UNIDAD ACADÉMICA DE CIENCIAS AGROPECUARIAS CARRERA...
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UNIDAD ACADÉMICA DE CIENCIAS AGROPECUARIAS
CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
MACHALA2017
MORANTE BRAVO KATHERINE LICETMÉDICA VETERINARIA ZOOTECNISTA
DETERMINACIÓN DEL ÍNDICE DE PREVALENCIA DEL TOXOPLASMAGONDII EN FELINOS EN LA CIUDAD DE SANTA ROSA
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UNIDAD ACADÉMICA DE CIENCIAS AGROPECUARIAS
CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
MACHALA2017
MORANTE BRAVO KATHERINE LICETMÉDICA VETERINARIA ZOOTECNISTA
DETERMINACIÓN DEL ÍNDICE DE PREVALENCIA DELTOXOPLASMA GONDII EN FELINOS EN LA CIUDAD DE
SANTA ROSA
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UNIDAD ACADÉMICA DE CIENCIAS AGROPECUARIAS
CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
MACHALA2017
MORANTE BRAVO KATHERINE LICETMÉDICA VETERINARIA ZOOTECNISTA
DETERMINACIÓN DEL ÍNDICE DE PREVALENCIA DEL TOXOPLASMA GONDIIEN FELINOS EN LA CIUDAD DE SANTA ROSA
MACHALA, 12 DE SEPTIEMBRE DE 2017
ALVAREZ DIAZ CARLOS ARMANDO
TRABAJO TITULACIÓNTRABAJO EXPERIMENTAL
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3
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UTMACH
UNIDAD ACADÉMICA DE CIENCIAS AGROPECUARIAS
CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTÉCNIA
TITULO:
“DETERMINACIÓN DEL ÍNDICE DE PREVALENCIA DEL
TOXOPLASMA GONDII EN FELINOS EN LA CIUDAD DE SANTA
ROSA PROVINCIA DE EL ORO”
AUTOR:
KATHERINE LICET MORANTE BRAVO.
TUTOR:
DR. CARLOS ARMANDO ALVAREZ DIAZ PhD
MACHALA – EL ORO
2017
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II
“DETERMINACIÓN DEL ÍNDICE DE PREVALENCIA DEL
TOXOPLASMA GONDII EN FELINOS EN LA CIUDAD DE SANTA
ROSA PROVINCIA DE EL ORO”
KATHERINE LICET MORANTE BRAVO.
AUTORA
C.I. 0705351708
DR. CARLOS ARMANDO ÁLVAREZ DÍAZ PhD.
TUTOR
C.I. 0706734557
Machala, 12 septiembre de 2017
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III
DEDICATORIA
Este trabajo le dedico a mi madre, Tanya Elizabeth Bravo Vilela, que siempre ha
estado conmigo brindándome su apoyo incondicional guiándome para tomar
siempre las mejores decisiones, y dejándome lecciones de vida.
A Dios, por siempre llenarme de fe, valentía para luchar hasta el fin sin importar los
miles de tropiezos que he tenido antes de llegar a esta meta.
También dedico este trabajo a mi querido padre, Tomas Clotario Bravo Castillo, que
se me adelantó y ahora está gozando del cielo; no pudo verme lograr mi sueño,
pero quiero que se sienta orgullosa de mi, y que a pesar de todos los obstáculos
que tuve, lo logre.
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IV
AGRADECIMIENTO
Agradezco a Dios por brindarme la fe, paciencia, fortaleza y salud para realizar mi
proyecto final.
A mi madre Tanya Elizabeth Bravo Vilela, a Roberto Enrique Lucio Mackenzie, por
siempre estar apoyándome, guiándome, retándome, para culminar hasta el final y
obtener mi título.
A mi querido docente, tutor, guía al Dr. Carlos Armando Álvarez Díaz PhD, quien
siempre confió en mí, y me brindó sus conocimientos para realizar mi proyecto de
titulación; al Dr. Luis Hurtado Flores MgSc y Dr. Wilson Torres Ríos MgSc por
guiarme y apoyarme en el laboratorio al momento de realizar el trabajo diagnóstico.
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V
A. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
En el cantón Santa Rosa se han reportados casos de toxoplasmosis en mujeres
embarazadas según muestran los registros del “Hospital Obstétrico Ángela Loayza
de Ollague” de los últimos dos años, de ahí la importancia de determinar el índice
de prevalencia del Toxoplasma gondii mediante el método coprológico en felinos,
principales vectores de la enfermedad, en diferentes sectores de la ciudad.
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VI
RESUMEN
La toxoplasmosis es una enfermedad infecto contagiosa zoonósica provocada por el
parasito Toxoplasma gondii, protozoario que afecta a los animales de sangre caliente en
general y a los felinos en particular de manera que estos últimos se les considera como
huéspedes naturales, y a los demás homeotermos como hospedadores intermediarios.
Como principales hospedadores, los felinos parasitados, luego de haber ingerido presas
contaminadas como roedores, aves, agua, etc., expulsan los ooquistes por medio de las
heces fecales; los humanos adquieren el toxoplasma gondii al tener contacto con las heces
fecales de los gatos contaminados o al ingerir carne cruda contaminada. El objetivo de la
presente investigación fue determinar el índice de prevalencia de Toxoplasma gondii en
felinos de la ciudad de Santa Rosa, Provincia de El Oro. La metodología contemplo la
división normal en zonas (barrios) de la ciudad de Santa Rosa, cabecera del cantón
homónimo para el muestreo de los animales. Las variables estudiadas fueron el índice de
prevalencia de la parasitosis y su relación con el sexo, raza y edad. La técnica aplicada
para el diagnóstico fue la coprológica de flotación que detecta los ooquistes presentes en
las heces fecales. Se procesaron las muestras de heces fecales de 138 animales que fueron
analizadas en el laboratorio de Parasitología de la UACA de la UTMach mediante el método
de flotación aplicando la siguiente metodología diagnóstica: se tomaron dos gramos de
cada muestra que fueron colocadas en un mortero, agregando varias gotitas de solución
salina con el objetivo de propiciar una mayor trituración con la mano del mortero y
seguidamente se le agregó 20cc de solución salina a la mezcla con las heces fecales hasta
obtener una suspensión homogénea de las mismas para verter el contenido del mortero en
un vaso de plástico, a través de un colador de tela de alambre, y luego de llenar el mismo
con la solución salina se colocó un cubre objeto en la parte superior de la muestra dejándolo
reposar por 15 a 20 minutos y tomarlo para colocarlo suavemente en un porta objeto y
proceder a su observación al microscopio con lente 10x/0.25 e iluminación buena y
amortiguada. Los resultados muestran un índice de prevalencia del 28,98% con mayor
incidencia en animales machos, mestizos, menores de 6 meses de edad y mayor incidencia
en la ciudadela Las Palmeras. Estos resultados de las variables sexo y raza se relacionan
con los animales presentes en las áreas estudiadas, es decir, participantes en el muestreo
y que predominan en la ciudad, al tiempo que la variable edad se relaciona con lo reportado
en la literatura referente a que el diagnóstico coprológico positivo solo es válido para
animales menores de 6 meses por la presencia de oosquistes. Se recomiendan como
medidas manipular higiénicamente la arena de la caja o el lugar donde defeque el felino,
desparasitar como medida de prevención por lo menos 2 veces al año, limpiar y desinfectar
el área de descanso de nuestros felinos e ingerir alimentos manipulados con higiene y bien
cocinados.
Palabras Claves: Felinos - Toxoplasma gondii – Índice de prevalencia - Santa Rosa - El
Oro
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VII
SUMMARY
Toxoplasmosis is a contagious infectious zoonosis disease provoked by the parasite Toxoplasma gondii, protozoan that affects animals of hot blood in general and felines in particular so that the latter are considered as natural guests, and the other homoeothermics as intermediaries guests. As main hosts, felines parasitized, after ingesting contaminated prey such as rodents, birds, water, etc., expel the oocysts by means of fecal feces; humans acquire the disease by having contact with fecal feces from contaminated cats or by ingesting contaminated fresh meat. The objective of this research was to determine the prevalence rate of Toxoplasma gondii in felines in the city of Santa Rosa, province of El Oro. The methodology use the normal division in zones (barrios) of the Santa Rosa city, head of the homonym canton for the sampling of animals. The variables studied were the prevalence rate of parasitic diseases and their relationship with sex, race and age. The technique applied for the diagnosis was the carpological of flotation that detects the oocysts present in fecal feces. Fecal stool samples were processed from 138 animals that were analyzed in the Parasitology Laboratory of the UACA of UTMach using the method of flotation applying the following diagnostic methodology: two grams of each sample were taken that were placed in a mortar, adding several droplets of saline with the aim of propitiating a greater crushing with the hand of the mortar and then added 20cc of saline solution to the mixture with the fecal stools to obtain a homogeneous suspension of the same to pour the contents of the mortar in a plastic glass, through a sieve of wire cloth, and after filling it with the saline solution was placed a cover object at the top of the sample show by letting it stand for 15 to 20 minutes and take it to gently place it in an object holder and observe the microscope with 10 x/0.25 lens with good and damped lighting. The results show a prevalence rate of 28.98% with higher incidence in males, mice race and under 6 months of age animals and greater incidence in the Citadel Las Palmeras. These results of the variables sex and race are related to the animals present in the areas studied, that is, participants in the sampling and that predominate in the city, while the variable age is related to the reported in the literature that the diagnosis stool positive is only valid for animals less than 6 months by the presence of oocysts. It is recommended as measures to hygienically manipulate the sand of the box and the place where defecate the feline, deworming as a prevention measure at least 2 times a year, clean and disinfect the rest area of our felines and ingest food handled with hygiene and well cooked. Key Words: Felines - Toxoplasma gondii - Prevalence Index-Santa Rosa-El Oro
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VIII
ÍNDICE
I. INTRODUCCION ............................................................................................ 13
OBEJTIVOS .......................................................................................................... 14
Objetivo general: ................................................................................................ 14
Objetivos específicos ......................................................................................... 14
2. REVISIÓN LITERARIA ................................................................................... 15
2.1. DEFINICION ............................................................................................ 15
2.2. ETIOLOGIA .............................................................................................. 15
2.3. TAXONOMIA ............................................................................................ 17
2.4. MORFOLOGIA ......................................................................................... 17
2.4.1. Ooquiste y esporozoíto ...................................................................... 18
2.4.2. Taquizoíto .......................................................................................... 18
2.4.3. Bradizoíto .......................................................................................... 18
2.5. CICLO BIOLOGICO ................................................................................. 18
2.6. MEDIOS DE CONTAGIO ......................................................................... 20
2.7. PATOGENIA ............................................................................................ 21
2.8. DIAGNÓSTICO ........................................................................................ 22
2.9. TRATAMIENTO ....................................................................................... 23
2.10. EPIDEMIOLOGIA ................................................................................. 24
3. MATERIALES Y MÉTODOS ........................................................................... 26
3.1. MATERIALES .......................................................................................... 26
3.1.1. Localización Del Estudio ................................................................... 26
3.1.2. Equipos y materiales ......................................................................... 27
3.1.3. Población ........................................................................................... 27
3.1.4. Muestras ............................................................................................ 27
3.1.5. Variables a Analizar ........................................................................... 28
3.2. MÉTODO ................................................................................................. 29
3.2.1. Metodología ....................................................................................... 29
3.2.2. Método ............................................................................................... 29
3.2.3. Estadística ......................................................................................... 29
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IX
4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN ....................................................................... 30
4.1. Muestras que dieron positivas y negativas según la edad. ...................... 31
4.2. Muestras que dieron positivas y negativas según el sexo. ....................... 32
4.3. Muestras que dieron positivas y negativas según la raza. ....................... 33
5. CONCLUSIONES ........................................................................................... 35
6. RECOMENDACIONES ................................................................................... 36
7. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS ............................................................... 37
8. ANEXOS ......................................................................................................... 45
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X
ÍNDICE DE TABLAS
Tabla 1.Clasificación zoológica del toxoplasma gondii. 17
Tabla 2. Animales diagnosticados según área de procedencia 31
Tabla 3. Resultados según categoría etaria. 31
Tabla 4. Animales positivos según su sexo. 32
Tabla 5. Animales positivos según la raza. 34
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XI
INDICE DE FIGURAS
Figura 1. Estructura del toxoplasma gondii 17
Figura 2. Ciclo de vida de la toxoplasmosis. 19
Figura 3.Diferentes medios de contaminación de la toxoplasmosis 20
Figura 4.Ciclo infectivo de la toxoplasmosis en las mujeres en gestación. 25
Figura 5.Mapa del Cantón Santa Rosa 26
Figura 6. Índice de prevalencia del Toxoplasma gondii en felinos. 30
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XII
ÍNDICE DE ANEXOS
Anexo 1. Presentación a los dueños para permitir obtener la muestra. 45
Anexo 2. Obtención de la muestra, en su respetiva cajita de arena. 45
Anexo 3. Obtención de la muestra, en su respetiva cajita de arena. 46
Anexo 4. Obtención de la muestra en lugares externos de la casa. 46
Anexo 5. Muestras llevadas al laboratorio de la Utmach. 47
Anexo 6. Se tritura la muestra en un mortero, con unas gotas de cloruro de sodio.
47
Anexo 7. Luego se coloca la muestra en un vaso, llenándolo con la solución de
cloruro de sodio. 48
Anexo 8. Se coloca, las muestras junto con su respectiva caja de heces
enumerada para identificarlas y también el porta objetos. 48
Anexo 9. A continuación, se coloca un cubre objeto encima de cada muestra
teniendo en cuidado que no se hunda, y se deja reposar entre 15 a 20 minutos. 49
Anexo 10. Con ayuda de una pinza vamos sacando el cubre objeto, colocándolo
en el porta objeto para llevar a observar en el microscopio. 49
Anexo 11. Se lleva la muestra al microscopio y se observa con lente de 10 x. 50
Anexo 12. Al ir observando en el microscopio, tener a un lado el cuaderno para ir
identificando los casos positivos y negativos. 50
Anexo 13. Caso positivo en muestra a toxoplasmosis en heces de felino. 51
Anexo 14. Caso positivo en muestra a toxoplasmosis en heces de felino. 51
Anexo 15. Caso positivo en muestra a toxoplasmosis en heces de felino. 52
Anexo 16. Caso positivo en muestra a toxoplasmosis en heces de felino. 52
Anexo 17. Registro que utilice para recoger las muestras. 53
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13
I. INTRODUCCION
A medida que los medios de comunicación, tecnología, y otros pueden estar más a
la disposición de la sociedad, se ha permitido que se instruya, eduque y en de cierta
manera cambie el modo de cuidar a nuestras mascotas que, al ser tratadas como
parte de la familia, se les brindan los cuidados que necesitan para su sano desarrollo
físico y mental. El nivel socioeconómico de muchas personas, no les permite
instruirse y educarse, considerando a las enfermedades de sus mascotas como algo
fatal e inevitable provocado por el clima y otros factores ambientales.
Una de las enfermedades parasitarias más comunes en los gatos, la toxoplasmosis,
es provocada por el parasito Toxoplasma gondi, enfermedad zoonosica, de elevada
morbilidad en gatos. La ciudad de Santa Rosa presenta condiciones climatológicas
que permite que este parasito tenga cierta incidencia en la población felina por lo
que puede afectar a las personas principalmente a mujeres gestantes, de ahí la
necesidad de actualizar el índice de prevalencia de esta parasitosis en la localidad
para establecer medidas capaces de prevenirla.
En las mujeres embarazadas si la infección se produce durante la gestación, puede
ocurrir el aborto con posible afectación del sistema nervioso central del niño al
presentarse anomalías neurológicas como hidrocefalia, microcefalia e
irregularidades psicomotoras e inclusive provocar su muerte al nacimiento, además
los nacidos pueden padecer de retraso mental, linfoadenopatias, malestar general,
fiebre, linfocitosis y miocarditis. En el hospital Obstétrico Ángela Loayza, del cantón
Santa Rosa se pudo obtener información del año 2015, 2016 acerca de la cantidad
supuestos casos de mujeres embarazadas con toxoplasmosis; recién se ha
incrementado realizar examen de toxoplasmosis como examen rutinario a
pacientes.
En la ciudad de Santa Rosa, no se tiene referencias de trabajos anteriores sobre el
índice del Toxoplasma gondii en felinos, de ahí la importancia del presente trabajo
por ser una enfermedad zoonósica.
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OBEJTIVOS
Objetivo general:
Determinar el índice de prevalencia del toxoplasma gondii mediante análisis coprológico en felinos en la ciudad de Santa Rosa, Provincia de El Oro.
Objetivos específicos
Determinar el índice de prevalencia del toxoplasma gondii en felinos en la ciudad de Santa Rosa, Provincia de El Oro mediante la prueba diagnóstica del método de flotación.
Relacionar el índice de prevalencia con las variables edad, sexo, raza.
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2. REVISIÓN LITERARIA
2.1. DEFINICION
La toxoplasmosis es provocada por el parásito Toxoplasma gondii que es un
protozoario causante de una infección muy grave que abarca tanto animales como
a los humanos. Los principales hospedadores son los felinos que expulsan los
ooquistes por medio de las heces fecales, luego de haber ingerido presas como
roedores, aves, agua. En cambio, los humanos adquieren el toxoplasma gondii al
tener contacto con las heces fecales de los gatos(contaminados)o al ingerir carne
cruda contaminada o mal cocida. (1)
También se indica que este parasito no solo afecta a los gatos, si no a los animales
de sangre caliente por su gran tejido muscular y cerebral; los felinos se los determina
como huéspedes naturales, y los demás homeotermos como hospedadores
intermediarios. Pero se ha determinado que la especie canina podría ser parte de
la exposición del parasito en mención. (2)
Los gatos que se dedican la caza pueden infectarse alimentándose de cadáveres
de pequeños mamíferos o aves infectadas con T. gondii. (48)
La infección de toxoplasmosis tiene un alto riesgo en el deterioro inmunológico de
los individuos. (5)
Aunque esta enfermedad no es muy sonada como lo son la tuberculosis, ébola,
malaria, existe la toxoplasmosis en distribución baja en el mundo, se estima que el
40% de la población una mundial son parte de la infección del toxoplasma gondii;
sobre todo en los humanos con sistema inmune bajo como lo son pacientes con VIH
que reciben daños en el cerebro, ojos que en si empeoran causarían la muerte. (36)
Se presenta la enfermedad congénita y se adquiere después del nacimiento, con
una incidencia de 1,5 en exámenes serológicos. Los quistes en el hospedador dan
pauta para recurrencias oculares. (39)
2.2. ETIOLOGIA
El nombre del parasito proviene del griego toxon que tiene como significado arco y
plasma que significa forma. Por ende, su nombre se da por la forma del parasito. (37)
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16
La infección de la toxoplasmosis se suele relacionar con costumbres higiénicas, por
el nivel socioeconómico, sanidad y sobre todo por el contacto con hospedadores
definitivos. (7)
La infección llamada Toxoplasmosis es de gran distribución mundial, zoonosica que
tiene como síntoma común los abortos en mujeres; porque no hay síntomas muy
marcados ni característicos en el humano. (3)
La toxoplasmosis no se consideraba como una infección que puede ser provocada
por el consumo de agua contaminada, pero en Brasil existió un brote por consumir
agua de un reservorio subterránea no filtrada, en Canadá hubo un similar
acontecimiento. (2)
También existe la transmisión por medio de la leche procedentes de animales
infectados en distintas especies animales. (38)
Se observó una cabra de 4 años de edad, que fue inoculada 48 horas después del
parto, presentando la infección de forma aguda provocando fiebre, metritis,
agalactia, enteritis, inapetencia. (40)
Así como se lo asocia con los abortos en humanos, se lo relaciona con el nacimiento
de crías débiles. (6)
Al desarrollarse la enfermedad la respuesta inmune disminuye porque ciertos
parásitos se escapan al musculo tejido nervioso, retina, convirtiéndose en quistes
histicos. (29)
Uno de los animales que son susceptibles aparte de los gatos se encuentran los
hurones domésticos, suelen presentar anorexia, diarreas, hipotermia, letargia,
trombocitopenia, neutrofelia. (29)
La toxoplasmosis es de trasmisión vertical y horizontal, aunque de forma vertical es
menos frecuente. El 20% y 70 % de evidencia serológica por infección se presenta
en la población humana. (42)
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2.3. TAXONOMIA
El toxoplasma gondii tiene la siguiente clasificación taxonómica:
Tabla 1.Clasificación zoológica del toxoplasma gondii.
Fuente: Serrano 2014.
2.4. MORFOLOGIA
Figura 1. Estructura del toxoplasma gondii
Fuente: Velásquez 2014
El toxoplasma gondii tiene dos formas: la una extracelular con similitud a un arco, la
cual mide de 4 a 6 micras de largo; de 2 a 3 micras de ancho. Y la otra de forma
Phylum Apicomplexa
Clase Conoidasida
Subclase Coccidia
Orden Eucoccidiorida
Suborden Efimerita
Familia Sarcocystidae
Subfamilia Toxoplasmatidae
Género Toxoplasma
Especie Gondii
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intracelular de manera ovalada. Muere a las 48 horas, conservando su virulencia
por algunas semanas; tiene poca flexibilidad (21)
Este parasito está constituido por tres formas que son: taquizoitos, ooquistes, y
bradizoitos. (17)
2.4.1. Ooquiste y esporozoíto
Existen dos clases de ooquistes el primero sin esporular que tienen forma esférica,
con una medición de 10 a 12 um de diámetro, y los otros ooquistes son los que son
esporulados con forma elipsoidales con una medición de 11 a 13 micras de
diámetro. Ambos ooquistes contienen cuatro esporozoitos que miden 2 x 6-8 um,
con un gran número de lípidos. (28)
2.4.2. Taquizoíto
Tienen una forma de media luna, con una medida de 1 x 6 um; está conformado por
mitocondrias, aparato de Golgi, ribosomas, organelas, anillos polares, anillos
apicales, retículo endoplasmatico, película protectora, y con un núcleo a basa de
cromatina. (28)
Las células del bazo de ratones producen altos niveles de IFN-gamma cuando se exponen a taquizoitos vivos de Toxoplasma gondii o un extracto soluble de parásito, suficiente para estimular esta respuesta, que también es inducida por sobrenadantes libres de células de taquizoitos cultivados. (50)
2.4.3. Bradizoíto
Son quistes pequeños miden alrededor de 5 um los jóvenes y los adultos están
formados de cientos de organismos en su interior, pero carece de lípidos, números
de gránulos densos en su inferior, con un núcleo posterior, susceptibles a la enzima
proteolíticas causando la destrucción. (28)
2.5. CICLO BIOLOGICO
Existen identificadas cuatro cepas: I, II, III, IV; cada una posea su grado de infección,
y tiene su propio ciclo de vida. El toxoplasma gondii tiene tres estados que son:
ooquistes, Taquizoíto y bradizoito. (11)
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19
Figura 2. Ciclo de vida de la toxoplasmosis.
Fuente: Espinoza 2015
Para un estudio más concreto se han establecido dos ciclos distintos: el primero que
se da en el intestino delgado de los felinos productores de ooquistes llamado:
enteroepiteleal; y el segundo que está a cargo de los bradizoitos y taquizoitos. (15)
En el intestino delgado de los gatos domésticos comienza la reproducción sexual,
al expulsar las heces los gametocitos que son transformaos en esporozoitos la cual
infectan tanto la tierra, verduras, frutas, hortalizas, agua. El felino se infecta al ingerir
roedores, aves contaminadas con quistes tisulares, los cuales tiene un tiempo de
desarrollo de 3 a 6 días, luego se continua con el ciclo enteroepitelial la cual los
esporozoitos son liberados, provocando los merozoitos invasores del epitelio.
Cuando comienza la diferenciación sexual tienden aparecer los macrogametocitos
y microgrametocitos que en la fecundación unen los gametos, creando el ooquiste
unicelular, el cual, al llegar al suelo, con contacto con la humedad, oxigeno,
temperatura, tiene 3 cambios formando dos células con cuatro esporozoitos. (11)
Todo este proceso dura alrededor de 25 días cuando ingieren los gatos los
ooquistes del suelo, se dice que luego de 20 días de su infección se elimina 10
millones de ooquises por día de forma inmadura hacen cierto contacto con el
ambiente permaneciendo durante un año viable. (11)
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20
Los ooquistes son demasiados resistentes a desfavorables condiciones
ambientales, incluso permanecen activos en presencia del agua por 54 meses y en
el suelo por un año. (14)
Se encuentra en altas cantidades los bardizoitos, pues persisten en el organismo
de forma indefinida, estos son causantes de la fase crónica donde se obtiene una
respuesta inmune polarizadas de células Th2 hemáticos. (11)
En cambio, los taquizoitos tiene una forma de multiplicarse muy rápida, son
causantes de la fase aguda de la infección, la división se produce cada 4 a 6 horas,
las células se rompen y se liberan en el sistema retículo endotelial (menos en los
glóbulos rojos); hasta en la saliva, orina, liquido peritoneal, leche, linfa y sangre. (11)
2.6. MEDIOS DE CONTAGIO
Figura 3.Diferentes medios de contaminación de la toxoplasmosis
Fuente: Fernández 2015
Una de las causas de transmisión de mayor influencia es por la vía digestiva, luego
se puede decir que por la vía transparentaría, existe una replicación del parásito en
hospedadores inmunocompetentes a las respuesta inmune, celular y humoral. (9)
Otro de los medios de contagio es por la trasfusión de sangre o el trasplante de
órganos; pero la más común es por digerir carne cruda, mal cocida. (10)
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El mal lavado de los utensilios por falta de agua, jabón, el consumir frutas
contaminadas, las carnes más comunes que suelen tener el parasito por no
cocinarlas son las de cerdo y cordero. (22)
2.7. PATOGENIA
Para determinar los signos de la toxoplasmosis depende de su localización, estos
pueden ser en el sistema respiratorio, neuromuscular, gastrointestinal. (4)
Cuando se presenta la toxoplasmosis clínica que se notan hallazgo muy marcados
como son fiebre persistente, ictérica, desordenes oculares, neurológicos,
pulmonares, hepáticos, musculares, gastrointestinales y leucopenia. (18)
El toxoplasma gondii en estado infectante (taquizoito) tienen a multiplicarse
intracelular en el tracto gastrointestinal, estos a la vez se diseminan en nódulos
linfáticos mesentéricos por invasión linfática o por hematógena. No ocurre la
acidificación porque las proteínas del huésped son bloqueadas por las vacuolas
pasaritoforas que producen los taquizoitos, estos pueden ser destruidos por
intermediarios reactivos del oxígeno, acidificación, fluctuaciones osmóticas,
intermediarios reactivos del nitrógeno, anticuerpos específicos. La forma de quistes
del parasito es causantes de la infección residual, latente y sobre todo persistente
del cerebro, ojo y musculo. (17)
El toxoplasma gondii en pequeños carnívoros, con condiciones normales obtiene
una respuesta inmunológica humoral, celular, por lo anticuerpos que disminuyen la
etapa del taquizoito que tiene poca actividad en formas celulares, teniendo en
cuenta que los animales inmunodeprimidos la ruptura de los quistes se reactiva la
infección. (20)
En el miocardio de ciertos animales se localiza el toxoplasma gondii, en el sistema
nervioso suelen tener gravedad de localización, en el tejido los quistes se
encuentren en las meninges; y con un exudado puede variar entre seroso y
hemorrágico. Cuando hay casos de encefalitis y hepatitis se observa la presencia
de taquiozoitos. (20)
Cuando hay lesiones en el pulmón que se dan en los gatos contaminados con fase
aguda de la infección presenta endocarditis, miocarditis. En lesiones oculares se da
la uveítis anterior granulomatosa. (20)
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2.8. DIAGNÓSTICO
La toxoplasmosis en los animales vivos se puede realizar una biopsia, con títulos
crecientes o anticuerpos específicos; como diagnóstico clínico de rutina se realizan
pruebas serológicas, teniendo en cuenta que en los gatos adultos es muy escaso
presenten síntomas clínicos. Una de las pruebas más comunes es la coprológica
que detecta los ooquistes por medio de las heces fecales de gatos, realizando la
técnica de flotación. (20)
Otro método es por medio de sedimentos teñidos de líquido cerebroespinal,
exudados, saliva, tejidos sospechosos obtenidos por punciones, necropsias y
biopsias. Hay que tener en cuenta que, para observar los quistes en cerebro, retina,
hígado, pulmón se realizan técnicas histológicas por medio de inmunohistoquimicas
específicas. (20)
Como pruebas serológicas se tiene a Sabin-Feldman, Dye- Test y IFAT de
microaglutinacion directa (MAT) o (ELISA). Teniendo en cuenta que la prevalencia
de anticuerpos del toxoplasma gondii tienen un positivo de 1:32. Un solo título
positivo de IgG no permite distinguir la infección activa de la crónica entonces se
debe realizar por lo menos 2 determinaciones séricas de IgG de 2 a 3 semanas. (20)
En los felinos la seroprevalencia, aumenta según su edad y sobre todo en machos,
de pelo corto depende de la alimentación, una de las pruebas más comunes en los
gatos es detectar por medio del suero, la cual se eliminan los ooquistes; un felino
seronegativo podría estar sano o haber estado infectado recientemente. En la
toxoplasmosis digestiva se determina por medio del fluido abdominal a traces de
técnicas de inmunohistoquimicas con suero anti-toxoplasma gondii. (20)
Existen algunos estudios complementarios como son radiología, resonancia
magnética, ecografía, electroretinografia, angiografía, tomografía que son de gran
ayuda para el diagnóstico dependiendo del grado de evolución de patológicas que
afectan a los ojos y al SNC. Es muy común las convulsiones en los gatos. (20)
Se tiene como prueba de rutina a la prueba de hemaglutinación, pero no es muy
específica porque presente reacciones cruzadas en otros parásitos. (8)
Se puede realizar como examen en PCR, que sirve para observa los ooquistes solo
que suelen confundirse con la morfología de ciertos protozoarios. y como técnicas
de lesiones se utilizan la hepatitis necrótica, linfadenitis, neumonía intersticial. (15)
En gatos sanos, se suele recomendar el examen de heces para encontrar los
ooquistes utilizando el método de flotación, se pude realizar un examen
-
23
hematológico que revela la eosinofilia en el perro infectado provocando problemas
en el SNC. (43)
En los animales, la biosíntesis de ácidos grasos es potencialmente un excelente
objetivo para la terapéutica dirigida contra la Toxoplasmosis y otras enfermedades
mediadas por apicomplexos. (49)
2.9. TRATAMIENTO
Como antibiótico recomendado es aquel del grupo de las lincosamidas la
clindamicina que actuara como inhibidor de la peptilidiltransferasa; como dosis se
recomienda darles a los felinos de 12,5 a 25 mg/kg, por vía intravenosa cada 12
horas alrededor de 2 semanas. (20)
Otro antibiótico recomendado es la sulfadiazina con dosis de 30 mg/kg; y la
pirimetamina con dosis de 0,4 mg/kg; estas se pueden combinar durante 14 días,
cada 12 horas dando un excelente resultado. Pero están contraindicadas para
animales en edad gestantes. (20)
Para los animales en gestación se recomienda la espiramicina; para evitar la
excreción de los ooquistes se puede administrar la toltrazuril, monensina,
sulfamidas(anticoccidiosicas). (20)
En el caso de los humanos infectados también tienen un tratamiento a base de la
pirimetamina con una dosis de 100 a 200 mg como dosis inicial y luego 50 a 100
mg por día con ácido fólico utilizando la dosis de 10 mg/día más sulfadicina con
dosis de 2 a 8 g/día, administración vía oral por un lapso de 6 semanas. (26)
Cuando se da la miocarditis toxoplasmaticas en los felinos se lo realiza con el
tratamiento tradicional, pero cuando los felinos presentan granulomas encefálicos
el tratamiento inmediato es una intervención quirúrgica administrándole fenobarbital
para las convulsiones. (29)
Para disminuir el riesgo de trasmisión al feto en los humanos., se recomienda la
espiramicina durante las 3 a 4 semanas primeras luego de la sero- conversión. (44)
Teniendo en cuenta que el problema de la toxoplasmosis en mujeres embarazadas
es que se produce una infección asintomática, pero ya en el tercer mes aumenta el
71% de sero- conversión produciendo manifestaciones en el sistema nervioso
central, retardo mental, y desordenes inflamatorios. (45)
-
24
Estudios epidemiológicos recientes indican que los agentes infecciosos pueden
contribuir a algunos casos de esquizofrenia. En los animales, la infección con
Toxoplasma gondii puede alterar el comportamiento y la función del
neurotransmisor. En los seres humanos, la infección aguda con T. gondii puede
producir síntomas psicóticos similares a los mostrados por personas con
esquizofrenia (46)
2.10. EPIDEMIOLOGIA
En la mayoría de los países de América Latina, por abandono social,
desconocimiento de la población. enfermedades de transmisión, problema sanitario,
se da una alta morbilidad de enfermedades zoonocicas importantes provocadas por
parásitos como la toxoplasmosis. (13)
El contagio vertical de toxoplasmosis gondii se provoca por vía transparentaría al
feto mediante la transmisión del protozoario por la primera infección materna,
dependiendo de la edad gestacional del feto, exactamente unas 13 semanas,
período más común para la infección del toxoplasma gondii. (16)
El diagnóstico temprano de toxoplasmosis en mujeres embarazadas da una pausa
para un buen tratamiento, tratando de reducir la tasa de transmisión y el daño
congénito. (19)
Como medidas de prevención de toxoplasmosis se centra en la higiene de cajones
de arena para los gatos, por medio de una limpieza diaria, alejada de cocinas y
comedores; al momento de manipular la caja de arena usar guantes y de inmediato
el lavado de las manos. El contacto directo con un felino raramente puede causar la
trasmisión, por eso se debe controlar que los mismo no ingieran ratones, aves,
carne infectada. (20)
En el caso de las mujeres es gestación se debe observar la relación con los gatos,
porque es susceptible a la infección cuando no tiene anticuerpos anti-toxoplasmas
gondii. También se debe lavar las manos al manipular carne cruda, vegetales;
cuando se realiza trabajo de jardinería siempre se debe utilizar guantes, y lavado
de manos. (20)
-
25
Figura 4.Ciclo infectivo de la toxoplasmosis en las mujeres en gestación.
Fuente: Almeida 2016
En el 2014 se realizó un estudio en mujeres embarazadas en la provincia de El Oro
para determinación del toxoplasma gondii, utilizan un método explicativo básico, a
mujeres de 15 a 40 años, en el primer trimestre de embarazo; dando como resultado
un 50% en Machala, un 36,8% en Pasaje. (25)
Se tiene un estudio en Argentina donde el 25% de la población está infectada de
toxoplasmosis, porque un felino puedo excretar más de 1 x 107 ooquistes por día,
lo cual contaminan alimentos, incluso el agua. (27)
Se mostró que beber agua directamente de la llave estuviera asociado
estadísticamente a un riesgo mayor, se encontró que tomar bebidas con agua sin
hervir aumenta el riesgo de infección 4,5 veces y que beber agua de botella, bolsa
o botellón, es un factor protector. (47)
-
26
3. MATERIALES Y MÉTODOS
3.1. MATERIALES
3.1.1. Localización del Estudio
El presente trabajo de investigación se realizó en la ciudad de Santa Rosa, ciudad
cabecera del Cantón Santa Rosa de la provincia de El Oro ubicada al sudoeste del
Ecuador (Figura 5).
Figura 5.Mapa del Cantón Santa Rosa
Fuente: Duran
La ciudad de Santa Rosa cuenta con una población estimada de 74.148 habitantes.
Sus coordenadas geográficas e indicadores climáticos son:
Latitud -3.43333
Longitud -79.9667
Altitud 13 msnm
Superficie 825,04 Km2
Temperatura 22 -280C
-
27
Límites:
Al norte con los cantones Machala y Pasaje
Al sur con los cantones Arenillas y Piñas
Al este con los cantones Atahualpa y Pasaje
Al oeste con el cantón Arenillas(23)
3.1.2. Equipos y materiales
Mandil
Mortero
Varilla
Heces
Cajas de heces
Porta objeto
Cubre objeto
Colador de alambre
Algodón
Guantes
mascarillas
Hojas de registro
Cámara fotográfica
Solución saturada de sal (cloruro de sodio)
Vasos de plástico de 1.5 onza
Nevera
Extractor de heces
Solución salina
3.1.3. Población
La ecuación más conocida para determinar el tamaño de la muestra necesario para
calcular el porcentaje de la población que pudiera tener o no la variable de interés,
es la utilizada, que la describe el libro de Epidemiologia Veterinaria. (30)
3.1.2. Muestras
Para determinar la muestra a investigar se tomó en cuenta el nivel de confianza
siendo un 95% aplicando la ecuación 1. (30)
https://es.wikipedia.org/wiki/Cant%C3%B3n_Machalahttps://es.wikipedia.org/wiki/Cant%C3%B3n_Pasajehttps://es.wikipedia.org/wiki/Cant%C3%B3n_Arenillashttps://es.wikipedia.org/wiki/Cant%C3%B3n_Pi%C3%B1ashttps://es.wikipedia.org/wiki/Cant%C3%B3n_Atahualpahttps://es.wikipedia.org/wiki/Cant%C3%B3n_Pasajehttps://es.wikipedia.org/wiki/Cant%C3%B3n_Arenillas
-
28
Ecuación 1
n =Z2 𝑝𝑞
d2
Donde:
n= Total de la población
Z2 = 1.96 (si la seguridad es del 95 %)
p = proporción esperada (en este caso 10% = 0.10)
q = 1 – p (en este caso 1-0.10 = 0.90)
d = precisión (en este caso deseamos un 5 %= 0,05). (30)
n =(1,96)2 (0,10)(0,90)
(0,05)2
n =(3,8416)(0,10)(0,90)
0,0025
n =0,3457
0,0025
n = 138
3.1.3. Variables a Analizar
Grupo etario: gatitos de 0 a 6 meses, jóvenes de 7 a 12 meses y adultos de 1 a 7
años.
Sexo: hembras y machos.
Raza
-
29
3.2. MÉTODO
3.2.2. Metodología
El estudio, de tipo investigativo no experimental, se realizó a nivel del laboratorio a
partir de muestras de heces fecales obtenidas de la población felina. Las muestras
de heces fueron debidamente identificadas con un número y conservadas en
refrigeración para su posterior traslado al laboratorio donde se procedió a realizar el
diagnóstico mediante el método de flotación; los resultados se registraron en cada
hoja de control.
3.2.3. Método
Se tomaron 2 gramos de cada muestra de heces fecales que fueron
colocadas en un mortero, para seguidamente y con el objetivo de
humedecerlas se les fue agregando varias gotitas de solución salina,
comenzando su trituración con la mano del mortero para agregarle 20cc de
solución salina la que fue mezclada con las heces fecales empleando la
mano del mortero hasta obtener una suspensión homogénea de las heces.
(24)
Seguidamente se vertió el contenido del mortero en un vaso de plástico, a
través de un colador de tela de alambre, y luego se llenó el mismo con la
solución salina colocándose el cubre objeto en la parte superior de la muestra
dejándolo reposar de 15 a 20 minutos. (24)
A continuación, se colocó el cubre objeto en la porta objeto muy despacio y
se procedió a observar en el microscopio con lente 10x/0.25 e iluminación
buena y amortiguada. (24)
3.2.4. Análisis estadístico
Se utilizó la siguiente fórmula:
Número de casos positivos
Índice de prevalencia = x 100
Número de casos investigados
-
30
4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
4.1. Índice de Prevalencia del Toxoplasma gondii en felinos en la ciudad de
Santa Rosa.
El número total de muestras analizadas fueron 138 (100%) de las cuales resultaron
positivas 40, para un índice de prevalencia del 28,98% en los distintos barrios de la
ciudad (Figura 6); estos resultados muestran un nivel de Toxoplasmosis superior en
la población felina que los reportados por Napo (2014) quien determinó una
prevalencia muy baja (0,5 %) para la ciudad de Machala, capital provincial de El
Oro.
Figura 6. Índice de prevalencia del Toxoplasma gondii en felinos.
4.2. Procedencia de los animales muestreados.
Como se aprecia en la tabla 2, las muestras de heces fecales de los felinos que
participaron en la presente investigación fue bastante homogénea por área de
procedencia; se destaca la ciudadela Las Palmeras como la de mayor cantidad de
animales infestados al diagnosticarse el 55,55% de los animales muestreados como
positivos a Toxoplasma gondii mientras que en las ciudadelas “El Paraíso” y la
“Teniente Hugo Ortiz” de 23 animales muestreados, todos resultaron negativos.
0
20
40
60
80
100
120
140
160
TOTAL ANIMALES POSITIVOS NEGATIVOS % POSITIVOS
-
31
Tabla 2. Animales diagnosticados según área de procedencia
4.3. Variable edad.
En la Tabla 3, se observa la cantidad de casos positivos y negativos según grupo
etario destacándose la positividad de los animales, solo para los menores de 6
meses de edad, que representaron el 36,23% del total de animales muestreados.
Para esta categoría etaria, menor a 6 meses, el diagnóstico positivo de Toxoplasma
gondii en las heces fecales involucró al 80% de los animales.
Tabla 3. Resultados según categoría etaria.
PROCEDENCIA POSITIVOS NEGATIVOS TOTAL
NUEVO SANTA ROSA 4 7 11
LOS HELECHOS 3 8 11
CDLA EL PARAISO 0 9 9
TENIENTE HUGO ORTIZ 0 14 14
MI ROSITA 4 10 14
24 DE MAYO 4 9 13
MIRAFLORES 3 10 13
SAN MARCOS 4 5 9
LAS PALMERAS 10 8 18
CALDERON 2 7 9
EL ORITO 3 6 9
GALAPAGOS 3 5 8
TOTAL 40 98 138
EDAD POSITIVOS NEGATIVOS
> 6 meses 40 10
6-12 meses 0 47
˂ 1 año 0 41
TOTAL 40 98
-
32
Los animales de edad superior a los 6 meses fueron negativos, es decir, el índice
de prevalencia para estas edades fue de cero como se aprecia en la Figura 7; estos
resultados coinciden con lo reportado en la literatura clásica como Grandía, Entrena
y Cruz (2013) y Torre, Yanet, Mariana y David (2015) que señalan la no presencia
de Toxoplasma gondii en heces fecales a partir de esta edad por lo que para estas
edades deben efectuarse estudios serológicos.
Figura 7. Porcentajes de Animales positivos según categoría etaria.
4.4. Variable sexo.
En la Tabla 4, se observa que la cantidad de machos muestreados es superior a la
de hembras (88 vs 50) diagnosticándose mayor prevalencia en machos (39,68%)
que en hembras (30%).
Tabla 4. Animales positivos según su sexo.
SEXO POSITIVOS NEGATIVOS
MACHOS 25 63
HEMBRAS 15 35
TOTAL 40 98
0
20
40
60
80
100
120
> 6 meses 6-12 meses ˂ 1 año TOTALPOSITIVOS NEGATIVOS
-
33
La toxoplasmosis es una enfermedad infecto-contagiosa que afecta a los animales
independientemente del sexo como reportan Troncoso Toro (2015) y Uribe
Henriquez(2015); En la presente investigación los resultados referentes a que la
cantidad de machos infestados sea superior a la de hembras se debe a que en la
localidad hay mas machos que hembras y no al efecto “sexo” (Figura 8 ).
Figura 8. Porcentajes positivos y negativos referente al sexo.
4.5. Variable raza.
La Tabla 5, muestra la predominancia de los gatos mestizos en la localidad, de ahí
que el 100% de los diagnosticados con toxoplasma gondii fueran de la raza mestiza,
nótese que solamente 2 animales fueron de raza pura lo que puede explicarse por
el “efecto comunidad” al tener animales más resistentes a enfermedades y más
efectivos para cazar roedores que tener gatos como mascotas muy sensibles a
enfermedades por lo que requieren más atención y cuidados. Estos resultados
coinciden con lo reportado en la literatura por Castillo (2012) y Noé (2014).
0
20
40
60
80
100
120
MACHOS HEMBRAS TOTAL
POSITIVOS NEGATIVOS
-
34
Tabla 5. Animales positivos según la raza.
RAZA POSITIVOS NEGATIVOS
MESTIZO 40 96
SIAMES 0 1
AZUL 0 1
TOTAL 40 98
-
35
5. CONCLUSIONES
1- El índice de prevalencia del Toxoplasma gondii en felinos de la ciudad de Santa
Rosa fue del 28,98%.
2- El diagnóstico coprológico por el método de flotación para la detección del
Toxoplasma gondii solo es válido en animales menores de 6 meses de edad.
3- Los resultados se relacionaron con animales machos y mestizos debido a que
fueron la raza y el sexo predominante en el área de estudio.
4- La ciudadela “Las Palmeras” resultó la del porcentaje más elevado de animales
positivos (55,55%) mientras que las ciudadelas “El Paraíso” y “Teniente Hugo
Ortiz” resultaron negativas en todos los animales muestreados.
-
36
6. RECOMENDACIONES
1- Aplicar las medidas higiénicas recomendadas para la manipulación del cajón de
arena o del área empleada por los felinos para defecar.
2- Llevar un control de antiparasitarios a nuestros gatos como medida de
prevención por lo menos 2 veces al año, siempre siguiendo las instrucciones del
veterinario, que es quien decidirá la pauta de desparasitación adecuada para
nuestra mascota.
3- Limpieza y desinfección frecuente del área de descanso de nuestros felinos.
4- Tener un mayor cuidado al ingerir alimentos, que deben estar bien cocinados,
sobre todo los que expenden en la calle.
-
37
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8. ANEXOS
Anexo 1. Presentación a los dueños para permitir obtener la muestra.
Anexo 2. Obtención de la muestra, en su respetiva cajita de arena.
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Anexo 3. Obtención de la muestra, en su respetiva cajita de arena.
Anexo 4. Obtención de la muestra en lugares externos de la casa.
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Anexo 5. Muestras llevadas al laboratorio de la Utmach.
Anexo 6. Se tritura la muestra en un mortero, con unas gotas de cloruro de sodio.
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Anexo 7. Luego se coloca la muestra en un vaso, llenándolo con la solución
de cloruro de sodio.
Anexo 8. Se coloca, las muestras junto con su respectiva caja de heces enumerada para identificarlas y también el porta objetos.
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Anexo 9. A continuación, se coloca un cubre objeto encima de cada muestra teniendo en cuidado que no se hunda, y se deja reposar entre 15 a 20 minutos.
Anexo 10. Con ayuda de una pinza vamos sacando el cubre objeto, colocándolo en el porta objeto para llevar a observar en el microscopio.
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Anexo 11. Se lleva la muestra al microscopio y se observa con lente de 10 x.
Anexo 12. Al ir observando en el microscopio, tener a un lado el cuaderno para ir identificando los casos positivos y negativos.
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Anexo 13. Caso positivo en muestra a toxoplasmosis en heces de felino.
Anexo 14. Caso positivo en muestra a toxoplasmosis en heces de felino.
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Anexo 15. Caso positivo en muestra a toxoplasmosis en heces de felino.
Anexo 16. Caso positivo en muestra a toxoplasmosis en heces de felino.
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Anexo 17. Registro que utilice para recoger las muestras.
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