TEMA 19 Infecciones del tracto respiratorio superior · mejor muestra: aspirado de secreciones...
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Tema 19. Infecciones del tracto respiratorio superior
1. Anatomía del tracto respiratorio2. Mecanismos inespecíficos de defensa del tracto respiratorio3. Microbiota normal del tracto respiratorio superior4. Agentes etiológicos de infecciones nasofaríngeas y orofaríngeas5. Recolección y transporte de muestras
5.1. Hisopado faríngeo5.2. Hisopado nasofaríngeo
6. Examen directo de las muestras6.1. Métodos que no incluyen cultivo para la detección de Streptococcus
pyogenes7. Cultivo de las muestras
2. Mecanismos inespecíficos de defensa del tracto respiratorio
Mecanismos que impiden que microorganismos u objetos extraños entren enlos bronquios y lleguen a pulmones
• Pelos
• Pasaje contorneado
• Mucus (tapiza los cornetes nasales)
• IgA secretora
• Compuestos antibacterianos presentes en secreciones (lisozima)
• Cilios y mucosa que recubren la tráquea
• Reflejos (tos, estornudo, deglución)
Macrófagos alveolares (fagocitan partículas que escapan)
Microbiota normal orofaríngea y nasofaríngea (previene colonización patógenos)
3. Microbiota normal del tracto respiratorio superior
Algunos de los siguientes microorganismos pueden, en circunstancias especiales,provocar infecciones del tracto respiratorio
Nariz
Staphylococcus aureus Streptococcus pneumoniae
S. epidermidis Haemophilus influenzae
Corynebacterium
Amígdalas y adenoides
Staphylococcus aureus Streptococcus
Lactobacillus Propionibacterium
Corynebacterium Branhamella
Haemophilus Eikenella
Peptostreptococcus Fusobacterium
Bacteroides
3. Microbiota normal del tracto respiratorio
Faringe
Staphylococcus aureus Streptococcus mitis
Staphylococcus epidermidis Streptococcus pneumoniae
Streptococcus salivarius Haemophilus influenzae
H. parainfluenzae Neisseria
Mycoplasma Candida albicans
Corynebacterium Branhamella
Bacteroides Eikenella
Peptostreptococcus Fusobacterium
Veilonella
4. Agentes etiológicos de infecciones nasofaríngeas y orofaríngeas
Los microorganismos que causan infecciones del TRS deben:
• entrar en contacto con el epitelio de la mucosa
- la mayoría transportados por aerosoles
- generalmente, por condiciones de hacinamiento o falta de higiene
- algunos pertenecen a microbiota normal
• adherirse
• multiplicarse
Posible aislar gran número de especies de bacterias y hongos a partir de muestrasde tracto respiratorio superior
Muy pocos microorganismos pueden provocan verdadera patología
4. Agentes etiológicos de infecciones nasofaríngeas y orofaríngeas
Streptococcus pyogenes
• bacteria más aislada
• estreptococo β-hemolítico del grupo A
• responsable de la faringitis estreptocócica
• con frecuencia causa infecciones supurativas (piogénicas) de senos y oídomedio
Otros estreptococos (poco frecuente) pueden producir también faringitisestreptocócica
El laboratorio debe investigar sólo S. pyogenes
Otros patógenos causantes de infecciones del TRS
5. Recolección y transporte de muestras
5.1. Hisopado faríngeo
Hisopos de algodón, Dacrón o alginatocálcico (adecuados para recuperar lamayoría de microorganismos)
Obtener la muestra con ayuda de un depresor
Se rota el hisopo sobre la superficie elegida
Si el hisopo permanece húmedo
• no necesario medio de transporte si se cultiva en 4 horas (para detectarS. pyogenes puede permanecer seco 48 a 72 horas)
• después de 4 horas utilizar medio de transporte (Stuart, Amies, Cary-Blair)
Muestra para detectar Bordetella pertussis
• toser sobre placa de medio de cultivo
• mejor muestra: aspirado de secreciones nasofaríngeas con catéter contetina de goma o plástico
• idealmente sembrar al lado de la cama del paciente
• si no es posible sembrar, transportar en medio adecuado (máximo 2 horas)
• para PCR utilizar hisopo de Dacrón (colocarlo en tubo con 0,5 mL desolución fisiológica)
5.1. Hisopado faríngeo
Se utiliza hisopo flexible
Más recomendable que hisopado faríngeopara recuperar especies de Neisseria,virus respiratorio sincitial y virusparainfluenza entre otros
5.2. Hisopado nasofaríngeo
6. Examen directo de las muestras
Tinción de Gram no válida para el diagnóstico excepto para detección de:
• levaduras
• formas características fusiformes de Angina de Vincent
Identificación de Bordetella pertussis más recomendable por PCR que porinmunofluorescencia directa (poco específica)
Identificación de hongos (incluidas levaduras): KOH al 10%, calcoflúor
Disponibles diversos métodos mediante inmunofluorescencia y ELISA paradetección de muchos virus implicados en infecciones del TRS
6.1. Métodos que no incluyen cultivo para la detección de Streptococcus pyogenes
Más de 40 productos disponibles (Stretex, Directogen, Detect-A-Strep) paradetectar antígenos de los estreptococos del grupo A en apenas 10 minutos
Utilizan
• aglutinación de partículas de látex
• enzimoinmunoensayo
• sondas genéticas
Los hisopos de Dacrón parecen ser los más eficientes
Se recomienda cultivar las muestras negativas de las pruebas directas paraestreptococos del grupo A (no existe fiabilidad del 100%)
7. Cultivo de las muestras
Agar sangre (la mayoría de los estreptococos del grupo Ason β-hemolíticos, < 1% no lo son)
• adicionando disco con 0,04 unidades de bacitracinasobre agar sangre se puede hacer identificaciónpresuntiva de S. pyogenes (todos los estreptococosdel grupo A son sensibles)
Agar selectivo para estreptococos (identificación deS. pyogenes)
Agar inclinado de Loeffler y agar sangre con telurito(identificación de Corynebacterium diphtheriae)
Agar inclinado de Loeffler Agar sangre con telurito
Estreptococo β-hemolítico
Agar sangre con discode bacitracina
7. Cultivo de las muestras
Agar Regan-Lowe o agar sangre de caballo-carbónpara identificación de Bordetella pertussis
Agar Thayer-Martin, agar Martin-Lewis o agar NYCpara identificación de Neisseria
Agar chocolate para identificación de Haemophilus
Agar NYC
Agar Martin-Lewis
Agar Thayer-Martin
Agar chocolate
Agar sangre de caballo-carbón
Agar Regan-Lowe