida
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Gaussian regression
r2 = 0.89
Dose µg.kg-1
-5 0 5 10 15 20 25 30 35 40 45 50 55 60
Nu
mbe
r of la
rvea w
ith y
olk
sa
c a
bsorb
ed
0.0
2.0e+5
4.0e+5
6.0e+5
8.0e+5
1.0e+6
1.2e+6
1.4e+6
1.6e+6
1.8e+6
2.0e+6
a
b
oXX
y
−
−
=
2
5.0
01.1 QUÈ ÉS?Cerrando el ciclo, reproducción en primera generación desde cautiverio.
Primera maduración a 5-6 kg
Éxito de desove similar. Dosis óptima para inyección 15 μg Kg-1 GnRHa inyección única
H. Fernández-Palacios, D. Schuchardt, J. Roo, L. Robaina, C.M. Hernández-Cruz and
N. Duncan. The effect of different doses of a single GnRHa injection on the spawning
of meagre broodstock (Argyrosomus regius) Submitted to Aquaculture.Research
Reproductores criados en cautiverio
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?Objetivo parcial
5) Inducción hormonal
• Inducción exitoso cada 7 días
• Puestas de marzo a septiembre
• Puestas múltiples
Aqua Solutions
Biotech
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?Objetivo parcial
2) Microsatélites
AquaSolutions Biotech,
Parque Tecnológico de
Andalucia, Málaga
Se describieron 10
microsatélites
PCR multiplex
Análisis de paternidad
Aqua Solutions
Biotech
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
01.1 QUÈ ÉS?Objetivo parcial
2) Microsatélites
AquaSolutions Biotech,
Parque Tecnológico de
Andalucia, Málaga
Se describieron 10
microsatélites
PCR multiplex
Análisis de paternidad
Aqua Solutions
Biotech
01.1 QUÈ ÉS?
Protocolo de desove
Protocolo de desove:
Estrategia de diferenciación sexual - gonocorónica
Tamaño o edad en la primera madurez -> 8kg salvaje 5-6 kg en
cultivo
El período de gametogénesis, y las condiciones ambientales
durante el período - Invierno - Primavera 15+ ºC de
alimentación de sardinas, calamares y Skretting vitalis-reprod
El período de desove, y las condiciones ambientales durante el
período – primavera-verano 16-23° C
Información de inducción hormonal del desove.
Fecha de inducción - marzo-septiembre
Características del pescado - 6-30 kg
Tamaño del ovocito -> 0.56 mm
Hormona y dosis. Implante GnRHa, 50 microgramos / kg,
inyección de 15-20 microgramos / kg,
Detalles del desove: 0.2-3.5 millones / desove (media 1.7
millones) fertilización> 80%
Período de latencia – 48-72 horas (desde la aplicación)
Tipos de huevos – 0.9-1 mm pelágico
Datos de fecundidad - 282.000 a 498.000 por kg (130.000 por
desove inducido)
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Gracias por su atenciónEl fin.
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Calidad de los gametos y su gestión en la fertilización artificial
de la corvina (Argyrosomus regius) para facilitar la realización
de programas de mejora genética
Neil Duncan
Instituto de Recerca y Tecnologia Agroalimentarias
(IRTA) Sant Carles de la Rapita, Spain
Capacitación en el Cultivo
de Corvina (Argyrosomus regius)
2-17 de junio, 2021
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Calidad de los gametos y su gestión en la fertilización artificial de la corvina (Argyrosomus regius) para facilitar la realización de programas de mejora genética
Sandra Ramos Júdez
Neil Duncan, (IRTA), Christian Fauvel, (IFREMER),
Gilberto Dutto, (IFREMER), Wendy Gonzalez, (IRTA).
REPRODUCCIÓN Y MEJORA GENÉTICA II
INTRODUCCIÓN
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Producción acuícola europea (t)
INTRODUCCIÓN
Baja variedad de familias y de poblaciones
Programas de cría para evitar la endogamia
CRIA MEDIANTE EL CRUCE DE PAREJAS
FERTILIZACIÓN ARTIFICIAL
• Mayor número de familias en menor tiempo.
• Menos estrés de los individuos
Definir un protocolo para la obtención de gametos femeninos de alta calidad.Determinación del tiempo de ovulación tras la inducción hormonal.
OBJETIVOS
Establecer la ratio esperma:óvulo óptima para obtener las mayores tasas de fertilización.
Desarrollar un protocolo para la fertilización artificial.
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
MATERIAL Y MÉTODOS
♂
♀
Selección de reproductores por su estado de madurez.1
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Anestesia (70,6 mg/L MS-222)
♂
♀
Selección de reproductores por su estado de madurez.
MATERIAL Y MÉTODOS
1
• Total: 5 machos (15,94 ± 2,75 kg)
• Total: 13 hembras (20,45 ± 6,22 kg)
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
♂
♀
Selección de reproductores por su estado de madurez.
MATERIAL Y MÉTODOS
♀• Biopsias ováricas por canulación.
1
• Total: 5 machos (15,94 ± 2,75 kg)
• Total: 13 hembras (20,45 ± 6,22 kg)
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
• Total: 5 machos (15,94 ± 2,75 kg)
• Total: 13 hembras (20,45 ± 6,22 kg)
♂
♀
Selección de reproductores por su estado de madurez.
MATERIAL Y MÉTODOS
♀• Biopsias ováricas por canulación.• Hembras seleccionadas: Oocitos en
plena vitelogénesis (diámetro >550 µm)
>550 µm
1
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
♀
♂
MATERIAL Y MÉTODOS
Protocolo de inducción hormonal.2
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
♀
♂
MATERIAL Y MÉTODOS
Protocolo de inducción hormonal.
Inyección intramuscular de GnRHa Dosis = 15 µg/kg
♀
9-10 h después
2
Total: 24 inducciones con GnRHa (en diferentes semanas y rotando las hembras).
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
♀
♂
MATERIAL Y MÉTODOS
Inyección intramuscular de GnRHa Dosis = 15 µg/kg
♀
24h
• Diluido en Leibovitz 1:4.• Análisis (motilidad,
velocidad y duración).• Mantenido sobre hielo.
9-10 h después
Obtención de esperma
Obtención de gametos masculinos.3
Total: 24 inducciones con GnRHa (en diferentes semanas y rotando las hembras).
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
♀ ♀
♂
DETERMINACIÓN DEL TIEMPO DE OVULACIÓN TRAS LA INDUCCIÓN HORMONAL
♀
♂
Inyección intramuscular de GnRHa Dosis = 15 µg/kg
24h
MATERIAL Y MÉTODOS
Obtención de gametos femeninos.
9-10 h después
Obtención de esperma
Masajes abdominales
Cada 2:30 horas
35h
2:30h 2:30h 2:30h
Tiempo de ovulación:Tiempo transcurrido entre la inducción hormonal y el primer momento en el que se obtienen huevos ovulados.
4
Total: 24 inducciones con GnRHa (en diferentes semanas y rotando las hembras).
♀ ♀
♂
♀
♂
Inyección intramuscular de GnRHa Dosis = 15 µg/kg
24h
MATERIAL Y MÉTODOS
Fertilización artificial.
9-10 h después
Obtención de esperma
FERTILIZACIÓN
5
Agua de mar
Óvulos
Esperma diluido
Incubaciones en triplicado.
De 17,8 ºC a 18,4 ºC.
Durante 30 h.
Revisión de la tasa de fertilización (% del
número de huevos con embriones) en
400 huevos/incubador.
Total: 24 inducciones con GnRHa (en diferentes semanas y rotando las hembras).
MATERIAL Y MÉTODOS
PARTE 1: DETERMINACIÓN DEL TIEMPO DE OVULACIÓN
¿CUÁNDO HACER EL MASAJE ABDOMINAL Y OBTENER LOS GAMETOS DE MEJOR CALIDAD?
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
MATERIAL Y MÉTODOS
PARTE 1: DETERMINACIÓN DEL TIEMPO DE OVULACIÓN
XVI Congreso Nacional de Acuicultura
¿CUÁNDO HACER EL MASAJE ABDOMINAL Y OBTENER LOS GAMETOS DE MEJOR CALIDAD?
PARTE 2: DETERMINACIÓN DE LA PROPORCIÓN ÓPTIMA DE ESPERMA:ÓVULO
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
MATERIAL Y MÉTODOS
PARTE 1: DETERMINACIÓN DEL TIEMPO DE OVULACIÓN
XVI Congreso Nacional de Acuicultura
¿CUÁNDO HACER EL MASAJE ABDOMINAL Y OBTENER LOS GAMETOS DE MEJOR CALIDAD?
PARTE 2: DETERMINACIÓN DE LA PROPORCIÓN ÓPTIMA DE ESPERMA:HUEVO
1 Obtención de gametos
Obtención de esperma
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
MATERIAL Y MÉTODOS
PARTE 1: DETERMINACIÓN DEL TIEMPO DE OVULACIÓN
¿CUÁNDO HACER EL MASAJE ABDOMINAL Y OBTENER LOS GAMETOS DE MEJOR CALIDAD?
PARTE 2: DETERMINACIÓN DE LA PROPORCIÓN ÓPTIMA DE ESPERMA:HUEVO
1 Obtención de gametosFertilización artificial con diferente concentración de esperma (1:4 Leibovitz).
Obtención de esperma
2
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
MATERIAL Y MÉTODOS
PARTE 1: DETERMINACIÓN DEL TIEMPO DE OVULACIÓN
¿CUÁNDO HACER EL MASAJE ABDOMINAL Y OBTENER LOS GAMETOS DE MEJOR CALIDAD?
PARTE 2: DETERMINACIÓN DE LA PROPORCIÓN ÓPTIMA DE ESPERMA:HUEVO
1 Obtención de gametosFertilización artificial con diferente concentración de esperma (1:4 Leibovitz).
Obtención de esperma
2:00 h
Revisión de la tasa de fertilización
en 100 huevos de cada fertilización
2
RESULTADOSPARTE 1:
DETERMINACIÓN DEL TIEMPO DE OVULACIÓN TRAS LA INDUCCIÓN HORMONAL
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
PARTE 1: TIEMPO DE OVULACIÓN
RESULTADOS
RESULTADOS
1 2 3 4
PARTE 1: TIEMPO DE OVULACIÓN
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
RESULTADOS
PARTE 1: TIEMPO DE OVULACIÓN
1 2 3 4
RESULTADOS
1 2 3 4
32,5±43,50%
51,11±28,04%
27,49±16,39%
5,72±3,90%
PARTE 1: TIEMPO DE OVULACIÓN
RESULTADOS
XVI Congreso Nacional de Acuicultura
PARTE 1: TIEMPO DE OVULACIÓN
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
RESULTADOSPARTE 2:
DETERMINACIÓN DE LA RATIO ESPERMA:ÓVULO
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
RESULTADOS
No hubo diferencias significativas en las tasas de fertilización entre machos. Sí (P < 0.05) entre las hembras (indica diferente calidad de gametos).
---> Se combinaron los datos por hembras para obtener regresiones
♂♀
RATIO ESPERMA:ÓVULO
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
RATIO ESPERMA:ÓVULO
RESULTADOS
No hubo diferencias significativas en las tasas de fertilización entre machos. Sí (P < 0.05) entre las hembras (indica diferente calidad de gametos).
---> Se combinaron los datos por hembras para obtener regresiones
♂♀
Tasa
de
fert
iliza
ció
n (
%)
Ratio esperma:óvuloCapacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
RESULTADOS
No hubo diferencias significativas en las tasas de fertilización entre machos. Sí (P < 0.05) entre las hembras (indica diferente calidad de gametos).
---> Se combinaron los datos por hembras para obtener regresiones
♂♀
Tasa
de
fert
iliza
ció
n (
%)
Ratio esperma:óvulo
RATIO ESPERMA:ÓVULO
RESULTADOS
No hubo diferencias significativas en las tasas de fertilización entre machos. Sí (P < 0.05) entre las hembras (indica diferente calidad de gametos).
---> Se combinaron los datos por hembras para obtener regresiones
♂♀
Tasa
de
fert
iliza
ció
n (
%)
Ratio esperma:óvulo
P < 0,05
RATIO ESPERMA:ÓVULO
Las hembras mantenidas a 18ºC deben ser examinadas tras 38 h de la inducción hormonal con el fin de obtener la mejor calidad de gametos femeninos.
Protocolo de fertilización artificial:Mezclar:
CONCLUSIONES
Agua de mar
Óvulos
Esperma diluido
(~ 1.700 óvulos) extraídos en el periodo de 2-3 horas tras la
ovulación
(1:4 en Leibovitz modificado = ~ 3,4 x 108 espermatozoides)
Activación inmediata de un mínimo de 0,5 mL de agua
de mar/mL de huevos
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
GRACIAS POR SU ATENCIÓN
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Cultivo larvario y preengorde
Alicia Estévez
Instituto de Recerca y Tecnologia Agroalimentarias
(IRTA) Sant Carles de la Rapita, Spain
Capacitación en el Cultivo
de Corvina (Argyrosomus regius)
2-17 de junio, 2021
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Características de la larva de corvina
- Rápido crecimiento
- Aparición temprana de la vejiga natatoria (dia 3-4 después de la
eclosión)
- Alta supervivencia cuando están bien alimentadas (más del 60%)
Growth in weight DW=11.55*exp(0.151*age)
R2= 0.612
Age (dah)
0 10 20 30
Dry weight ( g)
0
500
1000
1500
2000
2500
Growth in legthSL=2.924*exp(0.0296*age)
R2= 0.84
Age (dah)
0 10 20 30
SL (mm)
0
2
4
6
8
10
Phytoplankton
Rotifers
Artemia
Microdiet
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Parámetros a considerar en el cultivo larvario de corvina
1) Temperatura
No hay demasiados estudios publicados sobre el crecimiento de las larvas
de corvina a distinta temperatura, prácticamente en todos los estudios
publicados se ha usado una temperatura en torno a los 20ºC
Temperatura (ºC) Talla (mm) 30 dph
19-20 6,1-8,5
20-23 15,1
21-25 11,7
20-21 6-8
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Age (dph)0 5 10 15 20 25 30 35
Dry
weig
ht
(g)
0
100
200
300
400
500
1000 lux
500 lux
50 lux
0 2 4 6 8 10 12 14 16 18
10
20
30
40
50
60
70
80
90
a
a
b
a
a
b
Parámetros a considerar en el cultivo larvario de corvina
1) Intensidad de luz
En un trabajo publicado en 2013 (Vallés & Estévez) se estudió el efecto
tanto de la intensidad de luz como de la longitud del fotoperiodo. Una luz
excesivamente brillante (1000 lux) o demasiado baja (50 lux) dio lugar a
un menor crecimiento (tanto en longitud como en peso) de las larvas,
además de provocar stress
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
a
ab
b
b
Age (dph)0 5 10 15 20 25 30 35
Dry
weig
ht
(g)
0
1000
2000
3000
4000
24L:0D
18L:6D
12L:12D
8L:16D
a
a
b
b
0 2 4 6 8 10 12 14 16
0
50
100
150
200
250
300
Parámetros a considerar en el cultivo larvario de corvina
3) Fotoperiodo
De igual manera el uso de fotoperiodos largos (24hL o 18hL:6hO) permite
a las larvas tener acceso a las presas vivas durante más tiempo dando
lugar a un mayor crecimiento. El uso de 24hL no es recomendable pues
provoca una mayor incidencia de canibalismo y stress en las larvas y por
lo tanto una menor supervivencia
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Parámetros a considerar en el cultivo larvario de corvina
3) Intensidad de luz y fotoperiodo
La luz excesiva o un fotoperiodo demasiado largo provoca stress en las
larvas, que permanecen mucho más tiempo en la superficie del agua
hiperinflando la vejiga natatoria. El exceso de presas vivas en el agua
(sobre todo nauplios de Artemia) también provoca stress en las larvas e
hiperinflación de la vejiga.
Fotoperiodo (h) Hiperinflacion
20dph
Hiperinflacion
26 dph
24L:0O 31,25 22
16L:8O 12 0
12L:12O 0 0
8L:16O 0 0
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Parámetros a considerar en el cultivo larvario de corvina
3) Intensidad de luz y fotoperiodo
Lo aconsejable durante el cultivo larvario es usar 12hL:12hO o 16hL:8hO y
500 lux para lograr un buen crecimiento y supervivencia a 30 dph
Fotoperiodo Intensidad
(lux)
SL
(mm)
DW
(mg)
Supervivencia
(%)
16L:8O 20 4,69 0,13 9,59
500 5,66 0,33 17,88
1000 5,07 0,21 15,27
24L:0O 500 9,41 2,22 6,18
16L:8O 500 8,45 2,12 13,79
12L:12O 500 6,96 0,80 27,26
8L:16O 500 6,53 0,63 47,74
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Parámetros a considerar en el cultivo larvario de corvina
3) Alimentación con presas vivas
Es imprescindible alimentar las larvas en cuanto abren la boca y antes de que
agoten las reservas de vitelo y la gota de grasa, si se retrasa demasiado la
alimentación se puede alcanzar el punto de no retorno alimentario, momento
en el que la larva está tan debilitada que aunque se suministre alimento, no
persigue las presas vivas y acaba muriendo
Retraso primera alimentación dentón
Edad (días)
0 2 4 6 8 10 12 14
Pe
so
se
co
(g
)
0
20
40
60
80
100
ayuno
día 3
día 5
y= 12.118 e0.152 edad
y= 8.697 e0.1471 edad
y= 24.52 - 1.08 edad
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Parámetros a considerar en el cultivo larvario de corvina
3) Alimentación con presas vivas
La mayoría de los productores de corvina utilizan la misma secuencia de
alimentación que en el cultivo de dorada: Microalgas (Nannochloropsis spp) del
dia 2 al 15, rotíferos del dia 2 al 15, Artemia enriquecida desde el dia 12 al 30 y
microdietas del dia 20 al 30 (destete).
En un trabajo publicado por Roo et al (2010) se usaron 3 secuencias distintas
con buenos resultados de supervivencia y crecimiento a dia 30
Secuencia SL
(mm)
DW
(mg)
Supervivencia
(%)
T1 8,00 1,45 36,75
T2 7,25 1,05 50,90
T3 6,91 0,91 50,93
T1 T2 T3
Microalgas 2-11 2-15 2-19
Rotifero enriquecido 2-11 2-15 2-19
Nauplios Artemia 8-11 12-15 16-19
Metanauplios enriquecidos 10-30 14-30 18-30
Microdietas 20-30 20-30 20-30
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Edad (dph)
0 5 10 15 20 25 30 35
Peso (
g)
0
1000
2000
3000
4000
5000
25 larvas/L
50 larvas/L
100 larvas/L
y= 21.96 e0.173*edad
y= 30.56 e0.135*edad
y= 31.004 e0.119*edad
Parámetros a considerar en el cultivo larvario de corvina
4) Densidad de larvas
Generalmente se utilizan 50 larvas/litro. Hay dos trabajos publicados (Estevez
et al, 2007, Roo et al, 2010) en los que se ensayaron distintas densidades de
larvas (25, 50 y 100 larvas/l y 50 y 125 larvas/l) en los que se demostró que
usando densidades bajas la supervivencia y crecimiento son mucho mejores,
aunque económicamente no es rentable.
Densidad SL (mm)
DW(mg)
Supervivencia (%)
50 8,02 1,45 40,92
125 6,75 0,81 53,24
Densidad DW (mg)
Supervivencia (%)
25 3,94 10,7
50 1,74 12,6
100 1,08 13,7
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Parámetros a considerar en el cultivo larvario de corvina
5) Destete con microdietas
Es uno de los problemas del cultivo, se realizaba generalmente a partir del dia
20 pero con la mejora en la formulación de microdietas se puede hacer a dia
12-15, teniendo cuidado de evitar el canibalismo.
En el trabajo de Campoverde et
al (2017) se demostró que es
posible hacer el destete a dia
12 si se baja la intensidad de
luz de 500 a 150-20 lux a partir
del dia 13 para evitar el
canibalismo.
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Parámetros a considerar en el cultivo larvario de corvina
6) Requerimientos en ácidos grasos
Existe poca información sobre los requerimientos específicos de la corvina, al ser
un pez carnívoro y de rápido crecimiento precisa que los acidos grasos omega 3
estén presentes en la dieta y se estima un requerimiento de DHA (acido
docosahexanoico, 22:6n-3) en torno al 12-15% (Campoverde & Estévez, 2017)
GroupsDHA-M DHA-H RP Hemp
% T
FA
0
20
40
60
80
100
120
SAT
MUFA
n-6
n-3
Comparison small and big fish
GroupsDHA-M DHA-H RP Hemp
% T
FA
0
5
10
15
20
25
30
EPA
DHA
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Principales problemas del cultivo
1) Hiperinflación de la vejiga natatoria debido al stress
Como se ha indicado antes, la corvina es una larva muy sensible al stress.
Se ha detectado que tanto el uso de un exceso de luz (intensidad y
duración) como de presas vivas presentes en el agua (especialmente los
nauplios de Artemia) provocan la hiperinflación de la vejiga natatoria.
Otros autores (Cárdenas, 2008) también lo achacan a una elevada carga
bacteriana en el agua.
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Principales problemas del cultivo
2) Canibalismo
Es uno de los grandes problemas durante el cultivo larvario y en especial durante
el destete. La diferencia de talla entre las larvas hace que los ejemplares más
grandes ataquen y se coman a los pequeños, hay varias maneras de reducir la
incidencia:
1.- Bajando la intensidad de luz
2.- Suministrando alimento de forma más frecuente
3.- Separando las tallas (grading)
4.- Para algunas especies proporcionando refugios
5.- Usando densidades bajas (mesocosmos)
6.- Domesticando más a la especie (huevos
obtenidos de segunda o tercera generación)
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Principales problemas del cultivo
2) Canibalismo
A nivel industrial la forma más efectiva de reducir la incidencia de canibalismo es
la selección de talla (grading) realizada a menudo. Los sistemas más empleados
son los siguientes:
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Diferencias de crecimiento
Los productores siempre han comentado las diferencias de crecimiento
observadas entre distintos grupos de juveniles. En los años 2014 y 2015 hicimos
un ensayo en el IRTA para ver si era cierto y se podía corregir haciendo
selección de tallas.
En 2014 usamos 6 familias distintas de larvas cultivadas por separado. El dia 50
se separaron los juveniles en 3 grupos (S, M, L)
Family
Related half-
sib family
Spawning Date
(Tank) Female Male
1 2 and 3 24/04/2014 (V8-1) 5-wild 19-wild
2 1 01/05/2014 (V8-1) 5-wild 20-wild
3 1 01/05/2014 (V8-2) 1-wild 19-wild
4 - 24/04/2014 (C2)
16-
cultured 21-wild
5 - 01/05/2014 (C1) 2-wild 22-wild
6 - 01/05/2014 (V6)
13-
cultured 17-wild
Larval growth second group
Age (dph)
0 10 20 30 40
Dry
we
ight (
g)
0
5000
10000
15000
20000
25000
30000
V8-1(2)
C1
V6
V8-2
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Diferencias de crecimiento
El dia 116 se hizo de nuevo una separación de tallas y se formaron 3 grupo
se unos 80 peces. El crecimiento registrado se muestra en la tabla y la
figura siguientes2014
53 dph 88 dph 116 dph 144 dph 164 dph 185 dph 205 dph 227 dph
19/06/2014 24/07/2014 SGR 21/08/2014 SGR 18/09/2014 SGR 08/10/2014 SGR 29/10/2014 SGR 19/11/2014 SGR 11/12/2014 SGR
S 0,43 0,4 9,42 1,8 2,27 17,855 1,786 2,80 31,488 6,052 3,35 45,55 8,57 3,65 61,01 15,14 4,04 71,58 21,31 4,07 79,47 24,40 4,18
M 15,47 3,9 22,682 1,288 3,02 41,214 4,488 3,61 58,59 8,55 3,88 78,13 14,81 4,28 94,18 19,79 4,33 101,33 23,48 4,41
L 5,26 3,4 43,23 17 3,72 27,184 1,544 3,17 47,768 5,311 3,75 65,26 9,06 3,99 94,39 13,46 4,47 113,93 21,00 4,51 125,55 26,49 4,62
Growth of fish in 2014
S M L
100 d 7,82 10,84 15,67
200 d 66,67 85,94 104,18
360 d 160,83 206,10 261,79
540 d 266,76 341,28 439,11
Juvenile ongrowing 2014
Sampling date1/6/14 1/7/14 1/8/14 1/9/14 1/10/14 1/11/14 1/12/14 1/1/15
We
igth
(g)
0
20
40
60
80
100
120
140
160
S
M
L
Age (days)50 100 150 200 250
N= 725
N= 79 L 89 M 86 S
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Diferencias de crecimiento
En 2015 hicimos un nuevo ensayo pero esta vez usando4 familias y mezclando
todas las larvas, se distribuyeron en 4 tanques de 1500L para el cultivo larvario. El
dia 50 se clasificaron en S, M, L y el dia 110 de nuevo se hizo una separación de
tallas
Family
Spawning Date
(Tank) Female Male
Hatched
larvae (N)
1 13/05/2015 (V7) 5-wild 19-wild 122617
2 13/05/2015 (V6) 6-wild 23-cultured 141983
3 13/05/2015 (V8-1) 1-wild 20-wild 66500
4 13/05/2015 (V8-2) 8-wild 22-wild 8050
Juvenile ongrowing 2015
Sampling date29/6/15 13/7/15 27/7/15 10/8/15 24/8/15 7/9/15 21/9/15 5/10/15 19/10/15
We
igh
t (g
)0
10
20
30
40
50
60
70
S
M
L
N= 3024
N= 100 x 9 tanks
Age (dph)40 60 80 100 120 140 160 180
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Diferencias de crecimiento
El crecimiento de los peces se muestra en la siguiente tabla y como en el
2014, el crecimiento fue claramente distinto entre los peces S, M y L
2015
49 dph 83 dph 110 dph 112 dph 134 dph 155 dph 190 dph
02/07/2015 05/08/2015 SGR 01/09/2015 SGR 03/09/2015 SGR 25/09/2015 SGR 16/10/2015 SGR 05/11/2015 SGR
S 0,263 0,030 4,806 1,20 1,61 17,841 5,646 2,82 13,96 1,39 1,20 19,07 2,79 2,83 26,13 4,04 3,12 29,89 5,31 3,30
M 0,434 0,093 7,030 1,83 1,97 22,171 5,776 3,03 21,50 1,47 1,52 30,43 3,53 3,28 38,61 6,13 3,49 45,83 8,79 3,72
L 1,202 0,494 12,359 5,69 2,51 37,950 14,961 3,54 29,18 1,56 1,56 39,76 5,40 3,53 55,12 8,40 3,83 66,62 11,88 4,08
Growth of fish in 2015
S M L
100 d 12,27 19,26 24,24
200 d 33,17 50,33 73,33
360 d 66,61 100,04 151,87
540 d 104,23 155,97 240,24
Juvenile ongrowing 2015
Sampling date29/6/15 13/7/15 27/7/15 10/8/15 24/8/15 7/9/15 21/9/15 5/10/15 19/10/15
Weig
ht
(g)
0
10
20
30
40
50
60
70
S
M
L
N= 3024
N= 100 x 9 tanks
Age (dph)40 60 80 100 120 140 160 180
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Diferencias de crecimiento
Con esos resultados calculamos cual es el coste de producción para los peces
considerados S y L
PRODUCTION COST OF L- AND S- GROWING
FISH (1000 juveniles)
L- S-
Juveniles (0.6€/unit) 600 600
Food 10-30 gr (2.4€/Kg) 90 136,8
30-250 gr (2.04€/Kg) 1526 2557,7
250-500 gr 1943,1 3243,6
Total 4159,1 6538,1
Market price (9,3€/Kg) 4650 4650
Como conclusión general podemos decir que en el caso de la corvina los peces
clasificados como L (grandes) siempre muestran un crecimiento mayor que los
M (medianos) y S (pequeños). No hay crecimiento compensatorio tras la
clasificación.
Comportamiento de la corvina (Argyrosomus regius) durante
la fase de engorda
Neil Duncan
Instituto de Recerca y Tecnologia Agroalimentarias
(IRTA) Sant Carles de la Rapita, Spain
Capacitación en el Cultivo
de Corvina (Argyrosomus regius)
2-17 de junio, 2021
Comparación de alimentación programada y alimentación de
auto-demanda para la corvina
Neil Duncan, Alicia Estevez, Ana Roque, Elvira
Fatsini, Jordi Comas
Instituto de Recerca y Tecnologia Agroalimentarias
(IRTA) Sant Carles de la Rapita, Spain
Capacitación en el Cultivo
de Corvina (Argyrosomus regius)
2-17 de junio, 2021
Introducción: Cuellos de botella
Variación del crecimiento en la engorda de la corvina
¿Base genética?
¿Base medioambiental?
¿Necesita mejorar los métodos de alimentación?
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Introducción: Demanda de alimentación
Demanda de alimentación en salmón atlántico (Salmo salar):
• Mejora de las tasas de crecimiento
• Mejora de la relación de conversión de alimentos (FCR)
• Reducción de la variación en el tamaño
• Reducción de la agresión en (Noble et al., 2007, 2008)
Demanda de alimentación en lubina europea (Dicentrarchus labrax):
• Mejora de las tasas de crecimiento
• FCR mejorado (Azzaydi et al., 1998, 2000),
La alimentación de la demanda en salmón del Atlántico se utilizó para mejorar las tablas de alimentación,
el crecimiento y la FCR (Noble et al., 2008)
La alimentación de la lubina europeo en relación con los ritmos de alimentación en comparación con la
alimentación a lo largo del día dio el mismo o mejor crecimiento y una menor FCR (Azzaydi et al., 2000,
1999).
La investigación en jaulas y tanques sobre salmón y lubina dio resultados similares.
Azzaydi, et al, 1998. Aquaculture, 163: 285-296
Azzaydi, et al,1999. Aquaculture, 170 253-266
Azzaydi, et al, 2000. Aquaculture, 182: 329-338
Noble, et al, 2007. Aquaculture Res 38, 1686–1691
Noble, et al, 2008. Aquaculture 275, 163-168
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Objetivo:
Comparar la alimentación automática programada con la alimentación auto-
demanda en tanques.
Condiciones para simular las condiciones de cría en jaulas (temperatura y
fotoperiodo) y alimentación automatizada programada para seguir las
prácticas de alimentación en jaulas.
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Métodos
RAS 1 RAS 2 RAS 3
Prog 1
AD 1
Prog 3
Prog 2 AD 3
AD 2
Sistema de recirculación (RAS)
Iniciado el 04/Oct → 06/Sept
Corvinas de 50g al principio, todos los peces
entrenados para la auto-demanda
200 → 75 peces por tanque
Fotoperiodo natural
Temperatura simulada de cultivo en jaula
Alimentación programada (Prog) –
• Tasa de alimentación de empresa de pienso
• Programa similar a los períodos de
alimentación en jaulas 09:00-10:00, 13:00-
14:00 y 17:00-18:00
• 50-100g = 3 x 1 hora de períodos de
alimentación
• 100-300g = 2 x 1 hora de períodos de
alimentación
Alimentación de auto-demanda (AD) –
• Péndulo para demandar alimento
• Alimentación de 5g por demanda
• Registro de tiempo de demanda
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Métodos
Sistemas de auto-demanda o
auto-alimentación
Métodos
Datos registrados
• Crecimiento
• Frecuencia del tamaño en la población
• Tasa de conversión de alimentación (FCR en ingles)
• Actividad con dos sensores de movimiento
• Superior 20 cm por debajo de la superficie
• Parte inferior a 80 cm de la superficie (20 cm desde la parte inferior)
• Momento de la demanda de alimentación – patrón de alimentación
• Condición de aletas
• Velocidad de natación
• Comportamiento agresivo
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Resultados
Crecimiento
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Resultados
Crecimiento (media±SEM, n=120)
Biomasa kg / m3
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Resultados
Tasa especifica de crecimiento
No hubo diferencias significativas entre tipo de alimentación
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Resultados
Crecimiento – Variación de tamaño – Coeficiente de variación (CV)
El grado de variabilidad en relación con la media de la población
No hubo diferencias significativas entre tipo de alimentación
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Results
Growth – Size variation - Frequency distribution
06/09/201704/10/2016
Número de peces en la categoría de peso de talla (g), muestra de 120 peces
No hubo diferencias significativas entre tipo de alimentación
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Resultados
Tasa de conversión de alimentación (FCR)
No hubo diferencias significativas entre tipo de alimentación
Promedio FCR programado 1.50 ± 0.02, Promedio auto-demanda 1.42 ± 0.01
FCR > 1.5 coincidieron con las temperaturas extremas (15ºC y 25ºC)
y/o las densidades de siembra más altas >20 kg/m3.
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Resultados
Comportamiento
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Resultados
Comportamiento – actividad de alimentación – patrón de alimentación
00:00:00 04:00:00 08:00:00 12:00:00 16:00:00 20:00:00 00:00:00
oct
nov
des
gen
feb
març
abr
maig
juny
jul
ag
set
oct
Hour
00:00:00 04:00:00 08:00:00 12:00:00 16:00:00 20:00:00 00:00:00 00:00:00 04:00:00 08:00:00 12:00:00 16:00:00 20:00:00 00:00:00
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Resultados
Comportamiento – actividad de alimentación – patrón de alimentación
Demandas acumuladas por hora durante todo el año / experimento
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Significativamente
mayor demanda durante
la noche en
comparación con el día.
Durante la noche (19:00
a 06:00) 720 ± 22
demandas/hora
Durante el día (07:00 a
18:00) de 439 ± 22
demandas/hora.
Resultados
Comportamiento – actividad de alimentación – patrón de alimentación
Demandas acumuladas por hora del 4 de octubre al 21 de abril
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Resultados
Comportamiento – actividad de alimentación – patrón de alimentación
Demandas acumuladas por hora durante el 22 de abril al 6 de septiembre
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Resultados
Comportamiento
Actividad – sensores
de movimiento
Sensor superior
Sensor de fondo
Resultados
Condición de la
aleta
oct 2016- sept
2017
1 – aleta perfecto
2 – poco daño de
las aletas
3 - daño pesado
de las aletas
4 – sin aleta
n=60
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
No hubo diferencias significativas entre tipo de alimentación
No hubo comportamiento agresivo
Resultados
Velocidad de
natación.
Programada:
37.8 ± 0.93 mm/s
Auto-demanda:
31.9 ± 0.95 mm/s.
Diferencias en
programada.
No diferencias en
auto-demanda
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Conclusiones
• Las prácticas de engorda de 2 a 3 períodos de alimentación durante las horas
de luz del día dan el mismo crecimiento, FCR y variación de tamaño que la
demanda de alimentación cuando los peces prefieren comer.
• Comparación de parámetros entre la alimentación programada y la
alimentación auto-demanda:
• Sin diferencias en el crecimiento
• Variación de tamaño similar
• Niveles bajos y similares de daño a las aletas
• No hay diferencia en FCR
• Alimentación durante todo el ciclo de 24 horas, incluso durante la noche
• Niveles más altos de alimentación durante la noche
• La corvina suba para llenar toda la columna de agua durante la noche y
permanece más profundo en el tanque durante el día
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
Gracias por su atenciónEl fin.
Introducción y Vista General del Cultivos de Sciaenidae
Ignasi Gairin
Instituto de Recerca y Tecnología Agroalimentarias
(IRTA) Sant Carles de la Ràpita, Spain
Capacitación en el Cultivo
de Corvina (Argyrosomus regius)
2-17 de junio, 2021
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 2021
CORVINA: ALEVINAJE Y TRANSPORTE
2
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 20213
CARACTERISTICAS DEL ALEVINAJE
• Rápido crecimiento de los alevines a temperaturas elevadas y
muy buenas conversiones del pienso
• Se recomienda llevar a cabo clasificaciones muy frecuentes para
limitar las dispersiones del lote.
• El canibalismo es un factor de riesgo muy importante hasta el
peso de 10 g
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 20214
CARACTERISTICAS DEL ALEVINAJE
Muestra una alta sensibilidad a las manipulaciones:
• Durante las clasificaciones se utiliza anestésico a unas dosis inferiores a las
que se usan en dorada. 40 ppm ms222
• Las escamas se desprenden con mucha facilidad por cualquier rozadura
(clasificaciones, carga y descarga en transporte, despesque en jaula)
• Para cualquier manipulación es recomendable evitar una alta acumulación de
peces en la red
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 20215
CARACTERISTICAS DEL ALEVINAJE
• La tasa diaria de alimentación es prácticamente el doble de la ración que le
correspondería a la dorada
• La alimentación debe ser ad libitum con especial importancia a las tomas de
primera hora de la mañana
• Se recomienda el uso de comederos automáticos y que la alimentación a mano
sea muy lenta para facilitar la ingestión por parte de los alevines
• En la fase de alevinaje y a temperaturas óptimas pueden preengordar a una
SGR superior al 2,7%
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 20216
CARACTERISTICAS DEL ALEVINAJE
• Las temperaturas óptimas de crecimiento están entre los 20 y los 26 ºC
• Es una especie muy sensible a la alta intensidad lumínica. La fase de alevinaje
se debe llevar a cabo en naves cerradas o en tanques exteriores con telas de
sombreo.
• En tanques expuestos al sol, los alevines siempre buscarán los zonas más
resguardadas de la luz
• Existen todavía unas calidades de lote de alevines muy diversas,
describiéndose lotes con crecimientos excelentes y otros con resultados
deficientes (G – M – P)
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 20217
CARACTERISTICAS DEL ALEVINAJE
• Es una especie con un comportamiento más de fondo que la dorada y la lubina
• Tiende a formar grupos de alta densidad de individuos
• Tiene una natación muy lenta, es por este motivo por el que aprovecha más el
pienso que ingiere en crecimiento
• Es una especie con un índice de conversión muy bajo. Por debajo de 0,7 en la
fase de alevín
• Se suelen utilizar piensos menos grasos que en el caso de la dorada y la lubina
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 20218
CARACTERISTICAS DEL ALEVINAJE
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 20219
TRANSPORTE
Los camiones irán provistos del siguiente material:
• Las 12 cubas de 2 m3 deben ser isotermas para amortiguar las variaciones de
la temperatura exterior
• Un compresor de aire alimentará las parrillas de las cubas con aire filtrado
• Botellas de oxígeno
• Cada cuba dispone de su propio sistema de regulación, distribución y
difusión de oxígeno (1 caudalímetro por cuba)
• Una bomba de agua autónoma para caudales de 6 a 30 m3/h
• Un caudalímetro de agua, cuba a cuba, que permita el control de los caudales
durante las operaciones de renovación de agua
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 202110
TRANSPORTE
El chofer dispondrá del siguiente material :
• 2 oxímetros en perfecto estado de funcionamiento (1 en uso + 1 de emergencia).
• Un medidor de pH
• Un kit rápido de medición de amonio
• Una regla de medición graduada para conocer el nivel de agua en las cubas.
• Un teléfono móvil conectado permanentemente.
• Un pulverizador a presión y una reserva de formol para la desinfección del camión.
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 202111
TRANSPORTE
• La carga de agua de mar en las cubas del camión se realizará al menos una hora
antes del inicio de la carga de los alevines.
• La puesta en marcha del compresor y del sistema de oxigenación se llevará a cabo
antes del inicio de la carga de los alevines.
• Las operaciones de carga se llevarán a cabo por un miembro del personal de la
empresa suministradora de los alevines utilizando una bomba de trasvase de peces
o cargando los alevines con cubos.
• El chofer estará presente en todas las operaciones de carga. Permanecerá encima
del camión verificando y supervisando el llenado de alevines en las cubas.
Capacitación en el Cultivo de Corvina (A. regius) 2-17 de junio, 202112
TRANSPORTE
• Los alevines estarán en ayuno durante 12-24 horas antes de ser cargados al
camión
Camión: Carga de alevines de dorada en 24 m3 de agua
• Alevín de 2 gramos: 800 kg/camión
• Alevín de 5 gramos: 1.300 kg/camión
• Alevín de 10 gramos: 1.600 Kg/camión
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TRANSPORTE
• Para minimizar el estrés, las cargas de los alevines para los transportes se
realizarán a un ritmo lento.
• La temperatura del agua se acondicionará a 20ºC para disminuir la actividad de
los alevines durante el transporte
• La menor actividad de los peces disminuirá la frecuencia respiratoria y la
posible bajada de pH
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TRANSPORTE
SUPERVISIÓN DURANTE EL TRANSPORTE
• Una vez estabilizados los niveles de oxígeno, la medición de la temperatura y la
de oxígeno, se realizará cada 4 horas.
• El transportista anotará en el informe del viaje cualquier incidente que pudiera
afectar al buen estado de los alevines.
• Si el chofer aprecia una mortalidad anormal durante el trayecto deberá contactar
lo más pronto posible con una de las personas responsables
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TRANSPORTE
• La corvina tiene una alta sensibilidad a la sobresaturación de gases
• Ya sea en clasificaciones o durante el transporte se aconseja no superar el 120-
140% de saturación de oxígeno en el agua
• Con la finalidad de favorecer el comportamiento de fondo de los alevines,
durante el transporte se evitará poner un burbujeo fuerte que agite los peces en
las cubas del camión
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TRANSPORTE
• A la llegada al destino, el camión iniciará el cambio de agua en el lugar en el
que el cliente le indique siempre que el chófer lo estime un lugar adecuado
• En alevines de corvina, el tiempo de acondicionamiento se incrementará en un
50% antes de la descarga respecto a la dorada (mínimo 3 horas, óptimo 4
horas), respetando que durante el cambio no se supere la diferencia de
temperatura de 1,5 grado/hora
• Una renovación rápida podría causar un rápido cambio de pH y un paso de la
sustancias nitrogenadas de la forma de amonio a la de amoníaco
• El transporte hasta las jaulas se llevará a cabo con las mismas indicaciones
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TRANSPORTE
Wellboat
• Transporte en barco con tanques
• Tiene mucha más capacidad que un camión
• Se puede dar un intercambio de agua en continuo durante
el viaje
• La velocidad de desplazamiento es más lenta
• Se debe valorar el coste
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PREENGORDE – TRANSPORTE – ENGORDE
¿Qué es lo que más importante para el cliente?
1. Número de alevines
2. Peso medio de los alevines
3. Dispersión del lote
4. Deformidades visibles en los alevines
5. Se entrega un porcentaje de alevines sin cargo
para compensar bajas.
6. Es recomendable asistir a las cargas
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ANECDOTAS EN ESPAÑA
Existen jaulas de engorde asiladas en las Islas Canarias:
• Viaje de alto riesgo por la logística que requiere:
1. Viaje en camión hasta el puerto de embarque
2. Viaje en barco de más de 36 h
3. Cambio de agua durante la travesía
4. Llegada al puerto canario
5. Viaje en camión hasta el muelle de descarga
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ANECDOTAS EN ESPAÑA
• El cultivo de corvina en España tuvo una gran expansión en los años 2005-2006
• Una nueva especie con un gran crecimiento
• Sin patologías hasta la fecha
• Un año más tarde había mucha oferta de corvina de 1 Kg
• Portugal era un mercado conocido para la venta de esta especie
• Las corvinas iban creciendo y se pasaban de talla de mercado
• Portugal no demandaba tanta corvina y su mercado no era de corvina de 1,6 -
1,8 Kg
• La situación empezaba a ser preocupante:
1. Corvinas + grandes, + biomasa/jaula, + pienso
2. Hubo jaulas que abrieron la red
3. Planificación de mercado para cualquier nueva especie
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Muchas gracias
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