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INSTITUTO POLITÉCNICO NACIONAL CENTRO INTERDISCIPLINARIO DE CIENCIAS MARINAS DEPARTAMENTO DE DESARROLLO DE TECNOLOGÍAS
EFECTO DE LA DENSIDAD DE CONFINAMIENTO SOBRE EL CRECIMIENTO Y LA SUPERVIVENCIA DEL PARGO AMARILLO Lutjanus argentiventris
(PETERS 1869) (PERCOIDEI: LUTJANIDAE) CULTIVADO EN JAULAS FLOTANTES
T E S I S
QUE PARA OBTENER EL GRADO ACADÉMICO DE
MAESTRO EN CIENCIAS
CON ESPECIALIDAD EN MANEJO DE RECURSOS MARINOS
P R E S E N T A:
ING. ACUAC. MARIO ALBERTO SILVA HERNANDEZ
Febrero 2004 LA PAZ, BAJA CALIFORNIA SUR.
Mario Alberto Silva Hernández Dedicatoria
CICIMAR-IPN
DEDICATORIA
A mi fiel compañera y
dueña de mis sentimientos
Mi amada esposa:
Maribel Arizmendi Burgos
A mi madre, In memoriam:
Ramona Guadalupe Hernández Ochoa
Tienes un lugar reservado en mi corazón, madre.
A mi padre:
Manuel Guillermo Silva Campoy
Sólido pilar de mi formación personal.
A mis tesoros
Mis hijos:
Mario
Dario Alejandro
A mis hermanos:
Maria Esther
Emma Cecilia
Teresa Yolanda
Lilia Irene
Manuel Guillermo
Norma Angelina
Jesús Enrique
Con quienes comparto el verdadero significado de la unidad familiar.
Mario Alberto Silva Hernández Agradecimientos
CICIMAR-IPN
AGRADECIMIENTOS
A mi compañera inseparable y admirada esposa Maribel quien verdaderamente a
comprendido y soportado las dificultades de un acuacultor, me llena de orgullo decirte que
este logro lo alcanzamos ambos ya que sin tu ayuda no hubiera sido posible, mi amor.
Al CONACYT, por la beca crédito otorgada para mis estudios de maestría. Al
proyecto SIMAC número 970106024 “Valoración de dos sistemas alternativos para el
desarrollo de maricultivos de peces marinos de importancia comercial en zonas costeras
protegidas del Golfo de California” a cargo del Dr. Jesús Rodríguez Romero. Al CIBNOR
por permitirme utilizar sus instalaciones acuícolas para la realización de esta
investigación.
Un sincero agradecimiento al MC. José Luis Ortiz Galindo por su invaluable
amistad y motivación durante mi formación académica y en la elaboración de esta tesis.
A mi comité de tesis por ser una valiosa guía durante el desarrollo de este trabajo:
Dr. Juan Pablo Lazo, MC. José Luis Ortiz Galindo, Dra. Silvie Dumas, Dr. Jesús
Rodríguez Romero y MC. Tanos Grayeb del Alamo.
A mis compañeros del grupo de peces del CIBNOR por su apoyo realizado en el
trabajo de campo. Al Sr. Mario Cota responsable de las embarcaciones del CIBNOR por
su ayuda durante innumerables salidas de campo.
Al Dr. Alfonso Alvarez González y al Dr. Roberto Civera Cerecedo por su apoyo
incondicional, aportando sus conocimientos en el campo de la nutrición de peces marinos.
A mi maestra y amiga Reyna Alvarado quien inicio con la co-dirección este trabajo
de tesis mi mas sincero reconocimiento y que Dios te tenga en su santa gloria.
Mario Alberto Silva Hernández Indice
i CICIMAR-IPN
INDICE
INDICE .............................................................................................................. i GLOSARIO ....................................................................................................... iv LISTA DE TABLAS .......................................................................................... vi LISTA DE FIGURAS ........................................................................................ viii RESUMEN ........................................................................................................ ix ABSTRACT ...................................................................................................... xi 1. INTRODUCCIÓN .......................................................................................... 1 2. ANTECEDENTES ......................................................................................... 8
2.1 Especie a cultivar .......................................................................... 8 2.1.1 Taxonomía ....................................................................... 8 2.1.2 Distribución geográfica ................................................. 9 2.1.3 Caracteres distintivos .................................................... 9 2.1.4 Hábitat .............................................................................. 10 2.1.5 Hábitos alimentarios ....................................................... 10 2.1.6 Hábitos reproductivos .................................................... 10 2.1.7 Condiciones ambientales .............................................. 10 2.1.8 Pesca y utilización .......................................................... 11
2.2 Sistema de cultivo ......................................................................... 11 2.2.1 Ventajas del sistema en jaulas flotantes ...................... 12 2.2.2 Selección del área de cultivo ................................. ....... 14
2.3 Crecimiento .................................................................................... 15 2.4 Factores abióticos ......................................................................... 16 2.4.1 Temperatura .................................................................... 16 2.4.2 Oxígeno disuelto ..................................................... ....... 18 2.4.3 Corrientes ........................................................................ 19 2.4.4 Profundidad ..................................................................... 20 2.5 Factores bióticos .......................................................................... 20 2.5.1 Densidad ......................................................................... 20 2.5.2 Alimentación ................................................................... 22
Mario Alberto Silva Hernández Indice
ii CICIMAR-IPN
2.5.3 Comportamiento ............................................................. 24 2.5.4 Condiciones de la engorda ........................................... 25 3. JUSTIFICACIÓN ................................................................................... ....... 27
4. OBJETIVOS .......................................................................................... ....... 29 4.1 Objetivo general ............................................................................. 29 4.2 Objetivos particulares ................................................................... 29 5. MATERIALES Y METODOS ........................................................................ 30 5.1 Area de estudio .............................................................................. 30 5.2 Arte de cultivo ................................................................................ 31 5.2.1 Construcción e instalación de la balsa flotante .......... 31 5.2.2 Construcción de las jaulas ............................................ 32 5.2.3 Instalación de las jaulas flotantes ................................. 32 5.3 Organismos experimentales ........................................................ 33 5.3.1 Recolecta y transporte de organismos ......................... 33 5.3.2 Biometría de los organismos capturados .................... 33 5.3.3 Aclimatación al cautiverio y al alimento balanceado .. 34 5.3.4 Siembra ............................................................................ 34 5.4 Diseño experimental ...................................................................... 35 5.5 Parámetros físico químicos del agua ........................................... 35 5.6 Alimento .......................................................................................... 36 5.6.1 Ración alimentaria ........................................................... 36 5.7 Biometrías y cambio de redes ...................................................... 37 5.8 Análisis proximal de los peces .................................................. 37 5.9 Análisis de datos ........................................................................... 38 6. RESULTADOS ............................................................................................. 43 6.1 Adaptación y manejo de los peces al sistema de cultivo ......... 43
6.1.1 Captura y transporte ...................................................... 43 6.1.2 Aclimatación ................................................................... 43 6.1.3 Biometrías y cambio de redes ...................................... 43
6.2 Parámetros físico químicos ......................................................... 44 6.3 Consumo de alimento .................................................................. 45 6.4 Crecimiento .................................................................................... 47 6.4.1 Normalidad y homogeneidad de varianza .................... 47
Mario Alberto Silva Hernández Indice
iii CICIMAR-IPN
6.4.2 Peso ................................................................................. 47 6.4.3 Biomasa total ............................................................... 48 6.4.4 Longitud ......................................................................... 51
6.4.5 Peso ganado ................................................................. 51 6.4.6 Ganancia en biomasa ................................................... 52 6.4.7 Tasa de crecimiento absoluta ...................................... 52 6.9.8 Tasa de crecimiento especifica ................................... 53 6.5 Supervivencia de juveniles ......................................................... 53 6.6 Indices de condición y de calidad del alimento ....................... 54 6.6.1 Factor de conversión alimenticia ................................ 54 6.6.2 Valor proteico productivo ............................................ 54 6.6.3 Tasa de eficiencia proteica .......................................... 54 6.6.4 Factor de condición ...................................................... 55 6.7 Análisis químico y proximal del pargo amarillo ....................... 55 7. DISCUSIÓN ................................................................................................ 57 7.1 Adaptación y manejo de los peces al sistema de cultivo ....... 57
7.2 Parámetros físico químicos del agua .................................... 58 7.3 Crecimiento de los juveniles ...................................................... 59 7.4 Supervivencia de juveniles ........................................................ 63 7.5 Comportamiento .......................................................................... 64 7.6 Indices de condición y calidad del alimento ............................. 65 7.7 Análisis químico del pargo amarillo .......................................... 68 8. CONCLUSIONES ....................................................................................... 70 RECOMENDACIONES PARA TRABAJOS FUTUROS ................................ 72 BIBLIOGRAFÍA .............................................................................................. 73 ANEXO I ......................................................................................................... 88 ANEXO II ........................................................................................................ 100 ANEXO III ....................................................................................................... 104
Mario Alberto Silva Hernández Glosario
iv CICIMAR-IPN
GLOSARIO
Aclimatación: Proceso en el cual se acondicionan paulatinamente a los organismos a un
determinado parámetro ambiental para evitarles el estrés.
Alimentación ad libitum ó saciedad: Cantidad de alimento voluntariamente ingerido
hasta que el organismo deja de consumirlo.
Biomasa: Es el peso vivo o el peso total de la materia viva en una superficie determinada.
Se expresa en unidades de peso/área, como kg/m3 (De La Lanza Espino et al., 1991).
Biometría: Proceso de manipular a los organismos con el propósito de obtener su peso y
talla.
Cosecha: Recolección de productos derivados de un cultivo en cualquiera de sus
modalidades (De La Lanza Espino et al., 1991).
Cenizas: Es el residuo inorgánico remanente después de la incineración en la mufla a
350 °C por 24 horas (Watanabe, 1988).
Crecimiento: Este representa la salida neta de una serie de procesos fisiológicos y de
comportamiento que inician con el consumo de alimento y finalizan con incrementos en
longitud y peso (Brett, 1979).
Engorda: Etapa del cultivo que comienza en peces con un peso superior a 5 ó 10 g (De
La Lanza Espino et al., 1991).
Extracto etéreo: Procedimiento tradicional el cual envuelve el secado y la extracción
exhaustiva de sustancias como los ácidos grasos, fosfolípidos, ceras, lecitinas con éter
etílico utilizando el equipo Soxhlet (Watanabe, 1988).
Fibra cruda: Se compone fundamentalmente de la celulosa, lignina y pentosas presentes
en los alimentos. Esta se determina coma la perdida en la incineración del residuo seco
después de la digestión de una muestra con un ácido (H2SO4) y una base (NaOH) bajo
condiciones especificas (Watanabe, 1988).
Mario Alberto Silva Hernández Glosario
v CICIMAR-IPN
Nutrición: Area del conocimiento sobre las diversas reacciones químicas y procesos
fisiológicos que transforman los alimentos en tejidos corporales (De La Lanza Espino et
al., 1991).
Período juvenil: Está compuesto de dos fases, la fase prejuvenil, la cual inicia cuando se
han formado todos los elementos de la aletas pares e impares y termina cuando se inicia
el patrón de escamación. La fase juvenil es considerada cuando los peces han
completado su patrón de escamación y termina cuando se inicia la formación de la
gónada (Ortiz-Galindo, 1991).
Proteína cruda: Se estima multiplicando el contenido de nitrógeno total (por el método de
Kjeldahl) por el factor que corresponde al contenido de nitrógeno que posee una proteína
(N X 6.25) (AOAC, 1995).
Producción: Cantidad de energía o materiales generados por un individuo, una población
o una comunidad, en un periodo específico (De La Lanza Espino et al., 1991).
Siembra: Proceso de introducción de peces en el agua para que proliferen (De La Lanza
Espino et al., 1991).
Sistema intensivo: Sistema de producción en el cual todos los requerimientos
nutricionales son proporcionados con alimentos completos, en algunos casos pueden
controlar las variables ambientales y las densidades del cultivo son elevadas lo que
permite obtener altas producciones con relativamente poca área de cultivo (Castelló-
Orvay, 1993).
Mario Alberto Silva Hernández Lista de Tablas
vi CICIMAR-IPN
LISTA DE TABLAS
Tabla 1. Análisis químico proximal y de energía del alimento comercial Silver Cup.
Tabla 2. Valores promedio de temperatura ± desv. est., oxígeno disuelto en mg/l ± desv. est., y
salinidad en partes por mil, del agua dentro de las jaulas, durante el cultivo de
juveniles del pargo amarillo Lutjanus argentiventris.
Tabla 3. Valores promedio del consumo mensual de alimento por jaula ± desv. est., durante el
cultivo de juveniles del pargo amarillo Lutjanus argentiventris.
Tabla 4. Valores promedio del consumo mensual de alimento por pez ± desv. est., durante el
cultivo de juveniles del pargo amarillo Lutjanus argentiventris.
Tabla 5. Peso en gramos de los juveniles del pargo amarillo (promedio ± desv. est.), por tiempo
y densidad.
Tabla 6. Biomasa total en gramos (pomedio ± desv. est.), de los juveniles del pargo amarillo
por densidad, durante el experimento.
Tabla 7. Tasas estimadas de crecimiento de juveniles del pargo amarillo por densidades, a
partir del modelo exponencial Y=aebx.
Tabla 8. Longitud patrón en centímetros de los juveniles del pargo amarillo (promedio ± desv.
est.), por tiempo y densidad.
Tabla 9. Peso ganado en gramos ganado por los juveniles del pargo amarillo (promedio ± desv. est.), por tiempo y densidad.
Tabla 10. Tasa de crecimiento absoluto (TCA)(g/día), obtenida por los juveniles del pargo
amarillo, en su respectiva temperatura (promedio ± desv. est.), por tiempo y densidad.
Mario Alberto Silva Hernández Lista de Tablas
vii CICIMAR-IPN
Tabla 11. Indices de crecimiento: peso ganado (PG), ganancia en biomasa (G), tasa de
crecimiento absoluto (TCA) y tasa de crecimiento especifico (SGR), calculados
durante el experimento para los juveniles del pargo amarillo por densidad (promedio
± desv. est.).
Tabla 12. Porcentaje de supervivencia (SUP), de los juveniles del pargo amarillo por densidad
(promedio ± desv. est.), al final del experimento.
Tabla 13. Indices de condición y de calidad del alimento: factor de conversión alimenticia (FCA),
valor proteico productivo (PPV), tasa de eficiencia proteica (PER) y factor de condición
(FC), calculados durante el experimento para los juveniles de L. argentiventris por
densidad (promedio ± desv. est.).
Tabla 14. Análisis químico proximal del pargo amarillo entero por densidad al inicio y al final del
experimento (promedio ± desv. est.).
Tabla 15. Análisis químico proximal del músculo del pargo amarillo por densidad al inicio y al
final del experimento (promedio ± desv. est.).
Mario Alberto Silva Hernández Lista de Figuras
viii CICIMAR-IPN
LISTA DE FIGURAS
Figura 1. Vista de planta del sistema de anclaje para las jaulas flotantes.
Figura 2. Vista lateral del sistema de anclaje para las jaulas flotantes.
Figura 3. Jaulas experimentales.
Figura 4. Histograma de frecuencias del peso promedio de la biometría exploratoria
del pargo amarillo.
Figura 5. Alimento consumido por los organismos en las diferentes densidades de
cultivo en función de la temperatura.
Figura 6. Curvas de crecimiento exponencial de juveniles del pargo amarillo en la
densidad de 6 peces/m2.
Figura 7. Curvas de crecimiento exponencial de juveniles del pargo amarillo en la
densidad de 9 peces/m2.
Figura 8. Curvas de crecimiento exponencial de juveniles del pargo amarillo en la
densidad de 12 peces/m2.
Mario Alberto Silva Hernández Resumen
ix CICIMAR-IPN
RESUMEN
Con el fin de evaluar el efecto de la densidad de cultivo en el crecimiento y la
composición proximal de los juveniles silvestres del pargo amarillo Lutjanus argentiventris,
se utilizaron 366 ejemplares con un peso promedio de 42.27 ± 5.05 g y con una longitud
patrón de 10.91 ± 0.44 cm. Se utilizaron tres densidades experimentales: 6, 9 y 12
peces/m2, durante un período de 182 días. El experimento se realizó en 9 jaulas flotantes
de 4.5 m2 de capacidad, instaladas en la laguna de La Paz.
Los organismos fueron capturados por medio de métodos tradicionales y
transportados a la zona de aclimatación. La fase de aclimatación de los peces al consumo
de alimento balanceado, tomó un tiempo aproximado de 60 días después de su captura.
Posteriormente, fueron distribuidos de forma aleatoria en jaulas flotantes utilizando tres
replicas por densidad experimental. Se realizó un monitoreo diario de la temperatura, la
salinidad y el oxígeno disuelto. Los organismos fueron alimentados diariamente (ad
libitum), proporcionandoles un alimento peletizado comercial con 47% de proteína y 8.5%
en lípidos, administrandolo en una sola ración, la cual se suministró durante dos horas
aproximadamente, registrando la cantidad de alimento proporcionado por jaula.
Mensualmente se realizaron biometrías a todos los organismos vivos, donde se
registró el peso y la longitud patrón. Al inicio y al final del experimento, se les realizó el
análisis químico proximal y de contenido de energía tanto al alimento balanceado como al
músculo y cuerpo entero de los peces.
El peso promedio de los peces expresado en gramos al finalizar el experimento fue
de 99.86 ± 16.04, 107.85 ± 22.04 y 109.66 ± 21.57 para las densidades 6, 9 y 12
peces/m2 respectivamente. Se encontró que el peso final de los organismos en la
densidad de 6 peces/m2 fue significativamente menor (P<0.05) que las densidad 9 y 12
peces/m2. Sin embargo, entre las densidades de 9 y 12, no se encontraron diferencias
significativas entre las densidades evaluadas (P>0.05). Se detectó que la biomasa total
producida en la densidad de 6 peces/m2 (2629 g), fue significativamente menor (P<0.05),
comparada con la producida en la densidad de 12 peces/m2 (5702 g). La supervivencia al
finalizar el experimento fue mayor al 96% en todas las densidades evaluadas y no se
encontró diferencias significativas (P>0.05). El factor de conversión alimenticia (FCA)
determinado fue 4.33 ± 0.42, 2.82 ± 0.04 y 2.78 ± 0.22 para las densidades de 6, 9 y 12
peces/m2 respectivamente, presentándose que el FCA en la densidad de 6 peces/m2
Mario Alberto Silva Hernández Resumen
x CICIMAR-IPN
fuera significativamente mayor (P<0.05). El factor de condición (FC) fue de 3.08, 2.97 y
3.06 para las densidades de 6, 9 y 12 peces/m2 respectivamente, sin embargo no se
presentaron diferencias significativas entre las densidades (P>0.05). La tasa especifica de
crecimiento (SGR), en las densidades 6, 9 y 12 peces/m2 fue de 0.48 ± 0.05, 0.51 ± 0.02 y
0.53 ± 0.02 respectivamente, sin presentar deferencias significativas (P>0.05). La tasa de
eficiencia proteica (PER), no presentó una diferencia significativa entre las densidades
(P>0.05), sin embargo, se encontró una tendencia a aumentar a densidades mayores 0.44
± 0.05, 0.67 ± 0.01 y 0.69 ± 0.06 para 6, 9 y 12 peces/m2 respectivamente. El valor
proteico productivo (PPV), mostró ser significativamente menor (P<0.05) en la densidad
de 6 peces/m2 (6.51), en comparación con la densidad de 9 peces/m2 (8.47).
Los datos de crecimiento en peso de los individuos para cada densidad se
ajustaron a un modelo de crecimiento exponencial, encontrándose un coeficientes de
correlación de 0.81, 0.78 y 0.82 para las densidades 6, 9 y 12 peces/m2 respectivamente.
Sin embargo no se encontraron diferencias significativas (P>0.05), entre las pendientes de
crecimiento de cada densidad.
Se concluye que la densidad de siembra más adecuada entre las densidades
evaluadas en este estudio, para el cultivo de juveniles del pargo amarillo fue 12 peces/m2,
por presentar una mayor ganancia en peso, una mayor producción de biomasa total y que
a pesar de no encontrarse diferencias significativas (P>0.05), se encontró una tendencia a
mejorar el aprovechamiento del alimento balanceado, evidenciado por la mejor eficiencia
en FCA, FC y la mejor TCA, SGR y PER.
Para el análisis proximal del cuerpo entero de los organismos, se detectó que la
densidad de 12 peces/m2, presentó el mayor contenido de energía (5531.7 cal/g), en
comparación con la densidad de 6 peces/m2 (5060.6 cal/g). En el caso del análisis
proximal del músculo, la proteína cruda encontrada en los peces cultivados en la densidad
de 12 peces/m2 fue superior (P<0.05) al inicio del experimento (86.9), comparándola con
el resultado obtenido al final del experimento (81.2).
Se puede considerar al pargo amarillo como un candidato para su cultivo en jaulas
flotantes, por presentar resistencia al manejo, altas supervivencia (> 96 %), soportar un
rango amplio de temperaturas (17.6 – 30.3 ºC), una captación alta del alimento
balanceado y no ser una especie agresiva ni territorialista en altas densidades de cultivo.
Mario Alberto Silva Hernández Abstract
xi CICIMAR-IPN
ABSTRACT
The objective of the present thesis was to evaluate the effect of the initial stocking
density in the growth, survival, and chemical composition of the juvenile of the yellow
snapper Lutjanus argentiventris in floating net cages. 366 fish were stocked (42.27 ± 5.05
g, wet weight and 10.91 ± 0.44 cm, standard length) in three experimental densities 6, 9,
and 12 fish/m2, during a period of 182 days. The experiment was carried out in nine
floating net cages of 4.5 m2 of capacity installed in the ensenada de La Paz.
The organisms were captured using traditional methods (lines and nets) and
transported to the acclimatization area. The acclimatization phase last approximately 60
days. After this period, the juveniles were randomly distributed in the floating net cages by
triplicate for each experimental density. Temperature, salinity and dissolved oxygen was
measured daily. The fish were fed ad libitum daily ones per day (2 hours period), with an
artificial commercial food, containing 47% protein and 8.5% lipids.
Every month all fish were measured (wet weight and standard length); and the
number of alive organisms was recorded. At the beginning and the end of the experiment,
10 fish for each density were sacrificed to carry out the chemical analysis and energy
content to the muscle and whole body.
The mean weight of the fish at the end of the experiment was of 99.86 ± 16.04 g,
107.85 ± 22.04 and 109.66 ± 21.57 for 6, 9 and 12 fish/m2 respectively. The final weight of
the organisms in the density of 6 fish/m2 was significantly smaller (P < 0.05) that the
densities 9 and 12 fish/m2. However, between the 9 and 12 fish/m2 no significant
differences were observed. The total biomass in the density of 6 fish/m2 (2629 g) was
significantly smaller than 12 fish/m2 (5702 g). Wet weight of fish for each density were
adjusted to an exponential model (y=aebx), high correlation coefficients were calculated for
6, 9 and 12 fish/m2 (0.81, 0.78 and 0.82 respectively). However, no significant differences
in the growth rates were detected.
Survival was high in all densities (approximately 96%). The feeding conversion
factor (FCA) was significantly higher in 6 fish/m2 compared with the two others. No
significant differences were detected in the condition factor (FC), specific growth rate
(SGR), protein efficiency rate (PER), and protein productive value (PPV) between
densities.
Mario Alberto Silva Hernández Abstract
xii CICIMAR-IPN
Significantly higher energy content for whole body was detected between 12
fish/m2 (5531.7 cal/g), compared to 6 fish/m2 (5060.6 cal/g). The chemical analysis of the
muscle showed higher significant differences for total protein in 12 fish/m2 (86.9%),
compared with the fish at the beginning of the experiment (81.2%).
We conclude that the optimal stocking density for the yellow snapper culture in
floating net cages was 12 fish/m2, because higher weight gain, total biomass, and smaller
FCA were calculated. We consider yellow snapper as a good candidate for aquaculture.
This species present high resistance to the handling, high survival (>96%), resist wide
range of temperatures (17.6 - 30.3 ºC), good adaptation to the artificial food, and is not
aggressive under high stocking densities.
Mario Alberto Silva Hernández Introducción
1 CICIMAR-IPN
1. INTRODUCCION
La acuicultura se define como el arte de cultivar organismos acuáticos y plantas.
Esta abarca diversas actividades de las cuales su principal objetivo es la producción de
organismos de agua dulce, salobre y marinas cultivadas por el hombre bajo condiciones
controladas o semi–controladas. Existen cuatro áreas principales de la producción
acuícola: el cultivo de algas (principalmente en el Sureste de Asia), de moluscos, de
crustáceos y el de peces. La acuicultura se originó en China y se le atribuye a Fan-Li, el
primer cultivo de peces alrededor de 1400 AC (Bernabé, 1994). Se podría decir que el
nacimiento de la acuicultura moderna se desarrollo de la observación del comportamiento
de los animales silvestres, tales como los peces durante su migración, la fijación de
moluscos en un sustrato y de algunos tipos de pesca basados en la captura de peces
cuando estos se desplazaban de lagunas costeras hacia el mar. Después de su captura
estos peces se colocaban en áreas protegidas para su cultivo en condiciones extensivas
(Chauvet, 1990, citado en Bernabé, 1994).
En países industrializados el principal objetivo de la acuicultura es la producción de
productos de alto valor para el consumo humano, los cuales no son obtenidos en
cantidades suficientes por la pesca (Bernabé, 1994).
La posibilidad de substituir alimentos de origen terrestre por fuentes de proteína de
origen acuático derivadas de la pesca, es ciertamente muy importante pero tiene sus
limitaciones. La pesquería de especies marinas se encuentran próximas al límite de
explotación sustentable y de continuar aplicando las técnicas de pesca tradicionales
seguramente se colapsarán (Castello-Orvay, 1993). Una alternativa, tecnológicamente
viable, para hacer frente a la creciente demanda de alimentos de origen proteínico para el
consumo generalizado de la población humana es sin duda alguna, la piscicultura marina
(Castello-Orvay, 1993).
Mario Alberto Silva Hernández Introducción
2 CICIMAR-IPN
El pescado es uno de los productos alimenticios más ampliamente distribuidos en
el mundo. Este contribuyó con el 6% de la proteína total suministrada y aportó para la
contribución indirecta de harina de pescado para alimentar animales, aproximadamente el
24 % de la proteína animal total provista (Shilo y Sarig, 1989).
La domesticación de especies piscícolas para el cultivo comercial intensivo es una
práctica relativamente moderna, que se ha enfocado primordialmente a las especies
carnívoras, porque su alto valor comercial permite grandes inversiones de largo plazo
requeridas para su desarrollo (Flores–Gatica, 1995). En el cultivo intensivo los peces
están sometidos a un confinamiento controlado, en estanques relativamente pequeños y
controlables, con canales de flujo rápido o jaulas flotantes y dependen totalmente del
suministro de alimento artificial, además, de estar sujetos por lo general a altas
densidades de cultivo (Tucker, 1998).
La producción acuícola mundial de peces, se ha incrementado de 11,284,725
Toneladas Métricas en 1993 y 16,664,491 TM en 1996. Repartiéndose el 85.1% las
especies dulceacuícolas, 11.4% diadromos y 3.5% las especies marinas. Alrededor del
97.4% de los peces marinos cultivados mundialmente son producidos por 12 países:
Japón (39.6%), China (38.5%), Grecia (4.2%), Egipto (3.6%), Taiwan (2.2%), Turquía
(1.8%), Korea (1.8%), Indonesia (1.8%), Italia (1.7%), España (1.1%), Hong Kong (0.7%) y
Malasia (0.4%) (FAO, 1998).
El cultivo de peces marinos se inició al comienzo del siglo 20 en Europa, pero la
falta de tecnología y de los resultados de investigaciones científicas que ahora son
disponibles (materiales plásticos, electricidad, hormonas), impidieron un rápido desarrollo
en esa época (Shelbourne, 1964, citado en Bernabé, 1994).
El mejoramiento de las técnicas para la maduración, desove, cultivo larval,
producción de juveniles y la tecnología de la engorda durante la década de los 90, ha
incrementado la producción de peces marinos a través de la acuicultura (Benetti y Feeley,
Mario Alberto Silva Hernández Introducción
3 CICIMAR-IPN
1998). En 1995, la producción total de peces marinos a través de la acuicultura fue de
532,000 toneladas métricas (TM). En países tropicales y subtropicales de Latinoamérica,
especies de importancia comercial de peces marinos localmente conocidos como pargos
(Lutjanus spp.), meros, robalos, lisas, corvinas, roncadores, dorado, pámpanos, atunes y
lenguados exhiben un potencial extraordinario para el desarrollo de la acuicultura
comercial (Benetti y Feeley, 1998). Todavía, incluso aun que la producción mundial se ha
incrementado exponencialmente durante los 90’s (F.A.O., 1997), este potencial
permanece sin realizarse en estos países, con la excepción de salmónidos en Chile y
unas pocas investigaciones y proyectos de desarrollo. La producción de peces marinos de
alto valor comercial en países Latinoamericanos y del Caribe han sido insignificantes y se
restringen a operaciones a escala piloto (Benetti et al., 1994).
El cultivo de peces marinos se puede realizar en estanques y tanques con
sistemas abiertos o de recirculación de agua, sin embargo, el sistema de jaulas flotantes
costeras y de mar abierto exhiben el mayor potencial para la engorda comercial de peces
marinos (Benetti et al., 1994).
Los orígenes del cultivo de peces en jaulas no son bien conocidos, se piensa que
las primeras jaulas fueron utilizadas por pescadores como estructuras de mantenimiento
temporal para los peces, hasta que se acumulara un número suficiente para ser vendidos
(Masser, 1988; Beveridge, 1996). Las primeras jaulas específicamente construidas para la
producción de peces fueron aparentemente desarrolladas en el Sureste de Asía,
aproximadamente a finales de 1900. Estas fueron construidas de madera o bambú y los
peces fueron alimentados con peces forrajeros y trozos de pescado (Masser, 1988).
El cultivo moderno en jaulas inicio en 1950, utilizando la ventaja de materiales
sintéticos para su construcción, lo cual permitió aprovechar aguas costeras menos
protegidas, gracias a la resistencia de dichos materiales. En la actualidad el cultivo en
jaulas está recibiendo más atención por los productores comerciales y los investigadores.
Mario Alberto Silva Hernández Introducción
4 CICIMAR-IPN
Los factores tales como el incremento del consumo de peces, algunas disminuciones de
las capturas naturales de peces y una pobre economía en las granjas de peces en
estanques han producido un fuerte interés en la producción de peces en jaulas. La
acuacultura aparenta ser una industria de rápida expansión y que puede ofrecer
oportunidades incluso a pequeña escala. El cultivo en jaulas también ofrece a los
piscicultores la oportunidad de utilizar los recursos de agua costeros existentes, los cuales
en la mayoría de los casos han limitado su uso a otro tipo de actividades (Masser, 1988).
El cultivo en peces marinos en jaula flotantes, fue introducido a Japón en 1956 y
rápidamente se extendió por todo el país con la producción del jurel Seriola
quinqueradiata y el esparido Pagrus major a partir de juveniles silvestres. Fue tal el éxito
en el cultivo de estas especies que para el año de 1989, alcanzaron una producción de
166,000 y 45,220 toneladas respectivamente, superando 4.8 veces la producción
pesquera del jurel (Ikenoue y Kafuku, 1992).
En Noruega, el desarrollo de la tecnología de cultivo de peces marinos en jaulas
flotantes se implementa en los años ochenta con el cultivo del salmón, obteniendo
resultados de producción muy favorables. Esto motivó mucho a los piscicultores
europeos, quienes evaluaron el potencial del cultivo comercial de otras especies como
Sparus aurata y Dicentrarchus labrax, así como Scophthalmus maximus en el
Mediterráneo. Este esfuerzo dio como resultado una creciente producción de alto valor
comercial, se estima en más de 15,000 toneladas métricas anuales (Sorgeloos et al.,
1986).
Las jaulas flotantes costeras y de mar abierto son los sistemas mas ampliamente
usados para la acuicultura comercial de peces marinos en Asia (Ikenoue y Kafuku, 1992;
Aoki, 1995; Chou et al., 1995; Li, 1995; Liao et al., 1995), produciendo mas del 90 % de
los 7.5 millones de TM de la producción mundial de peces marinos con alto valor
comercial entre 1992 y 1995 (Main y Rosenfeld, 1995). El cultivo en jaulas de peces
Mario Alberto Silva Hernández Introducción
5 CICIMAR-IPN
marinos ha crecido rápidamente durante la última década en Europa, particularmente en
Grecia y España con la dorada (Sparus aurata) y la lobina del Mediterráneo
(Dicentrarchus labrax). La producción de dorada y lobina en Europa incrementó de 1,000
TM en 1985 a 35,000 TM en 1994 (New, 1997) y superó las 60,000 TM en 1997 (Harache
y Paquotte, 1998). El cultivo en jaulas también se desarrolla muy rápidamente en
Australia, donde el atún aleta azul del sur (Thunnus maccoyii), ha llegado a ser una
industria multimillonaria. Los ranchos marinos de atún en Australia iniciaron en 1990 y es
la mayor industria de acuicultura de atún aleta azul, con una producción de
aproximadamente 3,000 toneladas en 1997 (New, 1998).
En Estados Unidos la piscicultura marina se enfoca comercialmente en las
especies Sciaenops ocellatus y a nivel experimental en el cultivo de pámpano Trachinotus
carolinus, el dorado Coryphaena hippurus y las especies de robalo Centropomus
parallelus, C. pectinatus y C. undecimalis ( Tucker y Jory,1991).
En el Pacífico latino-americano existe un gran potencial para implementar el cultivo
en jaulas flotantes. En Chile se cultiva comercialmente los salmones Salmo salar y
Oncorhynchus kisutch y se está implementando el cultivo para Scophtalmus maximus
(Flores–Gatica, 1995).
En Venezuela, Martinica y Colombia se realiza el cultivo del pámpano Trachinotus
carolinus, T. goodei, T. falcatus, el pargo Lutjanus analis, las cabrillas Epheniphelus itajara
y Mycteroperca bonaci y la paguara Chaetodipterus faber (Tucker y Jory, 1991). Se ha
observado que en condiciones de cultivo, juveniles silvestres del pargo gris Lutjanus
griseus crecen de 44 a 233 g en 210 días con una dieta de pescado fresco (León et al.,
1996). El pargo dorado Lutjanus johnii cuando es alimentado con peces forrajeros y
cultivados en jaulas, puede crecer de 90 a 600-800 g, en 6-8 meses (Tucker, 1998).
En México, específicamente en el Golfo de México en las costas de Campeche, la
empresa "Pesca Sustentable Sociedad de Responsabilidad Limitada, cultiva pámpano
Mario Alberto Silva Hernández Introducción
6 CICIMAR-IPN
(Trachinotus carolinus), palometa (T. falcatus) y boquinete (Lachnolaimus maximus) en
jaulas flotantes. En la región noroeste del país, destaca el estado de Sinaloa, con el
cultivo a nivel experimental del pargo amarillo L. argentiventris realizado por la empresa
CIFSA Consultores en colaboración con el gobierno del estado. Esta empresa realizó la
engorda de juveniles silvestres durante 6 meses en una densidad de 81 ind/m3 para
probar su factibilidad económica en jaulas flotantes hasta alcanzar un peso comercial de
300 g (CIFSA, 1990). El gobierno de Sonora inició el cultivo de esta misma especie a
finales de 1993 (Rodríguez-Ortega et al., 1994), y realiza además los estudios básicos
para el cultivo de Totoaba macdonaldi (Barrera-Guevara et al., 1994).
En Baja California Sur, el Centro Interdisciplinario de Ciencias Marinas (CICIMAR-
IPN) ha realizado estudios sobre la biología y cultivo larval de Cynoscion parvipinnis,
Gerres cinereus, P. maculatofasciatus, Eugerres axiláris, Calamus brachysomus y
Atherinops afinis (Matus-Nivón et al., 1990). También, el estudio del efecto de la densidad
de siembra en el crecimiento de la cabrilla arenera P. maculatofasciatus en jaulas
flotantes (Grayeb-Del Alamo, 2001). Además el Centro Regional de Investigaciones
Pesqueras de la Paz donde han descrito las técnicas del cultivo en jaulas flotantes y la
engorda del pargo amarillo L. argentiventris, el pargo raicero L. aratus y el pargo colorado
o huachinango L. peru, y la cabrilla arenera P. maculatofasciatus (Avilés-Quevedo y
Lizawa 1993; Avilés-Quevedo et al., 1995, 1996a, 1996b). El Centro de Investigaciones
Biológicas del Noroeste, ha realizado estudios sobre la reproducción artificial de la cabrilla
sardinera (Mycteroperca rosacea) (Gracia-López et al., 2003).
Aunado a estos estudios se cuenta con un experimento el cual se evaluó el efecto
de la densidad de siembra de juveniles silvestres del pargo amarillo L. argentiventris
cultivado en jaulas dentro de un estanque intermareal, localizado en la ensenada de La
Paz, tomando como sus densidades experimentales 6, 9 y 12 peces/m3 obteniendo que el
peso promedio final de los pargos sembrados a la densidad de 6 peces/m3 fue superior a
Mario Alberto Silva Hernández Introducción
7 CICIMAR-IPN
los 80 g en 125 días, consistentemente más pesados que el resto de los grupos de
densidades antes mencionados (Guerrero-Tortolero et al., 1999).
En el litoral del Pacífico Mexicano, los únicos intentos de piscicultura marina
comercial se están realizando en Isla de Cedro y Ensenada, B.C., con el cultivo de atún
aleta azul (Thunnus thynnus) y los cultivos del jurel (Seriola lalandi), en Bahía Magdalena
B.C.S., financiado por las empresas AQUACULTIVOS BAJAMAR S.A. y KALADA S.A.
Según las estadísticas acuícolas de FAO (1999), actualmente, los principales
peces marinos que se cultivan en jaulas flotantes son S. quinqueradiata con 138 536 Tm
y Pagrus major (81 426 Tm), en Japón, Dicentrarchus labrax (27 189 Tm) y Sparus aurata
(40 779 Tm) en Europa, Latex calcarifer con volúmenes de 19 676 Tm en Indonesia,
Malasya, Taiwan y Thailandia. En cuanto a la producción de atún (Thunnus maccoyi y T.
thynnus) cultivado, las cifras son de 2 189 Tm y solo se cultiva en España y Australia,
mientras que el cultivo de peces del género Epinephelus (5 247 Tm) y Lutjanus (2 128
Tm) se restringe solamente a los países asiáticos.
Mario Alberto Silva Hernández Antecedentes
8 CICIMAR-IPN
2.0 ANTECEDENTES
2.1 Especie a cultivar
2.1.1 Taxonomía Según Allen (1985) y Nelson (1994), indicaron que el pargo amarillo pertenece a:
División: Teleostei
Subdivisión: Euteleostei
Superorden: Acanthopterygii
Serie: Percomorpha
Orden: Perciformes
Suborden: Percoidei
Familia: Lutjanidae
Subfamilia: Lutjaninae
Género: Lutjanus
Especie: Lutjanus argentiventris (Peters, 1869).
Los miembros de la familia Lutjanidae están distribuidos principalmente en aguas
marinas tropicales y subtropicales y los juveniles de varias especies de este género
frecuentemente habitan esteros salobres y algunos alcanzan corrientes de agua dulce
(Allen, 1995). La familia Lutjanidae esta integrada por 21 géneros con aproximadamente
125 especies reconocidas en 5 subfamilias: Etilinae, Apsilinae, Paradichthyinae,
Caesioninae y Lutjaninae. La subfamilia Lutjaninae esta compuesta de 6 géneros,
Hoplopagrus, Lutjanus, Macolor, Ocyurus, Pinjalo y Romboplites con aproximadamente 72
especies (Nelson, 1994). El género Lutjanus es el más numeroso con 64 especies,
conteniendo más de la mitad de las especies de la familia. Además, incluye 9
representantes del Pacífico Oriental: Lutjanus argentiventris, L. colorado, L. guttatus, L.
peru, L. viridis, L. aratus, L. jordani, L. novemfasciatus y L. inermis (Allen y Robertson,
Mario Alberto Silva Hernández Antecedentes
9 CICIMAR-IPN
1994). Lutjanus argentiventris es el pargo más común en el Golfo de California (Thomson
et al., 2000).
2.1.2 Distribución geográfica.
El pargo amarillo Lutjanus argentiventris se encuentra distribuido desde Puerto
Peñasco hasta Perú, extendiéndose desde la parte Norte fuera del Golfo de California
hasta Bahía Magdalena (Thomson et al., 2000). En Baja California Sur existen registros
en: Bahía de La Paz (Abitia–Cárdenas et al., 1994); Bahía Concepción, (Rodríguez–
Romero et al., 1994); Bahía Magdalena (De la Cruz–Agüero et al., 1994); Isla Cerralvo
(Galván–Magaña et al., 1996); Isla Espíritu Santo, El Juncalito, Loreto y Río Mulegé (De la
Cruz– Agüero et al., 1997). Dentro de los estudios de ecología de comunidades se
registra a L. argentiventris como una de las especies dominantes en Isla Espíritu Santo y
la montaña submarina el Bajo Espíritu Santo, zonas importantes de pesca deportiva en
Baja California Sur (Rodríguez-Romero, 2002).
2.1.3 Caracteres distintivos
Su cuerpo es relativamente alto, moderadamente comprimido. Perfil anterior de la
cabeza muy empinado, hocico algo puntiagudo; preopérculo con escotadura y tubérculo
poco acentuados; placa de dientes vomerinos triangular o semilunar, con una extensión
posterior mediana larga; lengua con un área de dientes granulares; 12 o 13
branquiespinas en la rama inferior del primer arco branquial. Aleta dorsal con X espinas y
14 radios blandos; aleta con III espinas y 8 radios blandos; perfil posterior de aletas dorsal
y anal redondeado a anguloso; aletas pectorales con 16 a 17 radios; aleta caudal
emarginada. Serie de escamas en el dorso paralelas a la línea lateral. Color: rosáceo–
rojizo anteriormente, pero anaranjado o amarillo intenso en la mayor parte del cuerpo
(Allen, 1995).
Mario Alberto Silva Hernández Antecedentes
10 CICIMAR-IPN
2.1.4 Hábitat
Vive sobre fondos rocosos; se encuentra generalmente cerca de refugios o cuevas
de tipo rocoso, los juveniles menores de 30 cm son comunes en esteros y pozas de
mareas. Grandes cardúmenes de juveniles mayores son comunes sobre arrecifes durante
el verano (Allen y Robertson, 1994; Thomson et al., 2000; Rodríguez–Romero, 2002).
2.1.5 Hábitos alimentarios
Es un depredador mayormente nocturno, aunque con frecuencia esta activo de
día. Usualmente se alimenta al anochecer y al amanecer. Los adultos se alimentan de
moluscos (principalmente pulpos), pequeños peces y crustáceos (camarones y cangrejos)
(Allen y Robertson, 1994; Grove y Lavenberg, 1997; Thomson et al., 2000).
2.1.6 Hábitos reproductivos
Se presume una actividad diurna relacionada al cortejo, es evidente durante los
meses de invierno cuando los adultos grandes, algunas veces se juntan dentro y fuera de
las cuevas. El desove ocurre poco después, ya que los juveniles aparecen al finalizar la
primavera (Thomson et al., 2000).
2.1.7 Condiciones ambientales
El pargo amarillo es una especie eurihalina y es considerada como invasora de las
aguas continentales de México, en alguna fase de su ciclo de vida (Castro–Aguirre y
Balart, 1997). En un cultivo experimental se ha demostrado que L. argentiventris presentó
una mejor tasa de crecimiento en longitud y peso a una salinidad de 23 ppm (Serrano–
Pinto y Caraveo-Patiño, 1999).
Temperaturas extremas de invierno probablemente limitan la abundancia de esta
especie tropical en la parte alta del Golfo de California. Durante el invierno de enero de
Mario Alberto Silva Hernández Antecedentes
11 CICIMAR-IPN
1971 a lo largo de la costa de Sonora, los buzos han reportado pargos amarillos lánguidos
y demacrados que se encontraban entumecidos por el agua fría y que además podían ser
capturados a mano (Thomson et al., 2000).
2.1.8 Pesca y utilización
El pargo amarillo es capturado en toda el área del Pacífico Centro Oriental, con
redes de arrastre, varios tipos de redes artesanales y líneas de mano, en áreas costeras
hasta 60 m de profundidad. La captura total para el área registrada en 1990 fue de 4 028
TM. Se comercializa en fresco o congelado (Allen, 1995).
2.2 Sistema de cultivo
Los sistemas de cultivo acuícolas se clasifican de acuerdo a su ubicación en:
cultivos en tierra (estanques en tierra firme), cultivos en la costa (encierros en la zona
intermareal) y cultivos en mar (ubicados en pleno mar, la mayoría flotantes) (Castelló–
Orvay, 1993). También, se clasifican de acuerdo a su rendimiento y estrategias y/o
disponibilidad de alimento como: cultivo extensivo, cultivo semi-intensivo y cultivo
intensivo (Bernabé, 1994, Beveridge, 1996).
El cultivo en jaulas flotantes es considerado intensivo inclusive más que el cultivo
en estanques, debido a que busca indudablemente una elevada producción en el menor
espacio y de la manera más rápida posible (Masser, 1988; Castello–Orvay, 1993;
Beveridge, 1996).
Las jaulas pueden ser de estructura flotante, sumergidas o de fondo, que utilizan
los recursos de agua existentes, encerrando en su interior especies ictiológicas para su
engorda que por medio de una red o canasta, permiten que el agua pase libremente entre
los peces y el embalse (Masser, 1988; Castelló – Orvay, 1993).
Mario Alberto Silva Hernández Antecedentes
12 CICIMAR-IPN
El sistema de jaulas flotantes para el cultivo de peces puede ser construido de una
gran variedad de materiales y en cualesquier forma y tamaño. La construcción básica del
sistema requiere de materiales fuertes, durables y no tóxicos. La forma puede ser circular,
rectangular y cuadrada. Los componentes de este sistema consisten de un marco o
soporte, una malla o jaula, una tapadera y un collar de flotación. El marco o soporte de las
jaulas puede ser construido de madera, fierro, acero, aluminio, fibra de vidrio o PVC. Los
soporte de madera, fierro y acero (excepto galvanizados), deben ser cubiertos con una
sustancia resistente al agua salada como la pintura epoxica. La jaulas pueden ser
construidas de alambre cubierto con plástico, red de nylon (con nudo o sin nudo) y malla
de plástico sólido (Beveridge, 1996, Masser, 1997). La talla de la malla no debe de ser
menor de ½ pulgada para asegurar la buena circulación de agua a través de las jaulas.
Todas las jaulas deben de tener tapaderas para asegurar que los peces no escapen y que
los depredadores (incluyendo gente), no tengan acceso a las jaulas. Los anillos de
flotación pueden ser provistos de styrofoam, espuma de caucho contra el agua, tubos de
PVC sellados o boyas de plástico (Masser, 1997).
El diseño de las jaulas flotantes puede ser rotatorias y no rotatorias. Las más
usadas son las no rotatorias y pueden ser construidas con un collar de flotación ancho o
angosto. Los collares de flotación anchos son más comunes en jaulas grandes y sirven
como plataformas de trabajo, estos facilitan muchas de las tareas rutinarias de la granja
(Beveridge, 1996).
2.2.1 Ventajas del sistema en jaulas flotantes
El cultivo en jaulas flotantes tiene algunas ventajas distintivas las cuales incluye:
1. Uso de cuerpos de agua existentes, la ventaja más importante del cultivo en
jaulas es el poder utilizar cuerpos de agua ya existente (lago, estanque, canal,
laguna costera, mar, etc.). No existe la necesidad de construir estanques de
Mario Alberto Silva Hernández Antecedentes
13 CICIMAR-IPN
fondo plano excesivamente caros, ni vertedores de agua que suministren y
mantengan la calidad de agua necesaria para el cultivo de peces (Nett y
Barrett, 1979; Beveridge, 1996).
2. Baja inversión inicial, ya que los materiales empleados y el diseñó es más
barato, se eliminan las instalaciones de bombeo, lo cual no sólo incide en el
capítulo de inversiones, sino también en el capítulo de gastos por consumo
energético (Masser, 1988; Castelló – Orvay, 1993).
3. Bajo nivel de tecnología para su construcción, a diferencia de las jaulas
flotantes para el cultivo de peces en mar abierto, que son verdaderamente muy
sofisticadas, la mayoría de las jaulas son de simple construcción y pueden ser
colocadas en un día o un poco más, usando mano de obra sin experiencia
(Beveridge, 1996).
4. Los peces pueden ser sencillamente separados por tallas y cosechados,
simplemente levantando la jaula y extrayendo los organismos (Nett y Barrett,
1979; Masser, 1988; Nakada y Murai, 1991).
5. Protección de depredadores, las jaulas cubiertas protegen a los peces de los
depredadores tales como, peces silvestres, aves marinas, etc. (Nett y Barrett,
1979).
6. Alto porcentaje de productividad y control de enfermedades, gracias al
intercambio continuo de agua a través de las redes de las jaulas, mantiene un
adecuado nivel de oxigeno disuelto y permite que se desplacen los desechos
metabólicos, evitando así infecciones causadas por la alta concentración de
materia orgánica (Teng et al., 1978; Nakada y Murai, 1991).
7. Las jaulas se pueden mover y reubicarse fácilmente, cuando algún factor
pueda llegar a ser limitante o no deseado (corriente de agua, profundidad,
Mario Alberto Silva Hernández Antecedentes
14 CICIMAR-IPN
oxígeno, salinidad, temperatura, organismos incrustantes y contaminación)
(Anónimo, 1986; Nakada y Murai, 1991; Beveridge, 1996).
8. Más eficiente detección y tratamiento de enfermedades, desde que los peces
son colocados en espacios confinados, ellos pueden ser más fácilmente
observados (Nett y Barrett, 1979).
9. Las jaulas son fáciles de remplazar (Nakada y Murai, 1991).
10. Las jaulas flotantes pueden ser reparadas por el propietario–operador (Nakada
y Murai, 1991).
11. Alta calidad de los peces cultivados en jaulas (Beveridge, 1996).
2.2.2 Selección del área de cultivo
Según Mateos-Velasco (1993) los criterios para la selección del sitio idóneo para la
colocación de las jaulas flotantes, pueden ser clasificados en función de tres factores:
1. Condiciones físico-químico-biológicas, dependiendo de la especie a cultivar
(temperatura, salinidad, oxígeno, corrientes, contaminación, blooms de algas,
etc.).
2. Condiciones ambientales (climatología, sustratos de los fondos, profundidad,
etc.).
3. Factores que afectan a la posibilidad del área seleccionada (aspectos legales,
seguridad, consideraciones socio-económicas, etc.).
Con anterioridad a la instalación de las jaulas se han de realizar una serie de
estudios previos para localizar la zona más adecuada. En estos estudios se han de tener
en cuenta la especie a cultivar y sus necesidades:
a) Calidad del agua: Análisis del agua de la zona prestando mayor atención a los
posibles contaminantes debido a productos tóxicos industriales o
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15 CICIMAR-IPN
contaminación originada por emisarios. Estudios de la variación de
temperaturas a lo largo del año, para comprobar si las máximas y mínimas se
encuentran dentro del rango aceptado por la especie que se desee cultivar.
b) Intercambio de agua: Estudio de las corrientes dominantes tanto su dirección
como su intensidad, comprobando sus límites máximos y mínimos.
c) Fouling: Tipo de incrustaciones y período en el que son más abundantes.
d) Datos meteorológicos: Vientos dominantes y su intensidad; vientos temporales
su frecuencia, envergadura y altura de las olas creadas por los mismos.
e) Profundidad: La profundidad de la zona debe de estar de acuerdo con el
tamaño de la red, teniendo en cuenta que debe de existir espacio entre el final
de la red y el fondo para así evitar que roce incluso cuando se den las
máximas olas. También hay que evitar que esta distancia sea pequeña para
que los posibles desechos acumulados bajo la red no puedan ser elevados
cuando los peces naden hacia la superficie a la hora de comer.
f) Tipo de sustrato del fondo: Importante para elegir el sistema de anclaje más
adecuado.
2.3 Crecimiento
El crecimiento es una de las actividades más complejas de los peces. Este
representa la salida neta de una serie de procesos fisiológicos y de comportamiento que
inician con el consumo de alimento y finalizan con incrementos en longitud y peso (Brett,
1979).
La curva de crecimiento en los peces, presenta una pendiente que decrece
continuamente (excepto, durante el estadio larval). Los acuacultores de peces necesitan
concentrarse en la parte de la pendiente más ascendente de la curva (Bernabé, 1994). Es
decir, cuando el alimento no es limitante, disminuye la tasa de crecimiento en la talla y la
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16 CICIMAR-IPN
edad, indudablemente siguiendo una curva continúa, excepto cuando los estadios de
desarrollo (reproducción, etc.) alteran el modelo (Brett, 1979).
El crecimiento de los peces puede ser afectado por factores abióticos y bióticos.
2.4 Factores abióticos
Fry (1971) consideró que los parámetros ambientales según su efecto pueden ser
colocados dentro de las siguientes categorías (Citado por Brett, 1979):
1. Factores controladores, los cuales gobiernan las tasas de reacción por
influenciar el estado de activación molecular de los metabolitos (ejs.
temperatura, pH).
2. Factores limitantes, los cuales restringen el suministro ó remoción de
metabolitos (ejs. oxígeno, luz, amonio).
3. Factores enmascarantes, los cuales modifican ó previenen el efecto de un
factor ambiental a través de algún dispositivo (ejs. regulación de la temperatura
por flujos calientes en contracorriente como en peces de cuerpos calientes,
corrientes).
4. Factores directivos, los cuales avisan ó señalan al animal a seleccionar ó
responder a una característica particular del ambiente (preferencia de
temperatura, fotoperiodo-inducido).
2.4.1 Temperatura
La temperatura es el factor controlador individual más importe que influencia el
crecimiento de los peces (Tucker, 1998).
Los peces son animales poiquilotermos, es decir que su temperatura corporal
depende en buen medida de la temperatura del agua, por lo que sus funciones vitales son
afectadas por las variaciones de este parámetro. Por lo que respecta al crecimiento, el
Mario Alberto Silva Hernández Antecedentes
17 CICIMAR-IPN
metabolismo de los peces se incrementa, de manera general, a medida que aumenta la
temperatura hasta llegar a un límite, por encima del cual no solo disminuye, sino que
incluso se puede entrar en la zona de “valores letales” (Castelló-Orvay, 1993).
En algunas ocasiones las especies son categorizadas por los intervalos de
temperatura en los cuales se encuentran saludables y crecen mejor: de agua fría (<15 ºC),
agua moderadamente fría (15-25 ºC) y de agua cálida (>25 ºC). En general, los peces de
agua cálida crecen mejor que los de agua fría y moderadamente fría (Tucker, 1998).
Muchas de las especies que se cultivan en la región del Caribe presentan una
temperatura óptima en el intervalo de 26-30 ºC (Tucker y Jory, 1991).
Para el espárido Pagrus major cultivado en jaulas flotantes en Japón, la
temperatura del agua no debe disminuir por debajo de los 10 ºC ó incrementarse a 29 ºC,
el intervalo más adecuado para obtener un mejor crecimiento se encuentra entre 17-18 ºC
(Watanabe, 1988). Bajo el mismo sistema de cultivo, Seriola quinqueradiata (Carangidae)
puede sobrevivir a temperaturas del agua de 7 a 28 ºC. La temperatura óptima para el
crecimiento está entre 24 y 26 ºC (Ikenoue y Kafuku, 1992). Esta misma especie, mostró
una buena actividad de alimentación a una temperatura de 18-27 ºC, siendo la mejor entre
24-26 ºC y siendo mala a menos de 13 ºC y más de 28 ºC (Watanabe, 1988).
Calderer y Cardona (1993), durante sus estudios realizados en la dorada europea
(Sparus aurata) y la lubina (Dicentrarchus labrax), ambos en jaulas flotantes, encontraron
que la dorada podía sobrevivir a temperaturas de 4 a 32 ºC, con un óptimo crecimiento
entre 22-28 ºC y la lubina de 2 a 30 ºC siendo el óptimo entre 18-24 ºC.
Juveniles del dorado (Coryphaena hippurus) cultivados en Instituto Oceánico de
Hawai, demostraron poder sobrevivir a temperaturas de 13-28 ºC, con un intervalo óptimo
lo obtuvieron entre 25 y 27 ºC (Ostrowsky, 1995).
Mario Alberto Silva Hernández Antecedentes
18 CICIMAR-IPN
Ramos (1993), determinó los límites de tolerancia y los intervalos óptimos de
temperatura para el mejor crecimiento de los peces planos cultivados comercialmente en
España. Para el rodaballo (Scophthalmus maximus) se observó 7–30 ºC y óptimo 15-18
ºC y para el lenguado (Solea vulgaris vulgaris) 7-30 ºC y óptimo 18-20 ºC .
2.4.2 Oxígeno disuelto
El oxígeno disuelto es esencial para la supervivencia de los peces, alimentación y
crecimiento. Este es usado para la oxidación del alimento, liberando la energía necesaria
para el crecimiento (Bernabé, 1994).
Las necesidades de oxígeno por parte de los peces varía en función de la especie,
de la edad y con su estado fisiológico, nutricional y de desarrollo, siendo también variable
la sensibilidad a las bajas concentraciones de oxígeno. Existen niveles mínimos
necesarios para mantener un buen estado de alimentación en base a los índices de
conversión del alimento y en consecuencia para una correcta tasa de crecimiento. La
elevación de las actividades biológicas, como sucede durante los procesos de
alimentación y crecimiento, requieren un mayor consumo de oxígeno, por lo que debe
encontrarse en las concentraciones adecuadas cuando dichos procesos son manifiestos
(Bautista-Parejo, 1993).
La concentración de oxígeno es cercana a la saturación (y algunas veces de
supersaturación) en ambientes naturales y varia de 8 mg/l en aguas frías y 4.5 en aguas
tropicales, siendo más baja en aguas marinas debido a la actividad fotosintética de las
plantas. En general, se ha estimado que el nivel de 5 mg/l es suficiente para la mayoría de
las especies de peces (Bernabé, 1994).
Cuando la concentración de oxígeno baja de 4 mg/l, Seriola quinqueradiata pierde
el apetito y cuando es mayor de 5 mg/l su apetito es bueno (Ikenoue y Kafuku, 1992).
Mario Alberto Silva Hernández Antecedentes
19 CICIMAR-IPN
2.4.3 Corrientes
El buen recambio de agua a través de las jaulas es esencial para reabastecer el
oxígeno y remover los desechos metabólicos.
La velocidad de la corriente en áreas costeras marinas típicamente se encuentran
en el intervalo de 0 cm/seg en aguas estancadas y de 250 cm/seg en algunos sitios
durante la pleamar y bajamar. Los buenos sitios de cultivo deben tener periodos mínimos
de agua estancada. Es difícil establecer la velocidad de la corriente máxima como óptima
para una especie en particular debido a la influencia del diseño de la jaula y la densidad
de confinamiento. El capital de inversión de las jaulas y del anclaje se incrementa a
medida que la velocidad de la corriente aumenta. Mientras la producción puede ser
incrementada (aumentando la densidad de confinamiento) en sitios con altas velocidades
de corrientes, algunas veces puede ocasionar la reducción inaceptable del volumen de las
jaulas y los peces pueden gastar energía excesiva para mantenerse estables, afectando
adversamente la producción. La velocidad de la corriente de pleamar y bajamar esta en el
intervalo de 0.1-0.6 m/seg. Una velocidad media de la corriente de 0.03-0.2 m/seg ha sido
encontrada ser satisfactoria para el cultivo de los peces (Beveridge, 1996).
La velocidad de corrientes adecuada para el cultivo del pargo dorado (Lutjanus
johni) es de 31-50 cm/seg en bajamar y de 23-26 cm/seg en pleamar. Las corrientes por
el flujo de las mareas no debe de exceder los 70 cm/seg, debido a que pudiera ocasionar
severos daños en las jaulas flotantes (Anónimo, 1986). Para el espárido (Pagrus major)
cultivado en jaulas una velocidad de corriente de 5 a 15 cm/seg se considera adecuada
(Ikenoue y Kafuku, 1992). En cultivos en jaulas del mero (Epinephelus salmoides) se
determinó que velocidades de corrientes entre 20 y 50 cm/seg son consideradas
adecuadas. Sin embargo, velocidades de 1.5 m/seg ocasionan estrés en los peces en
cultivo (Chua y Teng, 1980).
Mario Alberto Silva Hernández Antecedentes
20 CICIMAR-IPN
2.4.4 Profundidad
La profundidad de la zona es otro factor abiótico muy importante para el cultivo en
jaulas flotantes. La profundidad del área de cultivo debe de ser de al menos 5 m en la
marea más baja del año. Dicha profundidad determina el tamaño de la red, ya que es
necesario una separación de la jaula mínima de 2 metros con respecto al fondo del mar,
para facilitar el flujo de agua y para que los posibles desechos metabólicos acumulados
en el fondo no deterioren la calidad del agua de las jaulas (Anónimo, 1986). Otros
investigadores sugieren que la profundidad del mar debe de ser más del doble que la
profundidad de las jaulas (Ikenoue y Kafuku, 1992).
2.5 Factores bióticos
Uno de los factores bióticos que mayor afecta el crecimiento de los peces bajo
condiciones de cultivo es la densidad de confinamiento (Yi et al., 1996; Hengsawat et al.,
1997; Maragoudaki et al., 1999)
2.5.1 Densidad
La densidad de confinamiento óptima para el cultivo de peces marinos en jaulas
flotantes, varia de acuerdo a la especie, zona de cultivo, talla de los peces inicialmente
confinados y tamaño y forma de las jaulas (Teng et al., 1977). Además, la densidad
óptima desde el punto de vista del acuícultor de peces también dependerá en varios
factores tales como el costo de los peces cultivados por unidad de cultivo, disponibilidad y
costo de los juveniles a sembrar en las jaulas y cambios en el precio de mercado con la
talla del pez, etc. (Björnsson et al.,1994).
La alta densidad de confinamiento en peces cultivados en jaulas flotantes es
posible gracias al flujo de la corriente de agua, la cual aporta un adecuado suministro de
Mario Alberto Silva Hernández Antecedentes
21 CICIMAR-IPN
oxígeno disuelto y constantemente elimina los desechos metabólicos de los peces,
reduciendo los efectos dañinos de la sobrepoblación (Bardach et al., 1982).
La densidad de confinamiento es un factor determinante para la producción en
jaulas. Consecuentemente, la identificación de la densidad de confinamiento óptima
para una especie dada, puede ser un factor critico en el diseño de un eficiente sistema de
cultivo en jaulas (Hengsawat et al., 1997).
La densidad de confinamiento es uno de los factores bióticos más importantes que
afectan directamente el crecimiento de los peces y además la producción (Chua y Teng,
1979). En algunas especies, la densidad presenta un efecto que se correlaciona
positivamente con el crecimiento de los peces, es decir, un aumento de la densidad
genera un incremento en el peso y en la producción final. Papoutsoglou et al. (1998)
realizaron un estudio sobre el efecto de la densidad de cultivo sobre el crecimiento de
juveniles Dicentrarchus labrax, comparando 4 densidades de siembra (16, 33, 65, 130
org/m3), iniciando con juveniles de un peso promedio de 8 g por un periodo de 168 días y
alimentados con una dieta balanceada. Concluyeron al finalizar el experimento que la
densidad en esta especie presentó un efecto positivo sobre su crecimiento y por lo tanto
la densidad óptima fue la de 130 ind/m3 por haber obtenido la mejor tasa de crecimiento
especifico (SGR= 3.21), supervivencia del 100 % y mayor biomasa en comparación con el
resto de las densidades.
Se observó que en juveniles de Epinephelus tauvina con un peso promedio de
17.1 g y sembrados en dos densidades de confinamiento (200, 400 ind/m3), durante 52
días de cultivo y alimentados con un alimento balanceado comercial, la densidad no
presentó un efecto significativo sobre el crecimiento de dichos organismos y por lo tanto
determinaron que la densidad óptima es la de 400 ind/m3 por obtener más ganancia en
biomasa al final del experimento (Abdullah et al., 1987).
Mario Alberto Silva Hernández Antecedentes
22 CICIMAR-IPN
Sin embargo, Irwim et al. (1999) encontraron que el crecimiento del pez plano
Scophthalmus maximus (8.62 g) sembrado en diferentes densidades (.7, 1.1, 1.5, 1.8
ind/m2) sobre 45 días, fue correlacionado negativamente con la densidad.
2.5.2 Alimentación
Alimentar peces supone suministrarles todos los nutrientes que precisen en cada
momento y en la cantidad que sea necesaria. Nutriente, es toda sustancia que sirve como
fuente de energía metabolizable, o es un material necesario pera el crecimiento o la
reparación de los tejidos o para el mantenimiento de las funciones corporales (Fernández-
Borrás y Blasco-Mínguez,1993).
Cuando el alimento suministrado no cubre los requerimientos nutricionales de la
especie, el crecimiento se inhibe o se detiene por completo (Hepher, 1993).
El máximo crecimiento en términos de incremento en peso y talla esta determinado
por la nutrición y un régimen óptimo nutricional. La alimentación con dietas bien
balanceadas y su adecuado suministro son los factores más importantes para el éxito del
cultivo de peces. Sin el consumo de alimentos adecuados los peces no tienen la
capacidad de mantener su salud y de incrementar su peso corporal (Watanabe, 1988).
La alimentación es el problema central de la piscicultura marina, porque:
a) El rendimiento final del cultivo [o sea, Kg de peces producidos por Kg de
alimento consumido (FCA)] depende, para cada especie, de la calidad y
cantidad del alimento.
b) Las dietas nutricionales deficientes afectan el crecimiento de los peces,
disminuyendo la producción y también traen como resultado un deterioro de
la salud en los organismos.
El objetivo principal del cultivo intensivo de peces marinos es maximizar el
crecimiento a un mínimo costo. En la producción del salmón Salmo salar en Noruega, el
Mario Alberto Silva Hernández Antecedentes
23 CICIMAR-IPN
alimento representa aproximadamente el 40% de los costos de producción. Es decir, el
factor de conversión alimenticia (FCA) tiene una fuerte influencia en la factibilidad del
cultivo en jaulas del salmón (Juell et al., 1994).
El incremento en el nivel de proteína en la dieta aumenta el costo de la misma y
por lo tanto es adecuado conocer el requerimiento óptimo de la especie en cultivo. Los
requerimientos de proteína en la dieta varían según la especie y la etapa de desarrollo.
Según New (1987, citado en Bernabé, 1994) recomendó que los peces marinos
presentaban un requerimiento de proteína entre 35 y 60 %, enlistando las siguientes
especies carnívoras más importantes cultivadas comercialmente: Pagrus major 52-60 %,
Seriola quinqueradiata 53-57 %, Epinephelus tauvina 40 %, Sparus aurata 44-55 % y
Dicentrarchus labrax 40-53 %. Para el mero Epinephelus salmoides (=malabaricus) se ha
determinado que un suministro de proteína en la dieta de entre 40 y 50 % es lo óptimo
para su mejor crecimiento (Teng et al., 1978). Webster et al. (1995), encontraron que para
la lubina híbrida (Morone chrysops X M. saxatilis) con un peso inicial promedio de 125 g y
cultivado en jaulas durante 143 días, el porcentaje óptimo de proteína en la dieta se
encontró entre 41 y 46 %, reflejado por el mayor peso promedio ganado y la mejor tasa de
crecimiento.
Incrementando la frecuencia alimenticia se ha reportado que se mejora el
crecimiento de los peces (Chua y Teng, 1978). En estudios realizados sobre la frecuencia
alimenticia (1,2,4,6,8 veces/día), con juveniles del mero (Epinephelus akaara) cultivados
en jaulas flotantes, encontraron que las altas frecuencias alimenticias generaron una alta
tasa de crecimiento, una eficiente conversión alimenticia y una alta supervivencia, es decir
que la frecuencia alimenticia presento una correlación positiva con el crecimiento de los
juveniles (Kayano et al., 1993).
Mario Alberto Silva Hernández Antecedentes
24 CICIMAR-IPN
2.5.3 Comportamiento
El comportamiento de manera general varia de acuerdo a la especie. Además, la
densidad de confinamiento ha sido encontrada tener un profundo efecto en los niveles
observados de agresión y la formación de jerarquías (Bagley, 1994). Los alto niveles de
interacción social pueden afectar el gasto de energía dando como resultado elevadas
tasas metabólicas y disminución del crecimiento (Brett, 1979). Jorgensen et al. (1993)
determinaron que para los juveniles de la trucha del Ártico (Salvelinus alpinus), su
agresividad tendió a decrecer a medida que aumentó la densidad de confinamiento y los
peces colocados en altas densidades mostraron un desarrollo rápido del comportamiento
de cardumen.
2.5.4 Condiciones de la engorda
Hogans (1994) realizó la engorda de la lubina rayada (Morone saxatilis) a partir de
juveniles silvestres con un peso promedio inicial de 375.3 g en jaulas flotantes (3X3X.5 H),
alimentados con alimento balanceado. Estos peces alcanzaron un peso promedio final de
438.3 g en 120 días de cultivo. Para los juveniles de la tilapia (Oreochromis urolepis
hornorum X O. mossambicus) con un peso inicial de 8.78 g sembrados a una densidad de
300 org/m3 en jaulas flotantes (1 m3) y alimentados con alimento comercial, se obtuvo un
factor de conversión alimenticia de 1.88, un factor de condición de 2.6, una tasa de
crecimiento de 1.88, una tasa de crecimiento absoluta de 1.94 g/día y una supervivencia
del 97.9% (Watanabe et al., 1990). Gómez-Gaspar (1987) realizó un ensayo del cultivo
del pámpano Trachinotus carolinus en jaulas flotantes de 50 m3 con juveniles silvestres
con un peso inicial de 1.37 g, sembrados a una densidad de 20 ind/m3, obtuvo un peso
promedio final de 391.36 g, una tasa de crecimiento absoluta de 1.06 g/día, un factor de
conversión alimenticia de 8-10:1 y una supervivencia del 62 % después de 365 días de
cultivo.
Mario Alberto Silva Hernández Antecedentes
25 CICIMAR-IPN
Existen varios trabajos sobre la engorda en jaulas flotantes de distintas especies
que pertenecen al genero Lutjanus (mismo genero que pertenece la especie de este
trabajo). Doi y Singhagraiwan (1993) realizaron la engorda de juveniles silvestres del
pargo Asiático Lutjanus argentimaculatus de 34 g de peso inicial, alimentados con
pescado fresco y confinados en jaulas flotantes de 25 m3, obtuvieron un promedio final de
963 g, un factor de conversión de 10.8 y una supervivencia de 96.8% al finalizar 300 días
de cultivo. Costa et al. (1998a;b) cultivaron dos especies de pargos Lutjanus jocu y L.
synagris en las costas de Brasil, confinando los juveniles silvestres en jaulas de 5 m3 de
capacidad. L. Jocu se sembró a una densidad de 25 ind/m3 y con un peso inicial de
102.6 g, se alimentaron con un alimento balanceado, después de 28 días de
confinamiento obtuvieron los siguientes resultados, un peso final de 123 g, una tasa de
crecimiento absoluta de 0.7 g/día, un factor de conversión alimenticia de 14.4 y una
supervivencia del 100%. L. synagris a una densidad de siembra de 40 ind/m3, con peso
inicial de 52.25 g, alcanzaron un peso final de 64.55 g, una tasa de crecimiento absoluta
de 0.44 g/día, un factor de conversión alimenticia de 12.4 y una supervivencia del 100%
después de 28 días de confinación.
También se encuentran los trabajos sobre engorda de pargos del Pacífico Centro-
Oriental (área que pertenece L. argentiventris) que realizó Avilés-Quevedo et al. (1996a;
1996b), confinando juveniles silvestres de L. peru, L. aratus y L. argentiventris en jaulas
de 13.5 m2 de volumen efectivo de agua. L. peru se confinó con peso inicial de 234.2 g a
una densidad de 6.4 ind/m2, se alimentaron con un alimento semi-húmedo (54% de
proteína), obteniendo un peso promedio final de 1116.88 g, un factor de condición de 2.7,
una tasa de crecimiento absoluta de 7.98 y una supervivencia del 65 % después de 397
días. L. aratus a una densidad de 6.3 ind/m2, peso inicial de 240.6 g y alimentados con
una dieta húmeda (pescado), después de 365 días los pargos alcanzaron peso final de
1111.85 g, un factor de condición de 1.6, una tasa de crecimiento absoluta de 8 g/día, un
Mario Alberto Silva Hernández Antecedentes
26 CICIMAR-IPN
factor de conversión alimenticia de 8.8 y una supervivencia del 97.67%. Para la especie L.
argentiventris, con una densidad de cultivo de 8.7 ind/m3 y un peso inicial de 29.7 g, con
una dieta húmeda a base de pescado y después de 365 días de cultivo, obtuvieron un
peso promedio final de 308.5 g, un factor de condición de 1.74, factor de conversión
alimenticia 8.7, tasa de crecimiento absoluta de 0.83 g/día y una supervivencia de 95.7 %.
Guerrero-Tortolero et al. (1999) también realizaron la engorda del pargo amarillo L.
argentiventris. Esta se practicó en jaulas de 1 m3 de capacidad colocadas dentro de un
estanque intermareal para el cultivo de camarón. Los juveniles silvestres tenían un peso
inicial de 17 g y se alimentaron con una dieta húmeda (pescado) durante 125 días en una
densidad de confinamiento de 6 peces/m3, obteniendo un peso final de 82.3 g, una tasa
de crecimiento absoluta de 0.52 g/día, un factor de conversión alimenticia de 8.3 y una
supervivencia del 65 %.
Mario Alberto Silva Hernández Justificación
27 CICIMAR-IPN
3. JUSTIFICACIÓN
El estado de Baja California Sur, es privilegiado por su ubicación geográfica,
encontrándose rodeado por las aguas del Golfo de California y el Pacifico Nororiental. Es
un semillero de gran abundancia y diversidad de peces marinos de alto valor comercial
que además cuenta con grandes extensiones de aguas protegidas propicias para la
piscicultura en jaulas flotantes.
El cultivo en jaulas flotantes presenta numerosas ventajas con respecto al cultivo
en estanques. Entre estas ventajas se puede citar el bajo costo de producción al no
consumir energía eléctrica, el manejo de altas densidades y la posibilidad del cultivo en
zonas profundas (Castello-Orvay, 1993; Mateos-Velasco, 1993). El intercambio continuo
de agua a través de las redes de las jaulas, mantiene un adecuado nivel de oxígeno
disuelto y permite que se desplacen los desechos metabólicos, evitando así infecciones
causadas por la alta concentración de materia orgánica y permite mantener altas
densidades que propician altos niveles de producción (Teng et al., 1978; Nakada y Murai
1991). En Asia, en particular Japón, algunas especies (Seriola quinqueradiata) han
logrado superar hasta 4.8 veces la producción pesquera (Ikenoue y Kafuku, 1992).
En el cultivo intensivo en jaulas, la densidad en la cual una especie puede ser
confinada es uno de los factores más importantes que determina la producción final y la
viabilidad económica del sistema de producción (Papst et al., 1992; Hengsawat et al.,
1997).
La falta de conocimientos y la poca experiencia en el manejo de jaulas flotantes
como arte de cultivo en México, ha limitado el desarrollo de una piscicultura marina
comercial exitosa. Aunado a lo anterior, la poca tecnificación y la falta de estudios previos
que hayan utilizado un alimento balanceado para el cultivo de peces marinos, ha impedido
Mario Alberto Silva Hernández Justificación
28 CICIMAR-IPN
tener datos para comparar el crecimiento y la eficiencia alimenticia de especies nativas
con las que se cultivan de manera comercial en otros países.
Los peces de la familia Lutjanidae que se conocen localmente como pargos,
forman un recurso pesquero importante en las regiones costeras tropicales y
subtropicales del mundo. En México constituyen un gran componente de la pesca
artesanal, en donde su importancia reside, tanto en sus elevados volúmenes de captura,
como en el beneficio económico (Allen, 1995). En la acuacultura de este género, destacan
los pargos L. argentimacualtus y L. johni que tienen una gran demanda y un alto precio
de mercado en el Sureste de Asia y son cultivados comercialmente en jaulas flotantes en
Singapur, Indonesia y las Filipinas (Emata et al., 1994). L. argentiventris ha demostrado
ser un organismo resistente al manejo y presenta altas supervivencia (Guerrero-Tortolero
et al., 1999), y se puede considerar técnicamente factible su cultivo en jaulas flotantes
(Avilés-Quevedo et al., 1996b).
El presente estudio pretende evaluar el efecto de la densidad de confinamiento
sobre el crecimiento, la supervivencia y la eficiencia alimenticia de juveniles silvestres del
pargo amarillo L. argentiventris, con el fin de contribuir al desarrollo de tecnología para su
cultivo en jaulas flotantes.
Mario Alberto Silva Hernández Objetivos
29 CICIMAR-IPN
4. OBJETIVOS
4.1 Objetivo general
• Determinar el efecto de la densidad de cultivo sobre la supervivencia y el crecimiento
de juveniles del pargo amarillo Lutjanus argentiventris, confinados en jaulas flotantes.
4.2 Objetivos particulares
• Evaluar el cultivo en jaulas a nivel experimental a partir de juveniles silvestres,
considerando la adaptación de la especie al manejo, confinamiento en jaulas y
suministro exógeno de alimento balanceado comercial.
• Determinar el efecto de la densidad de cultivo sobre el crecimiento, índices de
condición y de calidad del alimento en la especie.
• Determinar si existen diferencias en la composición proximal y de energía en los
organismos de las distintas densidades.
Mario Alberto Silva Hernández Materiales y Métodos
30 CICIMAR-IPN
5. MATERIALES Y METODOS
5.1 Area de estudio
El área de estudio, se encuentra ubicada en el municipio de La Paz, Baja
California Sur, dentro de la ensenada de La Paz, también conocida como Ensenada de
los Arípez, al sur de la Bahía de La Paz, localizada entre los 24°06´ y los 24°10´ Latitud
Norte y entre los 110°19´ y los 110°25´ Longitud Oeste (Anónimo, 1992).
En la parte Noreste la ensenada se comunica con la Bahía de La Paz por un canal
principal de un kilometro de ancho, al Este se encuentra limitada por la ciudad de La Paz,
al Suroeste por el poblado del Centenario y la playa el Comitán, al Oeste se encuentra
una angosta faja de tierra llamada ”El Mogote” que la separa de la Bahía y mide
aproximadamente un kilómetro en sentido Este-Oeste y 2.7 kilómetros en su parte ancha
(Holguin-Quiñones, 1971).
Por sus características morfológicas, físicas y químicas corresponde a una laguna
costera antiestuarina (Lankford, 1977). La laguna se caracteriza por tener un canal de
mareas de unos 5 km de longitud que une a la ensenada con la Bahía de la Paz,
formando una laguna amplia. Esta tiene una extensión total aproximada de 60 km2
equivalentes a unas 5,000 hectáreas (Ha), de las cuales 3,200 corresponden a una franja
con profundidad inferior a los 2 m. De estas, 1,570 Ha corresponden a la porción de la
laguna con profundidad mayor de 2 m, (estimada hasta el centro del canal de mareas) y
235.5 Ha de manglares (Anónimo, 1992).
El área seleccionada dentro de la ensenada de La Paz, para la colocación de las
jaulas flotantes se localiza en 24°09´46” Latitud Norte y 110°24´41” Longitud Oeste. Esta
área se seleccionó previo a una batimetría de la ensenada de La Paz, para localizar la
zona con mayor profundidad y con una velocidad de corriente que no excediera los 0.6
m/s, para evitar daños y deformación en las jaulas, así como un gasto energético excesivo
Mario Alberto Silva Hernández Materiales y Métodos
31 CICIMAR-IPN
de los peces por mantenerse nadando a contracorriente (Beveridge, 1996). Se utilizó una
ecosonda, marca Humminbird modelo DX200 y un sistema de posicionamiento global por
satélite (GPS), marca Garmin, modelo Etrex, para localizar la zona con mayor profundidad
que en este caso fue de 8 metros en marea baja. También se utilizó un corrientímetro
marca S4, el cual registró una velocidad de corriente máxima de 0.04 m/s en mareas
vivas, encontrándose dentro del intervalo óptimo 0.03 – 0.2 m/s (Chua & Teng, 1980).
5.2 Arte de cultivo
5.2.1 Construcción e instalación de la balsa flotante
La balsa flotante es la estructura que dio flotación y forma a las jaulas, cuyo
diseño se seleccionó de acuerdo a la hidrodinámica presente en el área de cultivo, la
disponibilidad y costo de los materiales en el mercado.
Básicamente la unidad de jaulas utilizada para el experimento consistió en una
balsa de 6.9 metros por 16.8 metros de fierro angular que dio soporte a 9 jaulas de 3 x 1.5
m. La balsa esta compuesta de 5 módulos, los cuales tienen la capacidad de soportar 2
jaulas cada uno. Estos módulos tienen un movimiento articulado e independiente por
medio de bisagras, para soportar el oleaje (anexo III, Figura 1).
La suspensión de la estructura de las balsas fue realizada por medio de flotadores
de poliestireno o styrofoam. Las balsas se mantuvieron fijas por medio de seis muertos de
concreto armado, con un peso aproxima
do de 200 kilos cada uno.
En la balsa experimental, los flotadores se colocaron en las uniones de las
estructuras y uno más en los espacios intermedios para dar un mayor soporte y reforzar la
estructura (anexo III, Figura 2).
Mario Alberto Silva Hernández Materiales y Métodos
32 CICIMAR-IPN
Su orientación se determinó después de conocer la dirección de los vientos
dominantes que en esta región tienen una dirección Noroeste, en los meses de
Noviembre a marzo, con una velocidad media de 12.2 m/s, denominándolos localmente
como “collas”. Los imperantes de abril a octubre son de dirección Sur con velocidad media
de 14 m/s, los cuales reciben el nombre de “coromueles” (Anónimo, 1992), con el fin de
propiciar que el contacto de los vientos sobre la balsa flotante fueran paralelos y así
beneficiar al movimiento articulado e independiente de cada módulo.
5.2.2 Construcción de las Jaulas
Las jaulas experimentales presentaban una dimensión de 3 x 1.5 m, elaboradas
con malla de multifilamento nylon tratada y alquitranada con luz de 1 ” y se utilizó un cabo
de 8
3” de diámetro para darle forma a la jaula (anexo III, Figura 3).
Las jaulas para el cultivo de juveniles estuvieron protegidas en la superficie por
una malla plástica negra, la cual evitó la depredación por aves.
Nota: la cantidad de las mallas para la construcción de las jaulas se duplicó, para
tener siempre una jaula limpia de repuesto.
5.2.3 Instalación de las jaulas flotantes
Una vez anclada la balsa con sus respectivos muertos de concreto, se colocaron
las jaulas en los claros de la balsa, sujetadas en la superficie con cabos de polipropileno.
En las esquinas de las jaulas se colocaron muertos con un peso aproximado de 4
kilogramos, los cuales mantuvieron las jaulas bien estiradas y sin dobleces para evitar las
lesiones de los peces por la posible fricción causada por la malla con el movimiento del
oleaje.
Mario Alberto Silva Hernández Materiales y Métodos
33 CICIMAR-IPN
5.3 Organismos experimentales
5.3.1 Recolecta y transporte de organismos
Los ejemplares de pargo amarillo se capturaron en las zonas de manglar
localizadas en las cercanías de la bahía de la Paz, para ello se utilizaron los siguientes
métodos:
• Red de arrastre de fondo, con una longitud aproximada de 60 metros de relinga
superior con una luz de malla de 5 mm, la cual se manipuló por dos personas.
• Atarraya de 10 pies de altura, con una luz de malla de 10mm, para evitar que se
enmallen los juveniles.
• Trampas de 50 x 50 x 30 centímetros, cebadas con desperdicios de pescado, jaiba o
cabezas de camarón.
Para el transporte de los organismos de las zonas de recolecta a las jaulas de
aclimatación, se utilizó una lancha de fibra de vidrio de 22 pies de eslora, con motor fuera
de borda de 90 HP. La lancha se equipó con 4 viveros de 100 litros cada uno. El llenado y
el recambio de agua de los viveros se realizaron por medio de una bomba eléctrica de 12
voltios, con una capacidad de 500 galones por hora.
5.3.2 Biometría de los organismos capturados
Se recolectaron aproximadamente 948 ejemplares silvestres de Lutjanus
argentiventris, de los cuales se seleccionaron 366 peces para ser utilizados en este
experimento. Los peces se pesaron y midieron individualmente, presentando un peso
promedio de 42.27 ± 5.05 g y una talla promedio de 10.91 ± 0.44 cm.
Mario Alberto Silva Hernández Materiales y Métodos
34 CICIMAR-IPN
5.3.3 Aclimatación al cautiverio y al alimento balanceado
Los peces capturados se confinaron en jaulas plásticas colocadas dentro de un
estanque intermareal, esto les permitió adaptarse a las condiciones en cautiverio y al
consumo de alimento inerte a base de pescado fresco y calamar. Una vez completado un
lote de organismos mayor a los requeridos en el experimento, se dio paso a la adaptación
paulatina al consumo de alimento balanceado. Esto consistió en adicionar un pequeño
porcentaje de alimento balanceado, a la dieta de alimento fresco que venían consumiendo
previamente. Este porcentaje se incrementó lentamente hasta sustituir en su totalidad al
alimento fresco, durante un período aproximado de 60 días.
5.3.4 Siembra
Después del período de aclimatación se seleccionaron los organismos
aparentemente sanos y libres de lesiones o malformaciones. Se colocaron todos los
organismos en un tanque de 2000 litros, para extraer una muestra aleatoria de 50
organismos y se realizó una biometría exploratoria para obtener los datos de peso
promedio (43.27 ± 6.61). Con esta información se elaboró un histograma de frecuencias
(Figura 1), con el cual se determinó el intervalo de peso con la menor dispersión posible y
se verificó la distribución normal de los datos (P < 0.05). Una vez conocido el intervalo se
procedió a realizar una biometría de peso y talla. Se tomaron los peces de manera
aleatoria, los cuales fueron colocados de manera también aleatoria en sus respectivas
jaulas, con su densidad determinada, utilizando una tabla de números aleatorios y de esta
forma se dio inicio al experimento.
Mario Alberto Silva Hernández Materiales y Métodos
35 CICIMAR-IPN
Figura 4. Histograma de frecuencias del peso promedio de la
biometría exploratoria del pargo amarillo.
5.4 Diseño experimental
Se instalaron nueve jaulas flotantes de 4.5 m2 dentro de la ensenada de La Paz,
donde se evaluaron tres densidades experimentales de 6, 9 y 12 peces/m2, con tres
replicas cada una, con una duración de seis meses de cultivo. La densidad más baja
utilizada en este experimento corresponde a la densidad recomendada por Doi y
Singhagraiwan (1993) para el pargo asiático (Lutjanus argentimaculatus), donde obtuvo el
mejor crecimiento en peso. La densidad más alta (12 peces/m2) se seleccionó por ser el
doble de la densidad recomendada por Doi y Singhagraiwan (op cit) y la densidad de 9
peces/m2 se determinó como el punto intermedio entre las dos densidades establecidas.
En el presente trabajo se utilizó la densidad en m2, debido a las recomendaciones hechas
por Doi y Singhagraiwan (op cit), de que los pargos mostraban un comportamiento de
mantenerse en el fondo de la jaula y no utilizar la columna del agua.
Normalesperada
PESO PROMEDIO (g)
Núm
ero
de o
bser
vaci
ones
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
20 25 30 35 40 45 50 55 60
Mario Alberto Silva Hernández Materiales y Métodos
36 CICIMAR-IPN
5.5 Parámetros físico químicos del agua.
Durante los seis meses de experimentación, se registraron los valores de oxígeno
disuelto (mg/l) y la temperatura del agua (ºC) diariamente dentro del sistema de cultivo.
Para ello se utilizó un oxímetro marca YSI, modelo 51-B, con precisión de 0.2 mg/l y un
termógrafo electrónico de la compañía ONSET, modelo StowAway Tidbit con un rango de
–20 ºC a + 50 ºC, con mediciones cada minuto.
5.6 Alimento.
El alimento utilizado durante el experimento consistió en un alimento peletizado
comercial de la compañía Silver Cup de México. Se realizó un análisis químico proximal
(AOAC,1995. Association of Official Analytical Chemists) y de energía (calorímetro
adiabático PARR. Modelo 1261). Los valores obtenidos se presentan en la Tabla 1.
Tabla 1. Análisis químico proximal y de energía del alimento comercial Silver Cup.
Dieta Promedio Desv. est.
* Proteína % 47.27 0.23
* Extracto etéreo % 8.53 0.01
* Cenizas % 20.49 0.12
Humedad % 5.17 0.12
* Fibra cruda% 0.16 0.02
E.L.N. 23.55
* Energía cal/g 5413.16 10.78
* Relación proteína:energía
(mg proteína /kcal) 86.82 0.50
5.6.1 Ración alimentaria.
Los organismos se alimentaron diariamente ad libitum, con una sola ración, la cual
fue suministrada durante dos horas aproximadamente, verificando visualmente que los
peces consumieran el alimento para tratar de evitar en lo posible, la perdida del alimento.
Se pesó una ración de 100 g individualmente para cada jaula, utilizando una balanza
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37 CICIMAR-IPN
marca Ohaus (0.001 g), modelo Precision Standard. El alimento no consumido se peso y
se estimó la cantidad de alimento consumido por día, la cual se registró en una bitácora.
El alimento se transportó en recipientes plásticos con tapa roscada que sellaban
herméticamente.
5.7 Biometrías y cambios de redes
Durante el periodo de experimentación, se efectuaron biometrías en los días 0, 30,
61, 91, 122, 153 y 182 días de cultivo, midiéndose a todos los organismos. Todas las
biometrías se realizaron en el laboratorio del CIBNOR, para lo cual se transportaban los
peces de la balsa al laboratorio en una lancha de fibra de vidrio de 23 pies de eslora y
motor de 90 HP, equipada con contenedores de 100 litros, cada uno marcado con el
número de replica correspondiente para evitar cualesquier confusión. Los datos
biométricos registrados fueron: la longitud patrón y el peso. No se tomó la longitud total,
debido a que algunos organismos presentaron pequeños daños en su aleta caudal y esto
no permitió la lectura exacta. Las mediciones se realizaron utilizando un ictiometro con
una precisión de 0.1 cm. El peso individual de los peces se registro utilizando una balanza
marca Ohaus (0.001 g), modelo Precision Standard. Así mismo, se contabilizó el número
total de peces para cada réplica, con el fin de determinar la supervivencia.
Se realizaron cambios de redes mensualmente (aprovechando que las jaulas se
encontraban vacías al momento de las biometrías), para evitar la saturación de las jaulas
con organismos incrustantes y así mantener un flujo de agua constante a través de las
jaulas.
5.8 Análisis proximal de los peces
Del grupo de peces ya aclimatados y previo al inicio del experimento, se
seleccionó un lote de 30 organismos tomados aleatoriamente, para practicarles un
Mario Alberto Silva Hernández Materiales y Métodos
38 CICIMAR-IPN
análisis de proteína cruda, lípidos, cenizas, fibra y de energía bruta del músculo y cuerpo
entero, con el fin de determinar la presencia de un cambio en la composición proximal
(AOAC,1995) y de energía (calorímetro adiabático PARR. Modelo 1261).
Al finalizar el experimento, se sacrificaron 3 organismos por replica, seleccionados
aleatoriamente, para practicarles el mismo análisis proximal, a los organismos entre el
inicio y el final del cultivo y entre los peces de las distintas densidades.
5.9 Análisis de datos
En primera instancia, se aplicó la prueba de Kolmogorov-Smirnov, para determinar
la distribución normal de los datos de peso y longitud patrón de los peces para cada
densidad y por tiempo. Posteriormente de confirmar la normalidad de los datos, se realizó
la prueba de Levene (homogeneidad de varianza), para determinar la diferencia entre las
replicas de cada densidad.
Se realizaron análisis de varianza de una vía, a los datos de peso y longitud patrón
de las densidades para cada fecha y se aplicó la prueba de diferencia mínima detectable
(LSD) de comparación múltiple, cuando se detectaron diferencias significativas (P< 0.05).
Para determinar si existían diferencias en cuanto al crecimiento en peso de los
organismos entre las densidades, se aplicó un análisis de covarianza al logaritmo del
peso a partir del modelo Y= aebx (Everhart, 1953), de crecimiento exponencial.
La composición química del músculo y del pescado entero se comparó entre las
densidades (P< 0.05) utilizando un análisis de Kruskal-Wallis y donde hubo diferencias
significativas, se utilizó la prueba de Tukey no paramétrico (Zar, 1996).
Los datos obtenidos se utilizaron para el cálculo de los siguientes parámetros:
incremento promedio en peso (PG); biomasa total (Bt); ganancia en biomasa (G); tasa de
crecimiento absoluta (TCA); tasa de crecimiento especifico (SGR); porcentaje de
supervivencia (SUP); factor de conversión alimenticia (FCA); valor proteico productivo
Mario Alberto Silva Hernández Materiales y Métodos
39 CICIMAR-IPN
(PPV); tasa de eficiencia proteica (PER) y factor de condición (FC). Para la comparación
de los índices de crecimiento y de calidad del alimento al final del experimento, se utilizó
la prueba de Kruskal-Wallis y donde se encontraron diferencias significativas, se utilizó el
análisis de Tukey no paramétrico (Zar, 1996). Estos análisis estadísticos se realizaron
con el programa STATISTICA versión 5.01, excepto en los casos donde se hace
referencia de los autores. A partir de los datos de crecimiento, consumo de alimento y
análisis químicos proximales de los peces se calcularon los siguientes índices de
crecimiento y de calidad del alimento:
1) Peso ganado por pez: Determina el peso promedio ganado por pez a un tiempo
determinado (Gracia-López y Castelló-Orvay, 1996).
WiWtPG −=
Donde:
Wt = Peso promedio del pez a los t días del experimento
Wi = Peso promedio del pez a la edad de siembra
2) Biomasa total (por jaula): Representa el peso total producido por los organismos en
cada jaula en un tiempo determinado.
NtPtBt *=
Donde:
Pt =Peso promedio de los organismos al tiempo t, en su respectiva densidad.
Nt = Número de organismos al tiempo t.
3) Ganancia en biomasa: Expresa el incremento en biomasa en un período de tiempo.
Mario Alberto Silva Hernández Materiales y Métodos
40 CICIMAR-IPN
BiBfG =
Donde:
Bf = Biomasa final
Bi = Biomasa inicial
4) Tasa de crecimiento absoluta: La relación expresa la ganancia en peso del
organismo en gramos al día (Gracia-López y Castelló-Orvay, 1996).
días)PiPf(TCA −
=
Donde:
Pf = Peso promedio final de los peces
Pi = Peso promedio inicial de los peces
5) Tasa de crecimiento especifico: Expresa el porcentaje de incremento en peso del
organismo al día (Lazo y Davis, 2000).
Donde:
LnPf = Logaritmo natural del peso promedio de los peces en el día t
LnPi = Logaritmo natural del peso promedio de los peces al inicio
6) Porcentaje de supervivencia: Es un indicador de la resistencia de los organismos al
manejo y al confinamiento, expresado como porcentaje (Weatherley y Gill, 1987).
X100días
)LnPi(LnPfSGR −=
Mario Alberto Silva Hernández Materiales y Métodos
41 CICIMAR-IPN
100XNiNtSUP =
Donde:
Nt = número de peces vivos al tiempo t
Ni = número de peces iniciales
7) Factor de conversión alimenticia: Se define como la ganancia en peso obtenida a
partir de una unidad de peso del alimento. Un valor de 1, nos indica un aprovechamiento
perfecto del alimento para producir una unidad de biomasa corporal (Hepher, 1993).
PgPaFCA =
Donde:
Pa = Peso del alimento ingerido
Pg = Peso fresco ganado por el pez
8) Valor proteico productivo: Este índice muestra la relación de la proteína retenida en
los tejidos del pez y la consumida en el alimento. En este criterio se toma en cuenta la
transformación de la proteína suministrada en la dieta, en proteína corporal
(Hepher,1993).
Donde:
Pfp = Proteína total final en los peces
Pip = Proteína total inicial en los peces
Pt = Peso total de la proteína del alimento suministrado
X100Pt
Pip)(PfpPPV −=
Mario Alberto Silva Hernández Materiales y Métodos
42 CICIMAR-IPN
9) Tasa de eficiencia proteica: Esta tasa compara en términos de ganancia en peso
corporal por gramo de proteína suministrada en el alimento. Esta relación evalúa el
contenido de proteína en el alimento, mientras más grande sea el PER, más eficiente será
la asimilación de proteína en el alimento (Watanabe, 1988).
Donde:
Pg = Peso fresco ganado por el pez
Psp = Peso seco de la proteína en el alimento suministrado
10) Factor de condición: Indica el estado de robustez para los peces de tipo fusiforme,
expresando la relación isométrica existente en función del peso (Weatherley y Gill, 1987).
100XLtPtK 3=
Donde:
Lt= Longitud promedio de los peces al tiempo t
Pt= Peso promedio de los peces al tiempo t
PspPgPER =
Mario Alberto Silva Hernández Resultados
43 CICIMAR-IPN
6. RESULTADOS
6.1 Adaptación y manejo de los peces al sistema de cultivo
6.1.1 Captura y transporte
No se presento mortalidad de los peces después de haber sido capturados por
ningunos de los tres métodos (atarraya, red de arrastre de fondo y trampas) y trasladados
a las jaulas de aclimatación, que se encontraban colocadas dentro del estanque
intermareal del CIBNOR.
6.1.2 Aclimatación
Durante la etapa de aclimatación el pargo amarillo mostró ser un pez que se
adapta rápidamente al cautiverio, al consumir alimento fresco e inerte a base de pescado
y calamar después del tercer y cuarto día de haber sido capturados. Además, los peces
en esta etapa no mostraron un comportamiento agresivo sino de cardumen.
La fase de aclimatación de los peces al consumo de alimento balanceado tomó un
tiempo aproximado de 60 días después de su captura.
6.1.3 Biometrías y cambios de redes
No se registró mortalidad de los organismos durante el transporte de la balsa al
laboratorio, durante las siete biometrías que se realizaron en el presente estudio.
Durante las biometrías los organismos demostraron ser resistentes al manejo y no
se presento ninguna muerte a pesar de haber sido manipulados cada uno para ser
pesados y medidos cuidadosamente.
Los cambios de redes fueron necesarios para mantener una buena calidad de
agua, permitiendo un flujo de agua adecuado y constante a través de la jaula evitando los
Mario Alberto Silva Hernández Resultados
44 CICIMAR-IPN
riesgos de una baja de oxígeno, a causa de los organismos que se incrustan en las jaulas
e impiden una adecuada circulación del agua al interior de la misma. Esto cambios de
redes se realizaron en cada biometría.
6.2 Parámetros físico químicos del agua
Se obtuvieron los valores diarios de los parámetros fisico-químicos del agua en las
jaulas flotantes (Tabla 2). Encontrándose que al inicio del experimento la temperatura del
agua promedio fue de 29.1 ºC y una concentración de oxígeno disuelto de 5.5 mg/l.
La tabla 2 muestra los valores de temperatura y oxígeno disuelto (promedio ±
desv. est.) del agua durante todo el cultivo. A partir de estos valores, se detectó que al
incrementarse la temperatura se presentó una disminución de la concentración de
oxígeno disuelto en el agua.
Durante el cultivo se registro un intervalo de temperaturas amplio (17.6 – 30.3 ºC),
detectándose la temperatura más alta en el mes de Septiembre y la más baja en Enero
(Tabla 2).
Los valores promedio de temperatura y oxígeno disuelto durante el cultivo fueron
23.31 ± 0.59 °C y 7.78 ± 0.63 mg/l respectivamente.
A partir de los valores de los parámetros de calidad de agua en las jaulas flotantes
se realizó un análisis de regresión, detectándose a lo largo del experimento altas
correlaciones entre la temperatura y el oxígeno disuelto (R= -0.87) (anexo I, Tabla a), es
decir que al aumentar la temperatura se presentó una disminución en la solubilidad del
oxígeno, sin embargo la concentración de oxígeno en el agua durante el experimento fue
superior a los 5 mg/l.
Mario Alberto Silva Hernández Resultados
45 CICIMAR-IPN
Tabla 2. Valores promedio de temperatura ± desv. est., oxígeno disuelto en mg/l ± desv. est., y salinidad en partes por mil, del agua dentro de las jaulas, durante el cultivo de juveniles del pargo amarillo Lutjanus argentiventris.
Fecha Temperatura
(ºC) Mín. Máx. Oxígeno dis.
(mg/l) Mín. Máx. Salinidad
(ppm) Mín. Máx.
Septiembre 1999 29.1 ± 0.5 28.3 30.3 5.5 ± 0.3 5.0 6.5 38.3 38.0 38.7 Octubre 1999 27.8 ± 0.8 25.8 29.7 6.8 ± 1.1 5.0 9.0 38.0 37.5 38.0 Noviembre 1999 24.6 ± 0.6 23.1 26.4 6.8 ± 0.5 5.8 7.4 37.9 37.0 38.0 Diciembre 1999 19.0 ± 0.1 18.3 19.7 8.8 ± 0.7 7.6 9.7 38.0 37.9 38.0 Enero 2000 19.0 ± 0.7 17.6 20.2 9.3 ± 0.7 7.8 11.0 38.0 37.9 38.1 Febrero 2000 20.3 ± 0.6 19.3 21.8 9.5 ± 0.5 8.6 10.4 38.0 38.0 38.1
6.3 Consumo de alimento
Durante los seis meses de cultivo, se utilizaron dos tipos de alimento con diferente
diámetro del pienso y una misma composición proximal. Al inicio del experimento los
organismos presentaron un peso promedio de 42.39 g y se alimentaron con un pienso
2.4 mm (3/32”) de diámetro. El cambio del pienso se realizó cuando los organismos
alcanzaron un peso promedio de 80 g y se utilizó un pienso de 4.0 mm (5/32”) de
diámetro.
Desde el inicio del experimento el alimento fue aceptado adecuadamente por los
organismos. Al alimentar los peces fue muy importante suministrar el alimento
pausadamente y con la ayuda de la transparencia del agua, la permanencia satisfactoria
de los piensos en la columna del agua y la buena profundidad de las jaulas, permitieron
que se pudiera observar el momento cuando los organismos dejaban de alimentarse,
evitando aparentemente de esta manera el desperdicio del alimento. Otras características
que se presentaron durante el suministro del alimento fueron, el poco apetito que
mostraban los peces en los días nublados con viento. Además, se observó un mayor
consumo de alimento promedio por pez, en la densidad mas baja (6 peces/m2) en
comparación con las otras densidades (9 y 12 peces/ m2) (Tabla 4).
La temperatura intervino directamente en el consumo de alimento por los
organismos (Figura 3 ), para lo cual, se realizó un análisis de regresión, detectándose a lo
Mario Alberto Silva Hernández Resultados
46 CICIMAR-IPN
largo del experimento altas correlaciones entre la temperatura y el consumo de alimento
para cada densidad (densidad 6 peces/m2 R= 0.94; 9 peces/m2 R= 0.93 y 12 peces/m2 R=
0.94) (anexo I, Tabla b). En el mes de octubre se presentó una temperatura promedio del
agua de 27.8 ºC y fue cuando los peces consumieron más alimento (densidad 6 peces/m2,
Consumo = 1919.1 g; 9 peces/m2, C= 2074.2 g y 12 peces/m2, C= 2919.6 g), para el mes
de Febrero la temperatura descendió a 20.3 ºC, provocando un descenso en el consumo
de alimento (densidad 6 peces/m2, Consumo = 408.9 g; 9 peces/m2, C= 571.7 g y 12
peces/m2, C= 701.6 g) (Tabla 3).
Tabla 3. Valores promedio del consumo mensual de alimento por jaula ± desv. est., durante el cultivo de juveniles del pargo amarillo Lutjanus argentiventris.
Den. Consumo mensual Total
Septiembre Octubre Noviembre Diciembre Enero Febrero
6 1988 +/- 109 1919+/- 81 1315+/- 36 698.6 +/- 12 519.3 +/- 12 400+/- 24 6841 +/- 1569 2084 +/- 77 2074+/- 87 1455+/- 79 755.2 +/- 36 683.2 +/- 39 571+/- 28 7625 +/- 19712 2821 +/- 102 2919+/- 27 1746+/- 62 910.7+/- 7.9 840+/- 154 701+/- 163 9940+/- 392
Tabla 4. Valores promedio del consumo mensual de alimento por pez ± desv. est., durante el cultivo de juveniles del pargo amarillo Lutjanus argentiventris.
Den. Consumo mensual
Septiembre Octubre Noviembre Diciembre Enero Febrero 6 73.62+/-2.73 71.07+/-2.63 48.70+/-1.80 25.85+/-0.96 19.22+/-0.71 14.81+/-0.55 9 50.82+/-1.24 50.58+/-1.23 35.48+/-0.87 18.41+/-0.45 16.65+/-0.41 13.92+/-0.34 12 52.24+/-0.97 54.05+/-1.00 32.33+/-0.60 16.85+/-0.31 15.55+/-0.29 12.98+/-0.24
Mario Alberto Silva Hernández Resultados
47 CICIMAR-IPN
Figura 3. Alimento consumido por los organismos en las diferentes densidades de cultivo en función de la temperatura.
6.4 Crecimiento
6.4.1 Normalidad y homogeneidad de varianza
Para el peso y la longitud patrón o notocordal en cada fecha, se demostró la
normalidad de los datos (anexo I, Tabla c y d). La prueba de Levine de homogeneidad de
varianza entre replicas, por fecha, mostró la homogeneidad en cada uno de ellos, excepto
en la variable peso, con los juveniles del día 0 en la densidad de 6 peces/m2 (anexo I,
Tabla e y f). Posteriormente, se realizó un análisis de varianza con respecto al peso de los
peces por fecha (anexo I, Tabla g y h). En los casos que se encontraron diferencias
significativas se realizaron pruebas LSD de comparaciones pareadas (anexo I, Tabla i y j).
6.4.2 Peso
Los análisis realizados para los datos de peso entre densidades (Tabla 5),
mostraron diferencias significativas (P<0.05) para los días 30, 61 y 182 (anexo I, Tabla g).
0
500
1000
1500
2000
2500
3000
18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30
Temperatura (°C)
Con
sum
o de
alim
ento
(g)
densidad 6
densidad 9
densidad 12
Cons. = -2051 + (149.33 X Temp.) R = 0.94
Cons. = -2818 + (184.01 X Temp.) R = 0.93
Cons. = -3961 + (222.23 X Temp.) R = 0.94
Mario Alberto Silva Hernández Resultados
48 CICIMAR-IPN
Observándose que la densidad de 6 peces/m2 fue la que presentó el peso promedio más
bajo con respecto a las otras densidades al final del experimento. Asimismo, se denota no
encontrarse diferencias significativas entre las densidades de 9 y 12 peces/m2 (P> 0.05).
A partir del día 30 se detecta una ligera ganancia en peso en las densidades mayores,
siendo la densidad de 9 peces/m2 significativamente mayor al resto (P<0.05). Pero es
hasta el día 61 cuando la densidad de 12 peces/m2 comienza a ser significativamente
mayor (P<0.05), en comparación a la densidad de 6 peces/m2. En los días 91, 122 y 153
la densidad de 12 peces/m2 presentó una tendencia a ganar más peso, solo se presenta
hasta el día 182 ser significativamente mayor a la densidad de 6 peces/m2(P<0.05). Sin
embargo, la densidad de 12 peces/m2 no fue significativamente superior a la densidad de
9 peces/m2.
Tabla 5. Peso en gramos de los juveniles del pargo amarillo (promedio ± desv. est.), por tiempo y densidad.
Tiempo (días)
Densidad 6 (peces/m2)
Densidad 9 (peces/m2)
Densidad 12 (peces/m2)
0 41.91 ± 4.55 42.72 ± 5.27 42.54 ± 5.13 30 53.66 ± 7.51a 56.90 ± 8.81b 54.67 ± 7.51a
61 74.48 ± 10.5a 73.54 ± 11.4ab 71.00 ± 10.7b
91 81.03 ± 12.0 82.72 ± 14.4 82.93 ± 13.8 122 83.91 ± 11.8 86.38 ± 16.2 88.08 ± 15.7 153 93.02 ± 14.3 97.01 ± 19.8 99.86 ± 16.04 182 99.86 ± 16.0b 107.85 ± 22.1a 109.66 ± 21.6a
Superíndices desiguales en las líneas indican diferencias significativas (P<0.05). Cuando no hay superíndices no se detecto diferencia significativa.
6.4.3 Biomasa total A pesar que la ganancia en peso individual de los organismos presentó una
diferencia significativa entre las densidades, resulta más notoria esta diferencia si se
compara la biomasa total para cada densidad (Tabla 6). Al finalizar el experimento, se
detectó que la biomasa total en la densidad de 6 peces/m2 (2629 g), fue significativamente
menor (P<0.05), comparada con la producida en la densidad de 12 peces/m2 (5702 g)
Mario Alberto Silva Hernández Resultados
49 CICIMAR-IPN
(anexo I, Tabla m-2). En los casos que se encontraron diferencias significativas se realizó
un análisis de Tukey no paramétrico (anexo I, Tabla o-2).
Tabla 6. Biomasa total en gramos (promedio ± desv. est.), de los juveniles del pargo amarillo por densidad, durante el experimento.
Tiempo Densidad 6 Densidad 9 Densidad 12 (días) (peces/m2) (peces/ m2) (peces/ m2)
0 1122+/-37 1751+/-63 2302+/-61 30 1448+/-42 2332+/-136 2952+/-25 61 2011+/-26 2991+/-146 3810+/-213 91 2160+/-24 3391+/-221 4422+/-241 122 2209+/-18 3456+/-160 4609+/-261 153 2449+/-40 3912+/-203 5085+/-207 182 2629+/-124b 4314+/-155ab 5702+/-192a
Superíndices desiguales en las líneas indican diferencias significativas (P<0.05). Cuando no hay superíndices no se detecto diferencia significativa.
La comparación entre las tasas de crecimiento (Tabla 7), no mostraron diferencias
significativas (P>0.05) entre las densidades (anexo I, Tabla k), pero si se observó una
tendencia a aumentar el crecimiento al incrementarse la densidad, donde la densidad de 6
peces/m2 (Figura 3) presentó una tasa de crecimiento menor con respecto a las
densidades altas de 9 y 12 peces/m2 (Figuras 4 y 5).
Tabla 7. Tasas estimadas de crecimiento de juveniles del pargo amarillo por densidades, a partir del modelo exponencial Y=aebx.
Densidad
(peces/m2)R n Tasas de crecimiento
6 0.81 560 0.0039 9 0.78 854 0.0042 12 0.82 1115 0.0044
No se detectaron diferencias significativas.
Mario Alberto Silva Hernández Resultados
50 CICIMAR-IPN
Figura 3. Curvas de crecimiento exponencial de juveniles del pargo amarillo en la densidad de 6 peces/m2.
Figura 4. Curvas de crecimiento exponencial de juveniles del pargo amarillo en la densidad de 9 peces/m2.
Figura 5. Curvas de crecimiento exponencial de juveniles del pargo amarillo en la densidad de 12 peces/m2.
Media+DSMedia-DSMedia+ESMedia-ESMedia
PESO=51.7e(0.0042TIEMPO)
R= 0.78
TIEMPO (días)
PE
SO
(g)
30
50
70
90
110
130
150
0 30 60 90 120 150 180
Media+DSMedia-DSMedia+ESMedia-ESMedia
PESO=50.3e(0.0044TIEMPO)
R= 0.82
TIEMPO (días)
PE
SO
(g)
30
50
70
90
110
130
150
0 30 60 90 120 150 180
Media+DSMedia-DSMedia+ESMedia-ESMedia
PESO=(51.5)e(0.0039TIEMPO)
R=0.81
TIEMPO (días)
PE
SO
(g)
30
50
70
90
110
130
0 30 60 90 120 150 180
Mario Alberto Silva Hernández Resultados
51 CICIMAR-IPN
6.4.4 Longitud
La longitud de los peces para cada densidad y por fecha mostraron diferencias
significativas (P<0.05) para los días 0 y 30, donde los peces de la densidad de 9 peces/m2
tuvieron la mayor longitud promedio con respecto a los peces de las densidades de 6 y 12
peces/m2 (anexo I, Tabla, h y j). Al finalizar el experimento se observó una tendencia a
incrementar la longitud promedio de los organismos a medida que la densidad fue mayor
(Tabla 8).
Tabla 8. Longitud patrón en centímetros de los juveniles del pargo amarillo (promedio ± desv. est.), por tiempo y densidad.
Tiempo (días)
Densidad 6 (peces/m2)
Densidad 9 (peces/m2)
Densidad 12 (peces/m2)
0 10.77 ± 0.43b 10.96 ± 0.47a 11.02 ± 0.45a
30 11.89 ± 0.59a 12.18 ± 0.71b 12.01 ± 0.57a
61 13.34 ± 0.66 13.45 ± 0.77 13.25 ± 0.67 91 13.91 ± 0.68 13.96 ± 0.80 13.89 ± 0.76 122 14.12 ± 0.67 14.25 ± 0.91 14.26 ± 0.83 153 14.43 ± 0.70 14.56 ± 1.01 14.49 ± 0.89 182 14.98 ± 0.84 15.22 ± 1.09 15.26 ± 0.96
Superíndices desiguales en las líneas indican diferencias significativas (P<0.05). Cuando no hay superíndices no se detecto diferencia significativa.
6.4.5 Peso ganado (PG)
Se comparó el peso ganado promedio por los organismos para cada densidad
(Tabla 9), obteniendo que la densidad de 6 peces/m2 fue significativamente menor
(P<0.05) a la densidad de 12 peces/m2 a los 182 días de cultivo (anexo I, Tabla m-1 y o-
1). Entre las densidades de 6 y 9 peces/m2 y 9 y12 peces/m2 no se presentaron
diferencias significativas (P>0.05).
Mario Alberto Silva Hernández Resultados
52 CICIMAR-IPN
Tabla 9. Peso ganado en gramos ganado por los juveniles del pargo amarillo (promedio ± desv. est.), por tiempo y densidad.
Tiempo (días)
Densidad 6 (peces/m2)
Densidad 9 (peces/m2)
Densidad 12 (peces/m2)
30 11.75±2.96 14.18±3.54 12.13±2.38 61 32.57±5.95 30.82±6.13 28.46±5.57 91 39.12±7.45 40.00±9.13 40.39±8.67 122 42.00±7.25 43.66±10.93 45.54±10.57 153 51.11±9.75 54.29±14.53 57.32±10.91 182 57.95±11.45b 65.13±16.83a 67.12±16.47a
Superíndices desiguales en las líneas indican diferencias significativas (P<0.05). Cuando no hay superíndices no se detecto diferencia significativa.
6.4.6 Ganancia en biomasa (G)
Se observó una diferencia importante en la producción de biomasa entre las
densidades (Tabla 11), encontrándose que la densidad de 6 peces/m2 fue
significativamente menor a la densidad de 12 peces/m2 (P<0.05)(anexo I, Tabla m-3 y o-
3).
6.4.7 Tasa de crecimiento absoluto (TCA)
Al comparar la tasa de crecimiento absoluto entre las tres densidades se observó
que al igual que la tasa de crecimiento anterior, no se presentan diferencias significativas
entre las densidades (P>0.05)(anexo I, Tabla m-4). Sin embargo, también se presenta una
tendencia de ser más eficiente el crecimiento de los peces, a medida que se incrementa la
densidad (Tabla 11). Además, se obtuvo la mejor TCA en el mes de Octubre, cuando la
temperatura del agua promedió 27.8 °C y la más baja TCA fue en Diciembre con 19 °C
(Tabla 10).
Mario Alberto Silva Hernández Resultados
53 CICIMAR-IPN
Tabla 10. Tasa de crecimiento absoluto (TCA)(g/día), obtenida por los juveniles del pargo amarillo, en su respectiva temperatura (promedio ± desv. est.), por tiempo y densidad.
TCA
Fecha Temperatura (ºC)
Densidad 6 Densidad 9 Densidad 12
Septiembre 1999 29.1 ± 0.5 0.39 0.47 0.40 Octubre 1999 27.8 ± 0.8 0.67 0.54 0.53 Noviembre 1999 24.6 ± 0.6 0.22 0.31 0.40 Diciembre 1999 19.0 ± 0.1 0.09 0.12 0.17 Enero 2000 19.0 ± 0.7 0.29 0.34 0.38 Febrero 2000 20.3 ± 0.6 0.24 0.37 0.34
6.4.8 Tasa de crecimiento especifica (SGR)
Los peces que presentaron la mayor tasa de crecimiento especifico fueron los
mantenidos a la densidad de 12 peces/m2 (Tabla 11), a pesar de esto, no se presentaron
diferencias significativas entre las densidades (P>0.05)(anexo I, Tabla m-5).
Tabla 11. Indices de crecimiento: peso ganado (PG), ganancia en biomasa (G), tasa de crecimiento absoluto (TCA) y tasa de crecimiento especifico (SGR), calculados durante el experimento para los juveniles del pargo amarillo por densidad (promedio ± desv. est.).
Indices Densidad 6
(peces/m2) Densidad 9 (peces/m2)
Densidad 12 (peces/m2)
PG (g) 57.95±11.45b 65.13±16.83ab 67.12±16.47a G (g) 1507.3 ± 131.7b 2562.6 ± 99.4ab 3405.1 ± 247.8a
TCA 0.32 ± 0.03 0.36 ± 0.03 0.37 ± 0.02 SGR 0.48 ± 0.03 0.51± 0.02 0.53 ± 0.02
Superíndices desiguales en las líneas indican diferencias significativas (P<0.05). Cuando no hay superíndices no se detecto diferencia significativa.
6.5 Supervivencia de juveniles
Al comparar los porcentajes de supervivencia entre las densidades (Tabla 12), no
se detectaron diferencias significativas (P>0.05), obteniendo valores por arriba del 96% de
supervivencia en las tres densidades (anexo I, Tabla l).
Mario Alberto Silva Hernández Resultados
54 CICIMAR-IPN
Tabla 12. Porcentaje de supervivencia (SUP), de los juveniles del pargo amarillo por densidad (promedio ± desv. est.), al final del experimento.
Densidad
(peces/m2)Vivos Muertos Total % Supervivencia
6 79 2 81 97.5 ± 2.1 9 120 3 123 97.6 ± 4.2 12 156 6 162 96.3 ± 1.9
No se detectaron diferencias significativas. 6.6 Indices de condición y de calidad del alimento
6.6.1 Factor de conversión alimenticia (FCA)
El FCA (promedio ± desv. est.) no presentó diferencias significativas (anexo I,
Tabla n-1) entre las densidades , pero si mostró una tendencia muy marcada a
incrementarse en la densidad más baja y de disminuir en la densidad más alta (Tabla 13).
6.6.2 Valor proteico productivo (PPV)
En este índice se encontró una diferencia significativa (P<0.05), entre la densidad
de 6 peces/m2 y la densidad de 9 peces/m2. La transformación de la proteína
suministrada en la dieta en proteína corporal más deficiente, en comparación con la
densidad de 9 peces/m2. Sin embargo, no se presentaron diferencia significativas
(P>0.05), entre la densidad de 6 y 12 peces/m2 y entre la densidad 9 y 12 peces/m2
(Tabla 13)(anexo, Tabla n-2 y p-1).
6.6.3 Tasa de eficiencia proteica (PER)
La tasa de eficiencia proteica después de haber sido comparada entre las distintas
densidades experimentales, no presentó diferencias significativa (P>0.05) pero si una
tendencia a ser más eficiente la asimilación de la proteína en el alimento, en la densidad
Mario Alberto Silva Hernández Resultados
55 CICIMAR-IPN
de 12 peces/m2 y a medida que disminuyó la densidad de 9 y 6 peces/m2, también
descendió su eficiencia de asimilación (Tabla 13) (anexo 1, Tabla n-3).
6.6.4 Factor de condición (FC)
No se presentaron diferencias significativas (P>0.05) en cuanto al factor de
condición en las distintas densidades (anexo I, Tabla n-4). Sin embargo, los peces que se
mantuvieron a una densidad de 12 peces/m2 obtuvieron el mayor factor de condición
comparados con los peces cultivados a 6 y 9 peces/m2 (Tabla 13).
Tabla 13. Indices de condición y de calidad del alimento: factor de conversión alimenticia (FCA), valor proteico productivo (PPV), tasa de eficiencia proteica (PER) y factor de condición (FC), calculados durante el experimento para los juveniles de L. argentiventris por densidad (promedio ± desv. est.).
Indices Densidad 6
(peces/m2) Densidad 9 (peces/m2)
Densidad 12 (peces/m2)
FCA 4.33 ± 0.4 2.82 ± 0.04 2.78 ± 0.21 PPV 6.51 ± 0.64b 8.47 ± 0.11a 7.50 ± 0.68ab
PER 0.44 ± 0.42 0.67 ± 0.01 0.69 ± 0.11 FC 2.97 ± 0.01 3.06 ± 0.03 3.08 ± 0.11
Superíndices desiguales en las líneas indican diferencias significativas (P<0.05). Cuando no hay superíndices no se detecto diferencia significativa.
6.7 Análisis químico proximal del pargo amarillo
Las tablas 14 y 15 describen la composición química proximal y de energía del
pescado entero y músculo de los juveniles del pargo amarillo.
Para el análisis proximal del cuerpo entero, se detectaron diferencias significativas
(P<0.05), en los casos de proteína cruda, extracto etéreo (lípidos), cenizas y energía
(anexo I, Tabla q-1, q-2, q-3, q-4, r-1, r-2, r-3 y r-4). En los tres primeros casos se
encontró solamente diferencia entre la densidad de 12 peces/m2 al inicio y al final del
experimento. El contenido de proteína cruda en los peces de la densidad de 12 peces/m2
disminuyó significativamente (P<0.05), al finalizar el experimento (Tabla 14). La
concentración de lípidos en la densidad de 12 peces/m2, aumentó significativamente
Mario Alberto Silva Hernández Resultados
56 CICIMAR-IPN
(P<0.05), después de 182 días de cultivo (Tabla 14). La disminución del contenido de
cenizas en los peces de la densidad de 12 peces/m2 al finalizar el experimento fue
significativo (P<0.05). En el caso de la energía, se detectó ser significativamente menor
(P<0.05), la energía contenida en el cuerpo de los peces de la densidad de 6 peces/m2,
en comparación de los individuos de la densidad de 12 peces/m2 (Tabla 14).
Tabla 14. Análisis químico proximal de L. argentiventris entero por densidad al inicio y al final del experimento (promedio ± desv. est.).
Análisis Inicio Densidad 6
(peces/m2) Densidad 9 (peces/m2)
Densidad 12 (peces/m2)
Proteína cruda 59.1 ± 0.1a 57.4 ± 0.13ab 52.2 ± 0.08ab 47.6 ± 0.01b Extracto etéreo 19.3 ± 0.3a 25.5 ± 0.10ab 32.5 ± 0.26ab 39.2 ± 0.01b
Cenizas 18.3 ± 0.6a 16.5 ± 0.10ab 15.3 ± 0.01ab 12.9 ± 0.04b
Energía (cal/g) 5099.1 ± 3.0ab 5060.6 ± 15.9a 5062.73 ± 77.1ab 5531.7 ± 15.5b
Superíndices desiguales en las líneas indican diferencias significativas (P<0.05). Cuando no hay superíndices no se detecto diferencia significativa.
En el caso del análisis proximal del músculo, también se detectaron diferencias
significativas (P<0.05) (Tabla 15). Para la proteína cruda, se encontró una diferencia en la
densidad de 12 peces/m2 al inicio y al final del experimento (anexo I, Tabla q-5 y r-5). En
el extracto etéreo y la energía del músculo de los organismos, se descubrieron diferencias
solamente en la densidad de 9 peces/m2 al inicio y al final del experimento (anexo I, Tabla
q-6, q-8, r-6 y r-7).
Tabla 15. Análisis químico proximal del músculo de L. argentiventris por densidad al inicio y al final del experimento (promedio ± desv. est.).
Análisis Inicio Densidad 6
(peces/m2) Densidad 9 (peces/m2)
Densidad 12 (peces/m2)
Proteína cruda 86.9 ± 0.1a 81.6 ± 0.24ab 82.1 ± 0.05ab 81.2 ± 0.15b Extracto etéreo 7.7 ± 0.1b 11.8 ± 0.28ab 13.4 ± 0.14a 13.1 ± 0.06ab
Cenizas 5.6 ± 0.2 5.5 ± 0.03 5.8 ± 0.05 5.4 ± 0.05
Energía (cal/g) 5229.9 ± 78.4b 5229.9 ± 3.50ab 5203.8 ± 31.3a 5334.9 ± 27.1ab
Superíndices desiguales en las líneas indican diferencias significativas (P<0.05). Cuando no hay superíndices no se detecto diferencia significativa.
Mario Alberto Silva Hernández Discusión
57 CICIMAR-IPN
7. DISCUSION
7.1 Adaptación y manejo de los peces al sistema de cultivo
Las jaulas flotantes utilizadas resultaron ser satisfactorias para la engorda del
pargo amarillo, ya que los valores obtenidos de supervivencia fueron mayores del 96 %
para todas las densidades experimentales al finalizar el estudio. Estas jaulas son
frecuentemente utilizadas para cultivar peces de diversas especies de manera
experimental. Tal es el caso de los salmones (Salmo gardneri = Oncorhynchus mikkys;
O. masou)(Trzebiatowski et al., 1981; Teskeredzic y Teskeredzic, 1990), de los pargos
(Lutjanus jocu; L. synagris)(Costa et al., 1998a, 1998b), del jurel (Seriola dumerili)
(Mazzola et al., 2000) y exitosamente de manera comercial, el cultivo del róbalo asiático
( Lates calcarifer)(Chou y Lee, 1997).
Al parecer, los reemplazos de las redes que se realizaron mensualmente, fueron
adecuados para la zona de cultivo y para las distintas estaciones del año que se
presentaron a lo largo del estudio. Debido a que las jaulas nunca se saturaron de
organismos incrustantes, el agua siempre fluyó libremente al interior de las jaulas,
eliminando los desechos metabólicos de los peces y manteniendo una adecuada calidad
del agua.
De manera general, el área seleccionada dentro de la ensenada de La Paz fue
adecuada para el cultivo en jaulas flotantes por ser una ensenada protegida, con una
velocidad de corriente máxima de 0.04 m/s en mareas vivas que no excedió los 60
cm/seg. Esto evitó daños y deformaciones físicas en las jaulas, así como un gasto
energético excesivo de los peces por mantenerse nadando a contracorriente (Beveridge,
1996). Gracias al buen recambio de agua y la adecuada velocidad de las corrientes de
mareas se logró mantener concentraciones de oxígeno adecuadas (por encima de 5 mg/l,
según lo reportado por Ikenoue y Kafuku (1992). Así mismo, la profundidad fue adecuada
ya que era mayor a los 8 m y se recomienda al menos los 5 m en la marea más baja del
Mario Alberto Silva Hernández Discusión
58 CICIMAR-IPN
año. También la separación que existía de 5 m, entre la jaula y el fondo fue adecuada,
más de los 2 m recomendados, para facilitar el flujo de agua y para que los posibles
desechos metabólicos acumulados en el fondo no deterioren la calidad del agua de las
jaulas (Anónimo, 1986). Según Ikenoue y Kafuku (1992) la profundidad del mar debe de
ser más del doble de la profundidad de las jaulas. En el presente estudio las jaulas
presentaron una profundidad real de 2 m (altura sumergida), es decir que la profundidad
del mar fue más del triple superior que las jaulas.
7.2 Parámetros físico químicos del agua
La concentración de oxígeno disuelto durante todo el cultivo fue adecuada, según
lo recomendado por Bernabé (1994) quien estimó que un nivel de 5 mg/l es suficiente
para una adecuada oxidación del alimento y así liberar la energía necesaria para todas
las actividades vitales en la mayoría de las especies de peces. Ikenoue y Kafuku (1992)
han encontrado que concentraciones menores de 4 mg/l, producen una perdida de apetito
en los peces, provocando una disminución en el crecimiento a causa del bajo consumo de
alimento.
La salinidad se mantuvo relativamente constante y solamente fluctuó de 37.9 a
38.7 ppm. Este intervalo de salinidad no afecta al pargo amarillo, por ser una especie
considerada como eurihalina (Allen y Robertson, 1994; Castro-Aguirre y Balart, 1997).
La temperatura del agua presentó un intervalo muy amplio (17.6 - 30.3 °C),
influyendo directamente en el consumo de alimento y en el crecimiento de los pargos. Las
temperaturas altas favorecieron en el crecimiento y en el consumo de alimento (Figura 3).
También para Dicentrarchus labrax incrementos en la temperatura mejoran su tasa de
crecimiento (Hidalgo et al., 1987).
Mario Alberto Silva Hernández Discusión
59 CICIMAR-IPN
7.3 Crecimiento de los juveniles
Los resultados obtenidos claramente muestran que el peso promedio de los
juveniles del pargo amarillo, se incrementa con el aumento de la densidad de
confinamiento, mostrando una marcada correlación positiva, la cual es muy adecuada
para cualesquier cultivo comercial, por obtener el mejor peso en la mayor densidad. Al
igual que los resultados mostrados en este estudio, se encuentran dos trabajos realizados
con la trucha del Artico (Salvelinus alpinus) y con los juveniles de la lubina europea
(Dicentrarchus labrax), en los cuales se reportaron una correlación positiva entre el peso
promedio y la densidad de confinamiento (Papst et al., 1992; Jorgensen et al., 1993;
Papoutsoglou et al., 1998). Existen otros estudios, en los que no se han detectado
diferencias significativas en el peso promedio entre las distintas densidades evaluadas; es
decir que la densidad no ejerce una gran influencia sobre el crecimiento de los
organismos, tal es el caso de lo reportado por Abdullah y colaboradores (1987) con
juveniles del mero (Epinephelus tauvina); Cruz y Ridha (1989) con juveniles de tilapia
(Oreochromis spilurus) y por Watanabe et al., (1990) con híbridos de tilapia (Oreochromis
urolepis hornorum X O. mossambicus) cultivados en jaulas marinas.
Sin embargo, se ha documentado un efecto inhibidor de las altas densidades de
confinamiento en el crecimiento de los organismos en cultivo (Yi et al., 1996; Maragoudaki
et al., 1999). Estas relaciones inversas (correlación negativa) han sido reportadas por
muchos investigadores con diversas especies. Tal es el caso de la lubina rayada híbrida
(Morone saxatilis X M. chrysops), que disminuyó su crecimiento (de 352.1 a 335.3 g) al
incrementar su densidad de confinamiento de 100 a 150 ind/m3 (Woods et al., 1983), del
bagre (Clarias gariepinus), que disminuyó su crecimiento (de 498 a 490 g) al incrementar
la densidad de 50 a 100 ind/m3 (Hengsawat et al., 1997), del esparido (Pagrus pagrus)
disminuyendo su crecimiento (de 66.22 a 63.61 g) con el incremento de la densidad de 50
a 100 ind/m3 (Maragoudaki et al., 1999) y de la cabrilla arenera (Paralabrax
Mario Alberto Silva Hernández Discusión
60 CICIMAR-IPN
maculatofasciatus) que inhibió su crecimiento (de 55 a 41.1 g) con el aumento de la
densidad de 300 a 900 g/ m3 (Grayeb-Del Alamo, 2001). También el pargo amarillo (L.
argentiventris) presentó este mismo comportamiento al ser confinado en jaulas dentro de
un estanque intermareal, disminuyendo su crecimiento de 82.3 g (densidad 6 ind/m3) a
57.5 g (12 ind/m3) (Guerrero-Tortolero et al., 1999), presentando ser lo opuesto a los
resultados de este estudio. Pudiendo ser la causa la poca estabilidad de los parámetros
físicos y químicos del agua en estos estanques, en comparación con los embalses
mayores abiertos con un flujo de agua constante, donde las jaulas flotantes de este
estudio se colocaron.
Frecuentemente se reportan relaciones positivas ó negativas entre la densidad de
confinamiento y el crecimiento de un mismo pez cultivado en jaulas. Por ejemplo, Yi et al.,
(1996), documentó que el peso promedio de la tilapia del Nilo (Oreochromis niloticus)
cultivada en jaulas, fue mayor en la densidad de 50 peces/m3 (561 g), superando a la
densidad de 30 peces/m3 (550 g) y después declinó en la densidad de 70 peces/m3 (519
g), debido a un aumento excesivo en la biomasa alcanzada al finalizar el experimento.
En el presente estudio, la correlación positiva entre la densidad de confinamiento y
el crecimiento del pargo amarillo, pudo ser provocada a que no se alcanzó una biomasa
excesiva en las jaulas que repercutiera negativamente en el crecimiento de los peces.
La tasa de crecimiento absoluto (TCA) presentó una tendencia a ser mayor en los
peces confinados en la densidad de 12 peces/m2 (0.37 g/día), seguidos por los peces en
la densidad de 9 peces/m2 (0.36 g/día) y finalmente la densidad de 6 peces/m2 (0.32
g/día). Comparando estos resultados con los encontrados por Grayeb-Del Alamo
(2001)(0.17 g/día), para una densidad de 13 peces/m3 durante la fase de engorda en
jaulas flotantes de la cabrilla arenera (Paralabrax maculatofasciatus), mostraron una tasa
de crecimiento inferior en comparación del pargo amarillo. Sin embargo, la tasa de
crecimiento obtenidas en este experimento fueron inferiores a lo reportado para
Mario Alberto Silva Hernández Discusión
61 CICIMAR-IPN
Epinephelus tauvina (0.9 g/día)(Abdullah et al., 1987), L. jocu (0.7 g/día), L. synagris (0.44
g/día)(Costa et al., 1998a, 1998b), para el híbrido de la tilapia (Oreochromis urolepis
hornorum X O. mossambicus) (1.94 g/día)(Watanabe et al., 1990) y para el híbrido de
lubina rayada (Morone saxatilis X M. chrysops)(1.4 g/día) (Woods et al., 1983).
La tasa de crecimiento especifico (SGR), también presentó una tendencia a
incrementarse con el aumento de la densidad de confinamiento. Esta tasa de crecimiento
de 0.53 %/día en la densidad alta (12 peces/m2), se encontró ligeramente superior a lo
reportado por Grayeb-Del Alamo (2001), para Paralabrax maculatofasciatus con 0.52
%/día e inferior en comparación a las reportadas en la literatura para Acanthopagrus
sivicolus con 1.58 %/día (Shokita et al., 1991), Pagrus pagrus con 1.39 %/día (Kentouri et
al., 1995), Oreochromis spilurus con 1.57 %/día (Cruz y Ridha et al., 1989) y Scopthalmus
maximus con 4.38 %/día (Irwin et al., 1999). Estas tasas de crecimiento bajas pudieron
haber sido provocadas por las bajas temperaturas del agua que imperaron durante el
cultivo, con más de un 50 % del tiempo transcurrido en temperaturas bajas (17.6 – 23.1
°C), para una especie considerada como tropical (Thomson et al., 2000). La mejor TCA
(0.58 g/día) para el pargo amarillo se obtuvo en el mes de octubre, cuando la temperatura
del agua promedió 27.8 °C y la más baja TCA (0.12 g/día) fue en diciembre con 19 °C.
Similares disminuciones en la tasa de crecimiento provocadas por temperaturas bajas
han sido reportadas para Epinephelus guaza, con una TCA de 0.48 g/día en 25.9 °C y de
0.33 g/día en 20.4 °C.(Gracia-López y Castelló-Orvay, 1996). Como se puede observar
las temperaturas bajas disminuyeron el crecimiento del pargo amarillo. Sin embargo, el
pargo amarillo puede ser considerado como una especie euritérmica, porque durante el
cultivo resistió un intervalo de temperaturas amplio (17.6 – 30.3 ºC), pero la temperatura
óptima para su crecimiento se encontró entre 25.8 y 29.7 °C. Algo similar han encontrado
para distintas especies como Pagrus major que puede resistir temperaturas del agua de
10 a 29 ºC, pero el rango más adecuado para obtener la mejor tasa crecimiento se
Mario Alberto Silva Hernández Discusión
62 CICIMAR-IPN
encuentra entre 17-18 ºC (Watanabe, 1988). Seriola quinqueradiata puede sobrevivir a
temperaturas del agua de 7 a 28 ºC y la temperatura óptima para el crecimiento está entre
24 y 26 ºC (Ikenoue y Kafuku, 1992). Calderer y Cardona (1993), determinaron que
Sparus aurata y Dicentrarchus labrax podían sobrevivir a temperaturas de 4 a 32 ºC y 2 a
30 ºC, pero el óptimo crecimiento lo obtuvieron entre 22-28 ºC y 18-24 ºC. Otro factor que
pudo intervenir en la disminución de tasas de crecimiento en este estudio, fue que el
alimento se suministro en una sola dosis por día. Se ha reportado que incrementando la
frecuencia alimenticia se mejora el crecimiento de los peces (Chua y Teng, 1978). Para
Lutjanus argentimaculatus alimentados dos veces al día, crecieron mejor que los
alimentados una vez al día solamente (Doi y Singhagraiwan, 1993). En Epinephelus
akaara se mostró que a mayor frecuencias alimenticia aumenta la tasa de crecimiento,
una eficiente conversión alimenticia y una alta supervivencia, es decir que la frecuencia
alimenticia presentó una correlación positiva con el crecimiento de los juveniles (Kayano
et al., 1993). La baja frecuencia alimenticia puede causar cambios metabólicos que
disminuyan la asimilación de las proteínas y la acumulación de lípidos en los peces,
provocando una baja conversión de la proteína contenida en la dieta a músculo del pez
(Kayano et al., 1993). Algo similar pudo haber ocurrido con el pargo amarillo, que fue
sometido a una frecuencia de alimentación muy baja (1 vez/día), lo cual pudo provocar
una deficiencia en la asimilación de las proteínas del alimento, disminuyendo las tasas de
crecimiento y aumentando la acumulación de lípidos en los peces.
La biomasa total registrada al finalizar el experimento en la densidad más alta,
fue significativamente mayor (5702 g) que la biomasa total en la densidad menor (2629 g).
Lo anterior demuestra que existe una fuerte relación entre la biomasa total (cosecha final)
y la densidad, de incrementarse con el aumento de la densidad de confinamiento. Estos
resultados están de acuerdo con los obtenidos para otras especies Dicentrarchus labrax
(Papoutsoglou et al., 1998), Salvelinus alpinus (Jorgensen et al., 1993) y Epinephelus
Mario Alberto Silva Hernández Discusión
63 CICIMAR-IPN
tauvina (Abdullah et al., 1987). Sin embargo, en otras especies un incremento excesivo de
la densidad reduce la biomasa total, Oreochromis spilurus (Cruz y Ridha, 1989) y
Epinephelus salmoides (Teng y Chua, 1979).
En otros estudios se han reportado altos niveles de producción a densidades de
confinamiento consideradas como óptimas, pasando dicha densidad los niveles de
producción disminuyen (Hengsawat et al., 1997). Mientras los valores de cosecha y/o
biomasa final están directamente relacionados con la densidad de confinamiento, debe de
existir una densidad en la cual la mortalidad es alta por una variedad de causas y las
tasas de crecimiento se reducen. Al parecer la densidad máxima no fue alcanzada en este
estudio ya que la densidad más alta fue relativamente baja (12 peces/m2) en comparación
con las altas densidades (300-400 peces/m3) utilizadas en otros estudios (Abdullah et al.,
1987; Cruz y Ridha, 1989; Watanabe et al., 1990; Hengsawat et al., 1997). Es importante
mencionar, que la aparente relación de la biomasa y la densidad de confinamiento tiene
que ser tratada con cautela. En altas densidades, la mortalidad puede llegar a ser
extremadamente severa, provocando en algunos casos una total perdida de la producción
(Hengsawat et al., 1997). Esta mortalidad extrema, puede ser causada por un gran
número de agentes relacionados a la densidad de organismos; por ejemplo, cambios del
comportamiento o en una rápida dispersión de algún virus patógeno (Cruz y Ridha,
1991).
7.4 Supervivencia de juveniles
El coeficiente de supervivencia del pargo amarillo cultivado en jaulas flotantes, fue
superior al 96% en todas las densidades experimentales. Similarmente, han sido
reportados para esta misma especie, altos coeficientes de supervivencia (Avilés-Quevedo
et al., 1996; Guerrero-Tortolero et al., 1999). Lutjanus argentiventris presentó un alto
porcentaje de supervivencia, si se compara con el obtenido por otras especies cultivadas
Mario Alberto Silva Hernández Discusión
64 CICIMAR-IPN
bajo el mismo sistema de cultivo y con una duración de la engorda aproximada, como
Epinephelus salmoides con el 88.8 % (Teng y Chua 1978), Lutjanus peru con 65 %
(Avilés-Quevedo et al., 1996a) y Trachinotus carolinus con 62 % (Gomez-Gaspar, 1987).
Al parecer la densidad de confinamiento no tuvo ningún efecto negativo en la
supervivencia. Jorgensen et al (1993), también reportó efectos similares para Salvelinus
alpinus. Sin embargo, otros estudios han reportado altas mortalidades con el aumento de
la densidad de confinamiento. Tal es el caso de Epinephelus salmoides con el aumento
de la mortalidad (de 93 a 88.8 %) al incrementar la densidad de 60 a 120 peces/m3 (Teng
y Chua, 1979) y Oreochromis niloticus de 50 a 70 peces/m3 (de 83.9 a 57.2 %) (Yi et al.,
1996).
7.5 Comportamiento
Para L. argentiventris, el haber incrementado su crecimiento a medida que
aumentaba la densidad, se podría deber al comportamiento de cardumen y de mayor
apetito mostrado en la densidad más alta (12 peces/m2) con respecto a la más baja (6
peces/m2) probada en este experimento. Aunque no se observó claramente un
comportamiento agresivo, posiblemente el cultivar el pargo amarillo en densidades bajas,
motivo la formación de jerarquías dominantes provocando condiciones estresantes.
Papoutsoglou et al. (1998) indicaron que la lubina (Dicentrarchus labrax) sembradas en
densidades bajas, presentó una disminución en el crecimiento debido a que en estas
densidades los peces se encuentran cultivados bajo condiciones estresantes. Se ha
encontrado que la densidad presenta un profundo efecto sobre las interacciones sociales
y de agresión causantes del estrés en los salmónidos bajo cultivo (Bagley, 1994). Para
soportar esta hipótesis, se encuentra lo reportado por Jorgensen et al. (1993), que
demostraron que para el salmónido (Salvelinus alpinus) su agresividad tendió a decrecer
a medida que aumentó la densidad de confinamiento y los peces colocados en altas
Mario Alberto Silva Hernández Discusión
65 CICIMAR-IPN
densidades mostraron un desarrollo más rápido del comportamiento de cardumen que los
sembrados en las densidades bajas.
Más posibles evidencias para la existencia de un factor estresante en los peces de
una baja densidad esta dado por los valores obtenidos en el factor de conversión
alimenticia (FCA), que sugieren que la eficiencia del factor de conversión fue mejorado
bajo densidades altas. Esto tal ves se deba a lo reportado por Brett (1979), quien indicó
que los altos niveles de interacción social pueden afectar el gasto de energía como el
resultado de las elevadas tasas metabólicas.
7.6 Indices de condición y calidad del alimento
En cuanto al factor de conversión alimenticia (FCA) obtenido por lo peces
cultivados en las diferentes densidades, se encontró un valor de 4.33 en la densidad más
baja utilizada, mientras que en la densidad más alta fue de 2.78. Es decir que los pargos
en las densidades bajas aparentemente consumieron más alimento con relación a su
peso ganado. Cabe mencionar, que el aumento del valor del FCA nos indica una
deficiencia en los peces, en el aprovechamiento del alimento para producir biomasa
corporal. Esta misma conducta fue registrada en Dicentrarchus labrax con un aumento en
su FCA de 3.21 a 3.52 con la disminución de la densidad (Papoutsoglou et al., 1998). En
este trabajo, el pargo amarillo presentó una mejor eficiencia del factor de conversión
alimenticio (2.78) en comparación con los resultados obtenidos anteriormente para esta
especie, cultivada en jaulas pero alimentada con pescado fresco (8.79; 8.3)(Avilés-
Quevedo et al., 1996b, Guerrero-Tortolero et al., 1999). Estos incrementos en el factor de
conversión alimenticio en el pargo amarillo alimentado con pescado fresco, tienen una
repercusión directa en la elevada cantidad de humedad que este tipo de alimentos
contiene (70% aprox.), dicha humedad disminuye los porcentaje de nutrientes (% de
proteínas, % de lípidos, etc.) aportados a los peces con este tipo de dietas, en
Mario Alberto Silva Hernández Discusión
66 CICIMAR-IPN
comparación con las dietas balanceadas (5% alimento utilizado en este estudio). Sin
embargo, los valores de FCA reportados para Seriola mazatlana (= lalandi) (1.2) por
Benetti y Wilson (1996), para Oreochromis niloticus (1.45) por Yi et al. (1996) y para
Sparus aurata (1.5) por Abellan y García-Alcaraz (1995) fueron más eficientes que los
obtenidos en el pargo amarillo, posiblemente debido a que dichos peces fueron
alimentados con dietas balanceadas especificas para cada uno de ellos y los organismos
en este trabajo se alimentaron con una dieta para trucha. Caso similar fue reportado por
Gatland (1995) quien realizó la engorda de Puntazzo puntazo (una especie en
investigación para ser cultivada), alimentada con alimento balanceado para Sparus
aurata, encontrando un FCA muy similar (3.0) al reportado en este estudio.
Los valores proteicos productivos (PPV) encontrados para el pargo amarillo
en este trabajo mostraron que el valor de la densidad de 6 peces/m2 fue
significativamente menor con 6.51 % a la densidad de 9 peces/m2 con 8.47 %. A pesar
de no encontrar diferencia significativa entre las densidades 6 y 12 peces/m2, si se
encontró una tendencia a aumentar los valores proteicos productivos de 6.51 a 7.50 %,
con el incremento de la densidad. En relación con estos resultados, los valores reportados
para otras especies muestran ser superiores, en Sparus aurata se reportaron valores de
21.96 a 25.57 % (Robaina et al., 1997). Para Siganus guttatus se encontraron valores de
23.19 a 36.03 % (Parazo, 1990). Esta notable disminución en la capacidad de asimilación
en comparación con las especies mencionadas se puedan deberse a que aún no se
conocen las necesidades nutricionales del pargo amarillo y la dieta suministrada (para
trucha), se encuentre lejos de ser la más adecuada para esta especie.
Las tasas de eficiencia proteica (PER), observadas en este estudio, fueron de 0.44
en la densidad de 6 peces/m2 y de 0.69 en la densidad de 12 peces/m2, observándose
una fuerte tendencia en incrementar su eficiencia proteica con el aumento de la densidad,
a pesar de haber sido alimentados con la misma dieta. Esta misma tendencia fue
Mario Alberto Silva Hernández Discusión
67 CICIMAR-IPN
reportada para Mystus nemurus, incrementando de 1.67 (densidad baja) a 1.80 (densidad
óptima) (Khan, 1994). La eficiencia proteica del pargo amarillo fue baja en comparación
de lo reportado para Sciaenops ocellatus con 2.44 alimentados con una dieta de 40% de
proteína y 19% de lípidos (Serrano et al., 1992). Para Siganus guttatus se reporto un PER
de 2.02, después de 8 semanas de alimentarlos con una dieta con el 26.2% de proteína y
8.8% en lípidos (Parazo, 1990). En Lates calcarifer se estimó un PER de 2.26 utilizando
una dieta de 35/10 proteína y lípidos (Catacutan y Coloso 1995). Cabe mencionar que la
eficiencia proteica encontrada en las especies anteriores fue determinado utilizando
dietas con un nivel óptimo de proteína y lípidos. En nuestro caso se desconocen los
niveles óptimos para el pargo amarillo, por lo que es posible que la baja eficiencia proteica
se deba a esto.
El intervalo de valores para el factor de condición al finalizar el experimento fue de
2.97 a 3.08. De acuerdo con Ricker (1984), los peces de tipo fusiforme presentan un
crecimiento homogéneo a medida que su valor de FC se acerca a 3. Por lo tanto el
crecimiento observado en esta investigación para las distintas densidades, mostró ser
homogéneo. Al contrastar estos resultados con los obtenido por Grayeb-Del Alamo (2001)
con Paralabrax maculatofasciatus (valores superiores a 3 y que además reportaron que la
cabrilla arenera presentaba grandes cantidades de grasa corporal), se determinó que los
peces de este estudio, aparentemente fueron menos obesos, aunque si presentaban un
ligero exceso de grasa en la cavidad mesentérica y sobre los órganos. Los valores
obtenidos fueron altos si se compara con los de otras especies cultivadas en jaulas, por
ejemplo para el jurel europeo Seriola dumerili se determinó un FC de 1.01. Este valor es
más bajo que los del pargo amarillo, debido a las características morfológicas del jurel,
que es una especie pelágica alargada (Mazzola et al., 2000). Un valor similar (1.54), a los
obtenido para el pargo amarillo, fue determinado para Morone saxatilis X M. chrysops
(Woods et al., 1987).
Mario Alberto Silva Hernández Discusión
68 CICIMAR-IPN
7.7 Análisis químico del pargo amarillo
El análisis proximal del cuerpo entero de los peces indicó un incremento en la
cantidad lípidos en los peces al aumentar la densidad de confinamiento. Este aumento
fue de 25.5 % (6 peces/m3) a 39.2 % (12 peces/m3). Khan (1994) reportó incrementos en
la cantidad de grasa en el cuerpo entero del bagre Mystus nemurus al aumentar la
densidad de 4.9 % (195 peces/m3) a 5.75 % (555 peces/m3), pero en menor magnitud que
los presentados en este estudio. Este análisis proximal en los peces también detectó un
incremento en el nivel de grasa del 19.3 % (inicio del experimento), al 39.2 % (densidad
12 peces/m2) después de finalizar la investigación. Al igual que al pargo amarillo se han
reportado para otras especies percoideas carnívoras estos incrementos en el porcentaje
de lípidos bajo la misma densidad de confinamiento. En Epinephelus malabaricus se
encontró un incremento del 8.3 al 16 % después de 50 días de confinamiento (Chen y
Tsai 1994) y de 2.2 al 6.6 % después de 56 días (Shiau y Lan 1996) . Para Lates
calcarifer se determinó un aumento del 15.30 al 22.99 % de lípidos en el cuerpo entero
después de 54 días de cultivo (Catacutan y Coloso 1995). Esta misma tendencia fue
reportada por Pérez et al. (1997) y Robaina et al. (1997). Ambos autores indicaron que el
aumento del nivel de proteína en la dieta, incrementó la cantidad de lípidos depositados
en los peces, hasta obtener peces gordos con grandes cantidades de grasa acumulada.
Sin embargo, Serrano et al. (1992) determinaron que el aumento de lípidos corporales en
Sciaenops ocellatus se produjo con el aumento de lípidos en la dieta, más que la cantidad
de proteína.
El análisis proximal en el músculo también indicó ese aumento significativo del 7.7
al 12.8 % de lípidos al final de ensayo. Dicho incremento en la cantidad de grasa
acumulada en el músculo después de un periodo de cultivo en jaulas también han sido
reportados para el salmón (Teskeredzic y Teskeredzic 1990).
Mario Alberto Silva Hernández Discusión
69 CICIMAR-IPN
Durante el presente estudio, la acumulación elevada de lípidos en el cuerpo entero
(aumento del 20% aprox.), fue mayor que la acumulación de lípidos en el músculo
(aumento del 6% aprox.). Esto se debió a que la mayoría de los lípidos fue a parar a la
región abdominal (tejido adiposo). El alimento suministrado en este estudio era rico en
energía y la relación proteína:energía era baja. Los peces que ingirieron más alimento
depositaron el exceso de energía como lípidos. Para Siganus guttatus se determinó que
alimentados con dietas con un nivel energético alto (3832 cal/g), da como resultado un
aumento en el nivel de lípidos corporales (del 5.7% al 26.2%, después de 56 días de
cultivo)(Parazo, 1990).
Por lo tanto el alimento suministrado probablemente superó los requerimientos de
proteína y de energía para el pargo amarillo. Según Shiau y Lan (1996) el incremento de
lípidos en el músculo es ocasionado por un exceso de proteína en la dieta mal
balanceada. Aunque esto actualmente podría beneficiar si se pretende comercializar
estos peces en la comunidad Asiática dentro de los Estados Unidos de Norteamérica, ya
que ellos prefieren filetes frescos con altos contenidos de lípidos.
Se observó una disminución en la proteína de los peces al inicio (86.9 %) y al final
de la investigación (81.6 %) en el músculo. Esto se puede deber al incremento en el
porcentaje de lípidos en el músculo y/o el suministro de una dieta que probablemente no
cubrió los requerimiento nutricionales del pargo amarillo.
Cabe mencionar, que la presente tesis es uno de los primeros trabajos que pudo
incorporar el suministro de una dieta balanceada en el cultivo en jaulas flotantes para una
especie de importancia comercial en México. Así, como su efecto en el crecimiento y
composición proximal de los organismos cultivado en las distintas densidades. Con los
resultados encontrados en esta investigación se requiere continuar con trabajos en el área
de la nutrición para conocer los requerimientos nutricios de esta especie que ha mostrado
ser un organismo con potencial acuacultural.
Mario Alberto Silva Hernández Conclusiones
70 CICIMAR-IPN
8. CONCLUSIONES
En conclusión, los resultados obtenidos en cultivo del pargo amarillo en jaulas
flotantes fueron positivos, al encontrar que el pargo amarillo es un organismo
potencialmente factible de ser cultivado en jaulas flotantes, por presentar altas
supervivencias, resistencia al manejo, aceptar el alimento balanceado, poder ser cultivado
a densidades relativamente altas obteniendo una mejor biomasa por área de cultivo y por
ser un organismo que se adapta fácilmente al cautiverio, sin presentar agresividad ni
territorialismo en densidades altas. Sin embargo, los resultados encontrados en este
trabajo no indicaron los limites superiores de la densidad de confinamiento para el pargo
amarillo cultivado en jaulas flotantes. Pero si generó expectativas positivas al obtener la
mejor biomasa y peso promedio en la densidad más alta probada en este estudio, sin
afectar la supervivencia y con la posibilidad de incrementar las densidades al igual que en
los cultivos comerciales.
El comportamiento de cardumen del pargo amarillo mostrado más notoriamente
en las densidades altas, pudo haber sido factor en las diferencias observadas en los
peces de cada densidad. Esto concluye que Lutjanus argentiventris, dentro del rango de
densidades de confinamiento probadas y al menos en este estadio juvenil, pertenece a la
categoría de los peces que presentan una correlación positiva entre las densidades de
confinamiento y el crecimiento. Otra característica del comportamiento mostrada por esta
especie fue que ocupaban no solamente el fondo de la jaula sino la totalidad de la jaula
desplazando de un punto a otro en el interior de la misma. Por lo tanto para los trabajos
futuros es recomendable establecer las densidades de confinamiento en peces/m3, para
obtener datos más precisos y que se puedan comparar fácilmente con los reportados en
los peces que comparten esta característica.
Mario Alberto Silva Hernández Conclusiones
71 CICIMAR-IPN
La alimentación a base de pienso seco en el pargo amarillo fue adecuada, por la
rápida aceptación de la dieta, la disminución de los costos al no requerir de refrigeración
para preservar una dieta fresca y cabria esperar mejores resultados en el crecimiento,
composición proximal y en la eficiencia alimenticia con la utilización de un pienso
balanceado que reuniera las necesidades nutritivas para esta especie y además se
suministrara en más de una sola dosis al día.
La temperatura fue un factor importante que influyó en el crecimiento de los pargos
amarillos. Encontrándose un incremento en el crecimiento y en el consumo de alimento
con el aumento de la temperatura del agua, siendo su rango de temperatura óptima para
su crecimiento entre 25.8 y 29.7 °C. Sin embargo, el pargo amarillo puede ser
considerado como una especie euritérmica, porque durante el cultivo resistió un intervalo
de temperaturas amplio (17.6 – 30.3 ºC). Lo anterior podría ser utilizado como una táctica
a nuestro favor, seleccionando la zona de cultivo con temperaturas de agua cálida lo
menos extremosa posible y si se planeara cultivar esta especie en jaulas flotantes en la
ensenada de La Paz o en alguna otra zona protegida de la Bahía de La Paz, seria
adecuado iniciar su cultivo en los meses más cálidos tomando como referencia los niveles
de temperatura óptimos para su crecimiento.
Mario Alberto Silva Hernández Recomendaciones
72 CICIMAR-IPN
9.0 RECOMENDACIONES PARA TRABAJOS FUTUROS
Se deberán realizar experimentos adicionales para determinar la densidad óptima
de confinamiento del pargo amarillo en jaulas flotantes, para conocer la densidad máxima
en la cual se obtenga no solo el mejor peso promedio sino la producción de cosecha más
alta manteniendo una buena supervivencia.
Es recomendable realizar estudios que permitan conocer las necesidades
nutricionales del pargo amarillo, con énfasis en la etapa de engorda en jaulas flotantes.
Otros estudios deben de realizarse para determinar los niveles óptimos de
alimentación y de dosificación en diferentes densidades.
La reproducción controlada de esta especie de importancia comercial y con gran
potencial de ser cultivada comercialmente, permitirá mejorar la disponibilidad de los
juveniles adecuados y homogéneos para realizar trabajos de investigación mucho más
representativos que los obtenidos por capturas silvestres. Todo esto nos permitirá realizar
estudios sobre la viabilidad económica del cultivo en jaulas de una especie nativa
candidata a ser cultivada, en la búsqueda de aportar conocimientos científicos y
económicos que puedan desarrollar una industria piscícola consolidada en el Noroeste de
México.
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Mario Alberto Silva Hernández Anexo I
CICIMAR-IPN 88
ANEXO Tabla a) Análisis de regresión y correlación de los parámetros ambientales. Oxígeno disuelto contra temperatura. R= .86719560 R²= .75202820 Ajustado R²= .75030618 F(1,144)=436.71 p<.00000 Error est. estimado : .82371
BETA Error est. B Error est. t(144) P de beta de b
Intersección 15.984020 0.399192 40.040888 0 Temperatura -0.867196 0.041497 -0.356897 0.017078 -20.897636 1.401E-45 Tabla b) Análisis de regresión consumo de alimento contra temperatura. Densidad de 6 peces/m2. R= .96896600 R²= .93889512 Ajustado R²= .93507606 F(1,16)=245.84 p<.00000 Error est. estimado: 169.15
BETA Error est. B Error est. t(16) P de beta de b
Intersección -2399.9784 229.28156 -10.467385 1.45E-08 TEMP. 0.968966 0.061799 151.823016 9.682935 15.679441 3.92E-11 Densidad de 9 peces/m2. R= .97553422 R²= .95166701 Ajustado R²= .94864620 F(1,16)=315.04 p<.00000 Error est. estimado: 149.24
BETA Error est. B Error est. t(16) P de beta de b
Intersección -2265.0874 202.29675 -11.196855 5.58E-09 TEMP. 0.975534 0.054962 151.637806 8.5433227 17.7492775 5.98E-12 Densidad de 12 peces/m2. R= .96895187 R²= .93886772 Ajustado R²= .93504695 F(1,16)=245.73 p<.00000 Error est. estimado: 242.72
BETA Error est. B Error est. t(16) P de beta de b
Intersección -3422.11823 329.00376 -10.401456 1.58E-08 TEMP. 0.968952 0.061812 217.803909 13.894367 15.6756983 3.94E-11
Mario Alberto Silva Hernández Anexo I
CICIMAR-IPN 89
Consumo de alimento total contra temperatura R= .91684920 R²= .84061245 Ajustado R²= .83754731 F(1,52)=274.25 p<.00000 Error est. estimado: 317.46
BETA Error est. B Error est. t(52) P de beta de b
Intersección -2695.72803 248.44302 -10.850488 5.75E-15 TEMP. 0.916849 0.055364 173.75491 10.492155 16.5604596 2.2E-22 Tabla c) Pruebas de Kolmogorov-Smirnov de normalidad para la variable peso por densidad y tiempo de vida de los juveniles. Día Densidad N D máxima p día 0 6 81 0.054 p > .15 día 0 9 123 0.088 p > .20 día 0 12 162 0.057 p > .20 día 30 6 81 0.063 p > .20 día 30 9 123 0.065 p > .20 día 30 12 162 0.073 p > .20 día 61 6 81 0.121 p < .20 día 61 9 123 0.078 p > .20 día 61 12 161 0.085 p < .20 día 91 6 80 0.108 p > .20 día 91 9 123 0.091 p > .20 día 91 12 160 0.061 p > .20 día 122 6 79 0.078 p > .20 día 122 9 121 0.069 p > .20 día 122 12 157 0.097 p < .15 día 153 6 79 0.082 p > .20 día 153 9 121 0.070 p > .20 día 153 12 157 0.084 p > .20 día 182 6 79 0.062 p > .20 día 182 9 120 0.052 p > .20 día 182 12 156 0.069 p > .20 Tabla d) Pruebas de Kolmogorov-Smirnov de normalidad para la variable longitud patrón por densidad y tiempo de vida de los juveniles. Día Densidad N D máxima p día 0 6 81 0.130 p > .20 día 0 9 123 0.117 p < .10 día 0 12 162 0.118 p < .10 día 30 6 81 0.092 p > .20 día 30 9 123 0.069 p > .20 día 30 12 162 0.098 p < .10 día 61 6 81 0.104 p > .20
Mario Alberto Silva Hernández Anexo I
CICIMAR-IPN 90
día 61 9 123 0.066 p > .20 día 61 12 161 0.070 p > .20 día 91 6 80 0.080 p > .20 día 91 9 123 0.084 p > .20 día 91 12 160 0.097 p < .10 día 122 6 79 0.095 p > .20 día 122 9 121 0.062 p > .20 día 122 12 157 0.074 p > .20 día 153 6 79 0.068 p > .20 día 153 9 121 0.073 p > .20 día 153 12 157 0.101 p < .10 día 182 6 79 0.091 p > .20 día 182 9 120 0.077 p > .20 día 182 12 156 0.093 p < .15 Tabla e) Prueba de Levine de homogeneidad de la varianza entre replicas de la variable peso. Día Densidad SC efecto gl CM efecto SC error gl CM error F p día 0 6 86.6247 2 43.3123 474.0702 78 6.0778 7.1263 0.0014 día 0 9 3.7649 2 1.8824 1009.7341 120 8.4145 0.2237 0.7999 día 0 12 43.6384 2 21.8192 1237.8933 159 7.7855 2.8025 0.0637 día 30 6 37.6206 2 18.8103 1545.3196 78 19.8118 0.9494 0.3914 día 30 9 81.0219 2 40.5109 3229.0315 120 26.9086 1.5055 0.2261 día 30 12 18.3388 2 9.1694 3563.1477 159 22.4097 0.4092 0.6649 día 61 6 68.4920 2 34.2460 2593.9073 78 33.2552 1.0298 0.3619 día 61 9 121.0792 2 60.5396 5539.1503 120 46.1596 1.3115 0.2732 día 61 12 56.0765 2 28.0383 5849.6722 158 37.0232 0.7573 0.4706 día 91 6 43.1045 2 21.5522 3938.3206 77 51.1470 0.4214 0.6576 día 91 9 102.6456 2 51.3228 9214.9725 120 76.7914 0.6683 0.5145 día 91 12 21.2807 2 10.6404 10003.9550 157 63.7195 0.1670 0.8464 día 122 6 12.6635 2 6.3318 3389.2051 76 44.5948 0.1420 0.8679 día 122 9 133.6788 2 66.8394 11040.9287 118 93.5672 0.7143 0.4916 día 122 12 6.7042 2 3.3521 12172.7273 154 79.0437 0.0424 0.9585 día 153 6 84.7687 2 42.3844 5259.9926 76 69.2104 0.6124 0.5447 día 153 9 198.1744 2 99.0872 16248.4072 118 137.6984 0.7196 0.4891 día 153 12 32.0531 2 16.0265 16265.2929 154 105.6188 0.1517 0.8593 día 182 6 102.3704 2 51.1852 5833.4318 76 76.7557 0.6669 0.5163 día 182 9 146.1835 2 73.0918 19692.3429 117 168.3106 0.4343 0.6488 día 182 12 33.9252 2 16.9626 22193.5150 153 145.0557 0.1169 0.8897 Tabla f) Prueba de Levine de homogeneidad de la varianza entre replicas de la variable longitud patrón. Día Densidad SC efecto gl CM efecto SC error gl CM error F p día 0 6 0.0111 2 0.0056 4.6273 78 0.0593 0.0939 0.9104
Mario Alberto Silva Hernández Anexo I
CICIMAR-IPN 91
día 0 9 0.1740 2 0.0870 7.6860 120 0.0641 1.3584 0.2610 día 0 12 0.0008 2 0.0004 11.9142 159 0.0749 0.0050 0.9950 día 30 6 0.2773 2 0.1386 8.6057 78 0.1103 1.2565 0.2903 día 30 9 0.3598 2 0.1799 18.1516 120 0.1513 1.1894 0.3080 día 30 12 0.0655 2 0.0327 20.8998 159 0.1314 0.2490 0.7799 día 61 6 0.3725 2 0.1862 10.6231 78 0.1362 1.3675 0.2608 día 61 9 0.9701 2 0.4850 20.6280 120 0.1719 2.8217 0.0635 día 61 12 0.0101 2 0.0051 26.3095 158 0.1665 0.0304 0.9700 día 91 6 0.4033 2 0.2016 13.5089 77 0.1754 1.1493 0.3222 día 91 9 0.4170 2 0.2085 24.6182 120 0.2052 1.0162 0.3650 día 91 12 0.0295 2 0.0148 27.3086 157 0.1739 0.0848 0.9187 día 122 6 0.5261 2 0.2630 11.1318 76 0.1465 1.7958 0.1730 día 122 9 0.6937 2 0.3468 36.1515 118 0.3064 1.1321 0.3258 día 122 12 0.0697 2 0.0348 35.1375 154 0.2282 0.1527 0.8585 día 153 6 0.1594 2 0.0797 12.6715 76 0.1667 0.4779 0.6219 día 153 9 0.9087 2 0.4544 41.2846 118 0.3499 1.2986 0.2768 día 153 12 0.1725 2 0.0862 41.4803 154 0.2694 0.3202 0.7265 día 182 6 0.0268 2 0.0134 17.9067 76 0.2356 0.0568 0.9448 día 182 9 0.5338 2 0.2669 48.7545 117 0.4167 0.6405 0.5289 día 182 12 0.0778 2 0.0389 46.8751 153 0.3064 0.1269 0.8809 Tabla g) Análisis de varianza con respecto al peso de los peces por fecha. Día SC efecto gl CM efecto SC error gl CM error F p día 0 34.1921 2 17.0960 9290.6217 363 25.5940 0.6680 0.5134 día 30 591.4575 2 295.7287 23060.7121 363 63.5281 4.6551 0.0101 día 61 810.2383 2 405.1192 43234.8080 362 119.4332 3.3920 0.0347 día 91 207.0350 2 103.5175 67456.6194 360 187.3795 0.5524 0.5760 día 122 921.3875 2 460.6937 80798.5515 354 228.2445 2.0184 0.1344 día 153 1025.3319 2 512.6660 116107.3696 354 327.9869 1.5631 0.2109 día 182 5218.8979 2 2609.4490 150039.0026 352 426.2472 6.1219 0.0024 Tabla h) Análisis de varianza con respecto a la longitud patrón de los peces por fecha. Día SC efecto gl CM efecto SC error gl CM error F p día 0 2.6730 2 1.3365 71.1606 363 0.1960 6.8178 0.0012 día 30 4.6010 2 2.3005 141.9206 363 0.3910 5.8841 0.0031 día 61 2.8465 2 1.4233 178.0794 362 0.4919 2.8932 0.0567 día 91 0.4254 2 0.2127 206.7272 360 0.5742 0.3704 0.6907 día 122 1.1077 2 0.5539 241.8687 354 0.6832 0.8106 0.4454 día 153 0.8736 2 0.4368 282.2254 354 0.7972 0.5479 0.5787 día 182 4.3296 2 2.1648 340.3800 352 0.9670 2.2387 0.1081
Mario Alberto Silva Hernández Anexo I
CICIMAR-IPN 92
Tabla i) Pruebas LSD de comparaciones pareadas del peso de los peces según la densidad. DIA 30
{1} {2} {3} M=53.659 M=56.896 M=54.673
6 {1} 0.004781 0.3503249 {2} 0.004781 0.020210
12 {3} 0.350324 0.020210
DIA 61
{1} {2} {3}
M=74.484 M=73.539 M=70.995 6 {1} 0.546093 0.0196549 {2} 0.546093 0.052716
12 {3} 0.019654 0.052716 DIA 182
{1} {2} {3} M=99.855 M=107.85 M=109.66
6 {1} 0.007851 0.0006529 {2} 0.007851 0.471154
12 {3} 0.000652 0.471154 Tabla j) Pruebas LSD de comparaciones pareadas de la longitud patrón de los peces según la densidad. DIA 0
{1} {2} {3} M=10.799 M=10.963 M=11.020
6 {1} 0.010099 0.0002719 {2} 0.010099 0.276008
12 {3} 0.000271 0.276008 DIA 30
{1} {2} {3} M=11.885 M=12.183 M=12.010
6 {1} 0.000965 0.1436709 {2} 0.000965 0.021217
12 {3} 0.143670 0.021217
Mario Alberto Silva Hernández Anexo I
CICIMAR-IPN 93
Tabla k) Análisis de covarianza entre las pendientes del crecimiento en peso del modelo de crecimiento Y=aebx para las densidad de confinamiento.
Densidad S x2 S xy S y2 n b SC residual gl residualDensidad 6 125963.24 3476.84 17.76 479 0.0039 45.937 477 Densidad 9 191571.17 6004.58 38.76 731 0.0042 74.845 729 Densidad 12 250354.90 8558.64 52.56 953 0.0044 101.948 951 REG ESTIM 222.648 2157 REG COMUN 567889.32 18036.08 107.1 0.00416 224.573 2158 REG TOTAL 2163 2161 F calculada 1.98347 F (0.05,2,2157) 3 Bc 0.005346 Tabla l) Análisis de Kruskal – Wallis del porcentaje de supervivencia (SUP) entre las densidades. H ( 2, N= 9) = .6666674 p =.7165
Código N Suma de rangos Grupo 1 6 3 16Grupo 2 9 3 17Grupo 3 12 3 12 Tabla m) Análisis de Kruskal – Wallis entre los índices de crecimiento por densidad. 1.- Peso ganado (PG) H ( 2, N= 9) = 8.000000 p =.0183
Código N Suma de rangos Grupo 1 6 3 6Grupo 2 9 3 15Grupo 3 12 3 24 2.- Biomasa total (Bt) H ( 2, N= 9) = 7.200000 p =.0273
Código N Suma de rangos Grupo 1 6 3 6Grupo 2 9 3 15Grupo 3 12 3 24
Mario Alberto Silva Hernández Anexo I
CICIMAR-IPN 94
3.- Ganancia en biomasa (G) H ( 2, N= 9) = 7.200000 p =.0273
Código N Suma de rangos Grupo 1 6 3 6Grupo 2 9 3 15Grupo 3 12 3 24 4.- Tasa de crecimiento absoluto (TCA) H ( 2, N= 9) = 2.488889 p =.2881
Código N Suma de rangos Grupo 1 6 3 9Grupo 2 9 3 17Grupo 3 12 3 19 5.- Tasa de crecimiento especifica (SGR) H ( 2, N= 9) = 2.755556 p =.2522
Código N Suma de rangos Grupo 1 6 3 9Grupo 2 9 3 16Grupo 3 12 3 20 Tabla n) Análisis de Kruskal – Wallis entre los índices de condición por densidad. 1.- Factor de conversión alimenticia (FCA) H ( 2, N= 9) = 5.422221 p =.0665
Código N Suma de rangos
Grupo 1 6 3 24.0Grupo 2 9 3 10.0Grupo 3 12 3 11.0 2.- Valor proteico productivo (PPV) H ( 2, N= 9) = 6.488887 p =.0390
Código N Suma de rangos Grupo 1 6 3 7Grupo 2 9 3 24Grupo 3 12 3 14
Mario Alberto Silva Hernández Anexo I
CICIMAR-IPN 95
3.- Tasa de eficiencia proteica (PER) H ( 2, N= 9) = 5.422221 p =.0665
Código N Suma de rangos Grupo 1 6 3 6Grupo 2 9 3 20Grupo 3 12 3 19 4.- Factor de condición (FC) H ( 2, N= 9) = 5.600000 p =.0608
Código N Suma de rangos Grupo 1 6 3 6Grupo 2 9 3 18Grupo 3 12 3 21 Tabla o) Análisis de Tukey no paramétrico de los índices de crecimiento en función de la densidad. 1.- Peso ganado (PG)
RB-RA SE q q(0.05,inf., 4)Den. 6 Vs. Den. 9 9 4.74 1.899 3.314Den. 6 Vs. Den. 12 18 4.74 3.797 3.314Den. 9 Vs. Den. 12 9 4.74 1.899 3.314 2.- Biomasa total (Bt)
RB-RA SE q q(0.05,inf., 4)Den. 6 Vs. Den. 9 9 4.74 1.899 3.314Den. 6 Vs. Den. 12 18 4.74 3.797 3.314Den. 9 Vs. Den. 12 9 4.74 1.899 3.314 3.- Ganancia en biomasa (G)
RB-RA SE q q(0.05,inf., 4)Den. 6 Vs. Den. 9 9 4.74 1.899 3.314Den. 6 Vs. Den. 12 18 4.74 3.797 3.314Den. 9 Vs. Den. 12 9 4.74 1.899 3.314 Tabla p) Análisis de Tukey no paramétrico de los índices de condición en función de la densidad. 1.- Valor proteico productivo (PPV)
RB-RA SE q q(0.05,inf., 4)Den. 6 Vs. Den. 9 17 4.74 3.586 3.314Den. 6 Vs. Den. 12 7 4.74 1.477 3.314Den. 9 Vs. Den. 12 10 4.74 2.11 3.314
Mario Alberto Silva Hernández Anexo I
CICIMAR-IPN 96
Tabla q) Análisis de Kruskal-Wallis entre la composición proximal de los peces por densidad (para el pescado entero y músculo). 1.- Proteína en el pescado entero. H ( 3, N= 12) = 10.45775 p =.0151
Código N Suma de rangosGrupo 1 Inicial 3 33Grupo 2 6 3 24Grupo 3 9 3 15Grupo 4 12 3 6
2.- Extracto etéreo en el pescado entero. H ( 3, N= 12) = 10.38461 p =.0156
Código N Suma de rangosGrupo 1 Inicial 3 6Grupo 2 6 3 15Grupo 3 9 3 24Grupo 4 12 3 33
3.- Cenizas en el pescado entero. H ( 3, N= 12) = 10.42105 p =.0153
Código N Suma de rangosGrupo 1 Inicial 3 33Grupo 2 6 3 24Grupo 3 9 3 15Grupo 4 12 3 6
4.- Energía en el pescado entero H ( 3, N= 12) = 7.820510 p =.0499
Código N Suma de rangosGrupo 1 Inicial 3 21Grupo 2 6 3 10Grupo 3 9 3 14Grupo 4 12 3 33
5.- Proteína en el músculo. H ( 3, N= 12) = 9.461538 p =.0238
Código N Suma de rangosGrupo 1 Inicial 3 33Grupo 2 6 3 18Grupo 3 9 3 21Grupo 4 12 3 6
Mario Alberto Silva Hernández Anexo I
CICIMAR-IPN 97
6.- Extracto etéreo en el músculo. H ( 3, N= 12) = 10.38461 p =.0156
Código N Suma de rangosGrupo 1 Inicial 3 6Grupo 2 6 3 15Grupo 3 9 3 33Grupo 4 12 3 24
7.- Cenizas en el músculo H ( 3, N= 12) = 6.921634 p =.0745
Código N Suma de rangosGrupo 1 Inicial 3 18Grupo 2 6 3 16Grupo 3 9 3 33Grupo 4 12 3 11
8.- Energía en el músculo. H ( 3, N= 12) = 10.38461 p =.0156
Código N Suma de rangosGrupo 1 Inicial 3 33Grupo 2 6 3 15Grupo 3 9 3 6Grupo 4 12 3 24
Tabla r) Análisis de Tukey no paramétrico de la composición proximal en función de la densidad. 1.- Proteína en el pescado entero.
RB-RA SE q q(0.05,inf., 4)Den. 6 Vs. Den. 9 9 6.24 1.44 3.633Den. 6 Vs. Den. 12 18 6.24 2.88 3.633Den. 6 Vs. Inicial 9 6.24 1.44 3.633Den. 9 Vs. Den. 12 9 6.24 1.44 3.633Den. 9 Vs. Inicial 18 6.24 2.88 3.633Den. 12 Vs. Inicial 27 6.24 4.33 3.633 2.- Extracto etéreo en el pescado entero.
RB-RA SE q q(0.05,inf., 4)Den. 6 Vs. Den. 9 9 6.24 1.442 3.633
Mario Alberto Silva Hernández Anexo I
CICIMAR-IPN 98
Den. 6 Vs. Den. 12 18 6.24 2.885 3.633Den. 6 Vs. Inicial 9 6.24 1.442 3.633Den. 9 Vs. Den. 12 9 6.24 1.442 3.633Den. 9 Vs. Inicial 18 6.24 2.885 3.633Den. 12 Vs. Inicial 27 6.24 4.327 3.633 3.- Cenizas en el pescado entero.
RB-RA SE q q(0.05,inf., 4)Den. 6 Vs. Den. 9 9 6.24 1.442 3.633Den. 6 Vs. Den. 12 18 6.24 2.885 3.633Den. 6 Vs. Inicial 9 6.24 1.442 3.633Den. 9 Vs. Den. 12 9 6.24 1.442 3.633Den. 9 Vs. Inicial 18 6.24 2.885 3.633Den. 12 Vs. Inicial 27 6.24 4.327 3.633 4.- Energía en el pescado entero
RB-RA SE q q(0.05,inf., 4)Den. 6 Vs. Den. 9 4 6.24 0.641 3.633Den. 6 Vs. Den. 12 23 6.24 3.686 3.633Den. 6 Vs. Inicial 11 6.24 1.763 3.633Den. 9 Vs. Den. 12 19 6.24 3.045 3.633Den. 9 Vs. Inicial 7 6.24 1.122 3.633Den. 12 Vs. Inicial 12 6.24 1.923 3.633 5.- Proteína en el músculo.
RB-RA SE q q(0.05,inf., 4)Den. 6 Vs. Den. 9 3 6.24 0.481 3.633Den. 6 Vs. Den. 12 12 6.24 1.923 3.633Den. 6 Vs. Inicial 15 6.24 2.404 3.633Den. 9 Vs. Den. 12 15 6.24 2.404 3.633Den. 9 Vs. Inicial 12 6.24 1.923 3.633Den. 12 Vs. Inicial 27 6.24 4.327 3.633 6.- Extracto etéreo en el músculo.
RB-RA SE q q(0.05,inf., 4)Den. 6 Vs. Den. 9 18 6.24 2.885 3.633Den. 6 Vs. Den. 12 9 6.24 1.442 3.633Den. 6 Vs. Inicial 9 6.24 1.442 3.633Den. 9 Vs. Den. 12 9 6.24 1.442 3.633Den. 9 Vs. Inicial 27 6.24 4.327 3.633Den. 12 Vs. Inicial 18 6.24 2.885 3.633
Mario Alberto Silva Hernández Anexo I
CICIMAR-IPN 99
7.- Energía en el músculo.
RB-RA SE q q(0.05,inf., 4)Den. 6 Vs. Den. 9 9 6.24 1.442 3.633Den. 6 Vs. Den. 12 9 6.24 1.442 3.633Den. 6 Vs. Inicial 18 6.24 2.885 3.633Den. 9 Vs. Den. 12 18 6.24 2.885 3.633Den. 9 Vs. Inicial 27 6.24 4.327 3.633Den. 12 Vs. Inicial 9 6.24 1.442 3.633
Mario Alberto Silva Hernández Anexo II
CICIMAR-IPN 100
ANEXO II Tabla 1. Especies marinas de interés comercial cultivadas en jaulas flotantes.
Especie Org/m3 Org/m2 Kg/m3 Dimensión(m)
Volumen(m3)
Peso inicial
(g)
Peso Final (g)
Tiempo(días)
Super(%) Referencia
8.7 3x3x2h 13.5 29.7 278.84 365 95.76 Avilés-Quevedo et al.,1996b.
6 1x1x1h 1.0 17 64 125 65 Guerrero-Tortolero et al., 1999. Lutjanus argentiventris 12 3x1.5x2h 9 42.54 109.66 180 96.3 Este trabajo
L. argentimaculatus 6 2.5x2.5x3.5 25 34 963 300 96.8 Doi y Siinghagraiwan 1993.
L. jocu 25 1.4x4x1.3h 5 102.6 123 28 100 Costa et al., 1998 L. synagris 40 1.4x4x1.3h 5 52.25 64.55 28 100 Costa et al., 1998
L. aratus 6.4 3x3x2h 13.5 240.6 1180 365 97.67 Avilés-Quevedo et al.,1996b.
L. peru 4 3x3x2h 13.5 234.2 1116 397 65 Avilés-Quevedo et al.,1996a.
Seriola mazatlana 25 ? 18 10 1000 180 90 Benetti y Wilson 1993.
S. dumerili 10 4.5 ∅ x 5h 75 48 1149 120 100 Mazzola et al., 2000.
Sciaenops ocellatus 37 ? 9 56 623 302 42 Davis et al., 1989.
Pogonias cromis 50 ? 6 48.1 179.5 195 87 Ojeda y Strawn 1980.
Oncorhynchus masou 20 4x4x6h 96 50 458 210 92 Teskeredzic y Teskeredzic 1990.
Salmo gardneri =(O. Mikkys) 150 2x1.5x1.5h 4.5 22 245.8 147 96 Trzebiatowski et al., 1981.
Tarpon atlanticus 5 4x5x1h 18 83.83 127.8 30 100 Costa et al., 1998
Trachinotus carolinus 20 4x4x3h 50 1.37 391.36 365 62 Gomez-Gaspar, 1987.
Epinephelus salmoides
(=malabaricus) 60 1.5x1.5x1.6 3.3 26.6 135.2 70 88.8 Teng y Chua 1979.
E. tauvina 400 7x1.5x0.6h 6 17.1 63.7 52 98 Abdullah et al., 1987.
Mario Alberto Silva Hernández Anexo II
CICIMAR-IPN 101
Tabla 2. Efecto de la densidad de confinamiento sobre el peso promedio de los peces en cultivo. DENSIDAD ESPECIE
Org/m3 Org/m2 Kg/m3 Kg/m2 Efecto
Densidad (correlación)
Mejor Densidad
(Peso)
Juveniles Nivel Producción
Referencia
6,9,12 negativa 6 silvestres Investiga. Guerrero-Tortolero et al.,1999 L. argentiventris 6,9,12 positiva 12 silvestres Investiga. Este trabajo
L. argentimaculatus 6,50,60,110,152 negativa 6 silvestre piloto Doi y Singhagraiwan 1993.
Sparus aurata .35,1.3,3.2 negativa .35 laboratorio comercial Canario et al., 1998. Epinephelus salmoides 15,30,60,120 significativa 60 silvestre comercial Teng y Chua 1979.
Scophthalmus maximus .7,1.1, 1.5,1.8 negativa .7 laboratorio comercial Irwin et al., 1999.
Oncorhynchus mykiss 265,415,715 negativa 265 laboratorio comercial Holm et al., 1990. Dicentrarchus labrax 16,33,65,130 positiva 130 laboratorio comercial Papoutsoglou et al., 1998. Pagrus pagrus 50,100 negativa 50 laboratorio comercial Maragoudaki et al., 1999.
200,400 No significati. 400 laboratorio piloto Abdullah et al., 1987. Epinephelus tauvina
5,20,60 negativa 5 laboratorio Investiga. Abdullah et al., 1987. Morone saxatilis X M. chrysops 100,150,200 negativa 100 laboratorio Investiga. Woods et al., 1983.
Oreochromis espilurus 100,200,300 No significati. 200 laboratorio comercial Cruz y Ridha 1989. O. niloticus 30,40,50,60,70 significativa 50 laboratorio comercial Yi et al., 1996. Oreochromis sp. 100,200,300 No significati. 300 laboratorio comercial Watanabe et al., 1990. Clarias gariepinus 50,100,150,200 negativa 50 laboratorio comercial Hengsawat et al., 1997. Hippoglossus hipoglossus 11,22,
33 negativa 11 laboratorio piloto Björnsson, 1994.
Salvelinus alpinus 15,60,120 positiva 120 laboratorio piloto Jorgensen, 1993. Salmo gairdneri 150,600,900 negativa 150 laboratorio comercial Trzebiatowski et al., 1981. Colossoma sp. 15,30,45,60 negativa 15-30 laboratorio piloto DelCarratore et al., 1998. Sciaenops ocellatus 37,73 No significati. 73 laboratorio Piloto Davis et al., 1989. Paralabrax maculatofa. .3,.6,.9 negativa .3 laboratorio Investiga. Grayeb-Del Alamo, 2001.
Mario Alberto Silva Hernández Anexo II
CICIMAR-IPN 102
Tabla 3. Comparación de los índices de crecimiento y del alimento para los peces en cultivo.
ESPECIE
Peso inicial
(g) Peso final
(g) Tiempo (días) FC TCA
(g/día) SGR
(%/día) FCA Alimento REFERENCIA
29.7 308.54 365 1.74 0.83 ? 8.79 Fresco Avilés-Quevedo et al., 1996b.
17 64 125 ? 0.52 ? 8.3 Fresco Guerrero-Tortolero et al., 1999 L. argentiventris
42.54 109.66 182 3.0 0.37 0.53 2.78 balanceado Este trabajo
L. argentimaculatus 34 963 300 ? 3.09 ? 10.8 fresco Doi y Singhagraiwan 1993.
L. aratus 240.6 1180.1 365 1.6 2.57 ? 8.8 fresco Avilés-Quevedo et al., 1996b.
L.peru 234.2 1116 397 2.7 2.8 ? 7.98 fresco Avilés-Quevedo et al., 1996a.
L. jocu 102.6 123 28 ? 0.7 ? 14.4 balanceado Costa et al., 1998.
L. synagris 52.25 64.55 28 ? 0.44 ? 12.4 balanceado Costa et al., 1998.
Sciaenops ocellatus 56 623 302 ? 1.9 ? 8.7 balanceado Davis et al., 1989.
Sparus aurata 20 185 219 ? 1.02 ? 1.5 balanceado Abellan y García 1995.
20 122 225 ? 0.8 ? 5.0 balanceado Abellan y García 1995. Puntazzo puntazzo
0.55 377 870 ? 0.43 ? 3.0 balacaedo Gatland, 1995.
Dicentrarchus labrax 6.6 27.6 168 ? ? 3.21 ? balanceado Papoutsoglou et al., 1998.
Epinephelus salmoides 26.6 135.2 70 2.31 0.8 ? 3.49 fresco Teng y Chua 1978.
E. tauvina 17.1 63.7 52 1.96 0.9 ? ? balanceado Abdullah et al., 1987.
Pagrus pagrus 15 280 360 ? 1.36 1.39 2.5 balanceado Kentouri et al., 1995.
Morone saxatilis X M. chrysops 44.6 352 220 1.54 1.4 ? 1.58 balanceado Woods et al., 1987.
Pogonias cromis 48.1 179.5 195 ? 0.82 ? 3.7 balanceado Ojeda y Strawn 1980.
Seriola mazatlana 10 1000 180 ? 5.5 ? 1.2 balanceado Benetti y Wilson 1996.
S. dumerili 48 1148 120 1.01 7.93 ? 1.22 fresco Mazzola et al., 2000.
Paralabrax maculatofasciatus 22.1 48.3 151 3.3 0.17 0.52 2.44 balanceado Grayeb-Del Alamo, 2001.
Mario Alberto Silva Hernández Anexo II
CICIMAR-IPN 103
Tabla 3. Continuación.
ESPECIE
Peso inicial
(g) Peso final
(g) Tiempo (días) FC TCA
(g/día)SGR
(%/día)
FCA Alimento REFERENCIA
Oreochromis sp. 8.78 176.8 84 2.6 1.94 3.54 1.88 balanceado Watanabe et al., 1990.
O. spilurus 42.87 124.7 75 ? 1.15 1.57 2.32 balanceado Cruz y Ridha 1989.
O. niloticus 148 561 90 ? 4.6 ? 1.45 balanceado Yi et al., 1996.
Oncorhynchus masou rhodurus 50 458 210 1.17 1.94 ? ? balanceado Teskeredzic y Teskeredz. 1990.
Lethrinus nebulosus 28.3 600 365 ? 1.56 ? 3.2 balanceado Shokita et al., 1991.
Acanthopagrus sivicolus 20 150 360 ? ? 1.58 ? balanceado Shokita et al., 1991.
Chaetodipterus faber 0.21 326.97 365 ? 0.76 ? 6-10 fresco Gomez y Larez 1984.
Scophthalmus maximus 8.62 37.7 45 ? 0.5 4.38 ? balanceado Irwin et al., 1999.
Mario Alberto Silva Hernández Anexo III
CICIMAR-IPN 104
ANEXO III
Mario Alberto Silva Hernández Anexo III
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