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1 UNIVERSIDAD NACIONAL DE AGRICULTURA DETERMINACIÓN DE LA CALIDAD DEL AGUA Y MONITOREO DE MACROINVETEBRADOS BENTÓNICOS EN LA MICROCUENCA DEL RÍO NETEAPA EN EL MUNICIPIO DE MOROCELÍ, EL PARAÍSO. POR: WENDEL DANILO IRÍAS MATAMOROS TESIS CATACAMAS, OLANCHO HONDURAS, C.A JUNIO, 2016

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UNIVERSIDAD NACIONAL DE AGRICULTURA

DETERMINACIÓN DE LA CALIDAD DEL AGUA Y MONITOREO DE MACROINVETEBRADOS BENTÓNICOS EN LA MICROCUENCA DEL RÍO

NETEAPA EN EL MUNICIPIO DE MOROCELÍ, EL PARAÍSO.

POR:

WENDEL DANILO IRÍAS MATAMOROS

TESIS

CATACAMAS, OLANCHO HONDURAS, C.A

JUNIO, 2016

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UNIVERSIDAD NACIONAL DE AGRICULTURA

DETERMINACIÓN DE LA CALIDAD DEL AGUA Y MONITOREO DE

MACROINVETEBRADOS BENTÓNICOS EN LA MICROCUENCA DEL RIO NETEAPA EN EL MUNICIPIO DE MOROCELÍ, EL PARAÍSO.

POR:

WENDEL DANILO IRIAS MATAMOROS

JORGE ORBIN CARDONA HERNANDEZ

.

Asesor Principal

TRABAJO DE TESIS

PRESENTADO A LA UNIVERSIDAD NACIONAL DE AGRICULTURA COMO

REQUISITO PREVIO A LA OBTENCION DEL TITULO DE

LICENCIADO EN RECURSOS NATURALES Y AMBIENTE

CATACAMAS, OLANCHO HONDURAS, C.A

JUNIO, 2016

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Contenido Pag

LISTA DE CUADROS. ......................................................................................................... 5

LISTA DE FIGURAS ............................................................................................................ 6

LISTA DE ANEXOS ............................................................................................................. 6

RESUMEN ............................................................................................................................ 7

I INTRODUCCIÓN ............................................................................................................... 8

II OBJETIVOS ....................................................................................................................... 5

2.1 GENERAL.................................................................................................................... 5

2.2 ESPECÍFICOS.............................................................................................................. 5

III REVISIÓN DE LITERATURA ........................................................................................ 5

3.1 El agua .......................................................................................................................... 5

3.2 Calidad del agua ........................................................................................................... 5

3.3 Importancia de la calidad de agua ................................................................................ 6

3.4 Contaminación del agua. .............................................................................................. 6

3.5 Contaminación de aguas superficiales por agroquímicos............................................. 6

3.6 Monitoreo y evaluación de calidad de agua ................................................................. 7

3.7 Parámetros físico químicos........................................................................................... 7

3.7.1 Turbidez ................................................................................................................ 8

3.7.2 pH ......................................................................................................................... 8

3.7.3 Temperatura .......................................................................................................... 8

3.7.4 Oxígeno disuelto ................................................................................................... 8

3.7.5 Demandan bioquímica de oxígeno ....................................................................... 9

3.7.6 Cianuro .................................................................................................................. 9

3.7.7 Dureza.................................................................................................................. 10

3.7.8 Nitritos y nitratos ................................................................................................. 10

3.8 Análisis microbiológicos .............................................................................................. 5

3.8.1 Coliformes totales y fecales.................................................................................. 5

3.9 Bioindicadores .............................................................................................................. 6

3.9.1 Macroinvertebrados ............................................................................................... 6

3.9.2 Ventajas del uso de macroinvertebrados acuáticos ............................................... 7

3.10 Macroinvertebrados más comunes ............................................................................. 7

3.10.1 Trichoptera........................................................................................................... 8

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3.10.2 Ephemeroptera..................................................................................................... 8

3.10.3 Coleóptera............................................................................................................ 9

3.10.4 Odonata.............................................................................................................. 10

3.10.5 Plecoptera. ......................................................................................................... 10

3.11 Índice de diversidad .................................................................................................. 10

IV MATERIALES Y MÉTODO ......................................................................................... 12

4.1 Materiales ................................................................................................................... 12

4.2 Descripción del área ................................................................................................... 12

4.3 Diagnostico de calidad de agua. ............................................................................... 12

4.3.1 Selección de los puntos de muestreo ................................................................... 13

4.3.2 Parámetros a medir .............................................................................................. 13

4.3.3 Muestreo .............................................................................................................. 13

4.3.4 Etiquetaje ............................................................................................................. 14

4.3.5 Formatos para recolección de información ......................................................... 14

4.3.6 Recolección, conservación y transporte de la muestra. ....................................... 15

4.4 Monitoreo de macroinvertebrados Bentónicos. ..................................................... 15

4.4.1 Método de Recolección de Macroinvertebrados. ................................................ 15

4.4.2 Identificación de Macroinvertebrados. ................................................................ 16

4.4.3 Cálculo del índice Ephemeroptera, Plecóptera y Trichoptera (EPT) ................. 16

4.4 4 Datos de campo ................................................................................................... 16

4.5 Identificación zonas de contaminación y usos de suelo ......................................... 17

4.5.1 Posibles zonas de contaminación y usos de suelo ............................................... 17

V RESULTADOS Y DISCUSIÓN .................................................................................... 18

5.1 Diagnosticar mediante análisis de laboratorio el estado de la calidad del agua de

cinco puntos de muestreo. .............................................................................................. 18

5.1.1 Coliformes Totales presentes en el primer y segundo muestreo. .................. 18

5.1.2 Coliformes termotolerantes presentes en el primer y segundo Muestreo. ... 19

5.1.3 Presencia de coliformes totales y termotolerantes en los diferentes puntos de

muestreo ...................................................................................................................... 19

5.1.4 Potencial de Hidrogeno (pH). ........................................................................... 20

5.1.5 Nitrito.................................................................................................................. 21

5.1.6 Nitrato. ................................................................................................................ 22

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5.1.7 Dureza ................................................................................................................. 23

5.1.8 Oxígeno Disuelto. ............................................................................................... 25

5.1.9 Magnesio. ............................................................................................................ 26

5.1.10 Parámetros analizados con valores no determinados y resultados de menor

valor. ............................................................................................................................ 26

5.2 Determinar la presencia de macro-invertebrados bentónicos en la microcuenca.27

5.2.1 Número total de individuos de macroinvertebrados bentónicos ................... 27

5.2.2 Número de individuos por cada muestreo....................................................... 27

5.2.3 Abundancia de familia ...................................................................................... 29

5.2.4 EPT (Ephemeroptera, Plecoptera, Trichoptera) ............................................ 29

5.3 Identificar posibles zonas de contaminación y uso de suelos en áreas cercanas a

la las micro-cuencas........................................................................................................ 30

5.3.1Focos de contaminación. .................................................................................... 30

5.3.2 Uso de suelo. ....................................................................................................... 31

VI CONCLUSIONES .......................................................................................................... 33

VII RECOMENDACIONES................................................................................................ 34

VIII CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES ........................¡Error! Marcador no definido.

IX PRESUPUESTO ..............................................................¡Error! Marcador no definido.

X BIBLIOGRAFIA .............................................................................................................. 35

Anexos .................................................................................................................................. 38

Resultados Obtenidos en el Primer Muestreo realizado. ............................................ 39

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LISTA DE CUADROS.

Cuadro 1. Rangos de dureza en el agua. ............................................................................... 10

Cuadro 2. Problemas del nitrato en exceso.Fuente: Lenntech (2008) .................................... 5

Cuadro 3. Problemas del nitrato en exceso. .......................................................................... 15

Cuadro 4. Problemas del nitrato en exceso. .......................................................................... 16

Cuadro 5. Porcentajes de coliformes totales en los dos muestreos. ...................................... 19

Cuadro 6. Porcentajes de coliformes termotolerantes en los dos muestreos. ....................... 19

Cuadro 7. Porcentajes de coliformes termotolerantes en los dos muestreos. ....................... 26

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LISTA DE FIGURAS

Figura 1. Mapa de área de estudio. ...................................................................................... 12

Figura 2. Ubicación de puntos de muestreo......................................................................... 14

Figura 3. . pH en los diferentes puntos de muestreo............................................................ 20

Figura 4. Presencia de nitritos en las estaciones de muestreo. ............................................ 21

Figura 5. Resultados de análisis de nitratos en puntos de muestreo. ................................... 22

Figura 6. Dureza total en puntos de muestreo. .................................................................... 23

Figura 7. Resultados de análisis oxígeno disuelto ............................................................... 25

Figura 8. Resultados de análisis magnesio .......................................................................... 26

Figura 9. Número de individuos encontrados en total en cada sitio de muestreo. .............. 27

Figura 10. Número de individuos por muestreos................................................................. 28

Figura 11. Abundancia de familias ...................................................................................... 29

Figura 12. Focos de contaminación encontrados en la microcuenca del rio Neteapa. ........ 31

Figura 13. Mapa de usos de suelos actual en la microcuenca del rio Neteapa. ................... 32

LISTA DE ANEXOS

Anexo 1. Concentraciones de contaminantes en el primer muestreo.

Anexo 2. Concentraciones de contaminantes para el segundo muestreo

Anexo 3. Despulpadora de café.

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Irías Matamoros, W. 2016. Determinación de la calidad del agua y monitoreo de

macroinvertebrados bentónicos en la microcuenca del río Neteapa en el municipio de

Morocelí, El Paraíso. Tesis. Lic. Recursos Naturales y ambiente. Catacamas, Olancho.

Universidad Nacional de Agricultura.

RESUMEN

El trabajo se realizó en la comunidad de Morocelí, El Paraíso en la microcuenca del rio

Neteapa en un periodo de 5 meses con el objetivo de conocer evaluar la calidad de agua y el

monitoreo de macroinvertebrados bentónicos lo que esto será de gran beneficio para las

comunidades que se aprovechan el agua de esta microcuenca. La metodología

implementada radicó en el reconocimiento de la microcuenca primero para identificar los

puntos de muestreo, toma de las muestras de agua y analizadas en los laboratorios

establecidos, monitoreo de Macroinvertebrados bentónicos mediante instalación de mallas

para recolectar las especies que se encontraron en la zona, identificación focos de

contaminación y usos de suelo actuales. En los resultados obtenidos se describe que los

parámetros analizados en su mayoría se encuentran dentro de los rangos permisibles por la

norma técnica nacional de agua potable de Honduras, la biodiversidad encontrada fue una

cantidad considerable de individuos un total de 437 con un total de 11 familias, una

debilidad encontrada es que el uso de suelo natural se ha ido degradando y esto puede

afectar tanto la cantidad como la calidad del agua cambiando por otra parte trae consigo la

instalación de maquinaria para cosecha del cultivo lo que genera un drenaje de aguas mieles

en la parte alta de la microcuenca, los asentamientos humanos dentro de la microcuenca

generan un fuerte impacto en la parte de las heces fecales por lo que este documento viene a

generar opciones para actuar en beneficio de la microcuenca.

Palabras clave: Macroinvertebrados bentónicos, calidad de agua, uso de suelo, puntos de

muestreo, parámetros de calidad de agua.

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I INTRODUCCIÓN

Aguas superficiales son las aguas continentales que se encuentran en la superficie de la

tierra. El agua superficial proviene de las precipitaciones, esta agua no se infiltra. También

es la que proviene de manantiales o nacimientos que se originan de las aguas subterráneas.

El agua es esencial y vital para la vida, es la fuente de toda forma de vida, la sobrevivencia

de una persona depende del agua, ya que está constituido en un 70% por agua, como

también lo es el 71% de la superficie de la tierra (Hernández, E. 2010). El agua es elemento

más importante para la buena salud y es necesaria para todas las funciones del organismo.

La problemática actual que se está viviendo debido a la contaminación de los cuerpos de

agua por diferentes factores, tales como el incremento de la población, industria, minería

sistemas productivos agrícolas, actividades que representa varias formas importantes de

contaminación a los cuerpos de agua. Todo lo anterior hace evidente la necesidad de

implementar procesos de investigación para conocer la salud de los cuerpos de agua.

Atravez de herramientas que indique el estado de los cuerpos de agua es haciendo uso de

parámetros indicadores.

Por la naturaleza montañosa del territorio hondureño, su suelo esta surcado por

innumerables corrientes de agua. Honduras tiene un potencial hídrico de 1,542 m³/s, de los

cuales se aprovecha un volumen estimado de 13.5 m3/s para consumo doméstico e

industria; 75 m³/s para riego y 242 m³/s para la producción de energía eléctrica. (WGP

2012).

A pesar del gran potencial hídrico con el que se cuenta el agua potable es un bien escaso, ya

que los métodos de tratamientos no se aplican, por falta de concienciación, conocimiento,

en otros casos por factor económico o de fuentes de agua no adecuadas para brindar el

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servicio. Por otra parte la calidad de agua ha ido cambiando rápidamente de un enfoque

puramente fisicoquímico a otro que toma en cuenta todos los componentes de ecosistema.

Actualmente, muchos países están apoyando el uso de comunidades acuáticas y el estudio

de su comportamiento a través del tiempo (biomonitoreo) como herramienta fundamental

para evaluar la calidad de las aguas (Rosenberg et al, 1986).

Debido al interés que se generó por parte de las autoridades encargadas de br indar el

servicio de agua potable, por conocer la salud del agua y tener un mejor conocimiento sobre

los recursos con lo que se cuenta, se realizó esta investigación en la microcuenca del rio

Neteapa en la comunidad de Morocelí, El Paraíso con el objetivo de conocer la situación

haciendo uso de herramientas necesaria y georreferenciando la microcuenca para conocer

usos de suelo y focos de contaminación para poder mantener los recursos existentes y así

evitar mayor contaminación.

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II OBJETIVOS

2.1 GENERAL

Evaluar la calidad de agua y el monitoreo de macroinvertebrados bentónicos en la

microcuenca del Río Neteapa en el municipio de Morocelí, El Paraíso.

2.2 ESPECÍFICOS

Diagnosticar mediante análisis de laboratorio el estado de la calidad del agua de

cinco puntos de muestreo.

Determinar la presencia de macro-invertebrados bentónicos en la microcuenca.

Identificar posibles zonas de contaminación y uso de suelos en áreas cercanas a la

las microcuencas.

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III REVISIÓN DE LITERATURA

3.1 El agua

El agua es la sustancia formada por la combinación de un volumen de oxígeno y dos de

hidrogeno (H2O). Es liquida, inodora, insípida en pequeña cantidad incolora y verdosa o

azuladas en grandes masas. Es el componente más abundante de la superficie terrestre y

más o menos puro, forma la lluvia, las fuentes, los ríos y los mares; es parte constituyente

de todos los organismos vivos y aparece en compuestos naturales.

El agua es considerada como uno de los recursos naturales más fundamentales para el

desarrollo de la vida, se sabe que el 97% del agua total del planeta se encuentra en los

océanos y otras masas salinas, el 3% restante un 2.8% aproximadamente, en estado sólido y

el resto un 0.62% se encuentra en lagos, ríos, y aguas subterráneas (Félez, M 2002).

3.2 Calidad del agua

Se refiere a las condiciones en que se encuentra el agua con respecto a las características

físicas, químicas y biológicas, en su estado natural o después de ser alteradas por el

accionar humano. Este concepto a sido asociado al uso del agua para consumo humano.

El agua que es recomendada para consumo humano se llama agua potable, la cual puede

provenir de fuentes subterráneas o superficiales y generalmente debe estar tratada para

eliminar cualquier contaminación.

La calidad del agua está afectada por diversos factores como los usos del suelo, la

producción industrial y agrícola, el tratamiento que se le da antes de ser vertida nuevamente

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a los cuerpos de agua, y la cantidad misma en ríos y lagos, ya que de ésta depende su

capacidad de purificación

3.3 Importancia de la calidad de agua

Según la ONU (2014) La baja calidad del agua afecta directamente sobre la cantidad de

agua de diversas maneras. El agua contaminada que no puede utilizarse para consumo, para

baño, para la industria o la agricultura reduce de forma efectiva la cantidad de agua

disponible en una determinada zona.

El deterioro de la calidad del agua se ha convertido en motivo de preocupación a nivel

mundial con el crecimiento de la población humana, la expansión de la actividad industrial

y agrícola.

Así mismo lenntech (2006) La mala calidad de agua afecta muchas actividades vitales, los

efectos más evidentes del uso del agua se refleja en actividades que afectan al ser humano.

3.4 Contaminación del agua.

Es la introducción de cualquier sustancia a un cuerpo de agua, por actividad humana o un

proceso natural, que da como resultado efectos negativos a los recursos vivos.

Honduras tiene una alta concentración de contaminación en sus ríos esto debido a las

actividades humanas, incremento de la población, actividades de la industria y desechos de

agroquímicos. lo cual genera resultados negativos en los seres vivos, en la salud de las

personas, el mismo uso del agua entre otras (Salgado, J 2012)

3.5 Contaminación de aguas superficiales por agroquímicos

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Plaguicida es cualquier sustancia o mezcla destinadas a prevenir, destruir o controlar

cualquier plaga. En la actualidad, con el fin de obtener mayores rendimientos en los

sistemas productivos, es cada vez mayor la utilización de agroquímicos en general y de

plaguicidas (o pesticidas) en particular. Este incremento a provocado que estas sustancias

estén presentes en diferentes medios (suelos, aguas superficiales y subterráneas) Además,

existen reportes de afecciones a la salud producto del contacto con estas sustancias.

La sola detección de agroquímicos en cualquier ambiente implica reconocer la

contaminación del mismo, lo que tendrá diferentes niveles de gravedad en función de sus

potenciales impactos. Con relación a la presencia de agroquímicos en aguas, más allá de

reconocer la contaminación del medio, existen inconvenientes para la gestión ambiental

dado que se dificulta caracterizar la calidad del agua en función de la gravedad de esa

contaminación, complicando las decisiones a tomar en consecuencia Peluso, F(2013)

3.6 Monitoreo y evaluación de calidad de agua

Chapman (1996) define el monitoreo de calidad de agua como la colección actual de

información en ubicaciones específicas con intervalos regulares para conseguir la

información necesaria para definir condiciones actuales y establecer tendencias, entre otros .

Por otro lado, la evaluación de calidad de agua está definida como el proceso completo de

la evaluación de la naturaleza física, química y biológica del agua en relación a la calidad

natural, efectos humanos y usos adecuados, particularmente los usos que pueden afectar la

salud humana y la salud del sistema acuático.

3.7 Parámetros físico químicos

Dado que es necesario conocer el significado y el origen de las características del agua a

continuación se presentan algunas definiciones y sus posibles causas. Estas son el eje

central de este trabajo de las cuales se presentan las características físicas, químicas y

bacteriológicas.

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3.7.1 Turbidez

Según lenntech (2008) La turbidez es una medida del grado en el cual el agua pierde su

transparencia debido a la presencia de partículas en suspensión. Cuantos más sólidos en

suspensión haya en el agua, más sucia parecerá ésta y más alta será la turbidez. La turbidez

es considerada una buena medida de la calidad del agua.

3.7.2 pH

El pH es una medición muy importante del agua. Los valores y cambios del pH pueden

indicar problemas de contaminación en el agua de los ríos y lagos.

No solamente el pH afecta a los organismos vivos que viven en el agua, sino que el cambio

en el pH puede también ser un indicador del aumento en la contaminación o algún otro

factor ambiental. El pH mayor a 7 tiende a ser alcalino, los rangos entre 4 a 7 son los

normales en un arroyo normal, el pH menor a 5 tiende a ser ácido USGS (2015).

3.7.3 Temperatura

La temperatura es una variable física que influye notablemente en la calidad de un agua.

Afecta a parámetros o características tales como la solubilidad de gases y sales, la cinética

de las reacciones químicas y bioquímicas, desplazamientos de los equilibrios químicos,

tensión superficial, desarrollo de organismos presentes en el agua

3.7.4 Oxígeno disuelto

Según lenntech (2008) el (OD), es el oxígeno que esta disuelto en el agua. Esto se logra por

difusión del aire del entorno, la aireación del agua que ha caído sobre saltos o rápidos; y

como un producto de desecho de la fotosíntesis.

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Los peces y los animales acuáticos no pueden diferenciar el oxígeno del agua (H 2O) o de

otros compuestos que contengan oxígeno. Solo las plantas verdes y algunas bacterias

pueden hacerlo a través de la fotosíntesis y procesos similares. Virtualmente el oxígeno que

nosotros respiramos es producido por las plantas verdes. Un total de las tres cuartas partes

del oxígeno de la tierra es producido por el fitoplancton en los océanos.

3.7.5 Demandan bioquímica de oxígeno

La demanda bioquímica de oxígeno (DBO) es una prueba usada para determinación de los

requerimientos de oxígeno para la degradación bioquímica de la materia orgánica. Su

aplicación permite calcular los efectos de las descargas de los efluentes domésticos e

industriales sobre los efectos de la calidad de agua de los cuerpos receptores.

La DBO se ve afectada por la temperatura del medio, por las clases de microorganismos

presentes, por la cantidad y tipo de elementos nutritivos presentes.

El agua potable tiene un DBO de 0.75 a 1.5 ppm de oxígeno y se considera que el agua esta

si la DBO es mayor a 5 ppm y los desechos industriales y agrícolas tienen un orden de

más6 de miles de ppm.

3.7.6 Cianuro

El cianuro en concentraciones entre 5 y 7 microgramos por litro es toxico para la

reproducción de los peces. En concentraciones mayores a 200 microgramos por litro es

altamente toxico para cualquier especie. El efecto nocivo y más letal e importante, es el de

impedir que el oxígeno por los glóbulos rojos de la sangre llegue a las demás células del

organismo, impidiendo así el proceso de respiración celular ello también hace aumentar la

cantidad de lactato en el organismo, que no puede ser llegar al hígado para su eliminación.

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Donde más causa daño el cianuro son en aquellos lugares donde se consume más oxígeno y

están más irrigados como son el corazón y el cerebro lo que esto provoca una parálisis

respitaria. (Ingrassia 2015).

3.7.7 Dureza

La dureza es una característica del agua que se determina por el contenido de carbonatos,

bicarbonatos, cloruros, sulfatos y en algunas ocasiones nitratos de calcio y magnesio. Las

aguas duras no producen espuma al tener contacto con el jabón a veces puede alterar el

color de la ropa y formar costras duras en los utensilios de cocina. El agua dura tiene un

sabor desagradable al consumirla.

La mayoría de los suministros de agua tienen un promedio de 250 mg/l, los niveles

superiores a 500 mg/l son indeseables para uso doméstico. El límite máximo permisible

para agua potable es de 300 mg/l de dureza.

Dureza como CaCO3 Interpretación

0 – 75 Agua suave

75 – 150 Agua poco dura (apta para consumo)

150 – 300 Agua dura

> 300 Agua muy dura

Cuadro 1. Rangos de dureza en el agua.

3.7.8 Nitritos y nitratos

Los nitratos y nitritos son iones que existen de manera natural y que forman parte del ciclo

del nitrógeno (Lenntech, 2007). En un medio acuático natural se espera encontrar la

mayoría del nitrógeno como nitratos, en lugar de la forma oxidada. La presencia de nitritos

de amonio, es un indicio de reciente contaminación orgánica o de que existen procesos

reductivos predominantes (Roldán, 2003). Las fuentes principales de nitrógeno en el agua

son la contaminación orgánica y la agricultura. Cuando existe un exceso de nitrógeno, se

desarrolla un proceso de eutrofización provocando un alto crecimiento de algas y plantas

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acuáticas. Debido a todo esto, el ecosistema es el que sufre las consecuencias ya que se

reduce la diversidad de especies al tener una menor fuente de oxígeno.

Los nitratos y la OMS (Organización Mundial de la Salud)

En los estándares europeos para el agua potable, segunda edición, publicada por la OMS

después de la convención de Génova en 1970, encontramos lo siguiente:

Constituyentes del agua que, si presentes en cantidades excesivas, pueden dar lugar a

problemas:

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1

Sustancia Naturaleza del problema

que puede aparecer

Nivel aproximado por

encima del cual pueden

aparecer problemas

Nitrato (como NO3) Peligro de

metahemoglobinemia

infantil si el agua es

consumida por niños

pequeños.

- Recomendado: menos de

50 mg/l.

- Aceptable: de 50 a 100

mg/l.

- No recomendado:

más de 100 mg/l.

Cuadro 2. Problemas del nitrato en exceso.Fuente: Lenntech (2008)

3.8 Análisis microbiológicos

Los ecosistemas acuáticos mantienen una gran diversidad de organismos, incluso mayor a

los terrestres. Los impactos como la contaminación inducen a cambios en la estructura de

las comunidades, la función biológica de los sistemas acuáticos y al propio organismo,

afectando su ciclo de vida, crecimiento y su condición reproductiva (Bartram y Ballance,

1996).

3.8.1 Coliformes totales y fecales

Los coliformes fecales se denominan termo tolerantes por su capacidad de soportar

temperaturas más elevadas. Esta denominación está ganando más relevancia actualmente,

pues sería una forma más apropiada de definir este subgrupo que se diferencia de los

coliformes totales por la característica de crecer a una temperatura superior. La capacidad

de reproducción de los coliformes fecales fuera del intestino de los animales

homeotérmicos es favorecida por la existencia de condiciones adecuadas de materia

orgánica, pH, humedad, etc. (Páez, 2007).

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3.9 Bioindicadores

Los organismos que habitan en los ríos pueden ser utilizados como indicadores de calidad

de agua, debido a que presentan diferentes rangos de tolerancia a la contaminación de su

habitad (EARTH 2007) el grupo más utilizado es el de los macroinvertebrados bentónicos.

La ventaja de utilizar a loa macroinvertebrados es que, en principio, no es necesario realizar

identificaciones, a nivel de especie, para aplicar los índices, sino que has realizar el

reconocimiento de grupos taxonómicos más sencillos. Normalmente se identifican a nivel

de familias, por lo cual solo se necesitan, como mucho una lupa de campo y una guía de

macroinvertebrados.

La mayor parte de los investigadores señalan que dentro de los faunísticos que son

considerados como bioindicadores de la calidad ambiental, los macroinvertebrados son los

mejores bioindicadores de la calidad del agua (Arenas, 1993, Barbour et al., 1995,

Figueroa, 1999, Alonso et al, 2002, Fenoglio et al., 2002, Hynea y Maher, 2003, Caín et al.,

2004, Leiva, 2004 Alonso y Camargo, 2005). Los macroinvertebrados bentónicos se

encuentran en todo tipo de ambiente acuático de agua dulce, como ríos o lagunas, donde

son importantes para el monitoreo de este ecosistema acuático en particular (cummning y

Klug, 1979).

3.9.1 Macroinvertebrados

Los macroinvertebrados son los invertebrados de un tamaño relativamente grande (visibles

al ojo humano), no muy inferiores a 0,5 mm pero habitualmente mayores de 3 mm.

Comprenden principalmente artrópodos (insectos, arácnidos, y crustáceos) y dentro de esto

denominan los insectos (en especial sus formas larvarias); los macroinvertebrados son el

grupo dominante en los ríos y también se encuentran en el litoral y fondos de ríos de lagos

y humedales.

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1

Los invertebrados bentónicos ( especialmente los macroinvertebrados )son uno de los

grupos biológicos más ampliamente usados como indicadores de calidad de agua .Esto se

debe a que integran mucha de las cualidades que se esperan de un indicador .Entre estas

destacan su extensa diversidad y que estén representados en diferentes taxones con

requerimientos ecológicos diferentes relacionado con las características hidromorfologicas

(velocidad del agua ,sustrato),fisicoquímica y biológicas del medio acuático.

3.9.2 Ventajas del uso de macroinvertebrados acuáticos

Según Roldán (2003) las razones por las cuales se consideran los macroinvertebrados como los

mejores indicadores de calidad de agua son las siguientes:

1. Son abundantes, de amplia distribución y relativamente fáciles de recolectar.

2. Son sedentarios en su mayoría, por tanto, reflejan las condiciones locales.

3. Relativamente fáciles de identificar, si se comparan con otros grupos, como las bacterias y

virus entre otros

4. Presentan los efectos de las variaciones ambientales de corto tiempo

5. Proporcionan información para integrar efectos acumulativos

6. Poseen ciclos de vida largos

7. Son apreciables a simple vista

8. Se pueden cultivar en el laboratorio

9. Responden rápidamente a los tensores ambientales

10. Varían poco genéticamente

3.10 Macroinvertebrados más comunes

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3.10.1 Trichoptera

Viven en aguas corrientes, limpias y oxigenadas, debajo de piedras, troncos y material

vegetal. Las larvas (caddisfly larvae) viven en el fondo o laderas de los ríos o asociadas a

macrófitas semisumergidas adheridos a vegetación flotante o enraizada (Mccafferty 1981,

Roldán 1992, 1996; Alba Tercedor 1996).

Los tricópteros son insectos holometábolos (metamorfosis completa, identificándose

claramente su etapa de huevo, la de larva, seguido por la pulpa y finalmente el adulto).

3.10.2 Ephemeroptera

estos organismos poseen ciertas características que los hacen importantes como indicadores

ecológicos de la calidad del hábitat: presentan una dispersión limitada, quizás porque los

adultos son de vida corta, poca capacidad para volar, y las ninfas son de hábitat acuáticos a

los cuales están relacionados debido a que permanecen adheridas a rocas, hojarasca o

sumergidas en el lecho arenoso o lodoso de los cuerpos de agua, por lo tanto si hay

alteración en el medio que los rodea, toda actividad es alterada (Zúniga y Rojas, 1995).

En general las ninfas habitan en aguas no contaminadas y bien oxigenadas (Domínguez et

al, 1992).

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3.10.3 Coleóptera.

Comprende el mayor orden de insectos en diversidad con alrededores de 300,000 especies

y con aproximadamente 5,000 especies acuáticas. Además los coleópteros ocupan un

amplio espectro de hábitats acuáticos, incluyendo sistemas de aguas frías, de corrientes

rápidas, aguas salobres, aguas estancadas de estuarios y ciénagas, y costas rocosas (merrit y

cummins, 1996).

La mayoría de los coleópteros acuáticos viven en aguas continentales lóticas y lénticas,

representadas en ríos, quebradas, riachuelos, charcas, lagunas, aguas temporales, embalses

y represas. En las zonas lóticas los sustratos más representativos son troncos y hojas en

descomposición, grava, piedras, arenas. Las zonas más abundantes en estos organismos son

las aguas someras en donde la velocidad de la corriente no es fuerte, aguas limpias, con

concentraciones de oxigeno altas y temperaturas medias (Rolda, 1998).

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3.10.4 Odonata.

Los Odonata viven en pozos, pantanos, márgenes de lagos y corrientes lentas y poco

profundas, por lo regular, rodeados de abundante vegetación acuática sumergida o

emergente. Viven en aguas limpias o ligeramente eutrofizadas (Roldán, 1988).

3.10.5 Plecoptera.

Las ninfas de los Plecóptera viven en aguas rápidas, bien oxigenadas, debajo de piedras,

troncos, ramas y hojas. Se ha observado en ciertos casos que son especialmente abundantes

en riachuelos con fondo pedregoso, de corrientes rápidas y muy limpias situadas alrededor

de los 2000m de altura. Son, por tanto, indicadores de aguas muy limpias y oligotróficas

3.11 Índice de diversidad

( Roldán, 1988).

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La diversidad de Shannon-Weaver toma en cuenta tres componentes: la riqueza de especies,

su abundancia y la equitabilidad (Broker et al, 1998). Aunque el uso de los índices de

diversidad como método de bioindicación ha perdido importancia en las últimas décadas,

debido a su incapacidad para diferenciar las interacciones biológicas y taxonómicas que

existen entre las especies (Segnini, 2003), estos son utilizados puesto que aún no existen

otros índices que los reemplacen.

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IV MATERIALES Y MÉTODO

4.1 Materiales

Cámara, libreta, lápiz, GPS, frascos esterilizados, computadora, herramientas de Sistema de

Información Geográfica, guantes de látex, hielera, formatos de recolección de información,

bolsas estériles, alcohol al 50%, lupa, red de malla de 20 cm.

4.2 Descripción del área

La investigación se llevó a cabo en el municipio de Morocelí, El Paraíso en la micro-cuenca

del rio Neteapa carretera hacia Danlí, El Paraíso. El municipio de Morocelí se encuentra en

86º52`05`` Longitud oeste; y 14º 07`20`` la región sur oriental del país a unos 50 Km de la

ciudad de Danlí y unos 55 Km de Tegucigalpa. Latitud norte. A una altura aproximada de

611 msnm.

Figura 1. Mapa de área de estudio.

4.3 Diagnóstico de calidad de agua.

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4.3.1 Selección de los puntos de muestreo

Los puntos de muestreo se identificaron en conjunto con el personal encargado de las juntas

de agua para una mejor coordinación, se recorrió la microcuenca y se ubicaron cinco puntos

de muestreo distribuidos en toda el área que se consideraron importantes por ser las obras

de captación de las comunidades. Los puntos de muestreo número dos (Limones #1) y

Numero tres (Limones #2) el agua no es captada del caudal del rio son vertientes que son

independiente.

4.3.2 Parámetros medidos

Los parámetros que se determinaron están divididos entre físico, químicos, bacteriológicos

y metales pesados las cuales fueron: pH, dureza, Oxígeno Disuelto(OD), Nitríto(NO2),

Nitrato(NO3), Coliformes Totales, Cianuro(CN), Plomo(Pb), Cadmio(Cd), Mercurio(Hg),

Magnesio(Mg) y Hierro(Fe) estos análisis se llevaron a la ciudad de Tegucigalpa, Francisco

Morazán en los laboratorios de Servicio Autónomo Nacional de Acueductos y

Alcantarillado (SANAA) y laboratorio de análisis y residuos (LANAR) en el primer

muestreo realizado, en el segundo muestreo solamente se llevó a cabo en laboratorios

laboratorios de análisis y residuos (LANAR).

4.3.3 Muestreo

Las muestras fueron tomadas en horas de la mañana, en los 5 diferentes puntos de muestreo

que se plantearon en los recipientes debidamente esterilizados y rotulados.

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Figura 2. Ubicación de puntos de muestreo.

Se realizaron análisis de metales pesados los cuales sólo se analizó en el primer muestreo

ya que no hay mucha variación en los resultados por el intervalo de tiempo en el que se

tomaron las muestras porque es un periodo de tiempo corto de 21 días.

4.3.4 Etiquetaje

Se etiqueto cada muestra colectada con el formato de recolección de información que se

elaboró donde se identificó: el punto de muestreo, el tipo de muestra, lugar de colección,

fecha y hora.

4.3.5 Formatos para recolección de información

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1

Se elaboró un formato para recolección de información previo a tomar las muestras con el

objetivo de tener un mejor control sobre las muestras en este formato se describió el lugar

de colección, el punto de muestreo, la hora y la fecha de toma de la muestra, tipo de

análisis.

Cuadro 3. Problemas del nitrato en exceso.

Descripción Datos

Lugar de colección

Punto de muestreo

Hora de la toma de la muestra

Fecha de toma de la muestra

Tipo de análisis.

4.3.6 Recolección, conservación y transporte de la muestra.

Se tomaron las muestras sin ser expuestas al sol o a la luz directamente con el fin de reducir

sus niveles de temperatura para detener sus procesos y reacciones que las muestras de agua

puedan producir y así mismo su conservación hasta el momento que fueron entregados al

laboratorio. Para lograr esto se hizo uso de una hielera para transportar las muestras.

4.4 Monitoreo de macroinvertebrados Bentónicos.

4.4.1 Método de Recolección de Macroinvertebrados.

Se realizó en cinco sitios del río en donde se tomaron las muestras de agua, usando una red

circular de 20 cm de diámetro para poder extraerlos del sedimento y hojarasca, todos los

organismos visibles recolectados se depositaron en un balde y se trasladaron hasta un lugar

seguro luego se hiso la recolección por red y se depositaron en frascos estériles con alcohol

al 50% y posteriormente se conservaron hasta ser identificados.

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4.4.2 Identificación de Macroinvertebrados.

Se llevó a cabo haciendo uso de una lupa, placas Petri y un manual de taxonomía para

identificar y clasificarlos por familias esto se hizo en cada muestreo realizado.

4.4.3 Cálculo del índice Ephemeroptera, Plecóptera y Trichoptera (EPT)

El análisis EPT se realizó mediante la utilización de estos tres grupos de macro

invertebrados (Ephemeroptera, Plecóptera y Trichoptera) que son indicadores de buena

calidad de agua debido a su alta sensibilidad a la contaminación. Se obtiene contando el

número de taxa de estos órdenes presentes en la muestra. El valor obtenido se compara en

un cuadro de calidad de agua (Klemm et al, 1990)

Cuadro 4. Problemas del nitrato en exceso.

Índice EPT Calidad de Agua

>10 Sin impacto

6-10 Levemente impactado

2-5 Moderadamente impactado

0-1 Severamente impactado

E + P + T=

Número Total de Macroinvertebrados

Porcentaje

× 100 = % EPT

4.4 4 Datos de campo

Para obtener la ubicación de los puntos de muestreo, posibles zonas de contaminación y uso

de suelo en la microcuenca se contactaron personas de las juntas de aguas que conozcan la

microcuenca para generar datos más confiables.

Se tomó la información mediante herramientas de sistemas de posicionamiento global

(GPS) para cargarlos a la computadora y generar información cartográfica.

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1

4.5 Identificación zonas de contaminación y usos de suelo

4.5.1 Posibles zonas de contaminación y usos de suelo

Las posibles zonas de contaminación y usos de suelo se georreferenciaron haciendo

recorridos por la microcuenca para tener una base de datos que con esto se generó material

cartográfico con el objetivo de tener identificado los mismos.

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2

V RESULTADOS Y DISCUSIÓN

5.1 Diagnosticar mediante análisis de laboratorio el estado de la calidad del agua de

cinco puntos de muestreo.

Análisis de calidad de agua en la microcuenca del rio Neteapa en Morocelí, El Paraíso

durante temporada seca en 5 diferentes puntos distribuidos en la microcuenca

específicamente en cada captación de agua de cada comunidad denominado el punto de

muestreo numero 1 como Morocelí, punto numero 2 Limones #1, punto numero 3 Limones

#2, punto numero 4 Hoya grande #1 y el punto numero 5 Hoya grande #2 realizando 2

muestreos con un intervalo de 21 días.

En el primer muestreo únicamente la estación de muestreo numero 1 (Morocelí), y la

estación de muestreo 5 (Hoya Grande #2) se realizaron en los laboratorios del Sistema

Autónomo Nacional de Acueductos y Alcantarillados (SANAA) por alianza entre la

asociación de juntas de agua encargada de la calidad de agua y conservación de la

microcuenca AJANE (asociación de juntas de agua para la protección del rio Neteapa) y el

Sistema Autónomo Nacional de Acueductos y Alcantarillados (SANAA). Las demás

estaciones de muestreo restantes fueron analizadas en los laboratorios de análisis y residuos

(LANAR) por parte de alianza entre AJANE y ICF-CLIFOR cooperación alemana.

5.1.1 Coliformes Totales presentes en el primer y segundo muestreo.

Muestreo Tipo de

análisis

Morocelí y Limones, #1 Limones, #2 Hoya

Grande #1

Hoya

Grande #2

Primer

Muestreo

Coliformes

Totales

240

UFC/100m

l

75

NMP/100m

l

75

NMP/100m

l

75

NMP/100m

l

300

UFC/100ml

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1

Segundo

Muestreo

Coliformes

totales

0 NMP/100

ml

<1.8

NMP/100

ml

O NMP/100

ml

0 NMP/100

ml

920

NMP/100

ml

Cuadro 5. Porcentajes de coliformes totales en los dos muestreos.

5.1.2 Coliformes termotolerantes presentes en el primer y segundo Muestreo.

Muestreo. Tipo de

análisis

Morocelí

y

Limones, #1 Limones, #2 Hoya

Grande

#1

Hoya

Grande #2

Primer

Muestreo

Coliformes

termotolerante

s

20

UFC/100

ml

<3

NMP/100m

l

75

NMP/100m

l

75

NMP/ml

<20

UFC/100ml

Segundo

Muestreo

Coliformes

termotolerante

s

0

NMP/100

ml

7.8

NMP/100

ml

0 NMP/100

ml

0

NMP/100

ml

920

NMP/100

ml

Cuadro 6. Porcentajes de coliformes termotolerantes en los dos muestreos.

5.1.3 Presencia de coliformes totales y termotolerantes en los diferentes puntos de

muestreo

Se muestran la cantidad de coliformes totales y termotolerantes en las diferentes estaciones

de muestreo y en ambos muestreos realizados. Analizando las muestras podemos decir que

el aumento en algunos puntos se debe a la presencia de viviendas cerca de la obra de

captación como es en el caso de punto de muestreo de Morocelí para el primer muestreo de

coliformes totales que se obtuvo un total de 240 NMP/100 ml y Hoya grande #2 para

coliformes totales en el primer muestreo se obtuvo 300 NMP/100 ml y hay una variación

importante ya que hubo un incremento sustancial de 920 NMP/100 ml, para coliformes

termotolerantes el primer muestreo el valor obtenido fue de <20 NMP/100 ml teniendo una

variación en el segundo muestreo de 920 NMP/100 ml. Por otra parte en algunos puntos de

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2

muestreo se ven reducidos e inexistentes la cantidad de coliformes totales por ser vertientes

que son captados y no tienen un recorrido en la superficie como en los casos de los puntos

de Limones #1, Limones #2.

Como pudimos observar algunos de los valores obtenidos en los análisis realizados en los

laboratorios de análisis y residuos (LANAR) no cumple con la norma técnica para la

calidad de agua potable de 1995, ya que esta expresa que el valor máximo admisible es de 0

NMP/100ml por lo que esto genera un riesgo para la salud.

5.1.4 Potencial de Hidrogeno (pH).

Figura 3. . pH en los diferentes puntos de muestreo.

En los resultados obtenidos se puede decir que no hay variación de suma importancia en las

estaciones de muestreo y que los valores expresados se encuentran dentro de la norma

técnica nacional de agua potable donde los valores recomendados se encuentran entre 6.5 –

8.5 por lo que es un agua con un pH óptimo para uso doméstico.

7.29

6.97

6.58

7.337.45

7.05 7.08 7.11 7.1

6.54

6

6.2

6.4

6.6

6.8

7

7.2

7.4

7.6

Morocelí Limones #1 Limones #2 Hoya Grande#1

Hoya Grande#2

6.5

-8.5

Puntos de Muestreo

Primer muestreo Segundo muestreo

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1

Es una medida de la concentración de iones hidrógeno. También es una medida de la

naturaleza ácida o alcalina de la solución acuosa que puede afectar a los usos específicos

del agua. La mayoría de aguas naturales tienen un pH entre 6 y 8.

5.1.5 Nitrito.

Se describe el valor de Nitríto presentes en el agua en los diferentes puntos de muestreo en

donde se realizaron las muestras para determinar la calidad de agua de la microcuenca del

rio Neteapa y se observa que los valores obtenidos están dentro de la norma técnica de

calidad de agua de 1995 donde el valor máximo admisible es 1 mg/L.

Figura 4. Presencia de nitritos en las estaciones de muestreo.

Los valores más altos obtenidos se dieron en el primer muestreo en el punto número 1

llamado Morocelí y en punto número 5 llamado Hoya grande #2. Por otra parte en el

segundo muestreo en el punto número 2 llamado Limones 1, punto número 2 llamado

Limones # 2 y punto número 5 llamado Hoya grande #2 no se determinaron valores por esa

razón no se describen en la Figura.

0.32

0.033

0.09

0.3

0.06 0.06 0.06

0

0.05

0.1

0.15

0.2

0.25

0.3

0.35

Morocelí Limones #1 Limones #2 Hoya Grande#1

Hoya Grande#2

mg/

L

Puntos de Muestreo

Primer muestreo Segundo Muestreo

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2

La presencia de nitritos en el agua es un indicativo de contaminación de carácter fecal

reciente (catalán L. et al, 1971; Catalán A., 1981; Matcalf y Eddy, 1998). En aguas

superficiales, bien oxigenadas, el nivel del nitrito no suele superar 0.1 mg/l (atumm y

Morgan, 1981; Marín, 1995). Así mismo, cabe resaltar que el nitrito se haya en un estado

de oxidación intermedio entre el amoniaco y el nitrato.

5.1.6 Nitrato.

Según los resultados obtenidos para este parámetro nos indica que existe una variación

notable en los valores obtenidos en la primer estación de muestreo (Morocelí ) y la quinta

estación de muestreo (Hoya grande #2) entre el primer muestreo y el segundo, en esos

resultados fueron obtenidos por el laboratorio del SANAA de Tegucigalpa.

Figura 5. Resultados de análisis de nitratos en puntos de muestreo.

Por otra parte en las estaciones de muestreo restantes se mantiene unos resultados similares

entre ellos y esos datos se obtuvieron en los laboratorios de análisis y residuos (LANAR) de

Tegucigalpa. Todos los valores que se obtuvieron en ambos laboratorios se encuentran

dentro de la norma técnica de calidad de agua.

0.01

8.11

5.478

3.67

0.02

3.963.08

3.83 3.83

2.47

0

1

2

3

4

5

6

7

8

9

Morocelí Limones #1 Limones #2 Hoya Grande#1

Hoya Grande#2

mg/

L

Puntos de muestreo

Primer Muestreo Segundo Muestreo

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1

El nitrato es un compuesto inorgánico compuesto por un átomo de nitrógeno (N) y tres

átomos de oxígeno (O); el símbolo químico del nitrato es NO3. El nitrato no es

normalmente peligroso para la salud a menos que sea reducido a nitrito (NO2).

5.1.7 Dureza

Según la norma técnica nacional de 1995 el valor recomendado para Honduras es de 400

ml/L CaCO3.

Figura 6. Dureza total en puntos de muestreo.

Según los resultados obtenidos para el parámetro de dureza total en las diferentes estaciones

de muestro podemos decir que hay una variación en cuanto a los resultados obtenidos para

el primer y segundo muestreo realizados en cada una de las estaciones pero siempre estas se

encuentra dentro de la norma técnica de agua potable.

Lo valore expresados en el primer muestreo hay una variación en cuanto a la cantidad de

miligramos por litros y es considerable esa variación por la cantidad tan baja que encontró

39.41

100

150

180

6.66

100

50

100 100 100

020406080

100120140160180200

Morocelí Limones #1 Limones #2 Hoya Grande#1

Hoya Grande#2

mg/

L C

aCO

Puntos de Muestreo

Primer Muestreo Segundo Muestreo

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2

en la estación de muestreo número 5 (Hoya grande #2), al igual también se encontraron en

el primer muestreo los porcentajes más altos siendo en la tercera estación de muestreo

(Limones #2) con una cantidad de 150 mg/L CaCO3, y en la cuarta estación de muestreo

(Hoya grande #1) con una cantidad de 180 mg/L CaCO3.

Para el segundo muestreo se obtuvieron resultados iguales para toda las estaciones de

muestreo excepto la estación de muestreo número 2 (limones #1) que se obtuvo el valor

más bajo siendo de 50 mg/L CaCO3, la norma técnica para agua potable expresa que el

valor recomendado de 400 mg/L CaCO3.

Según la OMS (2006). La dureza del agua se debe al contenido de calcio y, en menor

medida, de magnesio disueltos. Suele expresarse como cantidad equivalente de carbonato

cálcico. Las aguas blandas con una dureza menor que 100 mg/l aproximadamente tienen

una capacidad de amortiguación baja y pueden ser más corrosivas para las tuberías.

Antecedentes de la determinación del valor de referencia. Se estableció un valor de

referencia de 500 mg/l (como carbonato cálcico) para la dureza, basado en consideraciones

sobre el sabor y el uso doméstico. En las Guías de 1993 no se propuso ningún valor de

referencia basado en efectos sobre la salud para la dureza aunque, si ésta se encontraba por

encima de 200 mg/l aproximadamente, podía provocar la formación de incrustaciones en el

sistema de distribución.

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1

5.1.8 Oxígeno Disuelto.

Figura 7. Resultados de análisis oxígeno disuelto

Según los resultados obtenidos para el primer muestreo expresa que los valores

recomendados deben estar de 6-8 ml/L. la primer estación de muestreo (Morocelí) y la

cuarta estación de muestreo (Limones #1) se expresa que no hay presencia de oxígeno

disuelto obtuvieron un resultado de 0 mg/L por lo que esto es perjudicial ya que los bajos

niveles de oxigene vienen a afectar a la diversidad acuática. Y los demás puntos de

muestreo obtuvieron valores por encima del valor máximo admisible teniendo el valor más

alto Hoya grande #2 con un 9.3 mg/L y Limones #1 con 9.1 mg/L.

Para el segundo muestreo los primeros cuatro puntos de muestreo se obtuvieron resultados

dentro de la norma técnica de calidad de agua ya que se mantienen de 7.5 mg/L a 7.8 mg/L

y para el quinto punto de muestreo se obtuvo el valor más alto y esta se encuentra fuera de

la norma técnica con un total de 8.2 mg/L .

Altos niveles sostienen una mayor diversidad de especies y un ecosistema saludable por

otra parte los niveles bajos pueden debilitar o causar la muerte a peces y a la vida acuática

(Gonzales Toro, C. 2001).

9.1 8.9 9.3

7.8 7.5 7.5 7.8 8.2

0123456789

10

Morocelí Limones #1 Limones #2 Hoya Grande#1

Hoya Grande#2

mg/

L

Puntos de Muestreo

Primer Muestreo Segundo Muestreo

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2

5.1.9 Magnesio.

Figura 8. Resultados de análisis magnesio

Según resultado obtenidos para el parámetro de magnesio que fue analizado únicamente

una vez se comprueba presencia del mismo con unos valores para las diferentes estaciones

de muestreo dentro de la norma técnica nacional siendo el valor máximo admisible de 50

mg/L.

En las estaciones de muestreo se obtuvo el valor más alto en el punto numero 1 (Morocelí)

con un valor de 3.91 mg/L y los valores más bajos en el segundo punto de muestreo

(Limones #1) con 0.0359 mg/L y el tercer punto de muestreo (Limones #2) con 0.0446

mg/L estos siendo valores bajos pero siempre dentro de los valores recomendados por la

norma técnica de 1995.

5.1.10 Parámetros analizados con valores no determinados y resultados de menor

valor.

Cuadro 7. Porcentajes de coliformes termotolerantes en los dos muestreos.

3.91

0.0359 0.04460.3984

1.21

0

0.5

1

1.5

2

2.5

3

3.5

4

4.5

Morocelí Limones #1 Limones #2 Hoya Grande#1

Hoya Grande#2

mg/

L

Puntos de muestreo

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1

Tipo de análisis Hoya grande #1 Limones #1 Limones #2

Mercurio N.D. N.D N.D.

Hierro <0.0056 mg/L <0.0056 mg/L 0.0335 mg/L

Plomo <0.0045 mg/L <0.0045 mg/L <0.0045 mg/L

Cadmio N.D. N.D. N.D.

5.2 Determinar la presencia de macro-invertebrados bentónicos en la microcuenca.

5.2.1 Número total de individuos de macroinvertebrados bentónicos

Figura 9. Número de individuos encontrados en total en cada sitio de muestreo.

En la figura 9 se observan los dos muestreos realizados se obtuvieron un total de

individuos de 437 perteneciente a 11 familias las cuales fueron encontradas en las

estaciones de muestreos las mayas recolectores fueron trasladadas hacia un lugar seguro

donde se contabilizaron los individuos, y se conservaron en frascos con alcohol al 50% para

evitar que se perdieran las muestras. Al tenerlas en los frascos debidamente identificados

por estación de muestreo se trasladaron a ser la identificación por familia y orden.

5.2.2 Número de individuos por cada muestreo

61 6049

144

123

0

20

40

60

80

100

120

140

160

Moroceli Limones #1 Limones #2 Hoya grande#1

Hoya grande #2

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2

Figura 10. Número de individuos por muestreos.

El número total de individuos en las diferentes estaciones de muestreo fue muy variado

obteniendo los valores más altos en las estaciones número cuatro (Hoyan grande #1) con un

total de 66 individuos para el primer muestreo y 78 para el segundo muestreo, para la

estación número 5 (Hoya Grande #2) un total de 54 individuos para el primer muestreo y 89

para el segundo muestreo. Las demás estaciones de muestreo se obtuvieron resultados

menores para la estación de Morocelí se obtuvo 33 individuos para el primer muestreo y 28

para el segundo, para limones #1 29 individuos para el primer muestreo y 31 para el

segundo, en Limones #2 se obtuvieron 22 individuos para el primer muestreo y 27 para el

segundo.

3329

22

66

54

2831

27

78

69

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

1 2 3 4 5primer muestreo segundo muestreo

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1

5.2.3 Abundancia de familia

Figura 11. Abundancia de familias

Se encontraron 10 diferentes familias de las cuales encontramos cierta cantidad de

individuos para cada una de ella de las cuales las que hay mayor número de individuos es

ephemeroptera (Heptageniidae) con un numero de 91 individuos entre los 2 muestreos

realizados y la que obtuvo el menor número de individuos fue la Dictera (Tipulidae) con 4

individuos las familias que tienen mas abundancia de individuos es Odonata (Libellulidae)

con 65 individuos, Coleoptera (neopetaliildae) con 39 individuos, Oligochaeta

(Lumbricidae) con 48 individuos, Hirudinae (Glossiphoniidae) con 68 individuos,

Plecoptera (Perlidae) con 79 individuos y Diptera (Chiromidae) con 80 individuos.

5.2.4 EPT (Ephemeroptera, Plecoptera, Trichoptera)

Los valores del EPT determinados variaron de

Valores del EPT (Ephemeroptera, Plecoptera y Trichoptera) y clasificación de la calidad del

agua según este índice presente en cada uno de los sitios muestreados de la microcuenca del

rio Neteapa, Honduras.

0 50 100

Turbellaria planarians (Planariidae)

Melagoptera (Corydalidae)

Dictera (Tipulidae)

Trichoptera (Hydropsychidae)

Odonata (Libellulidae)

Coleoptera (Neopetaliildae)

Oligochaeta (Lumbricidae)

Hirudinae (Glossiphoniidae)

Plecoptera (Perlidae)

Diptera (Chiromidae)

Ephemeroptera (Heptageniidae)

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2

Sitios de Muestreo EPT Condición

Morocelí 4 moderadamente impactado

Limone #1 4 moderadamente impactado

Limones #2 8 levemente impactado

Hoya Grande #2 13 Sin impacto

Hoya Grande #2 12…………………………. sin impacto

EPT: Ephemeroptera, Plecoptera, Trichoptera,

E + P + T=

Número Total de Macroinvertebrados

Porcentaje

× 100 = % EPT

Cuadro 8. Índice de EPT

5.3 Identificar posibles zonas de contaminación y uso de suelos en áreas cercanas a la

las micro-cuencas.

5.3.1Focos de contaminación.

En los recorridos hechos en la microcuenca en conjunto con personal de la asociación de

juntas de agua identificamos focos de contaminación a los afluentes del rio Neteapa. Como

las descargas directas de las despulpadoras de café que se encuentran en la parte alta de la

microcuenca como se describe en el mapa, las parcelas productoras de café que de igual

forma se encuentran en la parte alta se identificaron las parcelas de café por el uso de

pesticidas y fertilizantes sintéticos ya que este es el método de producción predominante en

la zona, también viviendas muy cerca de los afluentes y algunas no tienen letrinas por lo

que es un contaminante permanente y esto ve afectada la calidad del agua.

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1

Figura 12. Focos de contaminación encontrados en la microcuenca del rio Neteapa.

5.3.2 Uso de suelo.

Dentro de la microcuenca se están viendo muchas alteraciones principalmente en la parte

alta en las zonas de recarga de las fuentes de agua que abastecen a las comunidades de

Morocelí, El suyate, Limones, Hoya Grande, Valle Arriba, Las Champas estas son las

principales comunidades que se benefician de esta microcuenca y se estan viendo afectadas

por el cambio de uso de suelo que se hizo donde los habitantes de las misma comunidades

deforestaron las areas naturales y las convirtieron en parcelas productoras de café como se

puede observar en el mapa siendo esto una cantidad de 406 ha aproximadamente aun la

mayor parte sigue siendo areas forestales, tambien tenemos areas ocupadas por 2

comunidades que se encuentran dentro de la microcuenca que son Hoya grande y

Lomanillos.

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2

Figura 13. Mapa de usos de suelos actual en la microcuenca del rio Neteapa.

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1

VI CONCLUSIONES

Los parámetros fisicoquímicos no tuvieron resultados relevantes lo que quiere decir que la

fuente de agua no tiene contaminación.

Los parámetros bacteriológicos tuvieron resultados levantes lo que quiere decir que la

fuente de agua tiene contaminación.

La microcuenca presenta problemas de EPT, siendo los puntos de muestreo de la zona

media y baja de la microcuenca los más afectadas, puesto que se encontraron rangos de leve

a moderado impacto.

El uso de suelo que ha sido modificado por zonas productoras de café afecta ya que se

encuentra en la zona de recarga y esto produce un impacto severo a la calidad del agua y al

ambiente por uso de agroquímicos y descarga de aguas mieles.

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2

VII RECOMENDACIONES

Dar continuidad a la investigación tanto para los parámetros físico, químicos,

bacteriológicos y metales pesados para conocer como varían en determinadas estaciones del

año para asi poder hacer frente y poder brindar una buena calidad de agua a las

comunidades.

Realizar planes de acción para el control de descargas de las aguas mieles al rio de las

despulpadoras de café que se encuentran en el área y brindar ayuda para un mejor manejo

de las aguas mieles.

Trabajar con organizaciones que se enfoquen en la conservación del ambiente y así poder

generar proyectos para las familias que se encuentran viviendo en la zona alta área de

recarga de la microcuenca y no cuentan con letrinas en sus casas.

Crear un plan de uso de suelo para el adecuado uso de este y evitar que se siga deforestando

las áreas forestales y hacer un plan de ordenamiento para evitar en las áreas productoras de

agua.

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Anexos

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Resultados Obtenidos en el Primer Muestreo realizado.

Anexo 1. Concentraciones de contaminantes en el primer muestreo.

No

.

Tipo de análisis Morocelí y

El suyate

Limones,

Champas y

Valle arriba #1

Limones,

Champas y

Valle arriba #2

Hoya Grande

#1

Hoya Grande

#2

1 Coliformes

Totales

240

UFC/100ml

75 NMP/100ml 75 NMP/100ml 75

NMP/100ml

300

UFC/100ml

2 Coliformes

Fecales

20 UFC/100

ml

<3 NMP/100ml 75 NMP/100ml 75 NMP/ml <20

UFC/100ml

3 PH 7.29 mg/L 6.97 6.58 7.33 7.45 mg/L

4 Nitrito 0.32 mg/L 0.033 mg/L N.D 0.09 mg/L 0.30 mg/L

5 Nitrato 0.01 mg/L 8.11 mg/L 5.478 mg/L 3.67 mg/L 0.02 mg/L

6 Cianuro <0.07 mg/L <0.07 mg/L <0.07 mg/L

7 Dureza Total 39.41 mg/L 100 mg/L

CaCO3

150 mg/L

CaCO3

180 mg/L

CaCO3

6.66 mg/L

8 Oxígeno Disuelto 9.1 mg/L 8.9 mg/L 9.3 mg/L

9 Mercurio N.D. N.D N.D.

10 Plomo <0.0045 mg/L <0.0045 mg/L <0.0045 mg/L

11 Cadmio N.D. N.D. N.D.

12 Magnesio 3.91 mg/L 0.0359 mg/L 0.0446 mg/L 0.3984 mg/L 3.91 mg/L

13 Hierro <0.0056 mg/L 0.0335 mg/L <0.0056 mg/L

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Resultados obtenidos en el segundo muestreo.

Anexo 2. Concentraciones de contaminantes para el segundo muestreo

No. Tipo de

análisis

Morocelí y

El suyate

Limones,

Champas y

Valle arriba

#1

Limones,

Champas

y Valle

arriba #2

Limones,

Champas y

Valle arriba

#3

Hoya Grande

#1

Hoya Grande

#2

1 Coliformes

Totales

0 NMP/100

ml

<1.8

NMP/100 ml

0

NMP/100

ml

33

NMP/100

ml

0 NMP/100

ml

920 NMP/100

ml

2 Coliformes

Fecales

0 NMP/100

ml

7.8 NMP/100

ml

0

NMP/100

ml

33

NMP/100

ml

0 NMP/100

ml

920 NMP/100

ml

3 PH 7.05 7.08 7.11 7.05 7.10 6.54

4 Nitrito 0.06 mg/L N.D 0.06 mg/L N.D 0.06 mg/L N.D

5 Nitrato 3.96 mg/L 3.08 mg/L 3.83 mg/L 2.64 mg/L 3.83 mg/L 2.47 mg/L

6 Dureza Total 100 mg/L

CaCo3

50 mg/L

CaCo3

100 mg/L

CaCo3

100 mg/L

caCo3

100 mg/L

CaCo3

100 mg/L

CaCo3

7 Oxígeno

Disuelto

7.8 mg/L 7.5 mg/L 7.5 mg/L 8.3 mg/L 7.8 mg/L 8.2 mg/L

Anexo 3. Despulpadora de café.

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Anexo 4. Resultado análisis de agua

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Anexo 5. Usos de suelo

Anexo 6. Toma de muestras de ag8a.

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Anexo 7. Recoleccion de mallas para monitoreo de macroinvertebrados bentónicos.