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UNIVERSIDAD DE GUAYAQUIL

FACULTAD DE CIENCIAS QUIMICAS

TESIS PREVIA A LA OBTENCION DEL TITULO DE

DOCTOR EN CIENCIAS QUIMICAS

TEMA:

“ESTUDIO FISICO QUIMICO Y BIOLOGICO DEL PROCESO DE EUTROFIZACION DEL EMBALSE DE POZA HONDA Y SU

INCIDENCIA EN LA FORMACION DE TRIHALOMETANOS EN EL SISTEMA REGIONAL DE AGUA POTABLE DE POZA HONDA”

AUTOR:

Q.F. HUGO WOLTAIRE YELA PEREZ

TUTOR:

DR. MANUEL VALENCIA TOURIZ

2004

Q.F. HUGO WOLTAIRE YELA PEREZ.

“La responsabilidad por los hechos, ideas y doctrinas expuestas en esta tesis, corresponden exclusivamente a su autor.”

CERTIFICACION

En mi calidad de Director de Tesis certifico que el presente

trabajo de investigación científica ha sido elaborado por el Q.F.

Hugo Woltaire Yela Pérez, por lo que autorizo su presentación.

Dr. Manuel Valencia Touríz

DIRECTOR DE TESIS

DEDICATORIA

A la menoria de mi padre (Hugo Yela Ubilla). Su recuerdo es para mí como una

luz que me guía a seguir adelante.

A mi madre Sra. Olga de Yela, y la de mis hermanos quienes me apoyaron y

me alimentaron espiritualmente en los momentos más difíciles durante el

desarrollo del presente trabajo de investigación.

AGRADECIMIENTOS

Debo gratitud al Dr. Carlos Valencia Touriz, tutor de la tesis doctoral, por la

ayuda que prestó revisando los capitulos de esta tesis. Las muchas

sugerencias que me brindaron personalmente o a través de los directivos de la

Coorporación Reguladora del Manejo Hídrico de Manabí, han sido muy utiles, y

les agradezco cumplidamente.

También doy gracias a mi familia por su paciencia y apoyo.

RESUMEN

El primer Embalse construido en el Ecuador fue el de Poza Honda en la

provincia de Manabí, para proveer agua potable e irrigación en el valle de

Portoviejo.

El embalse tiene problemas de eutrofización debido al clima tropical, uso

intensivo de la tierra en áreas críticas, y la ganadería en menor escala. La

transparencia, durante todas las estaciones del año tiene un promedio de 0.7

pfm a causa del acelerado crecimiento de algas. Esto causa que las

concentraciones de oxigeno disuelto sean menores a 1 mg/l en el fondo, debido

a la descomposición de las algas y el total de las concentraciones de fósforo de

0.4 mg/l y de nitrógeno de 0.4 mg/l.

Se han estimado las cargas de nutrientes que llegan al embalse para diferentes

épocas climáticas, en la que se denota la diferencia existente entre las

estaciones secas con las lluviosas.

Se hizo una estimación sobre la estabilidad de la estratificación del embalse,

llegando a la conclusión, de que existen en el, durante varios meses capas

horizontales debidos a influencias térmicas que producen diferencias de calidad

entre las aguas de la zona superficial (epilimnion) y en la zona de mayores

profundidades. Circulaciones completas al embalse, que son producidas por las

precipitaciones, influencia del viento y la mayoría durante la época de lluvia.

Importancia especial bajo las condiciones dadas del Embalse de Poza Honda,

se concede a la irradiación del sol y al régimen de luz dentro de la zona de

producción con respecto al proceso de foto asimilación y al desarrollo de algas.

El mecanismo de descomposición de hierro y manganeso, como también la

forma reductora de amonio y gas sulfhídrico, valor del ph, son factores en que

que el embalse demuestra un muy alto nivel de bio-producción. Por eso, en el

hipolimnion es decir, la zona de mayor profundidad y en el fondo por lo menos

durante todo el periodo de sequía, a sea mientras exista la estratificación del

embalse, dominan en el agua, más debajo de 5 mt procesos anaerobios de

putrefacción que conducen a un sensible empeoramiento de la calidad del agua

en el embalse y dificultan considerablemente la producción de agua potable en

la planta de tratamiento actual y generan por lo menos temporalmente,

reducciones de la calidad del agua potable.

El agua potable como fuente de enfermedades ha sido por miles de años un

tópico de interés. El presente trabajo trata de un problema de reciente retención

con relación a este tópico. El desarrollo de técnicas analíticas más sensibles ha

permitido identificar y cuantificar una gran cantidad de compuestos orgánicos

en agua potable, entre los que se encuentra los trihalometanos.

Estos trihalometanos se producen durante el proceso de desinfección por

reacción del cloro, ión bromuro e ión yoduro con algunos compuestos

orgánicos presentes en las aguas llamados genéricamente precursores. Los

trihalometanos encontrados con mayor frecuencia son el cloroformo (100%), el

bromodiclorometano (97.5%), el dibromoclorometano (90%), y el bromoformo

(31%). El trabajo resume y discute los aspectos más importantes de la

problemática referente a la presencia de trihalometanos en agua potable y los

riesgos para la salud. Los tópicos tratados incluyen: formación y niveles

detectados, niveles permisibles como resultado de estudios toxicológicos y

epidemiológicos, así como una evaluación de las alternativas propuestas para

alcanzar los niveles máximos permisibles establecidos en el presente.

ABSTRACT

SUMMARY

The first Reservoir built in the Ecuador was that of Deep Puddle in the county of

Manabí, and it was built to provide drinkable water and irrigation in the valley of

Portoviejo.

The reservoir has eutrofización problems due to the tropical climate; I use

intensive of the earth in critical areas, and the cattle rising in smaller scale. The

transparency, during all the stations of the year has an average of 0.7 pfm

because of the quick growth of algae. This causes that the concentrations of I

oxygenate dissolved they are smaller to 1 mg/l in the bottom, due to the

decomposition of the algae and the total of the concentrations of match of 0.4

mg/l and of nitrogen of 0.4 mg/l.

They have been considered the loads of nutrients that arrive to the reservoir for

different climatic times, in which the existent difference is denoted among the

dry stations with the rainy ones.

An estimate was made about the stability of the stratification of the reservoir,

reaching the conclusion, that they exist in the, during several months due

horizontal layers to thermal influences that produce differences of quality among

the waters of the superficial area (epilimnion) and in the area of more depths.

Complete circulations to the reservoir that you/they are produced by the

precipitations, influence of the wind and most during the rain time.

Special importance under the given conditions of the Reservoir of Deep Puddle

is granted to the irradiation of the sun and the régime of light inside the

production area with regard to the process of picture assimilation and to the

development of algae.

The mechanism of iron decomposition and manganese, as well as the form

ammonium reductora and gas sulfhídrico, value of the ph, is deduced that the

reservoir demonstrates a very high bio-production level. For that reason, in the

hipolimnion that is to say, the area of more depth and in the bottom at least

during the whole period of drought, to it is while the stratification of the reservoir

exists, they dominate in the water, more under 5 mt processes anaerobios of rot

that lead to a sensitive worsening of the quality of the water in the reservoir and

they hinder the production of drinkable water considerably in the plant of current

treatment and they generate at least temporarily, reductions of the quality of the

drinkable water.

The drinkable water as source of illnesses has been for thousands of years a

topic of interest. The present work is about a problem of recent retention with

relationship to this topic. The development of technical analytic more sensitive it

has allowed to identify and to quantify a great quantity of compound organic in

drinkable water, among those that he/she is the trihalometanos.

These trihalometanos takes place during the disinfection process for reaction of

the chlorine, ión bromide and ión I iodize with some compounds organic present

in the waters called precursors generically. The opposing trihalometanos with

more frequency is the chloroform (100%), the bromodiclorometano (97.5%), the

dibromoclorometano (90%), and the bromoformo (31%). The work summarizes

and it discusses the most important aspects in the problem with respect to the

trihalometanos presence in drinkable water and the risks for the health. The

topics treaties include: formation and detected levels, even permissible as a

result of studies toxicológicos and epidemic, as well as an evaluation of the

alternatives proposals to reach the permissible maximum levels settled down

presently.

INDICE

INTRODUCCION 1

CAPITULO I

MARCO TEORICO

GENERALIDADES

1.1. Concepto de eutrofización 3

1.1.1. Causas y efectos del proceso de Eutrofización 4

1.1.2. Calidad del agua en lagos y embalses 5

1.1.3. Calidad del agua potable 8

1.1.4. Algas 45

1.1.4.1. Morfología 46

1.1.4.2. Reproducción 47

1.1.4.3. Clasificación de las algas 48

1.1.4.4. Fotosíntesis por algas 52

1.1.4.5. Importancia de las algas 53

1.1.5. Nutrientes 57

1.1.6. Biología de los embalses 66

1.1.7. Trihalometanos 73

1.1.8. Cloro y sus subproductos 78

1.1.9. Estudios epidemiológicos de la carcinogecidad del cloro y

de los SPD. 88

1.1.10. Materia orgánica 89

1.2. Antecedentes 95

CAPITULO II

HIPOTESIS

2.1. Objetivos 103

2.1.1. Generales 103

2.1.2. Específicos 103

CAPITULO III

MATERIALES Y METODOS

3.1. Universo 104

3.2. Metodología del muestreo 104

3.3. Variables estudiadas 106

3.3.1. Variables cualitativas 106

3.3.2. Variables cuantitativas 106

CAPITULO IV

RESULTADOS OBTENIDOS

4.1. Resultados obtenidos e interpretación 109

4.1.1. Estación de muestro: Cola 109

4.1.1.1. Temperatura – Ph 109

4.1.1.2. Transparencia – Algas 112

4.1.1.3. Fosfatos – Nitratos 120

4.1.1.4. N-Amoniacal – Nitritos 123

4.1.1.5. Hierro – Manganeso 126

4.1.1.6. Materia orgánica – Ácido sulfhídrico 130

4.1.1.7. Oxigeno disuelto – Anhídrido carbónico 133

4.1.2. Estación de muestreo: Mitad 138

4.1.2.1. Temperatura – Ph 138







4.1.3. Estación de muestreo: Castillo 162

4.1.3.1. Transparencia – Ph 162







4.1.4. Planta de tratamiento 187

4.1.4.1. Agua Cruda 187

4.1.4.1.1. Color – Algas 187

4.1.4.1.2. Materia orgánica – Demanda de cloro 190

4.1.4.1.3. Ph – Temperatura 194

4.1.4.1.4. Oxigeno disuelto 195

4.1.4.2. Agua Tratada 196

4.1.4.2.1. Color – Algas 196

4.1.4.2.2. Materia orgánica – Trihalometanos 199

4.1.4.2.3. Ph – Temperatura 202

4.1.4.2.4. Cloro residual libre – Cloro residual

combinado 203

4.1.1.2.5. Oxigeno disuelto 205

CAPITULO V

CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES

5.1. Conclusiones 206

5.2. Recomendaciones 211

ANEXOS

INTRODUCCION

No cabe duda que uno de los campos de la limnología aplicada es, desde hace

algunas décadas, el estudio de la contaminación de las aguas continentales. La

Limnología; como ciencia de los lagos y embalses, poco interés práctico podría

ofrecer en Ecuador sino fuera por la construcción significativa de embalses en

los últimos 40 anos en importantes regiones del país. No es de extrañar,

ciertamente, que la preocupación por la contaminación de lagos y sistemas

afines haya surgido primero en los países pioneros o impulsores de la

limnología teórica. Pero no solo es la abundancia de lagos y el mayor

desarrollo industrial de los países centroeuropeos y del noreste de Estados

Unidos lo que ha determinado tal interés.

La sensibilidad ante este tipo de problemas se debe, sobre todo, a que la

mayor densidad de habitantes de esas áreas geográficas reside en buena parte

en las orillas de los embalses, por lo que cualquier alteración de la calidad de

sus aguas, siquiera en lo referente a las características organolépticas, es

apreciada directamente por una parte muy considerable de la población, desde

el mismo momento en que ella se produce. La situación en el Ecuador es

diferente. Por un lado, si las fuentes de contaminación no son todavía, en

términos absolutos, tan numerosos e importantes como en los países aludidos,

tampoco las soluciones puestas en práctica son proporcionalmente

comparables.

Los efectos resultantes no son tan moderados como cabría esperar. Por otra

parte, la zonas mas pobladas, salvo contadas excepciones, se dan

tradicionalmente en las costas marinas, pero no, lógicamente, en las orillas de

los embalses, cuyas presas, además de ser frecuentemente de reciente

creación, suelen estar ubicadas en áreas muy poco habitadas, sin perjuicio de

que en sus cuencas alimentadoras pueda haber un núcleo urbano mas o

menos importante. En tales circunstancias, a diferencia de lo que sucede en

aquellos países, lo que ocurra o no dentro de un embalse suele tener muy

pocos testigos directos, y normalmente no trasciende al conocimiento general,

a no ser que se trate de unas alteraciones muy llamativas y duraderas. A esto

hay que, añadir, preciso es reconocerlo, que a una parte importante de la

población todavía no parece importarle demasiado la contaminación ambiental,

a juzgar por la profusión de parajes o arboledas-basurero existentes en las

amplias zonas de influencias de las grandes ciudades, contaminadas

reiteradamente por los propios visitantes.

Sin embargo, la importancia social de los embalses es cada vez mayor, tanto

en lugares de recreo y de residencia temporal, como en cuánto a la garantía de

abastecimientos a las crecientes demandas de agua potable, al margen del

aspecto hidrológico energético y agrícola. Mientras tanto, las aportaciones de

contaminantes de sus cuencas no solo no disminuyen, sino que en muchos

casos aumentan de un modo continuo.

Conviene por consiguiente, no descuidar un aspecto de la contaminación que

esta presente, en mayor o menor grado, en el embalse de Poza Honda la

eutrofización, producida como consecuencia de toda carga contaminante que

incluya sustancias nutritivas para la flora acuática.

Como consecuencias indirectas de la eutrofización cabe reseñar brevemente,

además del detrimento producido por el valor estético y recreativo, los

problemas de potabilización (olor y sabor desagradables, obturación de filtros,

aumento de la demanda de cloro, etc. ) y de utilización para muchos usos

industriales, así como la proliferación de macro fiítas en los canales de

conducción de agua para uso agrícola.

CAPITULO I

MARCO TEORICO

GENERALIDADES

1.1. Concepto de Eutrofización.

La eutrofización o fertilización excesiva de los ecosistemas acuáticos, es

consecuencia de una sobrecarga continua de nutrientes que aceleran los

procesos dinámicos de la que disponen los lagos y embalses, apareciendo

los primeros efectos, consistentes en una proliferación de algas

planctónicas y una intensificación de la producción primaria. Resultado del

incremento de la biomasa es una disminución de la transparencia del agua

y una coloración más o menos verdosa, que lleva consigo la disminución

de la profundidad de la zona enfótica.

El aumento de la profundidad primaria provoca dos efectos de signo

opuesto: El primero en la zona trofógena tiene lugar una sobresaturación

de oxígeno disuelto, que escapa a la atmósfera; y el segundo en la zona

trofolítica se produce un consumo acelerado de oxígeno disuelto que da

lugar a una anoxia completa en las capas próximas al fondo. Si hay

estratificación del agua por densidades, evidentemente el agotamiento el

agotamiento de oxígeno en el fondo no podrá ser compensado con una

renovación de oxígeno de las capas superiores. Se da así el caso e que el

exceso de oxígeno producido cerca de la superficie del agua se escapa a la

atmósfera, en lugar de emplearse en cubrir el déficit creado en el fondo

1.1.1 Causas y efectos del proceso de Eutrofización.

Las causas inmediatas de la eutrofización residen en la

contaminación por nutrientes y mientras esta no cese o disminuya en

mayor o menor medida, no terminaran los problemas inherentes a la

eutrofización. Los nutrientes que normalmente controlan la

producción de algas, son los nitratos y, sobre todo los fosfatos, por

ser estos los que se encuentran mas escasos respectoo a las

necesidades relativas de todos los elementos que necesita el

fitoplancton.

La mayoría de los embalses eutróficos que hay en el mundo lo son

por vertidos de aguas residuales domésticas, tanto si son aguas

negras como si son afluentes de plantas de tratamiento primario o

secundario. En segundo lugar por importancia, cabe citar como

causas mas frecuentes, una agricultura extensiva con empleo

inmoderado de abonos agrícolas y una ganadería igualmente

intensiva, en especial cuando el ganado esta concentrado en

pequeñas parcelas. Algunas industrias pueden aportar así mismo

vertidos particularmente en nutrientes. Por ultimo, el drenaje de las

cuencas, si estas son muy extensas con respecto a la superficie del

embalse receptor y si el suelo es naturalmente fértil, pueden ser la

causa de la eutrofización de un embalse.

En cualquier caso es preciso subrayar que siempre que una presa

emplea a embalsar agua, la descomposición de la vegetación

sumergida produce durante unos años, una serie de efectos

similares a los que ocurren en un embalse eutrófico que recibe

aportes excesivos de nutrientes desde el exterior. Por los

mecanismo compensadores de que ha hablado anteriormente

(sedimentación, oxidación, mineralización), esos efectos

desaparecerán por completo, a menos que exista una contaminación

exterior.

1.1.2 Calidad del agua en lagos y embalses.

Los lagos varían significativamente en tamaño, forma y profundidad.

Puesto que todos son cuerpos del agua. Generalmente, las

características pueden ser clasificadas como físicas, químicas y

biológicas y serán discutidas en ese orden.

La estratificación termal que ocurre en lagos y embalses, es una

característica física que afecta la calidad del agua; resulta del cambio

en la densidad del agua por cambios de temperatura. La densidad

máxima en el agua ocurre a 4°C. La velocidad del cambio en la

densidad depende de las temperaturas altas que a temperaturas

bajas 0.3 mg/cc por °C a 30 °C versus 0.008 mg/cc por °C a 4°C. la

resistencia a mezclarse varia con la temperatura en la misma

manera como la densidad por ejemplo, una columna de agua con

temperatura superficial de 23 °C y una temperatura al fondo de 22 °C

requiere aproximadamente 30 veces más energía para mezclarse,

que la misma columna con una temperatura de 5°C y temperatura al

fondo de 4°C.

El modelo clásico de estratificación que ocurre en lagos consiste de

tres lechos que se llaman, yendo de arriba abajo; el epilimnión, la

termoclina y el hipolimnión.

Además de las propiedades termales, las propiedades de ópticas de

las aguas son de interés. La turbiedad presente en el agua,

disminuye la profundidad de penetración de luz. Puesto que el

proceso de fotosíntesis depende de la luz, la turbiedad influye en el

crecimiento de las algas y su actividad. La profundidad por la cual el

efecto neto de fotosíntesis es positivo, se llama la zona eufótica del

lago. Esta profundidad es normalmente igual a 5 veces la distancia

medida con un Disco de Secchi un dispositivo para medir la

transparencia del agua.

La zona eufótica se extiende hasta una profundidad en que el 99%

de la luz que entra es absorbida en la zona. Muy pocas plantas

verdes pueden vivir bajo de la zona eufótica.

Otras propiedades físicas de interés son el viento, ondas y corrientes

las cuales afectan las mezclas en el lago o embalse la entrada de

agua fría queda bajo el epilimnión. La termoclina esta inclinada, pero

esta estable. La sección rió arriba se mueve con cambios en el

influente. El influente frió fluye a través del reservorio y el epilimnión

queda en el reservorio. No hay aireación en el agua corriente bajo la

termoclina y, si esta agua queda en el reservorio por mucho tiempo,

valores bajo de oxigeno disuelto resultarán en ese lecho.

La química de embalses y lagos es muy compleja. En todos los

lagos, el oxígeno, nitrógeno, fósforo y carbono, son los elementos de

mayor interés. El oxígeno disuelto es importante porque es necesario

para la vida de los peces y también es beneficioso para la

purificación natural. Otros cambios en la calidad del agua, debido a la

ausencia de oxígeno es la formación de olores desagradables.

El nitrógeno y el fósforo son mucho más importantes, puesto que el

uso de fertilizantes para la agricultura aumenta su concentración. Los

efluentes de aguas servidas de los municipios, tienen altas

concentraciones de N y P. La remoción de estos elementos del agua,

es muy cara. Pero la introducción de estos elementos en un cuerpo

de agua de captación ayuda a la fertilización de las algas y plantas

acuáticas presentes. El crecimiento hiperactivo de las plantas causa

una disminución en la calidad de agua de un embalse. El color,

turbiedad, olores y sabores son afectados adversamente y la

concentración, disminuye.

El carbono es de interés, ya que las plantas necesitan anhídrido

carbónico para el crecimiento celular. En muchos de los cuerpos de

aguas naturales, sin embargo, el anhídrido carbónico está presente

en forma excesiva.

En reservorios profundos, el hierro, manganeso y azufre también

pueden ser de importancia. La descomposición anaeróbica de

materia orgánica, de ácido sulfhídrico, un gas corrosivo que imparte

un olor desagradable al agua. También bajo condiciones

anaeróbicas, el hierro y manganeso son reducidos a formas solubles,

las cuales afectan la calidad del agua adversamente. Esto puede

causar manchas en la ropa, azulejos, llaves y piletas.

El tiempo de retención hidráulica de muchos de los elementos

molestos en aguas de captación, es mayor que el tiempo de

retención en lagos o embalses. El incremento en tiempo de retención

ocurre por la precipitación química o biológica de compuestos en

solución y su entrampamiento en los sedimentos.

La actividad biológica en lagos y embalses es frecuentemente

significativa. El Plancton formado por organismos de poca habilidad

de moverse. Puede ser subdividido en fitoplancton, al cual

corresponden plantas como algas y el zooplancton, corresponden los

animales a los protozoarios. Las algas son una fuente mayor para la

alimentación del zooplancton. Un ciclo como éste es frecuentemente

propuesto.

Nutrientes

Hombre Algas

Peces Zooplancton

Algunas algas son utilizadas como alimento para el zooplancton o el

ciclo no funcionaría. Un exceso de algas resulta un “algae bloom”, el

cual es la presencia de una gran cantidad de organismos, como

500.000 por litro. El resultado es muy desagradable, forma espuma

de mal olor en la superficie del agua, que puede llevarse a la tierra y

descomponerse en las orillas, causando cambios y deterioros en la

calidad del agua, afectando el tratamiento de agua para consumo

humano negativamente.

El crecimiento del plancton depende de la presencia de nutrientes,

luz solar, Ph, y la temperatura del agua.

1.1.3 Calidad de Agua Potable.

Los países tienen legislaciones relacionadas con las aguas de consumo

humano, las que sirven para determinar las responsabilidades de los distintos

sectores involucrados en la producción y distribución del agua potable o

aguade bebida (términos equivalentes), en su monitoreo y de su control.

Los países cuentan asimismo, con reglamentaciones que definen qué se

entiende por agua potable; es decir, los patrones que debe seguir para que la

misma sea inocua para la salud humana. Dentro de esas reglamentaciones

hay una muy específica que se denomina la "Norma de Calidad de Agua de

bebida".

Allí se establece qué sustancias pueden estar presentes en el agua y las

concentraciones máximas permisibles que no signifiquen riesgo para la salud.

No existe ningún país que no considere como herramienta principal para la

confección y actualización periódica de sus Normas Nacionales, a las Guías OMS para la calidad del Agua Potable.

Las Guías son documentos que se reproducen en versiones actualizadas cada

12 años aproximadamente, a partir del trabajo mancomunado de cientos de

expertos de decenas de países, los que recogen la última información

disponible en el mundo sobre el tema. Son documentos de distribución global,

que se traducen a los idiomas oficiales de las Naciones Unidas; a otros idiomas

de trabajo de la Organización, y aún a idiomas no oficiales.

Las Guías se presentan en tres volúmenes.

Volumen 1: Recomendaciones.

Es el más popular y en él se exponen los valores guía para numerosos

contaminantes del agua relacionados con la calidad del agua potable,

proporciona asimismo una explicación de la forma en que deberían aplicarse

los valores guía, los criterios utilizados para seleccionar los diversos

contaminantes químicos, físicos, microbiológicos y radiológicos considerados;

una descripción de los métodos utilizados para obtener los valores guía, así

como breves exposiciones resumidas en las que se fundamentan los valores

guía recomendados o se explica por qué no es necesario en la actualidad, un

valor guía basado en la salud.

El objeto de los valores guía, tal como se ha mencionado, es servir de base

para la elaboración de normas nacionales que, debidamente aplicadas,

aseguren la inocuidad del agua abastecida, mediante la eliminación o la

reducción a una concentración mínima de los componentes considerados

peligrosos para la salud. La obra pone de relieve que los valores guía

recomendados no son límites obligatorios. Para definir límites de ese tipo, es

necesario considerar los valores guía en el contexto de las condiciones locales

o nacionales de carácter ambiental, social, económico y cultural.

La obra tiene seis capítulos. El primero brinda una orientación general sobre la

interpretación y utilización de los valores guía recomendados, incluidas varias

precauciones que deben tomarse al establecer normas nacionales o decidir

cuando se necesita una medida correctiva. Los valores guía se expone

después por separado, en capítulos dedicados a contaminantes

microbiológicos, químicos y radiológicos. Con respecto a los químicos, el libro

se concentra en numerosas sustancias seleccionadas porque representan un

peligro potencial para la salud humana y se detectan con bastante frecuencia y

en concentraciones relativamente altas en el agua de bebida. También se

examinan los desinfectantes y los productos derivados de los desinfectantes

del agua de bebida.

Como la apariencia, el sabor y el olor del agua de bebida inciden en su

aceptación por el consumidor, hay un capítulo, el quinto, donde se estudian los

componentes físicos, inorgánicos y orgánicos que pueden suscitar quejas a los

consumidores. En el último capítulo se da una explicación general de los

métodos de protección y mejoramiento de la calidad del agua, incluida la

selección y protección de las fuentes de agua, la elección de los procesos de

tratamiento, la protección de las redes de distribución y el control de la

corrosión.

Volumen 2: Criterios relativos a la salud y otra información de base.

Este documento contiene las monografías sobre los criterios aplicables a cada

sustancia o contaminante. Esto es: contiene toda la información clínica,

epidemiológica y sanitaria que respalda la elección de los parámetros y el valor

de sus concentraciones tal como se muestran en el Volumen 1.

Para cada uno de los parámetros que se describen en el Volumen 1, el

presente documento hace una descripción general del mismo, bajo que rutas y

en la forma como se verifica la exposición y la infección en el ser humano; el

significado específico que tiene la exposición a través del agua; los efectos

sobre la salud humana y como se ha llegado al valor guía recomendado.

Volumen 3: Vigilancia y control de los abastecimientos de agua a la comunidad.

Este documento describe los métodos empleados en la vigilancia de la calidad

del agua teniendo en cuenta los problemas especiales de los sistemas de

abastecimiento para las pequeñas comunidades, en particular las de los países

en desarrollo, y se exponen a grandes rasgos, las estrategias necesarias para

conseguir que la vigilancia sea eficaz. También se examinan allí los vínculos

entre vigilancia y acción correctiva, así como la forma que debe adoptar esta

última.

La estructura del volumen 3, refleja en su primer capítulo, las principales etapas

del desarrollo de la vigilancia. El capítulo 2 trata de la planificación, y los

capítulos siguientes versan sobre los procedimientos usados en el acopio de

información (inspección sanitaria y encuestas en la comunidad) (capítulo 3), y

sobre el análisis de la calidad del agua (capítulo 4). En el capítulo 5 se trata del

análisis y la interpretación de la información reunida y de su empleo en el

mejoramiento de los servicios de abastecimiento de agua. Los tres últimos

capítulos describen las estrategias de mejoramiento, a saber, intervenciones

técnicas (capítulo 6), educación en materia de higiene (capítulo 7) y legislación

y reglamentación (capítulo 8).

Valor guía

Las Guías OMS giran alrededor de un nuevo concepto que es importante

destacar y difundir. Ese concepto es el de valor guía, que sirve para estimar la

calidad del agua de bebida y que se define de la siguiente forma:

• Un valor guía representa la concentración de un componente que

no supone un riesgo significativo para la salud del consumidor si

éste bebe el agua durante toda su vida.

• La calidad definida en las Guías para la calidad del agua potable,

es la adecuada para el consumo humano y para todos los usos

domésticos habituales, incluida la higiene personal. Sin embargo,

se puede necesitar una mejor calidad para propósitos especiales,

como la diálisis renal.

• Cuando se sobrepasa un valor guía, esto se debe considerar

como una indicación de que es preciso: i) investigar la causa con

miras a tomar medidas correctivas y ii) solicitar el asesoramiento

de las autoridades responsables de la salud pública.

• Si bien los valores guía describen una calidad aceptable para el

consumo humano durante toda la vida, no ha de entenderse que

su establecimiento permita degradar la calidad del agua potable

para aproximarla a los niveles recomendados. Por el contrario,

debe hacerse un esfuerzo constante por mantener la mejor

calidad posible.

• Las desviaciones por un periodo breve durante el cual se

sobrepasan los valores guía, no significan necesariamente que el

agua no sea apta para el consumo. La proporción en que pueda

rebasarse un valor guía y el periodo durante el cual pueda

prolongarse esta situación sin que ello repercuta en la salud

pública dependerá de la sustancia de que se trate. Cuando se

sobrepase un valor guía, se recomienda que se consulte al

organismo de vigilancia competente (por lo general, la autoridad

responsable de la salud pública) para que aconseje medidas

adecuadas, teniendo en cuenta la ingesta de la sustancia

procedente de fuentes distintas del agua de bebida (si se trata de

componentes químicos), la toxicidad de la sustancia, la

probabilidad de efectos negativos y la naturaleza de éstos, las

posibilidades prácticas de adoptar medidas correctivas y otros

factores similares.

• Al elaborar las normas nacionales para el agua potable basadas

en estos valores guía, será necesario tener en cuenta una serie

de condiciones geográficas, socioeconómicas, alimentarías y de

otro tipo que influyen en la exposición potencia. Esto puede hacer

que las normas nacionales difieran apreciablemente de los

valores guía.

• En el caso de las sustancias radioactivas, se proporcionan valores

límite para la radiactividad alfa global y la radioactividad beta

global, sobre la base de un nivel de dosis de referencia.

A continuación se presenta una tabla con los valores guía pertenecientes a la

última edición (1995) de las Guías OMS para la calidad del agua potable.

Guías para la calidad del agua potable

Cuadros de valores guía

En los cuadros que figuran a continuación se resumen los valores guía

establecido para los microorganismos y las sustancias químicas presentes en

el agua potable. Estos valores no deben tomarse directamente de los cuadros;

deben usarse e interpretarse junto con la información contenida en los textos

de los Volúmenes 1 y 2, y otra información de base.

Cuadro A2.1 Calidad bacteriológica del agua potable

Organismos Valor guía

Toda el agua de bebida

E. coli o bacterias coliformes

termorresistentes b,c

No deben ser detectables en ninguna

muestra de 100 ml

Agua tratada que llega al sistema de distribución


Termorresistentesb

Total de bacterias coliformes


muestra de 100 ml


muestra de 100 ml

Agua tratada que se halla en el sistema de distribución


Termorresistentes b

Total de bacterias coliformes


muestra de 100 ml


muestra de 100 ml. En el caso de los

grandes sistemas de abastecimiento,

cuando se examinen suficientes muestras,

deberán estar ausentes en el 95% de las

muestras tomadas durante cualquier

período de 12 meses

A Si se detectan E. coli o bacterias coliformes en general, deben adaptarse

inmediatamente medidas para investigar la situación. En el caso e las bacterias

coliformes en general, se debe, como mínimo, repetir el muestreo; si las

bacterias se detectan también en la nueva muestra, se deben realizar

inmediatamente nuevas investigaciones para determinar la causa.

B Aunque E. coli es el indicador más preciso de contaminación fecal, el

recuento de las bacterias coliformes termorresistentes es una opción aceptable.

Si es necesario, se deben realizar las debidas pruebas confirmatorias. El total

de bacterias coliformes no es un indicador aceptable de la calidad sanitaria del

abastecimiento de agua en las zonas rurales, sobre todo en las zonas

tropicales donde casi todas las aguas no tratadas contienen numerosas

bacterias que carecen de importancia para la salud.

C Se reconoce que, en la gran mayoría de los sistemas de abastecimiento de

las zonas rurales de los países en desarrollo, hay una contaminación fecal

generalizada. En esas circunstancias, el organismo nacional de vigilancia debe

establecer objetivos a plazo medio para mejorar gradualmente el

abastecimiento, tal como se recomienda en el volumen 3 de Guías para la

calidad del agua potable.

Cuadro A2.2. Sustancias químicas de importancia para la salud presentes en el agua potable

A. Componentes inorgánicos

Observaciones Valor (mg/) guía

Antimonio 0,005 (P)a

Arsénico 0,01 b(P) Para un riesgo adicional de

cáncer de la piel de 6 x 10-4

Bario 0,7

Berilio NDSc

Boro 0,3

Cadmio 0,003

Cianuro 0,07

Cobre 2 (P) ASOd

Cromo 0,05 (P)

Fluoruro 1,5 Al establecer normas

nacionales, se deben tener

en cuenta las condiciones

climáticas, la cantidad de

agua consumida y la ingesta

procedente de otras fuentes

Manganeso 0,5 ASO

mercurio (total) 0,001

Molibdeno 0,07

Níquel 0,02

nitrato (NO3 -) 50 La suma de las razones

entre la concentración de

cada uno y su respectivo

valor guía no debe

sobrepasar la unidad

nitrito (NO2 3 (P)

Plomo 0,01

Selenio 0,01

Uranio NDS

B. Componentes orgánicos

Observaciones Valor (mg/) guía

Alcanos clorados

tetracloruro de carbono 2

Diclorometano 20

1,1-dicloroetano NDS

1,2-dicloroetano 30 b para un riesgo adicional de

10-5

1,1,1-tricloroetano 2000 (P)

Etenos clorados

Cloruro de vinilo 5 b para un riesgo adicional de

10-5

1,1-dicloroeteno 30

1,2-dicloroeteno 50

Tricloroeteno 70 (P)

Tetracloroeteno 40

Hidrocarburos aromáticos

Benceno 10 b Para un riesgo adicional de

10-5

Tolueno 700 ASO

Xilenos 500 ASO

Etilbenceno 300 ASO

Estireno 20 ASO

benzo[a]pireno 0,7 b para un riesgo adicional de

10-5

Bencenos clorados

Monoclorobenceno 300 ASO

1,1-diclorobenceno 1000 ASO

1,3-diclorobenceno NDS

1,4-diclorobenceno 300 ASO

triclorobencenos (total) 20 ASO

Diversos

adipato de di(2-etilhexilo) 80

ftalato de di(2-etilhexilo) 8

Archilamida 0,5 b para un riesgo adicional de

10-5

Epiclorhidrina 0,4 (P)

Hexaclorobutadieno 0,6

ácido edético (EDTA) 200 (P)

ácido nitrilotriacético 200

dialquilos de estaño NDS

óxido de tributilestaño 2

Cuadro A2.2. Sustancias químicas de importancia para la salud presentes

en el agua potable

Observaciones Valor (m g/l) guía

Antimonio 0,005 (P)a

Arsénico 0,01 b(P) Para un riesgo adicional de

cáncer de la piel de 6 x 10-4

Bario 0,7

Berilio NDSc

Boro 0,3

Cadmio 0,003

Cianuro 0,07

Cobre 2 (P) ASOd

Cromo 0,05 (P)

Fluoruro 1,5 Al establecer normas

nacionales, se deben tener

en cuenta las condiciones

climáticas, la cantidad de

agua consumida y la ingesta

procedente de otras fuentes

Manganeso 0,5 (P)

mercurio (total) 0,001

Molibdeno 0,07

Níquel 0,02

nitrato (NO3- 50 La suma de las razones



valor guía no debe

sobrepasar la unidad

nitrito (NO2-) 3 (P)

Plomo 0,01 Se reconoce que no toda el

agua se ajustará

inmediatamente al valor

guía; entretanto, deberán

aplicarse todas las demás

medidas recomendadas

para reducir la exposición

total al plomo

Selenio 0,01

Uranio NDS

C.Plaguicidas

Observaciones Valor (m g/l) guía

Alacloro 20 b para un riesgo adicional de

10-5

Aldicarb 10

aldrina/dieldrina 0,03

Atrazina 2

Bentazona 30

Carbofurano 5

Clordano 0,2

Clortolurón 30

DDT 2

1,2-dibromo-

3-cloropropano 1 b para un riesgo adicional de

10-5

2,4-D 30

1,2-dicloropropano 20 (P)

1,3-dicloropropano NDS

1,3-dicloropropeno 20 b para un riesgo adicional de

10-5

dibromuro de etileno NDS

heptacloro y

heptaclorepóxido

0,03

Hexaclorobenceno 1 b para un riesgo adicional de

10-5

Isoproturón 9

Lindano 2

MCPA 2

Metoxicloro 20

Metolacloro 10

Molinato 6

Pendimetalina 20

Pentaclorofenol 9 (P)

Permetrina 20

Propanil 20

Piridato 100

Simazina 2

Trifluralina 20

Herbicidas clorofenóxidos disntintos del 2,4-D y el MCPA

2,4-DB 90

Dicloroprop 100

Fenoprop 9

MCPB NDS

Mecoprop 10

2,4,5-T 9

D. Desinfectantes y sus productos secundarios

Desinfectantes Valor guía (m g/l)

Observaciones

Monocloramina 3

di- y tricloramina NDS

Cloro 5 ASO. Para que la

desinfección sea eficaz,

debe haber una

concentración residual de

cloro libre > 0,5 mg/litro

después de 30 minutos de

contacto, por lo menos, a un

pH < 8,0

dióxido de cloro No se ha establecido un

valor guía debido a la rápida

descomposición del dióxido

de cloro y a que el valor guía

para el clorito protege

suficientemente contra la

posible toxicidad del dióxido

de cloro

Yodo NDS

Productos secundarios de desinfectantes

Valor guía (m g/l) Observaciones

Bromato 25 b (P) para un riesgo adicional de

7x10-5

Clorato 200 (P) NDS

Clorito

Clorofenoles

2-clorofenol NDS

2,4-diclorofenol NDS

2,4,6-triclorofenol 200 b para un riesgo adicional de

10-5, ASO

Formaldehído 900

MX NDS

Trihalometanos La suma de las razones



valor guía no debe superar

la unidad

Bromoformo 100

Dibromoclorometano 100

Bromodiclorometano 60 b para un riesgo adicional de

10-5

Cloroformo 200 b para un riesgo adicional de

10-5

ácidos acéticos clorados

ácido monocloroacético NDS

ácido dicloroacético 50 (P)

ácido tricloroacético 100

hidrato de cloral

(tricloroacetaldehído)

10 (P)

Cloroacetona NDS

Productos secundarios de desinfectantes

Valor guía (m g/l)

Observaciones

acetonitrilos halogenados

Dicloroacetonitrilo 90 (P)

Dibromoacetonitrilo 100 (P)

Bromocloroacetonitrilo NDS

Tricloroacetonitrilo 1 (P)

cloruro de cianógeno (como

CN)

70

Cloropicrina NDS

a (P) - Valor guía provisional. Esta expresión se utiliza en el caso de los

componentes respecto de los cuales algunos elementos de juicio parecen

indicar la existencia de un posible riesgo, pero la información disponible sobre

los efectos en la salud es limitada; o cuando se ha aplicado para obtener la

ingesta diaria tolerable (IDT) un factor de incertidumbre superior a 1000. Se

recomiendan también valores guía provisionales: 1) para las sustancias cuyo

valor guía calculado se situaría por debajo de la concentración cuantificable en

la práctica o de la que puede lograrse mediante los métodos de tratamiento

existentes; o 2) cuando es probable que la desinfección haga que se sobrepase

el valor guía.

b En el caso de las sustancias consideradas carcinógenas, el valor guía es la

concentración en el agua potable asociada con un riesgo adicional de cáncer

durante toda la vida de 10-5 (un caso adicional de cáncer por cada 100 000

personas que ingieran agua que contenga la sustancia en la concentración

equivalente al valor guía durante 70 años). Multiplicando y dividiendo,

respectivamente, el valor guía por 10, pueden calcularse concentraciones

asociadas con riesgos adicionales de cáncer durante toda la vida de 10-4 y 10-

6.

Cuando no es posible mantener la concentración asociada con un riesgo

adicional de cáncer durante toda la vida de 10-5, debido a la insuficiencia de la

tecnología de análisis o tratamiento, se recomienda un valor guía provisional

practicable y se indica el riesgo adicional asociado.

Conviene poner de relieve que los valores guía aplicables a las sustancias

carcinógenas se han obtenido a partir de modelos matemáticos hipotéticos que

no pueden verificarse experimentalmente, por lo que no deben interpretarse

como los basados en una IDT, debido a la falta de precisión de los modelos. En

el mejor de los casos, esos valores deben considerarse estimaciones generales

del riesgo de cáncer. No obstante, los modelos utilizados pecan probablemente

de excesiva cautela. La exposición moderada a corto plazo a concentraciones

de carcinógenos que sobrepasen el valor guía no influye significativamente en

el riesgo.

c NDS- No hay datos suficientes para permitir la recomendación de un valor

guía basado en criterios sanitarios.

d ASO - Concentraciones de la sustancia iguales o inferiores al valor guía

basado en criterios sanitarios pueden influir en la apariencia, el sabor o el olor

del agua.

Cuadro A2.3 Sustancias químicas carentes de importancia para la salud en las concentraciones habitualmente halladas en el agua potable

Sustancias químicas Observaciones

Amianto

plata

estaño

i

i

i

i) Es innecesario recomendar valores guía basados en criterios sanitarios para

estas sustancias porque no son peligrosas para la salud humana en las

concentraciones habitualmente halladas en el agua de bebida.

Cuadro A2.4. Componentes radiactivos del agua potable

Valor límite(Bq/l)

Observaciones

radiactividad alfa global 0,1 Si se sobrepasa el valor

límite, es necesario un

análisis más detallado de los

radionúclidos. La detección

de valores más elevados no

implica necesariamente que

el agua no sea apta para el

consumo humano.

radiactividad beta global 1

Cuadro A2.5. Sustancias y parámetros del agua potable que pueden

provocar quejas de los consumidores

Concentraciones que

probablemente provoquen quejas de los consumidoresa

Razones de las quejas de

los consumidores

Parámetros físicos

Color 15 UCVb apariencia

sabor y olor - deben ser aceptables

Temperatura - debe ser aceptable

Turbiedad 5 UNTc Apariencia; para que la

desinfección final sea eficaz,

mediana de la turbiedad < 1

UNT, muestra única <

5 UNT

Componentes inorgánicos

Aluminio 0,2 mg/l depósitos, cloración

Amoniaco 1,5 mg/l olor y sabor

Cloruro 250 mg/l sabor, corrosión

Cobre 1 mg/l manchas en la ropa lavada y

las instalaciones de

fontanería (valor guía

provisional basado en

criterios sanitarios: 2mg/litro)

Dureza - gran dureza: incrustaciones,

formación de espuma

baja dureza: posible

corrosión

Hierro 0,3 mg/l manchas en la ropa lavada y


fontanería

Manganeso 0,1 mg/l manchas en la ropa lavada y


fontanería

(valor guía provisional

basado en criterios

sanitarios: 0,5 mg/litro)

oxígeno disuelto - efectos indirectos

pH - pH bajo: corrosión

pH alto: sabor, sensación

jabonosa

preferiblemente <8,0 para

que la desinfección con

cloro sea eficaz

Sodio 200 mg/l sabor

Sulfato 250 mg/l sabor, corrosión

sulfuro de hidrógeno 0,05 mg/l olor y sabor

total de sólidos

Disueltos 1000 mg/l sabor

Zinc 3 mg/l apariencia, sabor

componentes orgánicos

Tolueno 24-170 g/l olor, sabor (valor guía

basado en criterios

sanitarios: 700 g/l)

Xileno 20-1800 g/l olor, sabor (valor guía

basado en criterios


Etilbenceno 2-200 g/l olor, sabor (valor guía

basado en criterios


Estireno 4-2600 g/l olor, sabor (valor guía

basado en criterios

sanitarios: 20 g/l)

Monoclorobenceno 10-120 g/l olor, sabor (valor guía

basado en criterios


1,2-diclorobenceno 1-10 g/l olor, sabor (valor guía

basado en criterios

sanitarios:1000 g/l)

1,4-diclorobenceno 0,3-30 g/l olor, sabor (valor guía

basado en criterios


Triclorobencenos (total) 5-50 g/l olor, sabor (valor guía

basado en criterios

sanitarios: 20 g/l

Detergentes sintéticos - Espuma, sabor, olor

Desinfectantes y sus productos secundarios

Cloro 600-1000 g/l olor, sabor (valor guía

basado en criterios

sanitarios: 5 mg/l)

Cloro fenoles

2-cloro fenol 0,1-10 g/l sabor, olor

2,4-diclorofenol 0,3-40 g/l sabor, olor

2,4,6-triclorofenol 2-300 g/l olor, sabor (valor guía

basado en criterios


a Las concentraciones indicadas no son cifras exactas. Según las

circunstancias locales, puede haber problemas con concentraciones más bajas

o más elevadas. En el caso de los componentes orgánicos, se proporciona una

gama de concentraciones umbral para el sabor y el olor.

b UCV, unidad de color verdadero.

c UNT, unidad nefelométrica de turbiedad.

Normas internacionales para la calidad del agua de bebida

A los efectos de comparar las distintas normas de calidad del agua de bebida

que la mayoría de los países de la región de las Américas y el Caribe y de

algunos países del resto del mundo utilizan, se presenta un listado con los

parámetros más conspicuos y sus concentraciones correspondientes.

Se deja sin embargo, clara constancia que:

1. No siempre se han obtenido las normas de documentos oficiales

de los países, por lo que los valores presentados pueden

contener incorrecciones. Los presentes no son datos oficiales;

2. Si bien se ha tratado de colocar las últimas normas de cada país,

es posible que existan versiones más actualizadas;

3. Varias de ellas no están completas debido a su gran extensión o

detalle. El listado de los parámetros se ha basado en el listado de

las Guías OMS;

4. Algunos parámetros tienen valores muy distintos cuando

comparados entre las distintas normas. Ello se debe a la forma de

obtención del límite y (en unos pocos casos) a la forma de

expresión de su concentración. Estos criterios o condiciones son

las "notas" que aparecen dentro de las columnas de

"observaciones", que se explicitan en las normas originales pero

no en el listado presentado;

5. En los casos en que las normas presentan más de un límite para

un determinado parámetro (ej.: límite aconsejable, límite

aceptable y límite tolerable), se han tomado exclusivamente los

valores correspondientes a los máximos tolerables (los valores

más altos).

En primera instancia se enlistan los países que han adoptado a los valores guía

de la OMS como valores específicos para sus Normas Nacionales.

Antigua y Barbuda Dominica Saint Kitts and Nevis

Bahamas Granada Saint Lucia

Barbados Guyana S. Vincent & the

Granadines

Bermuda Haití Suriname

Belice Jamaica Trinidad & Tobago

Normas de países de Latino América:

PARAMETRO UNID. OMS ARG BOL BRA COL COR CHI ECU ELS

Año 1995 1994 1997 1990 1998 1997 1984 1992 1997

Origen Valores

guía

Código

Alimen-

tario

IBNORCA

NB512

Porta-

ria 36-

GM

RAS-

98

Dto.

25991-

S

NCH

409/1

IEOS NSO

130701

Microbiológicos

Coli fecales o E. Coli UFC/100ml 0 0 0 0 0 0 0 - 0

Coliformes totales UFC/100ml 0 3 0 0 1 - 1 1 0

Bact. Heterotróficas UFC/ml - - - - - - - - 100

Químicos de importancia para la salud

Inorgánicos

Antimonio Mg/L 0.005 - 0.05 - 0.05 0.05 - - 0.005

Arsénico " 0.01 0.05 0.05 0.05 0.01 0.01 0.05 0.05 0.01

Bario " 0.7 - 1 1 0.5 - - 1 0.2

Boro " 0.3 - - - 0.3 - - - 0.3

Cadmio " 0.003 0.005 0.005 0.005 0.003 0.05 0.01 0.005 0.003

Cianuro " 0.07 0.1 0.02 0.1 0.1 0.05 0.2 0.1 0.05

Cobre " 2 1 0.05 1 1 2 1 1 1

Cromo " 0.05 0.05 0.05 0.05 0.01 0.05 0.05 0.05 0.05

Fluoruro " 1.5 1.7 1.5 Variable1.2 1.5 1.5 1.7 1.5

Manganeso " 0.5 0.1 0.3 0.1 0.1 0.5 0.1 0.1 0.05

Mercurio " 0.001 0.001 0.001 0.001 0.001 0.001 0.001 0.001 0.001

Molibdeno " 0.07 - - - 0.07 - - - -

Níquel " 0.02 - 0.05 - 0.02 0.05 - 0.05 0.02

Nitrato " 50 45 - 10 10 50 10 10 45

Nitrito " 3 0.1 0.05 - 0.1 - 1 0.1 1

Plomo " 0.01 0.05 0.01 0.05 0.01 0.01 0.05 0.05 0.01

Selenio " 0.01 - 0.01 0.01 0.01 0.01 0.01 0.01 0.01

Orgánicos

Tetracloruro de

carbono

g/L 2 3 - 3 - 2 - - 2

Diclorometano " 20 - - - - 20 - - 5

1,1 Dicloroetano " NDS 0.3 - - - - - - 30

1,2 Dicloroetano " 30 10 - 10 - 30 - - 50

1,1,1 Tricloroetano " 2,000 - - - - 2,000 - - 200

Cloruro de vinilo " 5 2 - - - 5 - - 2

1,1 Dicloroeteno " 30 - - 0.3 - 30 - - 30

1,2 Dicloroeteno " 50 - - - - 50 - - 5

Tricloroeteno " 70 - - 30 - 70 - - 70

Tetracloroeteno " 40 - - 10 - 40 - - -

Benceno " 10 10 - 10 - - - - 5

Tolueno " 700 - - - - 700 - - 700

Xilenos " 500 - - - - 500 - - 500

Etilbenceno " 300 - - - - 300 - - 300

Estireno " 20 - - - - 20 - - 20

Benzopireno " 0.7 0.01 - 0.01 - 0.7 - - 0.2

Monoclorobenceno " 300 3 - - - 300 - - 100

1,2 Diclorobenceno " 1,000 500 - - - 1,000 - - 600

1,3 Diclorobenceno " NDS - - - - - - - -

1,4 Diclorobenceno " 300 400 - - - 300 - - 75

Triclorobencenos " 20 - - - - 20 - - 20

Adipato de di

(2etilhexilo) "

80 - - - - 80 - - 80

Ftalato de

di(2etilhexilo) "

8 - - - - 8 - - 6

Acrilamida " 0.5 - - - - 0.5 - - 0

Epiclorhidrina " 0.4 - - - - 0.4 - - 0.4

Hexaclorobutadieno " 0.6 - - - - 0.5 - - 0.6

EDTA " 200 - - - - 200 - - 200

Ac. Nitrilotriacético " 200 - - - - 200 - - 200

Oxido de

tributilestaño "

2 - - - - 2 - - 2

Plaguicidas

Alacloro g/L 20 - - - - 20 - - -

Aldicarb " 10 - - - - 10 - - -

Aldrina/Dieldrina " 0.03 0.03 - 0.03 - 0.03 0.03 0.03 -

Atrazina " 2 - - - - 2 - - -

Bentazona " 30 - - - - 30 - - -

Carbofurano " 5 - - - - 5 - - -

Clordano " 0.2 0.3 - 0.3 - 0.2 0.3 0.03 3

DDT " 2 1 - 1 - 2 1 1 -

2,4 D " 30 100 - 100 - 30 100 100 -

1,2 Dicloropropano " 20 - - - - 20 - - -

1,3 Dicloropropeno " 20 - - - - 20 - - -

Heptacloro y HCl-

epóxido "

0.03 0.1 - 0.1 - 0.03 0.1 0.1 -

Hexaclorobenceno " 1 0.01 - 0.01 - - 0.01 - -

Lindano " 2 3 - 3 - 2 3 3 -

Metoxicloro " 20 30 - 30 - 20 30 30 -

Metolacloro " 10 - - - - 10 - - -

Molinato " 6 - - - - 6 - - -

Pendimetalina " 20 - - - - 20 - - -

Pentaclorofenol " 9 10 - 10 - 9 - - -

Permetrina " 20 - - - - 20 - - -

Fenoprop " 9 - - - - - 10 - -

2,4,5 T " 9 - - - - 9 - 2 -

Desinfectantes y productos secundarios

Monocloramina g/L 3 - - - - 4,000 - - -

Cloro aplicado " 5 - - - - - - - -

Cloro residual " - 0.2 - 0.2 - 1 0.2 0.8 -

Plata " - 0.05 - 0.05 0.01 - - 0.05 0.1

Bromato " 25 - - - - 25 - - -

Clorito " 200 - - - - 200 - - -

2,4,6 Triclorofenol " 200 10 - 10 - 200 - - -

Formaldehído " 900 - - - - 900 - - -

Trihalometanos " Nota 100 - 100 100 - - 30 -

Bromo formo " 100 - - - - 100 - - -

Dibromoclorometano " 100 - - - - 100 - - -

Cloroformo " 200 - - - 30 200 - - -

Radiactivos

Radiactividad Alfa

global

Bq/L 0.1 - 0.1 - - - 15 pCi 0.1 15

Radiactividad Beta

global "

1 - 1 - - - 50 pCi 1 4

Sustancias que pueden producir quejas en los usuarios

Color UCV 15 5 15 5 15 15 20 15 15

Olor Varias Sin Sin - No obj. Acept.12° Inodora No

obj.

3

Sabor Varias - Sin - No obj. Acept.12° InsípidaNo

obj.

1

Turbiedad UNT 5 3 5 1 5 5 5 10 5

Temperatura C - - - - - 30 - 30

Conductividad S/cm - - - - 1,000 400 - - 1,600

Aluminio Mg/L 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 - 0.3 0.01

Amoniaco " 1.5 0.2 0.05 - - 0.5 - - 0.5

Cloruro " 250 350 250 250 250 250 250 250 250

Dureza " - 400 500 500 160 400 - 500 400

Calcio " - - 200 - 60 100 - - 75

Magnesio " - - 150 - 36 50 125 - 50

Hierro " 0.3 0.3 0.3 0.3 0.3 0.3 0.3 0.5 0.3

Ph Unidad - 8.5 8.5 8.5 - 8.5 8.5 8.5 8.5

Sodio Mg/L 200 - 200 - - 200 - 115 150

Sulfato " 250 400 300 400 250 250 250 400 250

Alcalinidad total " - - 370 - 100 - - - 250

Detergentes " - 0.5 - 0.2 - - - 0.5 -

Sulfuro de

hidrógeno "

0.05 - - 0.25 - 0.05 - 0.05 0.05

Sólidos disueltos

totales "

1,000 1,500 1,000 1,000 - 1,000 - 1,000 600

Zinc " 3 5 5 5 5 3 5 5 5

Tolueno g/L 170 - - - - - - - -

Xileno " 1,800 - - - - - - - -

Etilbenceno " 200 - - - - - - - -

Monoclorobenceno " 120 - - - - - - - -

Triclorobencenos

(total) "

50 - - - - - - - -

PARAMETRO UNID. OMS GUT MEX NIC PER DOR URU VEN

Año 1995 1998 1988 1994 1999 1980 1996 1998

Origen Valores

guía

NGO

29001

NOM CAPREDIGE-

SA

(pro-

puesta)

NOR-

DOM

Dto: 27335 -

Microbiológicos

Coli fecales o E. Coli UFC/100ml 0 < 2.2 0 0 0 0 0 -

Coliformes totales UFC/100ml 0 < 2.2 2 4 0 - 0 -

Bact. Heterotróficas UFC/ml - - - - 500 - 500 -


Inorgánicos

Antimonio Mg/L 0.005 - - 0.05 0.005 - - -

Arsénico " 0.01 0.05 0.5 0.01 0.05 0.05 0.05 0.01

Bario " 0.7 1 1 - 1 - - 0.7

Boro " 0.3 1 - - - - - 0.3

Cadmio " 0.003 0.01 0.005 0.05 0.005 0.01 0.005 0.003

Cianuro " 0.07 0.05 0.05 0.05 0.07 0.05 0.1 0.07

Cobre " 2 1.5 1.5 2 1 1.5 1 2

Cromo " 0.05 0.05 0.05 0.05 0.05 0.05 0.05 0.05

Fluoruro " 1.5 1.7 1.5 1.5 1.5 1.7 1.5 1.5

Manganeso " 0.5 0.5 0.15 0.5 0.5 0.4 0.1 0.5

Mercurio " 0.001 0.002 0.001 0.001 0.001 - 0.001 0.001

Molibdeno " 0.07 - - - - - - 0.07

Níquel " 0.02 0.02 - 0.05 0.05 - - 0.02

Nitrato " 50 45 5 50 10 45 10 45

Nitrito " 3 0.01 - 1 0.9 - - 0.03

Plomo " 0.01 0.1 0.05 0.01 0.05 0.05 0.05 0.01

Selenio " 0.01 0.01 0.05 0.01 0.01 0.05 0.01 0.01

Orgánicos

Tetracloruro de

carbono

g/L 2 - - 2 - - - -

Diclorometano " 20 - - 20 - - - -

1,1 Dicloroetano " NDS - - - - - - -

1,2 Dicloroetano " 30 - - 30 - - - 30

1,1,1 Tricloroetano " 2,000 - - 2,000 - - - -

Cloruro de vinilo " 5 - - 5 - - - -

1,1 Dicloroeteno " 30 - - 30 - - - 30

1,2 Dicloroeteno " 50 - - 50 - - - -

Tricloroeteno " 70 - - 70 - - - -

Tetracloroeteno " 40 - - 40 - - - -

Benceno " 10 - - - - - - 10

Tolueno " 700 - - 700 - - - 700

Xilenos " 500 - - 500 - - - 500

Etilbenceno " 300 - - 300 - - - 300

Estireno " 20 - - 20 - - - -

Benzopireno " 0.7 - - 0.7 - - - 0.7

Monoclorobenceno " 300 - - 300 - - - -

1,2 Diclorobenceno " 1,000 - - 1,000 - - - -

1,3 Diclorobenceno " NDS - - - - - - -

1,4 Diclorobenceno " 300 - - 300 - - - -

Triclorobencenos " 20 - - 20 - - - -

Adipato de di

(2etilhexilo) "

80 - - 80 - - - -

Ftalato de

di(2etilhexilo) "

8 - - 8 - - - -

Acrilamida " 0.5 - - 0.5 - - - 0.5

Epiclorhidrina " 0.4 - - 0.4 - - - -

Hexaclorobutadieno " 0.6 - - 0.5 - - - -

EDTA " 200 - - 200 - - - -

Ac. Nitrilotriacético " 200 - - 200 - - - -

Oxido de

tributilestaño "

2 - - 2 - - - -

Plaguicidas

Alacloro g/L 20 - - 20 - - - -

Aldicarb " 10 - - 10 - - - -

Aldrina/Dieldrina " 0.03 17 - 0.03 0.03 - - 0.03

Atrazina " 2 - - 2 - - - -

Bentazona " 30 - - 30 - - - -

Carbofurano " 5 - - 5 - - - -

Clordano " 0.2 3 - 0.2 0.3 - - 0.2

DDT " 2 50 - 2 1 - - 2

2,4 D " 30 100 - 30 50 - - 30

1,2 Dicloropropano " 20 - - 20 - - - -

1,3 Dicloropropeno " 20 - - 20 - - - -

Heptacloro y HCl-

epóxido "

0.03 18 - 0.03 0.03 - - 0.03

Hexaclorobenceno " 1 - - - 0.01 - - 1

Lindano " 2 56 - 2 2 - - 2

Metoxicloro " 20 35 - 20 20 - - 20

Metolacloro " 10 - - 10 - - - -

Molinato " 6 - - 6 - - - -

Pendimetalina " 20 - - 20 - - - -

Pentaclorofenol " 9 - - 9 - - - 9

Permetrina " 20 - - 20 - - - -

Fenoprop " 9 - - - - - - -

2,4,5 T " 9 100 - 9 - - - -


Monocloramina g/L 3 - - 4,000 - - - -

Cloro aplicado " 5 - - 5 - - - 3

Cloro residual " - 1 1 0.5 - 1 - -

Plata " - 0.05 - - - - - 0.05

Bromato " 25 - - 25 - - - -

Clorito " 200 - - 200 - - - -

2,4,6 Triclorofenol " 200 - - 200 - - - 200

Formaldehído " 900 - - 900 - - - -

Trihalometanos " Nota - - - 200 - - -

Bromo formo " 100 - - 100 - - - 100

Dibromoclorometano" 100 - - 100 - - - 100

Cloroformo " 200 - - 200 - - - 200

Radiactivos

Radiactividad Alfa

global

Bq/L 0.1 - - - - 3 0.1 0.1

Radiactividad Beta

global "

1 - - - - 3 1 1


Color UCV 15 50 20 15 15 50 20 25

Olor Varias Sin No

rechaz.

Característico 25° Acept. - CaracterísticoAcept.

Sabor Varias - No

rechaz.

Característico 25° Acept. - CaracterísticoAcept.

Turbiedad UNT 5 25 10 5 3 10 5 10

Temperatura C - 34 - 30 - - - -

Conductividad S/cm. - - - 400 1,500 - - -

Aluminio Mg/L 0.2 0.1 0.2 0.2 0.2 - 0.5 0.2

Amoniaco " 1.5 - - 0.5 0.5 - - -

Cloruro " 250 600 - 250 400 600 300 300

Dureza " - 500 300 400 500 500 500 500

Calcio " - 200 - 100 - 200 - -

Magnesio " - 150 125 50 - 150 - -

Hierro " 0.3 1 0.3 0.3 0.3 0.7 0.3 1

PH Unidad - 9.2 8.5 8.5 8.5 9.2 9 9

Sodio Mg/L 200 - - 200 - - 200 200

Sulfato " 250 400 250 250 400 400 400 500

Alcalinidad total " - - 400 - - - - -

Detergentes " - 1 - - 0.5 1 0.2 -

Sulfuro de

hidrógeno "

0.05 - - 0.05 - - - -

Sólidos disueltos

totales "

1,000 1,500 - 1,000 - 1,500 1,000 1,000

Zinc " 3 15 5 3 3 15 5 5

Tolueno g/L 170 - - - - - - -

Xileno " 1,800 - - - - - - -

Etilbenceno " 200 - - - - - - -

Monoclorobenceno " 120 - - - - - - -

Triclorobencenos

(total) "

50 - - - - - - -

Normas de países de Norteamérica y Unión Europea:

PARAMETRO UNID. OMS CAN USA EEC FRA UNK GER ITA SPN

Año 1995 1995 1998 1991 1989 1991 1990 1985 1990

Origen Valores

guía

HE

EHD

NP

DWR

- Dto

89-3

Reg

1837

LF

66

Dto

PCM

Dto

1138

Microbiológicos

Coli fecales o E. Coli UFC/100ml 0 0 0 0 0 0 0 0 0

Coliformes totales UFC/100ml 0 0 0 0 0

(95%)

0 0 0 0

Bact. Heterotróficas UFC/ml - - 500 100 20 No in-

crease

20 100 -


Inorgánicos

Antimonio Mg/L 0.005 - 0.006 0.01 0.01 0.01 0.01 0.01 0.01

Arsénico " 0.01 0.025 0.05 0.05 0.05 0.05 0.01 0.05 0.05

Bario " 0.7 1 2 0.1 - 1 1 0.1 0.1

Boro " 0.3 5 - 1 - 2 1 1 1

Cadmio " 0.003 0.005 0.005 0.0050.005 0.005 0.005 0.0050.005

Cianuro " 0.07 0.2 0.2 0.05 0.05 0.05 0.05 0.05 0.05

Cobre " 2 1 1.3 3 1 3 3 3 3

Cromo " 0.05 0.05 0.1 0.05 0.05 0.05 0.05 0.05 0.05

Fluoruro " 1.5 1.5 4 1.5 1.5 1.5 1.5 1.7 1.5

Manganeso " 0.5 0.05 0.05 0.05 0.05 0.05 0.05 0.05 0.05

Mercurio " 0.001 0.001 0.002 0.0010.001 0.001 0.001 0.0010.001

Molibdeno " 0.07 - - - - - - - -

Níquel " 0.02 - - 0.05 0.05 0.05 0.05 0.05 0.05

Nitrato " 50 45 10 50 - 50 50 50 50

Nitrito " 3 3.2 1 0.1 - 0.1 0.1 0.1 0.1

Plomo " 0.01 0.01 0 0.05 0.05 0.05 0.04 0.05 0.05

Selenio " 0.01 0.01 0.05 0.01 0.01 0.01 0.01 0.01 0.01

Orgánicos

Tetracloruro de

carbono

g/L 2 5 5 - - - - - -

Diclorometano " 20 50 5 - - - - - -

1,1 Dicloroetano " NDS - - - - - - - -

1,2 Dicloroetano " 30 5 5 - - - - - -

1,1,1 Tricloroetano " 2,000 - 200 - - - - - -

Cloruro de vinilo " 5 2 2 - - - - - -

1,1 Dicloroeteno " 30 - - - - - - - -

1,2 Dicloroeteno " 50 - - - - - - - -

Tricloroeteno " 70 - - - - 30 - - -

Tetracloroeteno " 40 - - - - 10 - - -

Benceno " 10 5 5 - - - - - -

Tolueno " 700 24 1,000 - - - - - -

Xilenos " 500 300 10,000 - - - - - -

Etilbenceno " 300 24 700 - - - - - -

Estireno " 20 - - - - - - - -

Benzopireno " 0.7 0.01 0.2 - - 0.01 - - -

Monoclorobenceno " 300 - 100 - - - - - -

1,2 Diclorobenceno " 1,000 200 600 - - - - - -

1,3 Diclorobenceno " NDS - 75 - - - - - -

1,4 Diclorobenceno " 300 50 - - - - - - -

Triclorobencenos " 20 - - - - - - - -

Adipato de di

(2etilhexilo) "

80 - 40 - - - - - -

Ftalato de

di(2etilhexilo) "

8 - 6 - - - - - -

Acrilamida " 0.5 - 0 - - - - - -

Epiclorhidrina " 0.4 - 0 - - - - - -

Hexaclorobutadieno " 0.6 - - - - - - - -

EDTA " 200 - - - - - - - -

Ac. Nitrilotriacético " 200 400 - - - - - - -

Oxido de

tributilestaño "

2 - - - - - - - -

Plaguicidas

Alacloro g/L 20 - 0 - - - - - -

Aldicarb " 10 - - - - - - - -

Aldrina/Dieldrina " 0.03 0.7 - - 0.03 - - - -

Atrazina " 2 - 3 - - - - - -

Bentazona " 30 - - - - - - - -

Carbofurano " 5 90 40 - - - - - -

Clordano " 0.2 - 2 - - - - - -

DDT " 2 - - - - - - - -

2,4 D " 30 - 70 - - - - - -

1,2 Dicloropropano " 20 - 5 - - - - - -

1,3 Dicloropropeno " 20 - - - - - - - -

Heptacloro y HCl-

epóxido "

0.03 - 0.4 - - - - - -

Hexaclorobenceno " 1 - 1 - 0.01 - - - -

Lindano " 2 4 0.2 - - - - - -

Metoxicloro " 20 900 40 - - - - - -

Metolacloro " 10 50 - - - - - - -

Molinato " 6 - - - - - - - -

Pendimetalina " 20 - - - - - - - -

Pentaclorofenol " 9 6 1 - - - - - -

Permetrina " 20 - - - - - - - -

Fenoprop " 9 - - - - - - - -

2,4,5 T " 9 - - - - - - - -


Monocloramina g/L 3 - - - - - - - -

Cloro aplicado " 5 - - - - - - - -

Cloro residual " - - - - - - 0.3 0.2 Variable

Plata " - - 0.1 0.01 0.01 0.01 0.08 0.01 0.01

Bromato " 25 - - - - - - - -

Clorito " 200 - - - - - - - -

2,4,6 Triclorofenol " 200 5 - - - - - - -

Formaldehído " 900 - - - - - - - -

Trihalometanos " Nota 100 100 - - - - - -

Bromo formo " 100 - - - - - - - -

Dibromoclorometano" 100 - - - - - - - -

Cloroformo " 200 - - 100 - - 3 - -

Radiactivos

Radiactividad Alfa

global

Bq/L 0.1 - 15

pCi/l

- - - - - 0.1

Radiactividad Beta

global "

1 - 4

mr/año

- - - - - 1


Color UCV 15 15 15 20 - 20 0.5

m-1

20 20

Olor Varias Sin Inofen-

sivo

3 25° - 3 3 1:3 0

Sabor Varias - Inofen-

sivo

- 25° - 3 - 1:3 0

Turbiedad UNT 5 5 5 10 - 4 1.5 10 10

Temperatura C - 15 - 25 - 25 25 25 25

Conductividad S/cm. - - - 400 - 1,500 2,000 400 400

Aluminio Mg/L 0.2 - 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2

Amoniaco " 1.5 - - 0.5 - 0.5 0.5 0.5 0.5

Cloruro " 250 250 250 250 250 400 250 200 200

Dureza " - 500 - - - - - 320 317

Calcio " - - - 100 - 250 400 100 100

Magnesio " - - - 50 50 50 50 125 30

Hierro " 0.3 0.3 0.3 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2

PH Unidad - 8.5 8.5 8.5 - 9.5 9.5 9.5 8.5

Sodio Mg/L 200 200 - 20 150 150 150 20 175

Sulfato " 250 500 250 250 250 250 240 250 250

Alcalinidad total " - - - - - - - - -

Detergentes " - - 0.5 0.2 0.2 0.2 0.2 0.2 -

Sulfuro de

hidrógeno "

0.05 0.05 - - - - - - -

Sólidos disueltos

totales "

1,000 500 500 1,500- 1,500 - 1,5001,500

Zinc " 3 5 5 5 5 5 5 3 5

Tolueno g/L 170 - 1,000 - - - - - -

Xileno " 1,800 - 10,000 - - - - - -

Etilbenceno " 200 - 700 - - - - - -

Monoclorobenceno " 120 80 100 - - - - - -

Triclorobencenos

(total) "

50 - 70 - - - - - -

Normas de otros países del Mundo:

PARAMETRO UNID. OMS RSA AUS TAW CHN THD IDN MLY

Año 1995 1998 1987 1996 - - - -

Origen Valores

guía

UMGENI AWRCTDWR- MH - -

Microbiológicos

Coli fecales o E. Coli UFC/100ml 0 - 0 - - 0 - -

Coliformes totales UFC/100ml 0 - 10 1 300 2.2 - -

Bact. Heterotróficas UFC/ml - - - - - - - -


Inorgánicos

Antimonio Mg/L 0.005 0.005 - - - - - -

Arsénico " 0.01 0.01 0.05 0.05 0.04 0.05 0.05 0.05

Bario " 0.7 0.7 - - - 1 0.05 1

Boro " 0.3 0.3 - 0.01 - - - 1

Cadmio " 0.003 0.01 0.005 - 10 - 10 0.005

Cianuro " 0.07 - 0.1 0.01 0.05 - - 0.2

Cobre " 2 0.5 1 1 1 1 1 1

Cromo " 0.05 0.05 0.05 0.05 0.05 0.05 0.05 0.05

Fluoruro " 1.5 - 1.7 0.8 10 1.5 1.5 1

Manganeso " 0.5 0.05 0.1 0.05 0.1 0.05 - 0.1

Mercurio " 0.001 0.005 0.001 0.002 - 0.0020.0010.001

Molibdeno " 0.07 0.07 - - - - - -

Níquel " 0.02 0.02 - - 1 - - 0.05

Nitrato " 50 10 10 10 - 18 45 -

Nitrito " 3 1 - - - - - -

Plomo " 0.01 0.05 0.05 0.05 0.1 - 0.1 0.05

Selenio " 0.01 0.02 0.01 0.01 0.01 0.01 0.01 0.01

Orgánicos

Tetracloruro de

carbono

g/L 2 - 3 5 - - - -

Diclorometano " 20 - - - - - - -

1,1 Dicloroetano " NDS - - - - - - -

1,2 Dicloroetano " 30 - 10 5 - - - -

1,1,1 Tricloroetano " 2,000 - - 200 - - - -

Cloruro de vinilo " 5 - - 2 - - - -

1,1 Dicloroeteno " 30 - 0.3 7 - - - -

1,2 Dicloroeteno " 50 - - - - - - -

Tricloroeteno " 70 - 30 5 - - - -

Tetracloroeteno " 40 - 10 - - - - -

Benceno " 10 - 10 5 - - - -

Tolueno " 700 - - - - - - -

Xilenos " 500 - - - - - - -

Etilbenceno " 300 - - - - - - -

Estireno " 20 - - - - - - -

Benzopireno " 0.7 - 0.01 - - - - -


1,2 Diclorobenceno " 1,000 - - - - - - -

1,3 Diclorobenceno " NDS - - - - - - -

1,4 Diclorobenceno " 300 - - - - - - -

Triclorobencenos " 20 - - - - - - -

Adipato de di

(2etilhexilo) "

80 - - - - - - -

Ftalato de

di(2etilhexilo) "

8 - - - - - - -

Acrilamida " 0.5 - - - - - - -

Epiclorhidrina " 0.4 - - - - - - -

Hexaclorobutadieno " 0.6 - - - - - - -

EDTA " 200 - - - - - - -

Ac. Nitrilotriacético " 200 - - - - - - -

Oxido de

tributilestaño "

2 - 3 - - - - -

Plaguicidas

Alacloro g/L 20 - - - - - - -

Aldicarb " 10 - - - - - - -

Aldrina/Dieldrina " 0.03 - 1 3 - - - -

Atrazina " 2 - - - - - - -

Bentazona " 30 - 400 - - - - -

Carbofurano " 5 - 30 - - - - -

Clordano " 0.2 - 6 - - - - -

DDT " 2 - 3 1 - - - -

2,4 D " 30 - 100 100 - - - -

1,2 Dicloropropano " 20 - - - - - - -

1,3 Dicloropropeno " 20 - - - - - - -

Heptacloro y HCl-

epóxido "

0.03 - 3 1 - - - -

Hexaclorobenceno " 1 - - - - - - -

Lindano " 2 - 100 4 - - - -

Metoxicloro " 20 - - - - - - -

Metolacloro " 10 - 800 - - - - -

Molinato " 6 - 1 - - - - -

Pendimetalina " 20 - 600 - - - - -

Pentaclorofenol " 9 - 10 5 - - - -

Permetrina " 20 - 300 - - - - -

Fenoprop " 9 - 20 - - - - -

2,4,5 T " 9 - 2 - - - - -


Monocloramina g/L 3 - - - - - - -

Cloro aplicado " 5 2.5 - - - - - -

Cloro residual " - - - 0.8 0.05 - - -

Plata " - 0.1 - 0.05 - 0.05 - 0.05

Bromato " 25 - - - - - - -

Clorito " 200 - - - - - - -

2,4,6 Triclorofenol " 200 - 10 - - - - -

Formaldehído " 900 - - - - - - -

Trihalometanos " Nota - 200 100 - - - -

Bromo formo " 100 100 - - - - - -

Dibromoclorometano " 100 100 - - - - - -

Cloroformo " 200 200 - - - - - -

Radiactivos

Radiactividad Alfa

global

Bq/L 0.1 - 0.1 - - - - -

Radiactividad Beta

global "

1 - 0.1 - - - - -


Color UCV 15 - 15 15 15 20 25 -

Olor Varias Sin - No

obj.

- - - - -

Sabor Varias - - No

obj.

- - - - -

Turbiedad UNT 5 0.5 5 4 5 5 - -

Temperatura C - - - - - - 50 -

Conductividad S/cm. - - - - - - - -

Aluminio Mg/L 0.2 0.2 0.2 - - - - -

Amoniaco " 1.5 1.5 - - - - 0.05 0.1

Cloruro " 250 250 400 250 - 250 600 200

Dureza " - 300 500 300 250 100 - 100

Calcio " - - - - - - 200 -

Magnesio " - - - - - - - -

Hierro " 0.3 0.2 0.3 0.3 0.3 0.5 1 0.3

PH Unidad - 9.5 8.5 8.5 8.5 8.5 8.5 -

Sodio Mg/L 200 100 300 - - - - -

Sulfato " 250 200 400 250 - - 400 200

Alcalinidad total " - - - - - - - -

Detergentes " - - - - - - - -

Sulfuro de

hidrógeno "

0.05 - - - 10 - - 0.05

Sólidos disueltos

totales "

1,000 - 1,000 500 - 500 1,500-

Zinc " 3 1 5 5 - 5 15 5

Tolueno g/L 170 - - - - - - -

Xileno " 1,800 - - - - - - -

Etilbenceno " 200 - - - - - - -


Triclorobencenos

(total) "

50 - - - - - - -

1.1.4 Algas.

El reino vegetal incluye 3 divisiones principales, una de las cuales, Thalllophyta,

incluye gérmenes, mohos y levadura. Las otras divisiones del reino vegetal son

Bryophyta (musgos y hepáticas) y tracheophyta (plantas vasculares).

Las talofitas son formas simples unicelulares, o bien organismos más

complejos multicelulares, pero no diferenciados en raíces, tallos u hojas; el

cuerpo de la planta se llama talo. La primera subdivisión incluye gérmenes que

contienen clorofila: diatomeas y las algas superiores (verdes, rojas, pardas,

etc). La segunda subdivisión consiste en organismos que no son fotosintéticos,

levaduras, mohos, hongos, etc.

Las algas azulverdes son procariotas, mientras que todas las demás l algas

son eucariotas. Las primeras evolucionaron a partir de bacterias ancestrales

fotosintéticas. Se ha propuesto que las demás algas y las plantas superiores se

desarrollaron a partir de un eucariota ameboflagelado por adquisición

simbiótica de pesticidas fotosintéticas procedentes de procariotas tempranos

fotosintéticos.

Se encuentran las algas prácticamente en cualquier parte de la tierra, desde el

trópico hasta las regiones antárticas. Son principalmente acuáticas y, por

consiguiente, aparecen en lagos y corrientes, mareas y océanos. Algunas

formas de agua dulce se adaptan al agua de mar y se encuentran en lagos

salados de la zona sudoeste de Estados Unidos. Muchas especies viven en

suelo húmedo; algunas crecen en rocas y facilitan la descomposición lenta por

lo que las rocas se transforman en tierra; otras se encuentran en lado

sombreado de los árboles donde reciben protección de la luz solar intensa.

Algunas especies se adaptan a climas fríos y crecen en nieve y hielo en

regiones polares y montañosas. Otras se han adaptado a temperaturas

elevadas y crecen en fuentes termales a 85 ó 90°C (por ejemplo, en el parque

Nacional Yellowstone en Estados Unidos).

1.1.4.1 Morfología.

Muchas especies de algas son células únicas microscópicas. Su forma

varía de esférica a cilíndrica, en masa, espirales e irregulares. Las especies

multicelulares presentan gran variación de forma y complejidad.

Algunas especies no son verdaderamente multicelulares sino que incluyen

acúmulos sencillos de células únicas aparentemente idénticas unidas por

una cubierta gelatinosa externa, de características cenagosas. Las células

coloniales, por lo contrario, incluyen células con funciones especializadas;

v. gr.: reproducción, o prolongaciones radiculares que fijan la planta a las

rocas u otras superficies sólidas. Algunas algas se mueven por medio de

flagelos; otras (diatomeas) por mecanismos desconocidos en que quizá

participe corriente protoplásmica. Muchas algas no tienen modalidad

independiente, pero flotan en el agua. Algunas especies normalmente

inmóviles incluyen células reproductoras móviles.

1.1.4.2 Reproducción.

Las algas se reproducen por varios mecanismos, que incluyen fenómenos

sexuales y asexuales, y muchas especies tienen ciclos vitales complejos

con etapas sexuales y asexuales.

La reproducción asexual incluye la división celular simple o fisión, en que

cada célula aumenta de tamaño y se divide. La fragmentación de los

filamentos de algunas algas sirve para la propagación. También tiene lugar

la formación asexual de esporas; se producen esporas inmóviles, o

zoosporas móviles, por células especializadas llamadas esporangios.

Hay tres tipos de reproducción sexual.

1) uno de los más sencillos es la isogamia, la fusión o conjugación de dos

células sexuales que no pueden distinguirse una de la otra. Los

gametos de dos plantas haploides (cepas + y -) se fusionan y producen

un cigoto que germina para producir una planta diploide. Esta

proporciona cigosporas (o sea esporas flageadas) que sufren una

división reductora, después de lo cual se producen plantas haploides de

las dos cepas.

2) una forma más avanzada es la anisogamia, la fusión de gemelos

masculinos haploides menores o más activos (flagelados), con gametos

hembras haploides menos activo y más voluminosos. El cigoto

resultante produce produce un esporofito diploide, en el cual se forman

tetrasporas y que sufre división reductora proporcionando esporas a

partir de las cuales crecen plantas haploides y se desarrollan gametos

masculinos y femeninos.

3) Finalmente, algunas especies poseen huevos voluminosos inmóviles, la

unión constituye la oogamia. Los gametos haploides, producidos sobre

los filamentos pequeños, se fusionan y producen un cigoto mientras el

huevo todavía esta unido a la boca del oogonio. Se desarrolla un

pequeño embrión antes de perderse la conexión con la planta original.

Crece un esporocito diploide voluminoso, y las zoosporas y se

transforman en gametofitos haploides masculinos o femeninos.

1.1.4.3 Clasificación de las Algas.

Las algas se clasifican según el carácter de los pigmentos que producen, el

tipo de producto que sintetizan y almacenan y su mecanismo de

producción. En el cuadro 1 se describen los seis grupos principales.

Algunos autores incluyen los dinoflagelados en las algas. Previamente

habían sido incluidos en los protozoarios, pero también considerarse algas

porque, como Euglenhopyta, son organismos límites con propiedades de

ambos reinos, animal y vegetal.

Cianobacteria o algas azulverde son las algas más primitivas que existen;

se parecen mucho a las bacterias y se clasifican junto con ellas como

procariotas. El cuerpo nuclear de las algas azulverdes, como el de las

bacterias, no esta rodeado por una membrana definida. De manera similar,

la actividad fotosintética no esta limitada a estructuras rodeadas de

membranas o cloroplastos, como ocurre en las algas eucariotas y en

plantas superiores. En vez de ello, ocurre en un sistema continuo laminar

que tiene clorofila y diversos carotenoides. Conviene observar que las

bacterias fotosintéticas difieren de las algas azulverdes en que poseen

estructura vesiculares pequeñas, cromatóforos, en los que acontece cierta

actividad fotoquímica, pero no fijación o reducción del bióxido de carbono.

El color azulverdoso de las algas depende del pigmento ficocianina, que es

lo bastante intenso para ocultar o enmascarar a la clorofila. Además del

mencionado, y estas formas tienen color rojizo o violáceo. El producto de la

fotosíntesis que se almacena es el polisacárido glucógeno, que se asemeja

al de los animales. La reproducción se hace por fisión asexual, como en las

bacterias.

Euglenophyta carecen de paredes celulares, son flexible como los

protozoarios, y poseen manchas oculares y vacuolas contráctiles. Son

flagelos unicelulares que se producen por fisión longitudinal. Además de los

géneros pigmentados fotosintéticos, hay géneros pigmentados y no

fotosintéticos, que se alimentan saprofíticamente o sea por absorción de

nutrientes solubles, orgánicos e inorgánicos. Estos se denominan a veces

leucocitos (del griego leukos, blanco + pitón, planta). Se ha comprobado

que Euglena pierde la capacidad de producir clorofila cuando se cultiva en

un medio que contiene penicilina; por lo tanto, no puede distinguirse de una

forma protozoaria.

Chlorophyta o algas verdosas comprenden un grupo grande y heterogéneo

con muchas características semejantes a las de plantas superiores. Es

frecuente encontrar los tipos coloniales, y el producto de la fotosíntesis es

el almidón. La reproducción se hace por fisión asexual, formación de

zoosporas asexuales y también por fusión sexual primitiva.

Chrysophyta incluyen diatomeas, microorganismos por lo regular

unicelulares con caparazones de silicio. Estos organismos están

distribuidos ampliamente en agua dulce y de mar, incluso en regiones

árticas, y sus caparazones se han acumulado en ciertos lugares con

espesor incluso de un kilómetro. Este material se conoce como tierra de

diatomeas; es un agente de filtración y también es un material abrasivo

muy fino, que se emplea a veces en los pastos dentífricas. Los crisofitos

producen y almacenan aceite y se piensa que han sido fuentes importantes

de depósito de petróleo.

Los dos grupos restantes de algas, Phaeophyta (algas pardas) y

Rodophyta (algas rojas), son organismos multicelulares grandes que se

agrupan en acúmulos familiares conocidos como sargazos, algas, y formas

semejantes. Su color depende de los pigmentos pardo, rojo o de otro tipo,

que ocultan la clorofila que tienen.

Son formas marinas, y las algas pardas prefieren el agua fría de las

latitudes elevadas; las rojas viven mejor en aguas tibias subtropicales. La

reproducción sexual esta desarrollada adecuadamente en ellas, pero

también aparece reproducción asexual por esporas.

Tabla No. 1 Grupo Principales de Algas

Dimensiones,

Grupo Estructura, Reproducción Hábitat

Etc.

Procariotas

Cianobacterias Generalmente microsco- Fisión asexual Agua dulce y

(Bacterias picas; multicelulares o u- suelo

azul-verde) nicelulares, contienen ca-

roteno, pigmentos carote-

noides, ficoeritrina; alma-

cenan glucógeno

Eucariotas

Euglenophyta microscópica, unicelular; Fisión longitudinal; Agua dulce

(Euglena) almacenan grasa y para- células sexuales

milo simples

Chlorophyta Microscópicas, unas po- Fisión asexual y Agua dulce,

(algas verdes) cas macroscópicas (o zoosporas; fusión tierra, corte-

sea de unas cuantas pul- sexual primitiva zas de árboles

gadas); uni o multicelula-

res; paredes de celulosa,

Almacenan almidón

Chrysophyta Microscópicas, casi sien- Generalmente Aguas dulces y

(Diatomeas, pre unicelulares; paredes asexual saladas (algu-

etc.) de dos mitades superpues- nas en zonas

tas, frecuentemente síli- árticas), tierra,

ceas; contienen pigmentos plantas supe-

Carotenoides; almacenan riores

aceites

Phaeophyta Multicelulares, voluminosas Sexual; algunas Agua salada

(Algas par- (hasta de varios centenares zoosporas (fría)

das; algas de pies); paredes de celulo- asexuales

Marinas, sa y algina; contienen pig-

etc.) mentos carotenoides; alma-

cenan manitol, laminarina

(un polisacárido), grasa

Rhodophyta Unicelulares o multicelula- Sexual por célu- Agua salada

(Algas rojas; res y macroscópicas (has- las germinativas (Tibia

Algas ta 4 pies); paredes de ce- masculinas y fe-

Marinas) lujosa; contienen el pig- meninas bien di-

mento phycobilina; alma- ferenciadas; a-

cenan almidón sexual por espo-

ras

1.1.4.4. Fotosíntesis por Algas.

La fotosíntesis por algas es idéntica en lo esencial a la de otras plantas. La

Clorofila, caratenoides u otros pigmentos absorben la luz. Cuando es

absorbida por pigmentos que no son clorofila, la energía obtenida de la luz

es transferida a la clorofila que hay dentro de la planta. La clorofila pasa al

estado excitado, y su energía extra luego oxida el agua, con reducción de

NADP

12 H2O + 12 NADP + 12 ADP + 12 Pi

(luz)

6 O2 + 12 NADPH2 + 12 ATP

(clorofila)

El oxigeno es liberado, los electrones pasan siguiendo la cadena de

transporte electrónico fotosintética y reducen la clorofila excitada; el

hidrogeno es transferido a NADP, proporcionando NADPH2. al mismo

tiempo ADP es fosforilado dando ATP. Entre tanto, carbohidratos de cinco

carbones que contiene fosfato, el difosfato de ribulosa, ha reaccionado con

el CO2 para producir unos compuestos de tres carbonos, ácido

fosfoglicérico. Esta se reduce a fosfato de triosa a expensas de la energía

de ATP y el hidrogeno de NADPH2. Se forma monofosfato de triosa, junto

con un mol de fosfato de hexosa como producto de la fijación fotosintética

de CO2. el monofosfato de ribulosa es fosforilado por el ATP del difosfato,

con lo cual se completa el ciclo este ATP puede derivar de la fosforilación

cíclica:

(luz)

6 ADP + 6 Pi 6 ATP

(clorofila)

12 Acido fosfoglicérico

6 CO2 12 NADPH2 12 ATP

12NADP

12 ADP

12 Pi

6 Difosfato de ribulosa 12 fosfato de triosa

6 ADP

6 Pi

6 ATP Fosfato de hexosa

6 Monofosfato de ribulosa

1.1.4.5. Importancia de las Algas.

Las algas abundan en agua dulce y de mar, las pardas y rojas son

conocidas de quienes hayan paseado por la playa. Contienen sustancias

químicas útiles; v. gr.: yodo, bromo y potasio, y también gran cantidad de

proteínas. En algunos países se emplean millones de toneladas

anualmente como fertilizantes.

En aguas naturales abundan algas unicelulares microscópicas. En el

océano puede haber ciento de miles de organismos por pie cúbico en las

capas superficiales en donde penetra la luz solar. Las algas son

organismos fotosintéticos primitivos importantes en el mar, y sin ellas

cesaría la vida animal oceánica. Las algas microscópicas constituyen el

alimento básico de animales acuáticos. Incluso la ballena azul que tiene 30

metros de largo ingiere indirectamente algas; una de sus fuentes

principales de alimento es un crustáceo, que a su vez se alimenta de algas,

especialmente diatomeas.

La distribución de algas en agua depende de la penetración de la luz. En

los océanos del norte de la tierra, no suelen encontrarse algas por abajo de

53 metros de profundidad, en tanto que en el agua transparente de muchos

mares del sur, pueden encontrarse dichos microorganismos a

profundidades incluso de 183 metros. Los pigmentos de las algas

participan de forma importante en su absorción de luz. La ficoeritrina roja

permite que las algas rojas vivan en aguas más profundas en comparación

con otras algas, dado que absorbe luz azul adecuadamente, y la luz azul o

la luz con longitud de onda menor que la luz solar penetra más hondo en el

agua que la luz roja con mayor longitud de onda. Las algas abundan en la

tierra, especialmente en el terreno húmedo. Su número en las capas

superficiales llega a decenas de miles por gramo. El volumen total de las

algas puede ser tres veces el de las bacterias del suelo. La abundancia de

estos microorganismos necesariamente influye en la composición química

del terreno. Como organismos fotosintéticos aumentan la sustancia

orgánica del terreno. Además, por lo menos 40 especies en 14 géneros de

algas azul-verdes pueden combinar o “fijar” el nitrógeno atmosférico.

Cuando esto tiene lugar en el suelo, puede aumentar netamente la

fertilidad. Gran parte de la superficie terrestre esta cubierta de agua; por lo

tanto, la fijación de nitrógeno por las algas en los océanos también

contribuye en una proporción elevada, pero todavía no precisada, de

nitrógeno combinada a la economía mundial.

Las algas por lo regular no son patógenas, aunque algunas especies

producen substancias tóxicas que pueden ponerse en contacto con el

hombre por medio de crustáceos, especialmente durante los meses de

verano.

Las gotitas lípidas almacenadas por las diatomeas son ricas en vitamina A

y D. estas vitaminas son pasadas por los crustáceos a los peces y el

hombre la extrae del hígado de los mismos.

La carragenina es un polisacárido de pared celular complejo derivado de

especies de Chondrus, una rodofita. Forma gel en presencia de potasio y

es utilizado para estabilizar emulsiones y sólidos suspendidos en las

industrias farmacéuticas, de alimentos, debidas, textiles y cueros.

Chondrus habita en las provincias marítimas del Canadá. La cubierta de la

cosecha de Nueva Escocia aumento desde unas 25 toneladas en 1941 a

más de 8500 toneladas en 1958.

Otro grupo de agentes que emulsionan y espesan las soluciones, derivadas

de las algas, son el ácido algínico y sus derivados. El ácido algínico tiene

estructura similar a la de la celulosa. Se presenta en laminillas y paredes

primarias de muchos géneros de Phaeophyta --- laminaria, Macrocytis,

Lessonia, Eklonia--- de Japón, Australia, África del sur y California. Las

láminas de algas cosechadas se lavan, desmenuzan, digieren con

hidróxido sódico y purifican, proporcionando alginato cálcico o ácido

algínico. Los alginatos solubles son coloides hidrófilos empleados en las

industrias alimenticias, de tejidos, cosméticos, caucho, papel y cerámica.

Las algas son indicadores importantes de la contaminación en corrientes y

Depósitos de agua, el agar o “agar-agar” probablemente derivó de un

miembro de la india de Rhodophyta, Eucheuma, pero la mayor parte del

agar se adquiere ahora de Gelidium, aunque muchos otros géneros pueden

servir como fuente de este polisacárido complejo. Las semillas lavadas y

secadas son extraídas, aclaradas, filtradas, purificadas y desecadas en

forma de hojuelas o en polvo. Se utilizan no solo como agente solidificante

en medio de cultivos sólidos, sino también en la industria de la misma

manera que la carragenina y los alginatos.

El Kieselguhr, o tierra de diatomeas, está formado por las paredes

celulares silíceas de diatomeas sedimentadas durante las épocas terciaria

y cuaternaria. Hay depósitos en California, Inglaterra y otras partes del

mundo, que se excavan con equipo adecuado y se purifican para empleo

como filtro de aire en muchas industrias, y como rellenos de pinturas,

papeles de productos aislantes. Cada año son utilizadas miles de toneladas

de tierra de infusorios.

Las algas son indicadores importantes de la contaminación en corrientes y

depósitos de agua. El numero de algas y la especie presente depende de

la índole del agua: su temperatura, contenido de oxígeno, pH y cantidad de

materia orgánica e inorgánica disuelta. Un agua muy contaminada, con

gran cantidad de materia orgánica en descomposición y poco oxígeno

disuelto, sólo permitirá la vida de una flora bacteriana anaerobia,

frecuentemente predominado las bacterias que producen azufre. Cuando

se purifica, junto con las bacterias de azufre crecen Euglena y algunas

azulverdes (Oscilatoria). Después de mayor purificación persiste muy poca

materia orgánica, porque la mayor parte ha sido oxidada a CO2, nitratos, y

sulfatos, que estimulan algunas algas al punto que constituyen una

dificultad porque se desarrollan formando grandes capas, especialmente

durante las estaciones calientes. Es frecuente encontrarlas donde las

aguas negras tratadas se descargan en una corriente que va a parar a un

pequeño lago. El crecimiento de las aguas arruina al lago para la pesca,

para bañarse, etc.

Algunas algas son comestibles. El alga verde Chlorella ha sido cultivada

experimentalmente con este fin varios años. No ha sido aceptada

ampliamente como alimento para el ser humano, pero se ha empleado en

animales. Una aplicación reciente de interés de sus actividades biológicas

incluye los experimentos elaborados para proporcionar oxígeno y en esta

forma ayudar o facilitar la vida humana en vehículos cerrados; y espaciales.

El bióxido de carbono de la respiración humana es dispersado en burbujas

con fuerza por tanques iluminados que incluyen Chlorella en solución salina

mineral. La fotosíntesis del alga produce la reacción corriente en que se

emplea bióxido de carbono y se libera oxigeno.

En partes de Escocia e Irlanda, algas marinas como Laminaria y Fucus se

utilizan durante gran parte del año como alimentos para las ovejas. Las

especies Sargassum se utilizan como forraje en China.

1.1.5. Nutrientes.

Se puede comparar la concentración de los distintos elementos en el

medio y la composición relativa del cuerpo de los organismos que viven en

aquel medio, y luego calcular un cuociente entre cada par de valores, que

se puede considerar como un factor de concentración relativo. La

concentración del H, del O, del C, en el cuerpo de los organismos, no es

mayor que sus respectivas concentraciones en el exterior; en comparación

con los elementos mencionados, la acumulación relativa de C, N y P en los

seres vivos es muy grande. Así pues, estos elementos, limitan el desarrollo

de la vida y, a su vez, los organismos regulan efectivamente la

concentración de aquellos elementos que, por tanto, figuran entre los de

proporcionalidad variable.

En el caso del carbono aunque el consumo sea grande en forma de cierto

procedente de la reserva atmosférica; por otra parte el factor de

concentración relativo del abono es el menos elevado. El carbono, por

tanto no suele ser limitante.

El nitrógeno ocupa una posición intermedia. Existe, ciertamente, una

enorme reserva de nitrógeno molecular, en forma de gas atmosférico

disuelto en el agua; pero esta reserva es sólo asequible a un reducido

numero de seres, bacterias y cianofíceas y, de ordinario, queda fuera de

ciclo.

El fósforo es el que ocupa una posición muy critica, porque no hay una

reserva de fósforo comparable a la atmosférica en los caso del carbono o

del nitrógeno. Numerosos indicios atestiguan que la concentración y el

suministro de fósforo regulan, a fin de cuentas, la producción básica en las

aguas naturales.

Las relaciones entre los tres elementos indicados, C: N: P, en número de

átomos, en el cuerpo de los organismos es alrededor de 100: 14: 1, esta

mismas proporciones se han de conservar en las distintas etapas de un

ciclo cerrado. En un agua profunda separada de la atmósfera por cierto

tiempo y en la que se haya descompuesto una cantidad de materia

orgánica, se encontraran desviaciones respecto al contenido inicial de

dichos elementos que se explicaran por las proporciones indicadas. Así por

ejemplo, en agua profunda del atlántico, los enriquecimientos relativos son

de 105: 15: 1, si se toma en cuenta del carbono de CO2, los compuestos

inorgánicos (no el gas de nitrógeno y los compuestos inorgánicos de

fósforo). La <<mineralización>> de dichos elementos en las proporciones

atómicas indicadas, representan una oxidación, con un consumo de 276 at

de oxígeno. La relación entre el decremento de oxígeno y el incremento de

fósforo: ∆O/∆P = -276 es aceptable en la interpretación de cambios

observados en muchas situaciones.

Las desviaciones de estas proporciones nos ponen sobre la pista de

fenómenos interesantes, que pueden ser limitantes en los ciclos biológicos

de producción. Ya vimos que el contacto agua/atmósfera representa una

posibilidad de perdida excesiva de oxígeno para el agua, cuando hay una

productividad muy intensa en aguas superficiales, con el agotamiento de

oxígeno en las capas profundas de los lagos eutróficos al final de la

temporada, lo cual destruye la armonía de ciclo. Igualmente, la

desnitrificación por parte de microorganismos hace pasar nitrógeno de los

compuestos inorgánicos a la forma gaseosa; esto ocurre en aguas

profundas marinas como en la fosa de Cariaco (Venezuela), y también en

algunos litorales cuando sobra aparentemente nitrógeno por haber

precipitado parte de fosfato. Para que el equilibrio vuelva a restablecerse

tiene que intervenir nitrificación orgánica y, en dichas condiciones, los

organismos que la pueden llevar a cabo tienen ventaja.

El nitrógeno se encuentra en el agua en tres formas: gas disuelto,

combinaciones inorgánicas y combinaciones orgánicas. La fijación de

nitrógeno molecular por bacterias y cianofíceas tiene importancia en el

agua y en el suelo. Ambos grupos de organismos se encuentran bien

representados en las aguas continentales y en las marines. Las bacterias

fijadoras pueden tener mayor importancia en las aguas dulce que en las

marines, y en medios con poco oxígeno. Es posible que existan diferencias

comparables a las que se manifiestan en los suelos, en los cuales en

ambientes mas calidos y pobres en calcio predomina BeijerincKia; en

regiones templadas, Azotobacter y las cianofíceas pueden alcanzar una

importancia relativamente mayor en aguas y suelos fríos.

La fijación de nitrógeno en el lago Windermere (Inglaterra) se estima en 10

Tm N por año, según Fogg y Horne. Se ha dicho que la fijación de

nitrógeno por las cianofíceas contribuye a la fertilidad de los arrozales y, en

países asiáticos, se ha estimulado introduciendo en los arrozales cultivos

de cianofíceas (Anabaena, Nostoc, Cylindrospermum, Tolypoyhrix,

Calothix), los heterocistes han sido interpretados como órganos de

asimilación de nitrógeno; en ellos existen nitrogenasas y se ha comprobado

la transferencia del nitrógeno asimilado de los beterocistes a células

vecinas; estas, a su vez, ceden compuestos de carbono a los heterocistes,

a través de los plasmodesmos. Pero no está fuera de duda que las formas

sin heterocistes, como Oscillatoria, no pueden fijar nitrógeno, las

cianofíceas planctónicas fijadoras de nitrógeno son muy frecuentes en las

aguas dulces; pero rarísima en el mar. Quizás por esto el nitrógeno es con

mucha frecuencia factor limitante en el medio marino. Una de las formas de

ensayarlo es por medio de experiencias de enriquecimiento, en las que

muestras de agua con su plancton original se enriquecen con distintos

elementos y se observa el crecimiento a que dan lugar. En estas

condiciones, en muestras de agua del centro de grandes océanos, así

como también muestras de verano del Mediterráneo, aparece luna

proliferación de las algas planctónicas después de añadir nitratos,

indicando que el fósforo no era realmente el elemento que mantenía la

producción a un nivel muy bajo, sino el nitrógeno.

El nitrógeno inorgánico no gaseoso se halla en forma de nitratos, nitritos y

amonio. La relación de actividades entre iones amonio y amoníaco no

disociado es de aNH4+/aNH4OH = 2,98 X 10(9-pH) lo cual significa que

solamente a pH de 9 y más puede haber concentraciones importantes de

amoniaco. En condiciones normales la fracción de amonio no ionizado es

muy pequeña.

Las proporciones entre las tres formas de nitrógeno combinado inorgánico

se comprenden haciendo un experimento muy simple, que consiste en

dejar descomponer plancton en agua y, analizar en tiempos sucesivos los

iones amonio, nitrato y nitrito. La formación de amonio se debe a fermentos

proteolíticos bacterianos o animales, principalmente estos fermentos no se

liberan o no actúan tan fácilmente en el medio como las fosfatasas, de

manera que el retorno a la forma inorgánica del nitrógeno, es decir, su

mineralización, es mas lenta que la del fósforo. Esta característica se

refleja en sus respectivos perfiles verticales de distribución en las aguas

naturales. En el caso general de una progresiva descomposición de arriba

abajo, el fosfato se separa antes que los compuestos inorgánicos de

nitrógeno. Tal relación se manifiesta por quedar el máximo de fosfato a un

nivel del agua menos profundo que el del nitrógeno inorgánico.

El amoniaco es oxidado por acción química, fotoquímica y bacteriana: en

las aguas este proceso se acelera por la actividad de las bacterias.

Interviene también, en el equilibrio, la asimilación por parte de los

vegetales. Las algas asimilan directamente el nitrato y el amonio, este

ultimo a velocidad mayor; por lo menos las diatomeas utilizan prestamente

el amonio disponible. Los aminoácidos son, desanimados, de modo que su

nitrógeno es asimilado también como amonio. Aunque el nitrito se

considera más o menos tóxico, puede ser asimilado por el fitoplancton en

presencia de luz y a las bajas concentraciones a que se suele encontrar el

nitrito.

Por lo dicho las proporciones entre las distintas formas de nitrógeno, en un

volumen de agua, representan el equilibrio de multitud de procesos si todo

ocurre normalmente, es natural encontrar la mayor fracción en forma de

nitrato, que es precisamente la forma más oxidada. Las proporciones entre

las distintas formas son expresión de la marcha de los procesos biológicos.

Se comprende que la concentración relativa de amonio y de nitrito sea

mayor donde la descomposición de materia orgánica es más activa, es

decir, cerca del fondo o, en las aguas profundas, por debajo de la superficie

de compensación, donde se mineraliza activamente el plancton y donde se

halla aproximadamente, en el mar, el nivel mínimo de oxígeno.

Lo dicho respecto a la distribución en el espacio puede aplicarse en los

cambios en el tiempo: la concentración de amonio y nitrito es relativamente

mayor en aquellos momentos en que los procesos de descomposición

revisten particular intensidad. Sobre esta distribución a grandes rasgos,

fenómenos cuantitativamente menos importante pueden dar origen a

desviaciones cuyo estudio presenta notable interés en las aguas marinas

moderadamente o bien estratificadas, a parte del máximo principal o

profundo de nitritos, se suele encontrar un máximo secundario de NO2 – no

tan lejos de la superficie, justamente donde la luz decae rápidamente y

donde existe una reserva relativamente importante de nitritos. Este máximo

no corresponde se debe a la reducción de nitrato por fitoplancton en trance

de sedimentación, reducción que no va más allá, pues sostener el siguiente

paso de nitrito o amonio requiere una energía que solo puede ser

proporcionada por la fotosíntesis, no posible ya a este nivel.

La cantidad total de inorgánicos de nitrógeno en las aguas naturales varia

entre limites amplios: en las aguas marinas suele ser entre 10 mg y 150 mg

N m-3 (0.6 a 10 ug-at N 1-1 ; un ug-at 1-1 es igual a 14 (peso atómico del N) ug de

N por litro, o 14 mg m3 ); en las aguas dulces ordinariamente es aún mayor,

frecuentemente alrededor de 300 mg N m-3 y en las aguas residuales

todavía es más alto. La concentración que corresponde a la mitad de la

velocidad máxima de asimilación por los vegetales del plancton se estima

en 0.5 a un ug-at N 1-1 para poblaciones de las áreas pobres del centro del

atlántico y entre 2 y5 ug-at N 1-1 en poblaciones de aguas costeras o de

áreas más ricas. El compuesto más abundante es el nitrato y el menos

abundante el nitrito. El agua del Missisipí contiene, por metro cúbico, las

siguientes cantidades de nitrógeno: 200 mg en forma de nitrato, 5 mg en

forma de nitrito, 20 mg en forma amónica y 350 mg en forma orgánica. En

el mar son comunes relaciones parecidas.

Respecto al fósforo vale buena parte de lo dicho con respecto al nitrógeno.

Pero su estudio es más sencillo: el ciclo ha de cerrarse con el agua y los

sedimentos y no hay intercambio con la atmósfera. Existe un isótopo

radioactivo del fósforo, el P, que se ha utilizado en la investigación del ciclo

del fósforo en lagos en los organismos, el fósforo está en forma de ésteres

fosfóricos y la separación del fosfato después de la muerte es muy rápida y

uniforme. La determinación analítica de la concentración de fosfato reactivo

en las aguas es mucho más fácil que la determinación de los compuestos

de nitrógeno, aunque debe atenderse a la posible interferencia del

arsénico. Dicha determinación se basa en la producción de un color azul

(azul de molibdeno) en molibdato acidificado, en presencia de reductor. La

intensidad del color producido depende de la concentración de iones

fosfato presentes. El análisis se puede hacer con la muestra de agua sin

tratar, o simplemente filtrada (fosfato reactivo), o bien después de

mineranzar con un ácido el fosfato orgánico que pudiera estar presente

(fósforo total).

El fósforo ha de proceder de la disgregación y lavado de las rocas que lo

contienen. A su vez, parte del fósforo que interviene en el ciclo orgánico

queda inmovilizado en los sedimentos, en parte como fosfato cálcico o

como fosfato férrico. Si el pH aumenta por la fotosíntesis, una fracción

considerable de fosfato precipita con el CaCa-. El fosfato férrico (FePo4 ·

2H2O, strengita) se produce al oxidarse el ion ferroso que aparece en

solución en condiciones de baja tensión de oxígeno. Si el sedimento

vuelve a estar en condiciones de reducción, puede liberarse de nuevos

fósforo; en los fangos con sulfhídrico, la formación de sulfuros de hierro

acompaña a una solubilización de parte del fosfato. Pero, generalmente,

con todos estos cambios una fracción del fósforo queda inmovilizado de

manera irreversible en el sedimento.

También se pierde nitrógeno en el sedimento, en forma húmica, y de

manera más importante en las aguas ácidas que es donde hace más falta

por la escasez de fijadores de nitrógeno en ellas. No existe una

correspondencia entre la inmovilización del nitrógeno y la del fósforo y la de

este último elemento puede ser más importante para el ciclo general.

El lago eutrófico funciona como una trampa de fósforo en su sedimento, lo

cuál, desde el punto de vista humano no es malo, porque reduce la

fertilidad de los emisarios, con disminución del riesgo de poluciones, que

en otro caso podrían ser mas frecuente, por ejemplo, en embalses.

Precisamente, la eliminación del fósforo mineralizado en un agua

depurada, que se practica muy efectivamente con cloruro férrico.

En el mar, bajo los centros de gran producción, con gran aporte de fósforo

y baja de tensión de oxígeno, así como a Ph también relativamente bajo

(algo menos de 8) se depositan nódulos de fosforita, de fórmula general

Ca10 (PO4, CO3)6 F2-3.

Todos estos fenómenos son casos particulares de una regularidad más

general: los sistemas de alta productividad son menos eficiente y una de

las manifestaciones de su ineficiencia relativa es la inmovilización temporal

o permanente de una parte de los recursos fuera de los organismos, en

este caso en los sedimentos, lo cual puede ser causa de un retardo en el

ciclo. La adición de superfosfato se ha usado para aumentar la fertilidad de

bahías y lagos, como primera etapa de experiencias de acuicultura.

Aunque los resultados son positivos, no son duraderos, porque el ciclo se

regula en función del complejo de condiciones y parte del fósforo añadido

se pierde irreversiblemente en los sedimentos. El aumento de fertilidad se

tendría que conseguir por procedimientos indirectos, acelerando el ciclo.

El enlace entre el ácido fosfórico y las moléculas orgánicas se cuenta entre

los más fácilmente hidrolizables. Las fosfatasas son ubicuas y actúan en

variadas condiciones, dentro y fuero de los organismos, en el tubo digestivo

de los animales, en sus excrementos y hasta en el medio, de modo que la

liberación de fosfato, a partir de la materia orgánica muerta, es rapidísima.

La materia orgánica soluble que ceden las algas contiene fosfato en

cantidad notable, que se separa pronto en esta forma. El estudio de la

excreción de elementos por parte de los animales tiene gran importancia

para atender los ciclos de producción. Se comprende que la distribución

vertical de fosfato inorgánico en el agua tenga un máximo situado por

encima de aquel nivel en que se libera la mayor cantidad de nitrógeno. El

fosfato inorgánico está en su mayor parte en forma de ortofosfato (H2PO4- ,

y principalmente HPO4=). La naturaleza de la fracción orgánica que

contiene fosfato es poco conocida; existen numerosos productos de

descomposición, como atestigua la cromatografía. Pero por la fácil

hidrólisis de los ésteres fosfóricos, la fracción que representa la parte

orgánica es sólo del orden del 2 al 20 % del total, bien diferentemente del

caso del nitrógeno, en que la fracción orgánica suele superar a la

inorgánica.

En las aguas dulces muy puras de lagos ácidos y turberas, y en mares muy

pobres, como el Mediterráneo, se hallan concentraciones de 0,5 a 5 mg P

m-3 (se prefiere la expresión en ug-at1-1 , que seria de 0,017 a 0,17 en el caso

indicado). En las costas atlánticas es de 0,2 a 0,7 ug-at1-1 ; en lagos y mares

fértiles, hasta 1,6 ug-at 1-1 . Las cifras indicadas se refieren a la zona

iluminada, productiva. Si se incluyen en el cálculo del promedio las aguas

profundas, Redfield estima el contenido medio de los océanos mundiales

en 2,3-2,5 ug-at1-1. Estas cifras están lejos de ser las mismas en todas

partes y en Mediterráneo son unas diez veces inferiores.

Las zonas de gran fertilidad marina son aquellas en que agua rica en

fosfato asciende a capas iluminadas. Un afloramiento moderado puede

llevar a la superficie unos 200mg de P por m2 y un día (costa de Venezuela;

mayor en estas áreas), capaz de sostener una producción primaria de 20 g

de carbono por m2 y día, que sólo en parte se realiza. En las aguas pobres,

la concentración de fosfato en el agua puede bajar a niveles no detectables

y entonces la mayor parte del ciclo del fosfato se desarrolla en el cuerpo de

los organismos. Una de las diferencias más importantes entre los mares y

los lagos en que, en aquellos, las áreas de mineralización pueden no

coincidir con las áreas de asimilación más intensa, en virtud de los

movimientos horizontales del agua, mientras que en los lagos todo el ciclo

se cumple aproximadamente en la misma vertical. En los lagos, las

grandes fluctuaciones del contenido en fosfato son frecuentemente la

consecuencia de la solubilización de fosfato contenido en el sedimento del

fondo; la liberación del fósforo contenido en los 0,5 cm superficiales de

sedimento, en el curso de una semana (Linsley Pond), puede tener afectos

muy marcados sobre el desarrollo del fitoplancton. Situaciones

potencialmente análogas se pueden encontrar en áreas marinas, cuando la

solubilización del fósforo contenido en los sedimentos es capaz de

aumentar grandemente la concentración de fosfato disuelto en el agua.

El uso de fósforo radiactivo permite una estima cuantitativa de la velocidad

del ciclo de este elemento. En pequeños lagos se han medido tiempos de

renovación o de ciclo total de 6 a 17 días en el agua y unas diez veces más

en el sedimento. El fósforo es un factor limitante principal, del cual las más

veces dependen las poblaciones de organismos acuáticos. A través del

fósforo es posible regularlas. En general la productividad de un agua

guarda relación con su concentración en fosfato, o en su enriquecimiento

periódico en fosfato. Un gráfico que representa la correlación positiva

existente entre la concentración de fosfato del agua y la abundancia de

crías de peces más tarde, en las costas inglesas, se ha difundido en casi

todos los libros de ecología. Sin embargo no se puede decir que la

correlación sea siempre positiva, porque a veces hay poco fosfato por

haber sido consumido y haber dado origen a plancton abundante, y otras

veces hay poco fosfato por haber sido consumido y haber dado origen

plancton abundante, y otras veces hay poco plancton como consecuencia

de la limitación de fosfato. Las correlaciones, por tanto, no son siempre se

pueden establecer entre concentraciones, sino que es mucho más

significativo buscarlas entre procesos: por ejemplo, entre absorción de

fosfato y crecimiento del plancton.

Las concentraciones de nutrientes más importantes y limitantes, el fósforo y

el nitrógeno influye primordialmente sobre los productores primarios. La

concentración de dichos nutrientes determinan la distribución a la

abundancia de unas o de otras especies, porque ciertas especies sólo

prosperan bajo concentraciones muy altas, como sino pudiera regular la

concentración de dichos elementos en el interior de la célula: estos

organismos absorben rápidamente el fósforo del medio, pero lo ceden

también con mucha facilidad si se pasan a un medio muy pobre. Son las

Asterionella, por ejemplo, así como las diatomeas incapaces de

mantenerse en un agua con poco fosfato. Muchas otras especies, por el

contrario viven, aunque creciendo lentamente, en aguas con bajas

concentraciones de nutrientes, porque su fisiología es capaz de asegurar la

obtención de una cantidad suficiente de dichos elementos dentro de las

células. Las Ceratium y numerosas diatomeas, como son las Rhizosolenia,

se encuentran en este último caso.

1.1.6. Biología de los Embalses

Existe una progresiva preocupación mundial por la calidad de las aguas

continentales. Además del problema de la contaminación creciente, esta el de

la fertilización paulatina de las aguas naturales, que van aumentando su

producción en materia orgánica, con la consiguiente pérdida de calidad. Por si

fuera poco, las necesidades de agua crecen constantemente, teniendo que

destinar nuevas reservas a usos domésticos. No solo preocupa la fertilización

de las de las masas de agua que se están utilizando actualmente, sino también

la extensión del fenómeno de aguas que pueden emplearse el día de mañana,

porque, cuando llegue el momento de servirse de ellas, su calidad estará ya

muy disminuida. Entre las aplicaciones prácticas más importantes de la

limnología, ciencia que estudia la ecología de las aguas dulces, está el detectar

y predecir la fertilización y proponer remedios. En nuestros días, el uso del

agua de ríos y embalses para la refrigeración de unidades productoras de

energía, térmicas y nucleares, a añadido otro argumento a la preocupación por

la conservación, regulación o gobierno de las de las características del

potencial hidráulico de un país. A los embalses se aplica a veces la

designación de lagos artificiales; aunque no son verdaderos lagos, representan

superficies de agua estancada, reciben afluentes y su caudal se destina a usos

diversos, entre otros, el suministro de agua a ciudades.

Hay que precisar más en la comparación entre pantano y lago natural. En

aquel, el flujo de agua suele ser más intenso, variable e irregular que en éste.

Con pocas reservas podríamos definir el embalse como el híbrido de río y lago;

como en los ríos, predomina hacia su cola el transporte horizontal; y, como en

los lagos, se manifiesta, junto a la presa, la estratificación gobernada por la

dirección de la gravedad y de la luz.

De las múltiples alteraciones que el hombre introduce en la naturaleza, la

construcción de embalses es de las menos criticables, porque retarda el flujo

del agua y estabiliza así, relativamente, las comunidades de organismos

asociados al agua o dependientes de ella. La naturaleza, sin embargo, no

tiende a formar embalses, sino a complicar el curso de los ríos dando

meandros que luego se cortan y producen un cortejo de lagunas, donde

prosigue la evolución de la vida acuática. La construcción del embalse por obra

del hombre puede considerarse como un substituto de este proceso natural, en

el sentido de que ofrece oportunidades para la colonización y desarrollo de

comunidades de organismos, efímeras a una escala geológica del tiempo.

Las razones que inducen a la construcción de embalses son múltiples. Solo

cuando su función es principal regularizar los flujos y evitar inundaciones puede

decirse que van a favor del proceso natural de la sucesión y organización

creciente de los ecosistemas. Cuando se destinan ala producción de energía,

riego, consumo doméstico y usos industriales, la forma como el hombre

gobierna su flujo no suele coincidir con la más conveniente para la llamada

conservación de la naturaleza; lo cual se pone de manifiesto en el impacto que

suele sufrir la vida acuática y las de las riberas con las fluctuaciones del nivel

del embalse. Estas provocan que la capacidad de producción se desvíe de la

superficie del suelo o del sedimento a las aguas libres; en efecto por las

variaciones de nivel, zonas extensas de la orilla y, sobre todo, en la cola del

embalse quedan inundadas o secas, alternativamente y, además se incrementa

la productividad del plancton o vida suspendidas en las aguas, en detrimento

de los organismos del bentos, o fondos y litorales. El agua adquiere entonces

un matiz verdoso. Esta y otras consecuencias del régimen que están sometidos

los embalses pueden carecer de importancia práctica cuando las aguas se

destinan al riego o a la producción de energía eléctrica objetivos contra los

cuales atentan gravemente la erosión de las laderas y el relleno de sedimentos

sólidos, que reducen la capacidad del embalse.

Uno de los enfoques tradicionales de la ciencia limnológica es la limnología

regional, que pretende una tipificación de los lagos compatibles con su

distribución geográfica. Esta metodología se desarrolló a principios de siglo en

Escandinavia y norte de Alemania, por Naumann y Thienemann. De forma

esquemática, conduce a distinguir dos tipos opuestos de lagos que, en una

versión más modernizada, lleguen a considerarse como los extremos de un eje

de variación continua, que corresponden, respectivamente a los lagos

oligotrópicos y los eutroficos.

Los lagos oligotróficos son profundos, excavados en roca poco soluble, de

aguas transparentes y pobres en elementos químicos (principalmente el fósforo

y el nitrógeno); el plancton escasea y el agua permanece bien oxigenada en

profundidad durante todo el verano. Los lagos eutróficos típicos, a que se

referían los primeros limnólogos, eran lagos de llanuras cubiertas de

sedimentos glaciales, relativamente ricos en materias solubles y en los

nutrientes necesarios a veces como consecuencia de la explotación agrícola de

la cuenca; sus aguas aparecían poco transparentes, verdosas y ricas en

plancton y agotaban su oxigeno en profundidad hacia finales de verano, si no

antes.

El interés por la clasificación de los lagos según el eje oligotrofia-eutrofia

aumentó al comprobar que el relleno parcial por sedimentos y la aportación de

elementos nutritivos (fósforo, sobre todo) o de materia orgánica, a

consecuencia de la acción humana, podía determinar la evolución desde una

situación oligotrófica, o escasamente eutrófica, a otra eutrófica, o plenamente

eutrófica. Semejante alteración no podía pasar inadvertida, pues se extendía

como una plaga; afectaba a todos los lagos de los países desarrollados, dando

origen a la voz eutrofización significa pues, dificultad creciente para obtener

agua de buena calidad, toda vez que las agua profundas de los lagos

oligotróficos, ricas en oxigeno, se van degradando; al eutrofizarse, el agua es

de calidad baja, irregular pobre en oxigeno, rica en materia orgánica, llega a

despedir malos olores y ataca al hierro y al cemento.

Figura No.1.

El proceso de eutrofización varía en razón de la zona climática en que se

encuentre la presa. En los lagos y embalses de regiones templadas, la

eutrofización general y la cultural en particular se explican fácilmente. En los

lagos tropicales, cuyas aguas pueden estar permanentemente estratificadas

según gradientes de densidad, ocurren fenómenos de otro tipo, de los que

ahora no podemos ocuparnos. Por el contrario en la zona templada, la

temperatura de las masas de aguas continentales se uniforma verticalmente

durante la estación fría, o cuando la temperatura superficial desciende tanto

que el agua se hiela; existen entonces dos periodos, a saber, antes y después

de la formación del hielo, en que la temperatura es uniforme de arriba abajo. En

esos momentos puede producirse la mezcla vertical ya que el efecto del viento

encuentra muy poca resistencia al no oponérsele una estratificación vertical por

densidades. En dichas ocasiones no sólo desaparece la variación en la

temperatura (el gradiente térmico), si no que se consigue, además, uniformidad

en todas las propiedades, incluidas las concentraciones de oxigeno y de

compuestos de nitrógeno y fósforo. Los compuestos inorgánicos de carbono

(carbónico y bicarbonatos) son sobradamente suficiente para las necesidades

de los organismos en todo tiempo, por cuya razón no merece la pena ocuparse

de ellos ya que no regulan la cantidad de vida producida.

El ciclo de la producción biológica se ajusta estrechamente de eso cambios

ambientales. Así, la mezcla de la estación fría dispersa a muchos organismos

del plancton vegetal hacia abajo y al fondo, lejos de la luz, dispersión que

implica perdidas y consiguiente freno en el desarrollo de sus poblaciones. En

verano, el agua se calienta en la superficie y el lago o embalse se estratifica,

es decir, una gradiente térmico disponiéndose las capas mas calidas, y mas

ligeras por tanto, sobre las mas frías y más densas del fondo. Como

consecuencia de la agitación del agua superficial por la acción del viento, el

gradiente térmico vertical del verano no es progresivo, sino que las capas

superficiales están muy mezcladas y tienen una temperatura uniforme. La

temperatura desciende de una forma relativamente brusca (un grado por metro,

más) a nivel de la termoclina, que separa la zona superficial calentada por el

sol de la zona profunda fría. La termoclina suele formarse entre los 5 y 20

metros de profundidad, según los casos; los estratos situados por encima de

ella constituyen el epilimnión y suele coincidir con la masa de agua que recibe

iluminación suficiente para que en ello sea posible la fotosíntesis por los

organismos del plancton. Lo cierto es que en verano se desarrolla el

fitoplancton y se acumula rápidamente en el epilimnión. La cantidad de

plancton vegetal o fitoplancton, que se produce es proporcional a la cantidad

de nutrientes disponibles, más los que llegan con los afluentes, procedentes del

lavado de los suelos de la cuenca y, por último, con las aguas residuales. Si se

produce mucha materia vegetal en el lago o en el embalse, el agua se

sobresatura de oxígeno que resulta de la fotosíntesis escapa, por difusión, a la

atmósfera, a favor del gradiente natural en su concentración que va de más a

menos.

Parte del fitoplancton sedimenta y parte es devorado por el zooplancton. Los

animales del plancton, en el mar y en aguas dulces, mas en aquel que en

éstas, tienen las costumbres de comer en las capas superficiales y de excretar

en las profundas, por lo que contribuyen al transporte vertical hacia debajo de

la materia orgánica formada en las capas altas. Esta materia orgánica, pues, se

oxidara y descompondrá por debajo de la termoclina, en el hipolimnion. Así en

el lago estratificado, el epilimnion es la zona de producción de materia orgánica

y el hipolimnion de descomposición y retorno de los elementos al medio, en

forma inorgánica. Cuanto más productivo, más eufórico, sea un lago, más

oxígeno necesitara para oxidar la materia orgánica sintetizada; por

consiguiente, el oxígeno del hipolimnion irá consumiéndose hasta su total

agotamiento.

El proceso de eutrofización comporta otras cosas que es necesario tener en

cuenta. Si escribimos la consabida ecuación.

Anhídrido carbónico + agua + energía de la luz = materia orgánica + oxígeno,

Y la leemos de izquierda a derecha, observamos que la misma cantidad de

oxigeno producida en la fotosíntesis es la necesaria para la oxidación total de la

materia formada, incluyendo el que se gasta en el metabolismo de bacterias y

de otros organismos. Por lo tanto, si el lago es de gran eficacia biológica, y el

agua superficial se sobresatura de oxigeno, huyendo parte de éste a zonas

menos encontradas de la atmósfera (por difusión), advertiremos más tarde que

se necesitaba ese oxígeno para oxidar la materia orgánica producida y, al no

disponer entonces de esa parte, quedara materia orgánica sin descomponer,

acumulándose en el agua o incorporándose al sedimento.

Pero en realidad los lagos y embalses eutróficos lo siguen siendo porque no

pueden compensar totalmente la eutrofización ya que continuamente están

recibiendo nutrientes de la erosión del suelo, los desagües, etcétera, y siguen

trabajando a un ritmo intenso. No es raro especialmente en el caso de los

embalses, que reciban directamente materia orgánica a través de un afluente

que, por ser de una densidad superior, circula por el fondo. Ello contribuye a

agotar la reserva de oxigeno del hipolimnion, con lo cual se reducen las

posibilidades de oxidar la materia orgánica producida en el propio embalse; el

caso contrario, que un afluente potencie la concentración de oxígeno del

hipolimnion, es muy raro. Lo que si es corriente es que la evaluación preferente

de agua del hipolimnion de un embalse disminuya la gravedad de la

eutrofización en el propio embalse; sin embargo ese flujo que sale de la presa,

por tener un grado de eutrofización muy elevado, creara problemas en el río al

que va a parar. El mecanismo normal en lago aislado determinaría que éste

pasara de eutrófico a oligotrófico, salvo por el efecto de reducción del volumen

del hipolimnion debido a la acumulación de sedimentos que no dependen del

lago. Por causa sobre todo, de la acción humana, el lago o embalse aparece

relacionado con un área más amplia, que influye en el proceso de eutrofización

manteniéndolo o acelerándolo. Lo cual es certísimo para la presa que nace

bajo el impacto de la civilización, cuya eutrofización es muy rápida.

Ante el dato empírico del transito de oligotrofia a eutrofia en las aguas dulces

se creyó que tal sucesión era lo natural e inevitable, no habría porqué

preocuparse entonces por la eutrofización cultural, por la adicción exagerada

de nutrientes, que no hacen otra cosa que acelerar la sucesión natural. Pero

este proceso no es natural ni inevitable, como prueban las medidas de

corrección y mejora del lago Washington, promovidas por Edmondson. De ahí,

pues, la constante llamada de atención por parte de los limnólogos contra el

vertido de los nutrientes, muy especialmente del fósforo, al que se considera

como el factor más importante de la eutrofización con lagos y embalses.

No existe en el Ecuador embalses equivalentes a lagos oligotróficos, pero los

hay con distinto grado eutrofización. Por razones de orden practico, podemos

agruparlos en menos y en más eutróficos, tomando como limite o referencia

para tal división los valores siguientes, considerados promedios: 15 mg de

fósforo por m3, en lo que respecta a la concentración de fosfato; 140 mg de

nitrógeno por m3, de concentración de nitrato; 5000 células por ml, o 5 mg de

clorofila por m3, en lo que respecta a la concentración de fitoplancton; 3 mg por

m3, de agua y hora, respecto a la producción primaria o asimilación de carbono

por el fitoplancton. Si los valores observados rebasan repetidamente a los

indicados, se trata de un embalse muy eutrófico, que planteará problemas para

ciertos usos de su caudal. La profundidad a la que desaparecerá la visión de un

disco blanco sumergido en el agua (disco de secchi) proporciona una idea

inmediata y aproximada del grado de eutrofia, sabiendo que si desaparece a

una profundidad inferior a los tres metros la intensidad de la eutrofia es muy

elevada.

1.1.7. TRIHALOMETANOS

El agua Potable como fuentes de enfermedades ha sido por miles de años y

sigue siendo un tópico de interés. En el siglo XIX la principal preocupación se

centró en las enfermedades contagiosas y su relación con los suministros de

agua. Desde comienzos del siglo XX, la practica de la desinfección de las

aguas potables utilizando cloro como agente desinfectante, ha virtualmente

eliminado enfermedades tales como cólera y fiebre tifoidea, en la mayoría de

los países.

Al desaparecer las enfermedades la atención se ha ido centrando en las enfermedades crónicas. Por ejemplo, se están llevando a cabo estudios para

confirmar las postulaciones que existen sobre la relación entre el cáncer y los

niveles detectados de compuestos orgánicos presentes en el agua potable.

El desarrollo de métodos analíticos más sensibles ha permitido identificar y

cuantificar una gran cantidad de compuestos orgánicos en aguas potables. Al

presente se han identificado mas de 700 compuestos orgánicos específicos en

varios abastecimientos de agua potables en Estados Unidos (EPA, 1978).

Los contaminantes químicos orgánicos en aguas potables pueden dividirse

en dos grupos: de origen natural y de origen sintético. Las sustancias naturales

representan la mayor proporción y consisten de materiales húmicos y fúlvicos,

así como otros compuestos normales de descomposición orgánica o

transformaciones bióticas no dañinos por si mismos.

Las sustancias químicas sintéticas encontradas en el agua se pueden

subdividir en dos grupos. El primero consiste en aquellas sustancias que son

producidas por el tratamiento de potabilización y el segundo grupo en aquellas

sustancias que son el resultado de descargas puntuales y no puntuales en

aguas superficiales y profundas, procedentes de diversas fuentes.

Formación de Trihalometanos y niveles detectados

En el transcurso del desarrollo de un método analítico para la determinación de

compuestos orgánicos volátiles en agua se observó (Bellar et al, 1974) que

cloroformo y otros metanos trihalogenados aparecían consistentemente en

aguas potables. Casi al mismo tiempo, estudios realizados en el agua potable

de Nueva Orleáns (Lower Mississippi River Facility, 1974) y los realizados por

Rook (1974), llamaron la atención sobre la presencia de trihalometanos en las

aguas potables, los cuales no eran detectados en las fuentes antes del proceso

de potabilización.

Como resultado de estas evidencias, la Agencia de Protección Ambiental de

los Estados Unidos (EPA) propuso, en 1974. la realización de un estudio

denominado “National Organics Reconnaissance Survey” , (NORS), en todo el

territorio nacional, para determinar las concentraciones y el efecto de las

fuentes prácticas de tratamiento sobre lo formación de ciertos compuestos

orgánicos en agua potable. Este reconocimiento se llevo acabo en ochenta (80)

ciudades, cubriendo una población total expuesta de 36 millones de personas

(symons et al., 1975). Los resultados obtenidos confirmaron la presencia de

cloroformo, y bromoformo, en la mayoría de las aguas potables analizadas,

siendo su frecuencia de 100 por ciento, 97,5 por ciento, 90 por ciento y 31 por

ciento, respectivamente. Por otra porte, la presencia de estos compuestos en

las correspondientes fuentes fue de 61 por ciento, 9 por ciento, 1 por ciento y 0

por ciento, respectivamente. Como conclusión se puede decir que los cuatro

trihalometanos (THM) están diseminas en las aguas potables de los Estados

Unidos procedentes de diferentes fuentes (aguas superficiales y subterráneas)

y son el resultado de la cloración, ya que no se encuentran o están presentes

en bajas concentraciones, en las aguas crudas.

En estudios más extensos, tales como el “Nacional Organics Monitoring

Survey” que abarco 113 ciudades, los THM continuaron siendo los

predominantes en términos de su frecuencia y concentración (EPA, 1978)

aunque se identificaron otros compuestos orgánicos. Cloroformo es el más

común de los THM encontrados en aguas potables y generalmente presenta

las mayores concentraciones.

Los principales factores que influyen en la producción de los THM durante la

cloración son: composición química de las fuentes de agua (e.g./naturaleza y

concentración), pH, temperatura y el tratamiento practico.

Estudios realizados por Stevens et al., (1975) confirmaron la importancia de las

sustancias húmicas naturales como precursores en la formación de THM; sin

embargo dado que el “precursor” es una mezcla de compuestos con diferentes

reactividades a pH variables, solubilidades y otras características físicas y

químicas, las contribuciones relativas de los diferentes constituyentes de un

agua dada, dependen del tratamiento practico y de la fuente.

El pH es un parámetro muy importante ya que de él depende la distribución de

las especies de cloro, así como de los precursores. La producción de

cloroformo aumenta al aumentar el pH (Stevens et al., 1975).

Estos mismos autores también estudiaron la influencia de la temperatura, en

los límites de 3 a 40°C, en la reacción a la producción de cloroformo,

encontrando que la velocidad aumenta ante el incremento de la temperatura.

Resultados experimentados han demostrado que la concentración de sólidos

en suspensión tiene un efecto directo en la producción de cloroformo. Este

efecto puede deberse a las sustancias asociadas a las partículas, a las

sustancias que reaccionan en asociación con las partículas o posiblemente a

sustancias que pueden estar acomplejadas con la alúmina y precipitadas junto

con los flóculos. Se encontró que la remoción de las partículas reduce la

velocidad de reacción de producción así como la cantidad total de cloroformo

formada (stevens et. al., 1975).

La dosis de cloro, el cloro residual y el tiempo de contacto en el tratamiento y

en el sistema de distribución, son factores determinantes junto con la

concentración de precursores en la cantidad total o terminal de cloroformo

producido (Stevens et. Al., 1975).

TABLA No. 2

NIVELES DETECTADOS DE THMS EN SUMINISTROS DE AGUA EN EE.UU.

<Concentraciones en mg/l > (E.P.A., 1978)

THM NORS NOMS

s (a) (a) (b) (c) (d)

Cloroformo

Mediana 0.021 0.027 0.059 0.022 0.044

Promedio ---- 0.043 0.083 0.035 0.069

Rango NE-0.311 NE-0.271 NE-0.47 NE-0.20 NE-0.54

Bromoformo

Mediana 0.005 MLD MLD MLD MLD

Promedio ----- 0.003 0.004 0.002 0.004


Dibromoclorometano

Mediana 0.001 MLD 0.004 0.002 0.003

Promedio 0.001 0.008 0.012 0.006 0.011


Bromodiclorometano

Mediana 0.006 0.010 0.014 0.006 0.011

Promedio ----- 0.018 0.018 0.009 0.017


Trihalometanos Totales

Mediana 0.027 0.045 0.087 0.037 0.074

Promedio 0.067 0.068 0.117 0.053 0.100


(a) Concentraciones instantáneas; (b) Concentraciones terminales;

(c) Concentraciones terminales en agua declorinada.

(d) concentraciones terminales lo mismo que (c) sin declorinación.

NE - No encontrado.

MLD – Menor que límite de detección.

En términos generales la reacción de formación de los THM puede escribirse

como sigue:

Cloro + (Ión Bromuro + Ión Ioduro) + Precursores à Cloroformo + (otros

Trihalometanos).

1.1.8. Cloro y sus subproductos.

El cloro es el desinfectante de agua potable más ampliamente usado. Cuando

se agrega al agua ocurre la siguiente reacción en un tiempo aproximado de un

segundo:

CI2 + H2O = HOCI +H+ + CI-

La magnitud de la constante de hidrólisis en el equilibrio es tal que el ácido

hipocloroso, HOCI predomina en forma total en el agua dulce al pH 4 y en

concentraciones de cloro hasta de 100 mg/l (Morris, 1982).

El ácido hipocloroso es un ácido débil que se disocia parcialmente en el agua

del siguiente modo:

HOCI = H- + OCI-

El valor de la constante “de ionización” ácido es cerca de 3 x 10-8. Según se

muestra en la figura 1, a 20°C y pH de 7,5 hay una distribución igual de HOCI y

O CI- . a pH 8, cerca del 30% del cloro libre está presente como OCI y a pH 6,5

90% está presente como HOCI (Morris, 1982). El término cloro libre se refiere a

la suma del ácido hipocloroso y el ión de hipoclorito. Debido a que HOCI es un

desinfectante más eficaz que el cloro combinado (por ejemplo las cloraminas),

las Guías recomiendan que la desinfección se lleve acabo con el pH menor de

8 y a una concentración de cloro libre mayor que 0.5 mg/l.

De todos los desinfectantes la química y la toxicidad del cloro y de sus

subproductos son los más estudiados.

Desde el descubrimiento de la formación de haloformos por Chova durante la

cloración del agua de abastecimiento de Rótterdam (Rook, 1974), se han

identificado numerosos compuestos halogenados en agua de bebida clorada y

se ha evaluado su toxicidad. Los precursores de estos compuestos

halogenados incluyen compuestos naturales como los húmicos y los fúlvicos,

así como los productos de las algas. Los principales subproductos de

desinfección de cloro encontrados son los trihalometanos (THM), los ácidos

acéticos halogenados, los acetonitrilos halogenados, el hidrato de cloral y los y

los fenoles clorados. Otros incluyen a MX furanone clorado, a halopicrinas,

haluros “de cianógeno”, halocetonas y haloaldehidas. Los subproductos

halogenados de desinfección identificados representan aproximadamente solo

la mitad del total de subproductos formados.

Otros compuestos identificados en agua de bebida clorada son los

cloroalcanos, las cloraminas orgánicas, los ácidos carboxílicos no clorados y

una variedad de otras haloalcanos, cloroaldehidas/furanonas además de

aquellos evaluados en las Guías. Las impurezas principales en el cloro

gaseoso y el liquido son los propios relacionados a la naturaleza de los

productos de la cloración son el tetracloruro de carbono y el bromo (CHC,

1991; Bull y Kopiler, 1991).

En base a los estudios toxicológicos de animales, se han recomendado los

Valores Guías (VGs) para varios de estos compuestos. Indudablemente, la

tercera edición de las Guías, cuya realización está prevista para el año 2002,

incluirá subproductos adicionales de la cloración.

Es difícil calcular con precisión el riesgo por la exposición a los compuestos

halogenados de materia orgánica disuelta en agua de bebida. La exposición a

estos compuestos depende entre otros de la concentración del cloro, la carga

orgánica, pH, tiempo de contacto, cantidad de agua consumida, etc. Además

puede variar considerablemente si el agua de bebida se calienta antes de su

consumo (té, café, etc). Por ejemplo, la ebullición de agua durante cinco

minutos elimina un 95% de la fracción total de los hidrocarburos halogenados

volátiles, mientras que el calentamiento a 70-90°C eliminaría sólo un 50-90%

de compuestos halogenados (CHC, 1991).

Se han evaluado en las Guías los siguientes productos químicos que son

resultados de cloración:

- cloro libre (HOCI + O CI- )

- trihalometanos

- ácidos acéticos halogenados

- hidrato de cloral (trichloroacetaldehyde)

- MX (hidroxi-2(5H)-furanone 3-chloro-4-dichloromethyl-5-).

Para los países que desean controlar los SPD, quizás no sea necesario fijar las

normas para todos los SPD cuyos valores guías se han propuesto. Los

trihalometanos, cuyo mayor componente es el cloroformo, tiene posibilidad de

ser el principal SPD en algunos casos junto con los ácidos acéticos clorados.

Muchas veces, el control de los niveles de cloroformo y, el control apropiado

del ácido tricloroacético también proporcionarán una medida adecuada de

control de otros subproductos de la cloración.

(a) Cloro.

El cloro libre en agua de bebida no es particularmente tóxico para los seres

humanos. La mayor fuente de exposición al cloro es el agua de bebida. En

consecuencia, al establecer las guías se asignó un 100% del IDT al agua de

bebida lo que dio un VG basado en riesgo para la salud de 5 mg/l de la suma

del ácido hipocloroso y el íon de hipoclorito. Basada en el umbral del sabor y

del olor del cloro libre, se cree sin embargo que los consumidores no tolerarían

estos niveles de cloro. La mayoría de los individuos pueden percibir el cloro a

concentraciones por debajo de 5 mg/l y aun a niveles de solo 0.3 mg/l. el VG

para el cloro basado en criterios salud no debe interpretarse como un nivel

deseable de cloración.

(b) Trihalometanos.

Los subproductos de desinfección de cloro predominante son los THM. Sin

embargo, representan solo el 10% de los compuestos totales “de halogenos”

orgánicos formados mediante la cloración de agua.

Cuando el bromuro está presente en el agua de bebida, se oxida al ácido

hipobromoso por el cloro:

HOCI + Br = HOBr + CI-

HOBr reacciona con compuestos orgánicos naturales para formar halometanos

bromados. De igual manera, la presencia de yoduro puede conducir a la

formación de una mezcla clorobromoiodo-metanos.

Algunas afirmaciones generales con respecto a THM en agua de bebida

clorada (CHC, 1991; Morris, 1982; Canada, 1993):

- la concentración de THM en agua de bebida varia ampliamente y los

intervalos pueden ser entre un valor menor que el limite de detección a 1

mg/l o más;

- los niveles de THM en aguas superficiales cloradas son mayores a las

aguas subterráneas cloradas;

- las concentraciones de THM tienden a aumentar con el incremento de la

temperatura, el pH y la dosificación de cloro;

- las concentraciones de THM aumentan con el tiempo de almacenaje

incluso después de la desaparición del cloro residual o después de la

decloración. Lo que indica la información de productos intermedios que

conducen a la producción lenta de THM;

- el cloroformo es generalmente el THM más abundante; a menudo

representa un nivel mayor del 90% de la concentración total de THM;

- si hay una cantidad significativa de bromuro en el agua sin tratar pueden

predominar, los THM bromados, incluyendo bromoformo.

- La formación de THM puede reducirse al mínimo al evitar la precloración

y mediante una eficaz coagulación, sedimentación y filtración para

eliminar a los precursores antes de la desinfección final;

- La remoción de THM después de su formación es difícil e incluye los

procesos como adsorción en carbón activado y aereación.

Debido a que los trihalometanos generalmente se presentan un grupo, se

tiende a considerar como un grupo a los trihalometanos. Varios países han

fijado las pautas o normas partiendo de esta base, variando de 0,025 a 0,25

mg/l.

En las guías de la OMS de 1993, se ha recomendado VG individual para los

cuatro trihalometanos. En base a la suposición de los THM pueden ejercer

efectos tóxicos potenciales a través de mecanismos biológicos similares, las

autoridades pueden establecer las normas para THM totales que representan

los efectos en forma conjunta y no agregar simplemente valores por encima de

la guía propuesta para los compuestos individuales. En cambio, se recomienda

el siguiente enfoque:

C bromoformo C DBCM C BDCM C cloroformo

----------------- + ------------ + -------------- + ---------------- ≤1

VG bromoformo VG DBCM VG BDCM VG cloroformo

Donde:

C = concentración, y

VG = el valor de la guía

Cloroformo.

El cloroformo es uno de los principales productos de reacción del cloro durante

la desinfección. También se forma, pero en concentraciones mucho menores

con la desinfección con cloramina. La ozonización antes de la cloración puede

mejorar la formación del cloroformo (Bull y Kopfler, 1991).

Un total de 17 países informaron haber generado cloroformo en agua de bebida

por intervalos no detectados a concentraciones de 0.9 mg/l (CHC, 1991). Los

niveles en las aguas subterráneas cloradas rara vez exceden 0.02 mg/l.

El CHC ha clasificado el cloroformo en Grupo 2B como un potencial

carcinógeno humano. Se presentó un considerable discusión en la Reunión del

Grupo de Revisión con respecto a si el cloroformo es un carcinógeno

genotóxico o si induce los tumores a través de un mecanismo no genotóxico.

De modo conservador el valor final fue un VG de 0.2 mg/l para el riesgo de

cáncer en exceso de 10-5 , basada en la extrapolación de los tumores renales

observados en las ratas machos expuestos al cloroformo en agua de bebida

durante 2 años.

Trihalometanos Bromados.

La formación de los THM bromados durante la cloración de agua depende de

la presencia de bromuro en el agua. Muchos estudios han informado al

respecto a los niveles de estos compuestos. Las concentraciones

generalmente varían de 0.001 a0.05 mg/l para bromodiclorometano, de 0.001-

0.02 mg/l para clorodibromometano, y 0.001-0.01 mg/l para el bromoformo.

Debido al mayor contenido de bromuro natural, las muestras de aguas

subterráneas cloradas por lo general presentan niveles de trihalometanos

bromados mayores que el agua superficial tratada (CHC, 1991).

La ozonización previa a la cloración puede mejorar la formación de

trihalometanos bromados si el bromuro está presente en el agua (Bull y Kopfler,

1991).

El segundo trihalometano más abundante es el bromodiclorometano (BDCM).

Este compuesto también ocurre naturalmente en el tejido de varias microalgas

marinas. El CHC ha asignado al bromodiclorometano en el grupo 2B. En varios

estudios de carcinogenicidad, el bromodiclorometano causó un aumento de los

tumores del riñón en los ratones machos, del hígado de los ratones hembras, y

del riñón del intestino grueso en las ratas machos y hembras. En consecuencia,

el VG se derivó empleando el modelo de múltiples etapas el valor de 0,06 mg/l

obtenidos para un riesgo de cáncer adicional de 10-5. Rara vez el

bromodiclorometano está presente a este nivel en agua de bebida tratada las

concentraciones varían entre 0,001 y 0,05 mg/l.

El dibromoclorometano (DBCM) también presente en forma natural en las algas

marinas de donde pasan al agua del mar y el aire. Se recomendó a un VG de

0,1 mg/l. Las concentraciones de dibromoclorometano en agua de bebida

clorada generalmente están muy por debajo del VG. El CHC ha clasificado al

dibromoclorometano en el grupo 3.

El CHC también ha clasificado al bromoformo en el grupo 3. El VG de 0,1 mg/l

se obtuvo del valor umbral de los efectos tóxicos. Las concentraciones del

bromoformo en agua de bebida rara vez exceden de 0,01 mg/l.

(c) Ácidos acéticos halogenados

Loa ácidos acéticos halogenados se forman de la materia orgánica durante la

cloración de agua. Aunque no han sido investigados tan exhaustivamente como

los trihalometanos, probablemente son los principales subproductos de

cloración en agua de consumo humano entre ellos los ácidos mono di-

tricloroacético, así como los ácidos mono-y dibromoacéticos. La concentración

de los ácidos acéticos halogenados tienden a disminuir con un mayor pH.

Los niveles normales de los ácidos acéticos clorados en los suministros de

agua de consumo humano varían de 0,03 a 0,15 mg/l. En base a los datos

limitados, se conoce que el ácido monocloroacético está generalmente

presente en concentraciones de menos de 0,001 mg/l; el intervalo de

concentraciones del ácido di cloroacético varía de 0,01 a 0,1 mg/l. y el ácido

tricloroacético varía de 0,02 a 0,15 mg/l (CHC, 1991).

La información disponible sobre la ocurrencia y efectos en la salud de los

ácidos acéticos bromados es limitada.

Por no contarse con suficientes datos, no se ha podido establecer un VG para

el ácido monocloroacético.

En los estudios toxicológicos de animales, tanto los ácidos di-como los

tricloroacéticos causan mayor efecto hepático relativo. Se estableció a un VG

provisional para el ácido di cloroacético de 0,05 mg/l. El VG designado es

provisional porque los expertos no están seguros de que fuera técnicamente

alcanzable y las dificultades de satisfacer a un VG nunca deben ser una razón

para comprometer una adecuada desinfección.

Debido a la información limitada de datos, se estableció un VG provisional de

0,1 mg/l. para el ácido tricloroacético.

(c) Acetonitrilos halogenados, hidrato de cloral, fenoles clorados y MX.

Estos son productos de desinfección menores que generalmente están

presentes en concentraciones medias menores a 0,001 mg/l.

Para todos los compuestos que muestran un valor umbral, los VG

recomendados son “provisionales” debido a la limitación de datos y/o

considerando fórmulas conciliatorias con la desinfección. Aunque no se conoce

mucho acerca de la exposición a estos compuestos de las diferentes fuentes

de agua de consumo humano, no se empleó el valor preasignado de 10% del

IDT. En todos los casos se hizo una asignación de un 20% del IDA porque se

espera la exposición a esto SPD de otras fuentes sea pequeña. Para varios

compuestos, los datos de toxicidad disponibles son considerados insuficientes

para establecer a VGs

.

Acetonitrilos halogenados

Est5os compuestos han identificado como subproductos de la cloración de las

aguas superficiales. Los precursores potenciales para la formación de estos

compuestos durante la cloración son las algas, las sustancias húmicas y

material de origen proteínico que se presentan en forma natural en el agua. Se

ha detectado una variedad de acetonitrilos halogenados en las muestras

cloradas de agua de consumo humano; los acetonitrilos bromados se forman

cuando el bromuro está presente en el agua durante la cloración. Los niveles

encontrados son variables; la concentración total más alta de dihaloacetonitrilos

ha sido de 0,04 mg/l en sistema de abastecimiento de agua clorada en Florida.

La concentración de los acetonitrilos halogenados tiende a disminuir con el

aumento del Ph

.

Hidratos de cloral (tricloroacetaldehído)

Se forma como un subproducto de la reacción del cloro con sustancias

húmicas. También puede presentarse en las descargas industriales y en agua

de consumo humano se ha encontrado concentraciones de hasta de 0,1 mg/l.

Las concentraciones usuales resultado de la cloración son de

aproximadamente 0,002 mg/l. Los niveles de hidrato de cloral aumentan

mediante la preozonización y se reducen por cloraminación (Bull y Kopfler,

1991).

El dicloroacetonitrilo es el más abundante de los acetonitrilos. Conforme a

diversas evaluaciones, este compuesto se encontró en los suministros de agua

con mayor dosificación de cloro, se han reportado concentraciones hasta de

0,02 mg/l con una media de 0,001 mg/l. El bromocloroacetonitrilo y el

dibromoacetonitrilo se han encontrado en concentraciones hasta de 0,01 mg/l,

con una media de 0,0005 mg/l. El tricloroacetonitrilo se detectó en niveles de

0,0001 mg/l. (CHC, 1991).

Cloro fenoles

Los cloro fenoles están presentes en el agua de bebida como subproducto de

la reacción del cloro con compuestos fenólicos (biocidas) o como productos del

deterioro de los herbicidas fenoxiácidos

La reacción del cloro acuoso con los fenoles conduce a la formación de mono-,

di-y triclorofenoles. Estos compuestos tienen un sabor agradable y un fuerte

olor. El umbral gustativo para los fenoles es de 0,002 mg/l o menos. En

consecuencia, si el agua que contiene cloro fenoles no tiene sabor, es

improbable que presente riesgo para la salud.

Cuando se agrega un exceso de cloro se presenta cloración con deterioro del

anillo aromático de los fenoles para formar productos “insípidos” e inoloros

como el ácido oxálico, ácido maleico y dióxido de carbono (Morris, 1982).

1.1.9. Estudios epidemiológicos de la carcinogenicidad del cloro y de los SPD.

En 1991, el Organismo Internacional de la OMS para la investigación sobre el

Cáncer (CHC) publico una evaluación de los riesgos carcinogénicos a los

seres humanos del agua de consumo humano clorada basada en varios

estudios toxicológicos y epidemiológicos efectuados en animales. CHC

concluyó que debido a uno a varias debilidades metodológicas, los estudios

epidemiológicos revisados no constituyen la base de la evaluación de riesgo

válido.

La investigación epidemiológicas de la relación entre la exposición por

consumo de agua clorada versus la aparición de cáncer se consideró compleja

por que cualquier aumento de riesgo relativo de cáncer en las personas que

consumen agua no clorada, es probable que no resulte significativo y en

consecuencia es difícil detectar el riesgo real en los estudios epidemiológicos.

En todos los estudios evaluados, los cálculos de la exposición fueron

imprecisos y los periodos de la exposición no son atribuibles a los períodos

pendientes para la etiología de los cánceres en cuestión. Se conocen muchas

variables que afectan la incidencia del cáncer tales como los hábitos del

tabaquismo, las prácticas alimenticias, el uso del alcohol, el estado

socioeconómico y el grupo étnico, los que sin embargo no se consideran en la

mayoría de los estudios (CHC,1991).

En su evaluación general, CHC concluyó que las pruebas son inadecuadas

para probar la carcinogenicidad de agua de bebida clorada en los seres

humanos así como en los animales sujetos a pruebas de experimentación

(CHC, 1991).

1.1.10. MATERIA ORGANICA

En Suspensión

El agua natural cuando es sometida a la filtración y/o sedimentación se obtiene

un residuo llamado seston que puede ser de naturaleza orgánica provista de

vida como el plancton y otro de naturaleza inorgánica desprovista de vida como

el tripton y que esta constituido por fragmentos, arcillas, partículas finísimas de

sílice o de hidróxido de hierro.

El seston orgánico constituido por restos, excreciones de organismos formando

partículas de todos los tamaños, hasta llegar a micelas y moléculas orgánicas

verdaderamente en solución. En sentido opuesto opera la aglomeración y

compactación de partículas muy finas como ocurre en los excrementos

moldeados que entonces se sedimentan a mayor velocidad que el material

originario.

La elevada concentración de restos de organismos del plancton, granitos de

almidón procedente de las normales células del plancton se denominan

material autóctono. El material alejado del lugar donde luego se encuentra, es

más importante en aguas dulces especialmente en las corrientes, se conoce

como material alóctono

En las aguas dulces el material autóctono tiene poco color y de una relación de

carbono: nitrógeno de 12:1 aproximadamente. El material alóctono llega al

lugar en una etapa mas avanzada de alteración tiene una relación de carbono:

nitrógeno alta hasta 50:1 y es amarillo por una mayor proporción de

compuestos húmicos.

La cantidad de material detrítico orgánico, en suspensión en las aguas supera

la cantidad de plancton vivo.

La imagen del seston aparece dominada por el material detrítico, entre el que

se observan los organismos del plancton. En lo que concierne a la proporción

entre la materia viva y materia muerta, la composición del ecosistema

suspendido en el agua es mas parecido a la del bentónico de lo que antaño se

creía. En la mayoría de los casos esta materia detrítica tiene una masa

comprendida entre una y 10 veces a la del fitoplancton

Disuelta

“Es muy difícil decir donde termina la materia orgánica particulada y donde

empieza la disuelta Igualmente difícil es decidir la situación de la fracción

coloidal, que se puede considerar intermedia”

La única definición posible es hablar de materia que pasa a través o es retenida

por un filtro de determinadas características, generalmente de poro de fracción

de micra (entre 0.2-0,5 um). La concentración de materia orgánica disuelta es

de ordinario entre dos y cien veces mayor a la de la materia orgánica en

partículas.

Los métodos comprenden valoración del carbono por combustión húmeda, de

nitrógeno o el método de Kjeldahl, medida de volumen gaseoso resultante de la

combustión de la muestra; el método de reducción de permanganato de potasio

en caliente es inadecuado porque hay mucha materia orgánica que resiste a la

oxidación por el permanganato de potasio. Sin embargo el método sigue siendo

usado en hidrología, como indicador de materia orgánica fácilmente oxidable

en el agua poluta.

En las aguas dulces se suelen dar valores mayores. La determinaciones de la

limnología química en diversos lagos norteamericanos por juday y borde,

señalan valores de 2.9 a 39.6 mg/l de materia orgánica, que equivalen a 1-18

mg C 1-1 , si se usa el acostumbrado coeficiente de conversión de 2.4 para

pasar de carbono a materia orgánica. En la misma película superficial se

pueden encontrar concentraciones hasta 50 o 100 veces mayores,

especialmente en lípidos tensóactivos. La materia orgánica disuelta procede,

en ultimo termino, de la descomposición de material particulado, pero también

de excreciones solubles y, a este respecto es importante la contribución de los

organismo foto sintetizadores. Las algas unicelulares excretan del 2 al 15% a

veces asta el 30% de lo sintetizado, en forma soluble. En cultivos la excreción

de materia orgánica por las algas suele ser máxima al final de la fase

exporencial de crecimiento en células. La secreción puede ser rápida o mas

lenta. Parece lenta en el caso de las diatomeas que producen envolturas o

cordones mucilaginosos que se desintegran lentamente. Aunque la secreción

sea menos visible se puede reconocer fácilmente.

Pero la mayor proporción de la materia disuelta es particularmente esquiva a la

investigación. Se trata de moléculas no muy grande, pero muy resistente a los

seres vivos: es obvio que la acción continuada a la vida determina una

selección del contenido orgánico del agua, con destrucción preferente de la

materia orgánica. es muy diferente un agua de cloacla, rica en materia orgánica

fácilmente fermentable y putrescible, y un agua de un lago distrófico que puede

ser igualmente rica en materias orgánica pero de tipo muy estable y

relacionada con lo que vagamente se conoce con el nombre de materia

húmica.

La base de las materias húmicas son los anillos fenolicos que pueden servir de

soporte a aminoácidos y otros residuos. Por razón de dichos anillos fenólicos,

se ha supuesto generalmente que los compuestos húmicos de derivan de la

lignina:

LIGNINA

CH3O C=0 CH3O

0 0

CH2 CH2 CH-

CH2 CH CH2

C 0 C

CH3 0 CH3o CH3 CH3 0

ACIDO HUMICO

0 0 0

OH OH OH

C – CH = CH - C – CH = CH - C – CH = CH-

0 0 0

Pero las materias Húmicas se forman también a partir de restos de organismos

que no contienen lignina.

Niveles Permisibles

Los peligros asociados con la ingestión de contaminantes químicos en agua

potable, se pueden evaluar en dos formas generales: con estudios

epidemiológicos y con estudios de toxicidad en el laboratorio. El objetivo de

ambos tipos de estudios es proporcionar información sobre el riesgo en

humanos.

Estudios toxicológicos y epidemiológicos se están llevando a cabo para varios

de los compuestos orgánicos detectados en agua potables. Siendo el

cloroformo el compuesto orgánico trihalogenado presente con mayor frecuencia

y concentración, ha recibido la mayor atención. El Instituto Nacional de Cáncer

de EE.UU. ha completado estudios toxicológicos sobre este compuesto

demostrando que es cancerigeno en roedores (Nacional Cáncer Institute,

1976). Otros estudios también han mostrado este efecto que el cloroformo es

cancerígeno en animales bajo las condiciones experimentales estudiadas y por

lo tanto presenta un riesgo cancerígeno potencial para los humanos. La

academia Nacional de Ciencias de lo EE. UU. ha calculado el riesgo en el limite

superior de 9.5 por ciento de confidencia de riesgo en 1.5 x 10-5 tomando un

promedio de dos litros de agua como consumo diario, con una concentración

de promedio de 0.021 mg/l (NORS) de cloroformo por el periodo de vida

(Nacional Academy of Sciences, 1977).

Los otros THM resultantes de la cloración se están sometiendo a estudios

toxicológicos exhaustivos y al presente no existen evidencias de que sus

efectos sean menos preocupantes que los del cloroformo.

Dos de los haloformos bromodiclorometano y dimoclorometano, de los cuales

aún no han sido estudiada su actividad cancerígena, se ha encontrado que son

mutagénicos (Simmon y Tardiff, 1978).

Una serie de estudios epidemiológicos (Page et al., 1976; De Rouen y Diem,

1977; Luzma et al., 1977; Harris et al., 1977; Salg, 1977) se han realizado y se

siguen realizando a los efectos de correlacionar cáncer en humanos con

contaminantes orgánicos las aguas potables. La carencia de la base de datos

sistemática de los contaminantes orgánicos en aguas potables, así como la

superposición de factores adicionales presentes en las grandes ciudades y que

también puede estar relacionado con incidencia de cáncer, han dificultados los

estudios epidemiológicos. Sin embargo, las investigaciones tienen a reforzar la

preocupación resultante en el agua, de sustancias que producen cáncer en

animales. Alavanja et al., (1978) realizaron un estudio en casos gastrointestinal

y del tracto urinario ocurridos en siete condados del Estado de Nueva York

durante un periodo de tres años, encontrando que tanto hombres como

mujeres viviendo en áreas con suministros de agua clorinada, presentaban un

mayor riesgo de mortalidad por cáncer gastrointestinal y del tracto urinario, que

individuos viviendo en un área con suministro de agua no clorinada. Además

demostraron que este riesgo no es debido a disparidad de las edades,

distribución racial o étnica de la población o a un factor rural/urbano,

ocupaciones peligrosas, cancerígenos inorgánicos o a diferencia de agua

superficial o subterránea. Por otra parte, Cantol y McCabe (1978) estudiaron la

relación entre incidencias de cáncer y niveles de THM en 76 condados

incluidos en el NORS y el EPA Región V (EPA, 1975). Como resultado de este

estudio se encontró una asociación entre mortalidad por cáncer de la vejiga y

niveles de THM. La relación fue observada en ambos sexos.

Basándose en estos resultados, la Agencia de Protección Ambiental de los

Estados Unidos, en sus normas de calidad de agua potable ha propuesto y

esta poniendo en practica, un nivel máximo permisible de THM totales de 0.1

mg/l (EPA, 1978). Cabe notar que este nivel constituye un punto de partida y

que será reducida a medida que lo permitan las condiciones técnicas,

económicas y las prácticas de control.

1.2 . Antecedentes.

Foto No. 1.

La cuenca hidrográfica Poza Honda esta localizada en la costa ecuatoriana,

provincia de Manabí, a 30 km de Portoviejo, entre los paralelos 1°01´ y un

1°01´ y entre los meridianos 80°00´ y 80°12´ de longitud oeste.

Figura No. 2.

Según Holfelder (1) “…..el valle del río Portoviejo está lleno de depósitos

aluviales cuaternarios, que pueden ser clasificados en formaciones fluviales,

depósitos de laderas y tierras deslizables. El relleno del valle, que tiene

espesores de más 20 mt., ha cubierto la antigua y estrecha garganta del valle

del río Portoviejo, trasformándola en la plana superficie actual”.

La cuenca de Poza Honda consiste en dos subcuencas mayores:

El río plata de Pájaro y el río Mineral. Además ingresan al sistema

contribuciones menores, tales como: la Chacará, Agua Blanca, Los Platanales,

Tigre, Guajabe Grande y Guajabe Chico. La característica más significante es

el Embalse de Poza Honda que cubre 2.8% de la superficie de la cuenca.

El agua del vaso de la Presa Poza Honda, embalse desde 1972, proviene de

una cuenca de 175 km2 con fuerte vegetación tropical. La presa sirve para el

abastecimiento de agua potable de la parte central de la provincia de Manabí y

la irrigación del valle del río Portoviejo y tiene una capacidad de 100 millones

de metros cúbicos.

A 1 km., aguas abajo de la presa, se instalo en 1976, una planta de

tratamiento de agua para aproximadamente 1800 m3 /h con capacidad para

aumentar, según la demanda, a 3600 y 5400 m3 /h, en su fase inicial.

Debido a una eutrofización no esperada en su magnitud, la mayor parte del

contenido del vaso tomo propiedades o condiciones químicas reductoras;

esto es, mediante procesos anaeróbicos de descomposición, en la mayoría

por fitoplancton eutroficándoze, se presentaron en el agua, a partir de 4 a 5

mt. Por debajo de la superficie, entre otras, cantidades de, ácido sulfhídrico –

con sus parámetros acompañantes – fosfatos, hierro, manganeso y

agresividad.

Foto No. 2

Bajo estas condiciones extremas, la eficiencia del tratamiento en la planta y la

calidad del agua suministrada eran normales. No se logró la eliminación del

amoniaco, ni el sulfuro de hidrógeno, ni el manganeso, ni de la agresividad.

Foto No. 3

El problema existente en la planta potabilizadora.

El subsecuente problema del proceso de eutrofización en la planta

potabilizadora, que funciona en Poza Honda consta de la siguiente unidades:

aeración por cascada, precloración, clarificación en unidades tipo pulsador,

filtración rápida y cloración final. Esta planta tiene capacidad para potabilizar

aguas superficiales que contengan exceso de materias en suspensión y una

limitada concentración de gases disueltos. Sin embargo, el agua que entra a

la planta tiene los siguientes contaminantes: gases disueltas en abundancia,

grandes cantidades de plancton, exceso de hierro y manganeso, sustancias

orgánicas disueltas no volátiles productores de malos olores y malos sabores,

exceso de nitrógeno amoniacal y sólidos inorgánicos coloidales; además,

aunque no hayan sido identificadas, es posible que existan en el agua toxinas

excretadas por las algas, consecuentemente, el afluente de la planta

potabilizadora, aunque sea bacteriológicamente sano, frecuentemente no

cumple con las normas internacionales para el agua potable en lo que

respecta a olor, sabor, y concentración de manganeso, especialmente en

épocas críticas. Puesto que no se ha hecho medición de otros parámetros,

por ejemplo pesticidas y herbicidas, no se puede saber si se están

cumpliendo las normas respectivas.

En resumen, especialmente en épocas de sequía en las que se agudiza el

fenómeno de eutrofización del reservorio, la Planta Potabilizadora de Poza

Honda está extremadamente sobrecargada de contaminantes para cuya

remoción no está equipada, y consecuentemente, no puede entregar un

producto final satisfactorio.

TABLA No. 3 Resultados de los ensayos de Poza Honda y Planta de Tratamiento

(Según IEOS, CRM, Degremont y Kratzenstein)

Numero

Datos Técnicos Agua natural, Sali- Futuro agua pura en planta,

Denominación da inferior y toma luego de ampliaciones

Según proyecto

Año 1978 – 1983

Análisis químico

Aspecto a la toma casi clara-lig. Turbia clara

Color (visual) “ pardo-verdoso clara

Sedimento “ nada-pequeño nada

Olor “ a H 2 S sólo a Cl

Sabor “ --------------- sólo a Cl

Temperatura a la toma °C 25 - 27 25 - 27

Conductividad especif.

(Contenido de electrolitos)

120 - 27 180 - 360

en/ us / cm a 20°C

pH (temperatura a la toma,

reducido a 20°C, determ.

electrométrica) (6.9) 7.1-8.0 (8.7) 7.7 - 8.2

pH según Axt (met. Laborat.) -0.2 - 1.0 0 a - 0.2

pH con aparato de calcas - - 0 a - 0.1

índice de saturación (Langelier) según últimos adelantados ya no

(calculado según DIN) es criterio de corrosión

ácido sulfhídrico H 2 S mg/l 0 - 7 0

Anhídrido carbónico

libre (CO2) mg/l (0) 3 - 13 0.5 - 2

Anhídrido carbónico agres. Según últimos adelantados ya no

es criterio de corrosión

Al hierro (evita capa de prot.) ( DIM 50930 )

(calculado según DIN)

Oxígeno disuelto (O2) mg/l 0 - 0.2 7

Dureza total DG 2.4 - 5.6 5 - 11

Durezas por carbonatos DG 2.2 - 5.6 2.5 - 6

Dureza por no carbonatos DG 0 - 0.2 2.5 - 5

Dureza por cal DG 1.6 - 4.2 4.2 - 9.6

Dureza por magnesia DG 0.8 - 1.4 0.8 - 1.4

Número

Alcalinidad de fenolftalei-

0 - 0.05 0 - < 0.01

na (valor p) mval/l

Consumo de ácido (valor m) mval/l 0.8 - 2.9 0.9 - 2.2

Sodio y potasio mval/l 0.3 - 0.8 0.3 - 0.8

Contenido de ácidos

minerales (valor –m) mval/l - - - -

Bicarbonatos, medidos

como NaCHO3 mg/l 0 - 20 0

Amonio NH+4 mg/l 0.05 - 5.0 < 0.1

Nitritos (NO-2) mg/l 0.05 - 0.3 < 0.1

Nitratos (NO-3) mg/l 0 - 5 < 20

Cloruros (CI-) mg/l 1 - 4 < 10

Sulfatos (SO—4) mg/l 7 - 20 < 40

Total fosfatos (P2O5) mg/l 0.1 - 0.7 < 0.1

Poli fosfatos (P2O5) mg/l 0.02 - 0.05 < 0.05

Mono fosfatos (P2O5) mg/l 0.08 - 0.65 < 0.1

Silicatos

solubles (PiO2) mg/l 33 - 38 < 35

Capacidad de

oxidación (KMnO4) mg/l 3 - 16 < 6

Hierro (total Fe) mg/l (0) 0.1 - 075 < 0.1

Manganeso (total Mn) mg/l 0.08 - 1.6 < 0.05

Aluminio (total AL) mg/l - - < 0.2

Cobre (total Cu) mg/l

Zinc (total Zn) mg/l

Plomo (total Pb) mg/l

Total fenoles (C6H5OH) mg/l

Metano (CH4) mg/l 0.7 - 3.2 0

Cloro activo (tota Cl2) mg/l en 3 a 4

Sustancias sólidas

(filtro de membrana

0.5 / a 150°C) mg/l 16 - 92 < 0.5

Fluoruro, F, mg/l 0.10 - 0.11 < 0.10

Coeficiente de absorción

espectral

Con 436 nm/m 4 - 16 < 1

Con 254 nm/m 19 - 64 < 6

Capitulo II

2.1. Hipótesis.

Existe amplia evidencia de que los THM se forman mediante la cloración de las

aguas que contienen sustancias húmicas y compuestos solubles excretados

por las algas y compuestos orgánicos que estan presentes en forma natural.

Se presume que la concentración de los THM en importante concentración,

como consecuencia del proceso de eutrofización, ha sobrepasado los límites

permisibles en Agua Potable que distribuye el Sistema Regional de Agua

Potable de Poza Honda.

2.2. Objetivos.

2.2.1 Generales:

Caracterización Físico-Químico del Agua del Embalse.

Caracterización Biológica (Algas y sus variedades) del Embalse.

Caracterización Físico-Químico y Biológico que ingresa a la Planta de

Tratamiento.

2.2.2. Específicos:

Definir el proceso de Eutrofización del Embalse de Poza Honda.

Definir la presencia de Trihalometanos (THM).

CAPITULO III

MATERIALES Y METODOS

3.1. Universo.

El Embalse de Poza Honda y la Planta de Tratamiento es el universo

establecido en la presente investigación.

3.2. Metodología del Muestreo.

Foto No. 4 julio/2002

El programa de determinaciones a efectuar para una cuantificación, serán

considerados los parámetros involucrados en el proceso de eutrofización y en

la formación de trihalometanos el mismo que se divide en dos partes; En el

Embalse propiamente dicho y en la Planta de Tratamiento.

En el Embalse dado que el tiempo de retención es relativamente elevado se

estima conveniente el establecimiento de tres estaciones de muestreo ubicadas

una cerca de la presa, otro en el estrechamiento de la parte media y un tercero

en las cercanías a la confluencia de los Esteros Pata de Pájaro y Mineral, se

estima, en efecto que cuando el tiempo de retención del cuarto superior de un

embalse es superior a 15 días puede haber una retención importante de

nutrientes en el mismo. En tal caso, puede no haber correlación entre lo que

entra por la cola y lo que ocurre en la presa. El Embalse se debe considerar

dividido en tres partes, cada una de las cuales aportará las concentraciones

medidas de la vertical en las concentraciones de muestreo.

Para la recolección de las muestras se utilizó el equipo Van-Dorn de 2 litros de

capacidad desde una canoa a motor fuera de borda en donde se determinó la

temperatura, oxigeno disuelto, ácido sulfhídrico ,el mismo que posee un

mecanismo de medición de los niveles de profundidad..Cabe destacar que la

transparencia se la realizo mediante la técnica del disco secchi y los niveles de

profundidad se determinaron de acuerdo a un previo estudio de la

estratificación térmica del agua.

Se recolectaron muestran en los siguientes lugares:

Embalse de Poza Honda: Castillo, Centro (Familia Gómez) y Cola (Sitio

Mercedes).

En cada una se realizaron tres tomas, en intervalos de 30 días y durante un

periodo de un año, en tres diferentes niveles, que corresponde a la

estratificación térmica del Embalse: Superficial (epilimnion), 8 MT (termoclina). ;

16 MT (hipolimnion). Para un total de 2700 muestras.

Planta de Tratamiento: Se colecto muestra de agua cruda y tratada cada

30dias durante el mismo periodo citado, en el punto de ingreso al sistema de

aereación y en reservorio del efluente respectivamente, y del Cantón de Santa

Ana para un total de 792 muestras.

En razón de lo anteriormente expuesto, el total correspondiente es de 3492

muestras.

3.3. Variables Estudiadas.

3.3.1. Variables Cualitativas:

- Luminosidad

-Influencia del viento

- Agua de lluvia, y el aporte a través de los afluentes

3.3.2. Variables Cuantitativas:

- Parámetros físicos químicos.

Los parámetros realizados son los siguientes:

► Temperatura

► Conductividad eléctrica

► PH

► Transparencia

► Turbiedad

► Color

► Sólidos totales disueltos

► Fosfato

► Nitratos

► Nitritos

► Amoniaco

► Hierro

► Manganeso

► Sílice

► Cloruros

► Dureza total

► Alcalinidad total

► Alcalinidad simple

► Anhídrido carbónico

► Materia orgánica

► Ácido sulfhídrico

► Demanda Bioquímica de Oxígeno

► Demanda Química de Oxígeno

► Oxígeno disuelto

► Demanda de Cloro

► Estudio del fitoplancton

► Trihalometanos

► Cloro libre residual

► Cloro combinado residual.

Metodología de Ensayo.

Los Parámetros Físico-Químicos y Biológicos considerados para el efecto son

Los siguientes:

Parámetro Método de Analísis Referencia

Temperatura Termométrico SM-#124

Conductividad Electrica Conductímetria SM-#205

Potencial Hidrogeno Potenciometria

Transparencia Disco Secchi

Turbiedad Nefelometria SM-M132

Color Comparación Visual SM-#204

Sólidos Totales Disueltos Fotometria HACH-M8006

Fosfato Espectrofometía

Nitratos Espectrofometía HACH-M8151

Nitritos Espectrofometía HACH-M817

Amoniaco Espectrofometía HACH-M8155

Hierro Espectrofometía HACH-M8146

Manganeso Espectrofometía HACH-M8034

Sílice Espectrofometía SM-M429

Cloruros Argentometría SM-M270

Dureza Total Titrímetrico EDTA SM-M195

Alcalinidad Total Alcalimetría

Alcalinidad Simple Alcalimetría

Anhídrido Carbónico Titrímetrico de Bióxido

de Carbono Libre

SM-M268

Materia Orgánica Permangadimetria DG-M312

Ácido Sulfhídrico Yodimétrico Max. Lotear Hess

Lab. de Tratamiento de

Esgostos-Brasilia

D. Bioquímica de

Oxigeno

Standarizado SM-M483

D. Química de Oxigeno Reflujo SM-M490

Oxigeno Disuelto Yodimetrico SM-M421A

Demanda de Cloro Standarizado DG-M402

Estudio del Fitoplancton Sedgwich-Rafter SM-M1006B/1007

Trihalometanos Spectrofométria HACH-10132

Cloro Libre Residual Ortolidina SM-M86

Cloro Libre Combinado Ortolidina SM-M86

Observaciones:

SM = Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater – 15ava

Edición

DG = Degremont, Manual Técnico del Agua – 4ta Edición.

CAPITULO IV

4.1. RESULTADOS OBTENIDOS E INTERPRETACIÓN

La Eutrofización es un proceso gobernado por una serie de cambios químicos,

los mismos que pueden ser evidenciados por ciertos parámetros específicos.

En consecuencia, siendo el objetivo principal de esta tesis la importancia del

proceso de eutrofización del embalse, solo nos limitamos ha describir aquellas

características destacadas relacionadas con el proceso y tomando como

referencia la Norma de Calidad Ambiental y de Efluentes para la prevención y

control de la Contaminación.

Tabla # 3 Cota / mensual 2002-2003

Julio = 105.10 mt Enero = 94.88 mt

Agosto = 103.70 mt Febrero = 100.81 mt

Septiembre = 101.37 mt Marzo = 104.95 mt

Octubre = 100.54 mt Abril = 106.57 mt

Noviembre = 97.37 mt Mayo = 106.47 mt

Diciembre = 94.09 mt Junio = 105.57 mt

Niveles de Cota

859095

100105110

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mt

Cota

4.1.1. Estación de Muestreo: Cola.

4.1.1.1. Temperatura – Ph.

La estratificación termal que ocurre en el embalse, es una característica física

que afecta la calidad del agua; y resulta del cambio en la densidad del agua por

cambios de temperaturas.

El modelo clásico de estratificación que ocurre en los tres lechos que se

llaman, yendo de arriba hacia abajo: El epilimnion, la termoclina y el

hipolimnion.

La temperatura uniforme en el epilimnion (2 mt), es debido al efecto de la

mezcla por el viento y la luminosidad en esta sección de poca profundidad.

Epilimnion promedio = 28.41°C.

Solamente en los meses de julio, agosto y noviembre del 2002 se registraron

temperaturas menores comparadas con los meses restantes sujetos al periodo

de tiempo en estudio. Se explica esta disminución por la ausencia de rayos

solares y la desaceleración de las actividades químicas y biológicas.

La profundidad de la termoclina corresponde de 2 mt a 8 mt de profundidad. La

termoclina es definida arbitrariamente como el lecho de agua en el cual es

mayor o igual a 1°C por metro de profundidad. La termoclina sirve para separar

el epilimnion del hipolimnion y es muy resistente el proceso de mezcla.

Termoclina promedio = 26.60°C.

La influencia del intenso invierno y ambiente nublado del 2002 mantuvo hasta

los meses de julio y agosto temperaturas menores.

El hipolimnion es el lecho más bajo en el embalse y no es afectado mucho por

la energía solar.

Hipolimnion promedio = 26.00°C.

En líneas generales la temperatura del hipolimnion es la más fría y en los

meses de noviembre y diciembre del 2002, enero y febrero del 2003 no se

reportaron los resultados por la disminución del nivel del agua en el embalse, la

estación de muestreo por esta circunstancia se la ubico 500 mt antes de la

previamente señalada. Figura No. 3.

Figura No. 3

Temperatura

0

10

20

30

40

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

°C

Epilimnion (2 mt)Termoclina (8 mt)Hipolimnion (16 mt)

El crecimiento del plancton depende de la presencia de nutrientes, luz solar,

temperaturas y el Ph, en la zona trofogena lugar y desarrollo de la fotosíntesis.

Las algas utilizan el CO2 para el crecimiento, y la remoción de este gas resulta

en una disminución de H+ y un incremento en el Ph de acuerdo con el siguiente

equilibrio:

H + HCO3 CO2 + H2O

La actividad biológica generada en la capa superficial en el embalse registró los

siguientes valores promedios de Ph:

Epilimnion promedio Ph: 8.43.

Se destaca el valor del Ph en el mes de noviembre por tener un promedio

menor (7.33), debido a la situación ambiental imperante en la zona, por

ausencia de rayos solares y precipitaciones producidas en toda la región.

La disminución de la actividad biológica. Se debe fundamentalmente al

aumento de la profundidad y como resultado se obtienen Ph menores.

Termoclina promedio Ph: 7.54.

También la termoclina resulta afectada por las condiciones ambientales

presentes en la zona, razón por la cual el Ph de los meses noviembre y

diciembre del 2002 son relativamente menores a los meses restantes.

En el hipolimnion se destaca la ausencia de los rayos solares, y los valores

detectados son los siguientes:

Hipolimnion promedio Ph: 7.31.

El valor del Ph detectado en el mes de marzo del 2003 refleja claramente la

mezcla de las aguas provenientes de los afluentes de la cuenca y las

precipitaciones propias de la época. Figura No. 4.

Figura No. 4

Potencial Hidrógeno

02468

10

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

Toma # 1 (superficial)Toma # 2 (8mt)Toma # 3 (16mt)

4.1.1.2. Transparencia – Algas.

El método para medir transparencia data de 1865 y es muy utilizado en

pruebas de campos, sus unidades son de profundidad, el ámbito de lecturas

varía desde muy pocos cm en cuerpos de aguas turbios hasta varios metros en

cuerpos de agua tranquila.

El disco generalmente tiene un diámetro aproximado de 20 cm aunque se han

reportado medidas superiores a un metro el color del disco es blanco o puede

estar dividido en cuadrantes blancos y negros.

Además de las propiedades termales, las propiedades ópticas de aguas son de

mucho interés la turbiedad presente en el agua, disminuye la profundidad de

penetración de la luz. Puesto que el proceso de fotosíntesis depende de la luz,

la turbiedad influye en el crecimiento de las algas y su actividad. La profundidad

por la cual el efecto neto de fotosíntesis es positivo, se llama zona eufotica del

embalse. Figura No. 5

Figura No. 5

Transparencia

00,20,40,60,8

1

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

pfm


En virtud de la intensa estación invernal, influencia del viento y la afluencia de

grandes cantidades de agua a través de los tributarios llevaron a una alteración

completa de la calidad del agua en las diferentes profundidades. Estas

circulaciones son la causa de la dispersión de la materia orgánica suspendida a

las capas superficiales y con esto a la zona de producción, y su disminución de

la medida de transparencia a través del disco secchi en el mes de julio.

Para los meses de enero febrero y mayo del 2003 en el inicio de la estación

invernal se presentaron factores similares a los del mes de julio del 2002,

determinándose mediciones menores de transparencia. Figura No. 5.

Las concentraciones de fitoplancton no deben sobrepasar los 3000 cel/ml,

valores que nos indica el desarrollo pleno del proceso de eutrofización. Figura

No. 6.

Figura No. 6

Producción total de algas

050000

100000150000200000250000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

Cel/ml

Cola 1

La disminución de la intensidad de los rayos solares y las circulaciones

completas del embalse coadyuvaron a la menor producción de algas en los

meses de julio del 2002, enero y febrero del 2003. Figura No. 6.

En los meses de septiembre del 2002, y junio del 2003, fue donde se registro

mayor penetración de luz y por ende mayor producción de fitoplancton. Figura

No. 7.

Figura No. 7

Producción total de Algas

010000200003000040000500006000070000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 2

En lo que respecta a la zona profunda se destaca lo siguiente:

Que la mayor formación de algas en el transcurso del año en estudio se

registraron valores menores en relación a los dos niveles superiores en los

siguientes meses:

En lo referente al mes de octubre del 2002, se destaca que la recolección de

muestras se hizo solamente en dos niveles de profundidad, debido al descenso

del nivel en el sitio fijado para la estación de muestreo. Esta situación

fundamentalmente es ocasionada por la descarga de agua a través del túnel de

fondo y la entrega de agua para su tratamiento. En el mes de junio del 2003 se

presento un aumento, que se explica por la circulación de las capas profundas

ricas en nutrientes, producto de las aportaciones de los afluentes y la

circulación del agua. Figura No. 8

Figura No. 8


0

10000

20000

30000

40000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02 Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 3

Composición Cualitativa del Fitoplancton en el Embalse de Poza Honda

El agua que contiene una o varias clases de impurezas se dice que esta

contaminada. El termino contaminación suele aplicarse en forma restringida a

situaciones en las cuales el estado de las aguas es potencialmente peligroso

para salud humana o capas de obstaculizar seriamente el uso del agua o de su

ambiente inmediato (C. Mervin Palmer).

Mención especial, corresponde al caso de las Cianophytas, algas verde-azules

presentes en los tres estratos, entre ellas la Agmenellum Quadriduplicatum

que se encuentra particularmente en mayor cantidad por existir allí

contaminación por materia orgánica..

La Oscillatoria Subtilissima presente en mayor cantidad en Agosto/2002, se

considera un alga de aguas poco contaminadas. Figura No. 9.

Cianophytas Euglenophytas Clorophytas Pirrophytas Chrisophytas (Diatomeas)

Chorococcus Minor

Phacus SP Chorella Vulgare

Perisinium Sp Cocconeis SP

Agmenellum Quadriduplicatum

Ankistrodemus Falcatus

Synedra Acus

Oscillatoria Formosa

Scenedesmus Cuadricauda

Achnantes Microcephala

Oscillatoria Subtilissima

Scenedesmus Jaranensis

Amphyprora SP

Anabaenopsis Raciborskii

Chlamidomona Globosa

Nitzschia Gracilis

Anapcystis SP Diatoma Vulgare

Spirulina Subsalsa

Figura No.9


01000200030004000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola1Cola 2Cola 3

La Anabaenopsis Raciborskii, es un organismo que se encuentra en aguas

limpias y contaminadas. A medida que aumenta la materia orgánica se

incrementa su comunidad, sin embargo en el mes de Mayo/2002, a producirse

el mejoramiento de la calidad del agua su población aumentó significativamente

en condiciones de materia orgánica muy inferiores. Figura No. 10

Figura No. 10


020000400006000080000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3

Las Clorophytas, como la Chorella Vulgare presente en la fase final de la

eutrofización con cantidades apreciables de celulas en el medio acuoso, se

debe principalmente a que el fósforo es principal nutriente de las

Clorophytas.Cuándo de produce la circulación del embalse en los primeros

meses del año 2003 desaparece. Figura No. 11.

Figura No. 11

Chlorella Vulgare

01000020000300004000050000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3

La Clamidomona Globosa, acentúa su crecimiento en los primeros meses del

año 2003 por el reabastecimiento de materia alimenticia de las capas del fondo

a las capas superficiales. Figura No. 12.

Figura No. 12


0100002000030000400005000060000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3

El grupo de algas denominados Chrisophytas, tiene como especie a la Synedra

Acus que se encuentra presente mayormente en Agosto/2002, y en los meses

subsiguientes a medida que la contaminación aumenta, desaparece. Figura No.

13.

Figura No. 13

Synedra Acus

010002000300040005000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3

La Achanantes Microcephala, al igual que la anterior se presenta en mayor

número en el mes de Agosto y decrece en los meses subsiguientes. Figura No.

14.

Figura No.14


020000400006000080000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3

Con respecto a la Nitzschia Gracilis se presenta en mayor número en los

meses finales del año 2002. Esta situación denota que su medio de crecimiento

lo realiza en la etapa final de la eutrofización. Figura No. 15

Figura No.15

Nitzschia Gracilis

0500

10001500200025003000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3

Las Pirrophytas, en especial la Peridinium SP se encuentra en mayor cantidad

en la zona de menor cantidad de materia orgánica. El mes de Agosto/2002,

presenta su mayor producción. Por efecto de la caída de las lluvias en el mes

de Marzo/2003 presenta un prudencial incremento. Figura No. 16.

Figura No. 16

Peridinium SP

02000400060008000

10000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

(cel/ml)

Cola 1Cola 2Cola 3

4.1.1.3. Fosfatos – Nitratos.

Epilimnion.

Las aportaciones de fósforo del mes de julio del 2002, tuvo como característica

la intensa estación invernal, por lo que la carga de dicho mineral es sumamente

alta, probablemente por el arrastre de suelos erosionados de la cuenca.

Sin embargo la presa de Poza Honda evacuo de su vaso aproximadamente

400 millones de mt3, esto significa una relación de cuatro a uno con respecto a

su capacidad, que es de 100 millones mt3. Esto explica el mejoramiento de la

calidad de agua que determino el bajo valor de fosfatos (0.18 mg/l), con

respecto de los demás meses en estudio.

Fosfatos promedio = 0.34 mg/l.

Termoclina.

El fósforo procede de la disgregación y lavado de los suelos que lo contienen.

A su vez parte del fósforo que interviene en el ciclo orgánico queda

inmovilizado en los sedimentos en parte como fosfato cálcico como fosfato

férrico. Si el Ph aumenta por la fotosíntesis una fracción considerable precipita

con el carbonato de calcio.

Los fosfatos presentan un promedio mayor como consecuencia de su

precipitación y es un valor intermedio entre la zona superficial y la zona de

fondo.

Fosfatos promedio = 0.39 mg/l. Hipolimnion.

El promedio de la muestra de fondo arroja resultados mayores a las anteriores

donde se encuentra la mayor carga de nutrientes inorgánicos y orgánicos

producto del movimiento de las aguas por las precipitaciones. Figura No. 17

Fosfatos promedio = 0.48 mg/l.

Figura No. 17

Fosfatos

00,20,40,60,8

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


El nitrato representa la fase más alta oxidada en el ciclo del nitrógeno y

alcanza, normalmente, concentraciones importantes en las etapas finales de la

oxidación biológica.

Epilimnion.

El nitrato, como el amoniaco entra en el agua vía ciclo del nitrógeno más que a

través de los minerales disueltos.

Nitrato promedio = 0.38 mg/l. Termoclina.

El nitrato muestra valores superiores probablemente por acción nitrificante de

las bacterias y otras inherentes a la oxidación biológica del nitrógeno.

Nitratos promedio = 0.51 mg/l.

Hipolimnion.

La actividad biológica se presenta con reductores menores del nitrato debido, a

la descenso en el número de microorganismos cuyo fin es transformar los

nitratos a nitrógeno gaseoso. Figura No. 18.

Nitrato promedio = 0.49 mg/l.

Figura No. 18

Nitratos

00,20,40,60,8

11,2

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


4.1.1.4. N–Amoniacal – Nitritos.

El amoniaco gaseoso es extremadamente soluble en agua, y reacciona con ella

para formar NH4+ OH- ; a un Ph alto, el amoniaco gaseoso libre esta en la

forma no ionizada. Al Ph de la mayor parte de las fuentes de agua, el amoniaco

esta completamente ionizado.

NH4 + H2O NH4OH NH4+ + OH-

Epilimniom.

Siendo un producto de la actividad microbiológica cuando se encuentra en

aguas superficiales se acepta a veces que el nitrógeno amoniacal es una

evidencia química de la contaminación.

N–Amoniacal promedio = 0.058 mg/l.

El valor de 0.1mg/l, correspondiente al mes de mayo/2003, tuvo relación con el

rebose a través del vertedero de la presa produciéndose la circulación del agua

desestratificandose generado por las precipitaciones producidas en la zona.

Termoclina.

El N-amoniacal en los meses de julio/2002 y febrero/2003, presentan ambos

valores mayores como consecuencia de la propia circulación del embalse,

producidas por las lluvias y aportaciones de tributarios al Embalse de Poza

Honda.

N–Amoniacal promedio = 0.059 mg/l. Hipolimnion.

Su presencia en aguas profundas es bastante común, como resultado de

procesos naturales de reducción. Figura No. 19

N–Amoniacal promedio = 0.231 mg/l.

Figura No. 19

N-Amoniacal

0

0,5

1

1,5

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Siendo un paso en el ciclo del nitrógeno, el nitrito se presenta en las aguas

como un producto intermedio en los procesos de oxidación o reducción. En

aguas superficiales crudas, las huellas de nitrito indican contaminación.

Toma Superficial.

En el mes de noviembre/2002, el proceso de eutrofización alcanza su mayor

grado de contaminación y el nitrito arroja valores superiores como

consecuencia del estiaje imperante en la zona.

Nitritos promedio = 0.041 mg/l. Toma de 6 mt.

Se comprende que la concentración relativa de amonio y nitrito sea mayor

donde la descomposición de materia orgánica es más activa, es decir, cerca

del fondo o en las aguas profundas por debajo de la superficie de

compensación donde se mineraliza activamente el plancton ..

Nitritos promedio = 0.040 mg/l.

De acuerdo al descenso de la cota del mes de noviembre del 2002, se

recolecto en dos niveles de profundidad solamente, esta situación, influyó en el

incremento de nitritos de esta toma. Figura No. 20.

Figura No. 20

Nitritos

0

0,05

0,1

0,15

0,2

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Toma # 1 (superficial)Toma # 2 (6mt)Toma # 3 ---------

4.1.1.5. Hierro – Manganeso.

El hierro se encuentra en la mayor parte de las rocas ígneas y en los minerales

arcillosos. En ausencia de oxigeno, el hierro es bastante soluble en estado

reducido.

Epilimnion.

El hierro bajo condiciones reductoras, es relativamente soluble y existe en el

estado ferroso; por la exposición al aire se oxida en estado ferrico. Los limos y

arcillas en suspensión proveniente del aporte de los tributarios y el lavado de

los suelos contienen hierro soluble.

Hierro promedio = 0.10 mg/l.

Las condiciones climáticas propias de la época, coadyuvaron el incremento de

este mineral en los meses de enero, febrero y marzo/2003 y julio/2002.

Mención particular en lo referente al mes de agosto del 2002, al momento de

la recolección de la muestra el ambiente general se caracterizo por la presencia

de una pertinaz lluvia y que por efecto de dilución del agua no se detecto

hierro.

Termoclina.

A medida que aumenta la profundidad disminuye la concentración de oxigeno

disuelto y el hierro aumenta su solubilidad como es el caso del análisis de esta

muestra.


El hierro se encuentra con valores superiores con respecto al epilimnion, las

razones ambientales anteriormente expuestas son las que justifican su mayor

presencia. En al mes de agosto se produce exactamente la misma situación del

epilimnion.

Cabe mencionar que en los meses de noviembre, diciembre/2002, enero y

febrero/2003, no se considero este estrato (termoclina), debido al descenso del

nivel y que por razones obvias solo se se considero la capa superficial y el nivel

de fondo.

Hipolimnion.

En el estrato profundo el hierro presente se encuentra en ausencia de oxigeno

y es muy soluble en un estado coloidal, posiblemente peptizado con materia

orgánica, en la forma de complejos.


El incremento en el fondo en el mes de septiembre/2002 de este mineral, esta

correlacionado con la mayor concentración materia orgánica (10.13 mg/l).

Como se ha dicho en los meses de noviembre y diciembre/2002, enero y

febrero/2003, no se efectuó dicho análisis por en el descenso en la cota y por la

estación lluviosa irregular. Figura No. 21.

Figura No. 21

Hierro

0

0,1

0,2

0,3

0,4

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


El manganeso esta presente en muchos suelos, sedimentos y además en las

rocas metamórficas. En el agua libre de oxigeno, se disuelve fácilmente en

estado manganoso (Mn4+) y puede encontrase en las aguas profundas en

concentraciones superiores.

Epilimnion.

El aporte de los ríos Pata de pájaro y mineral más la presencia de lluvias

contribuyó a la aparición de una coloración oscura en el entorno del punto

fijado para el muestreo característica del manganeso, y materia orgánica La

circulación del embalse, el caudal de los ríos con que entran al cuerpo de agua

es la causa de esta situación.

Manganeso promedio = 0.24 mg/l.

En los meses de enero, febrero, marzo y abril/2003, fue donde incidió

mayormente el estado del clima en el incremento del manganeso (0.68, 0.45,

0.24, 0.39 mg/l).

Cabe resaltar que el mes de enero y febrero el nivel del embalse bajo

ostensiblemente y puede considerarse como un factor que ayude a incrementar

el valor del manganeso.

Termoclina.

El manganeso, cuyo valor en los meses de enero, febrero y marzo alcanzan su

valor mas alto en este periodo de estudio por las razones previamente

expuestas esto, es estado del clima, lavado de los suelos, nivel del embalse,

etc.


Que en los meses de noviembre, diciembre/2002, enero y febrero/2003, solo se

recolectó dos niveles de profundidad por el descenso en el nivel en el embalse.

Sin embargo, se destaca que en los meses de noviembre y diciembre se

presentaron lluvias esporádicas y los ríos de la cuenca aportaron en forma

mínima al embalse lo que no incidió mayormente en el estado funcional de

Poza Honda

Para los meses de enero y febrero/2003, las lluvias se hacían presente no con

la intensidad de la estación lluviosa anterior, y que paulatinamente fueron

aumentando el nivel del embalse y provocando el movimiento de los

sedimentos del fondo a las capas superiores por esta razón sus valores se

encuentran notablemente aumentados.

Al igual que el hierro, para el manganeso se efectuaron dos tomas una en la

superficial y la otra en el fondo por las razones expuestas anteriormente.

Hipolimnion.

Las concentraciones detectadas normalmente en el fondo del embalse son

relativamente menores respecto de los niveles superiores, reiterando que solo

se efectuaron 2 tomas la superficial y la del fondo. Figura No. 22.


Figura No. 22

Manganeso

0

0,2

0,4

0,6

0,8

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


4.1.1.6. Materia Orgánica – Ácido Sulfhídrico.

Puesto que el material orgánico constituye una parte significativa del suelo, y

ya que es utilizado por los organismos acuáticos para construir sus cuerpos y

producir alimentos, es inevitable encontrar productos orgánicos solubles en

agua provenientes del metabolismo, en todas las fuentes de agua.

Ciertos materiales orgánicos presentes en el agua contaminada por las

descargas agrícolas ejercen un efecto muy significativo sobre la vida del cuerpo

de agua de Poza Honda. Aun cuando el efecto no sea dramático, como sucede

con los peces muertos, tiene consecuencias de largo alcance, como el afectar

la reproducción o destruir la cadena alimentaría.

Epilimnion.

El efecto dilución causado por las precipitaciones en los meses julio/2002 y

mayo/2003, promovieron el descenso de materia orgánica, en los meses

restantes los valores presentan un incremento por la actividad biológica y

régimen de luz.

Materia Orgánica promedio = 9.90 mg/l.

Termoclina.

La concentración de materia orgánica disminuye principalmente por que la

acción de la fotosíntesis se ve influida por la temperatura y la incidencia menor

de luz.

Materia Orgánica promedio = 7.26 mg/l. Hipolimnion.

La descomposición anaeróbica de la materia orgánica en el fondo repercute en

la formación de compuestos indeseables y en la disminución de su valor

promedio. Figura No. 23.

Materia orgánica promedio = 6.30 mg/l.

Figura No. 23

Materia Organica

0

5

10

15

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


El sulfuro de hidrógeno que se encuentra presente en algunas aguas

superficiales y pozos profundos, generalmente es producido por

descomposición anaeróbica de los compuestos orgánicos que contienen azufre

o mediante las bacterias reductoras de sulfato que son capaces de convertir al

sulfato en sulfuro.

Epilimnion.

Debido a que el azufre se encuentra en la misma familia del oxígeno, hay

muchos compuestos en los cuales el azufre reemplaza al oxigeno en un

compuesto con propiedades similares.

Ciertas bacterias pueden metabolizar al átomo de azufre para formar sulfuro de

hidrogeno, al igual que las algas y otras plantas pueden metabolizar el oxígeno

para formar agua en la fotosíntesis para dar lugar origen a oxígeno libre y

carbohidratos. El subproducto del proceso bacteriano de la ruptura del H2S es

el azufre libre. Las ecuaciones químicas correspondientes son:

Fotosíntesis

Por Algas

CO2 + 2 H2O CH2O + O2 + H2O

Acción

Bacteriana

CO2 + 2 H2S CH2O + 2 S + H2O

Ácido Sulfhídrico promedio = 1.72 mg/l.

Los meses de enero y febrero/2003, presentaron lluvias irregulares que no

ocasionaron aumentos importantes en el volumen del embalse. Al parecer esta

situación, genero mayor formación de ácido sulfhídrico por el mayor grado de

eutrofización del Embalse de Poza Honda

Termoclina.

El promedio de ácido sulfhídrico se debe fundamentalmente a la difusión del

gas en el cuerpo de agua y, su valor es bajo respecto a la superficial y a la de

fondo.

Ácido Sulfhídrico promedio = 0.47 mg/l.

Las condiciones anaeróbicas en las aguas del fondo favorecen a la mayor

formación de ácido sulfhídrico. Figura No. 24.

Figura No. 24

Acido Sulfhidrico

0123456

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


4.1.1.7. Oxígeno Disuelto – Anhídrido Carbónico.

El oxígeno afecta tanto a la vida microscópica como a las formas más grandes

de vidas. Las bacterias que requieren oxígeno, y que producen CO2 como

subproducto, se conocen como organismo aeróbicos. Aquellas que pueden

vivir sin oxígeno se llaman anaeróbicas. Algunos, llamados organismos

facultativos, se pueden adaptar a cualquier situación. En el embalse de Poza

Honda el oxígeno en la superficie mantiene a los organismos aeróbicos y las

capas del fondo con poca capacidad de oxígeno mantendrán una población de

bacterias anaeróbicas.

Epilimnion.

En el agua superficial, existe una relación simbiótica entre las algas

productoras de oxigeno y las bacterias utilizadoras de oxígeno que aparecen

juntas en la lama, aunque pueden existir colonias individuales de estos

microbios por separado. La cantidad de oxígeno producido por las algas se ve

directamente afectada por la luz solar, de forma que el contenido del mismo

aumenta durante el día y disminuye durante la noche.

Oxígeno disuelto promedio = 13.54 mg/l.

En el mes de agosto/2002 se produce el más alto valor de población algal por

la intensa radiación y el incremento de nutrientes especialmente fosfatos.

Para el mes de febrero/2003 se detectaron valores de oxígeno disuelto y algas

menores al mes anterior, que se explica por las caídas de lluvias en toda la

región. El valor detectado de oxígeno disuelto de 18.6 mg/l O2 en el mes de

marzo/2003 tiene como explicación la intensa radiación del embalse de Poza

Honda lo que causo una mayor producción de algas. En el mes de abril/2003 la

concentración de oxígeno disuelto se mantuvo, pero las lluvias se hicieron

presente y el consecuente rebose de la presa provocó una menor densidad de

fitoplancton.

Termoclina.

Como consecuencia de la disminución en la actividad de la fotosíntesis, y de la

luminosidad, se detecto valores de oxígeno disuelto menores que en del estrato

superior.

Oxígeno Disuelto promedio = 2.84 mg/l.

La concentración de oxígeno disuelto en los meses de enero, febrero, marzo y

abril/2003, es claramente superior al resto de meses en estudio, debido a la

influencia de la estación climática normal de la época y también por la

circulación completa que se empieza a producir motivado por las lluvias, viento

etc. El agua de lluvia rica en oxígeno, la de los afluentes por tener temperaturas

menores viaja inicialmente hasta el fondo desplazando el agua hacia las capas

superiores.

Hipolimnion.

La acción de las bacterias anaeróbicas se llama fermentación y los

subproductos dióxido de carbono, hidrógeno, amoniaco y sulfuro de hidrogeno

consumen el oxígeno en el fondo.

Oxígeno Disuelto promedio = 0.72 mg/l.

La mayor presencia de oxígeno en el mes de marzo/2003 coincide, con la

circulación imperante en todo el embalse de Poza Honda. Figura No. 25.

Figura No. 25

Oxigeno Disuelto

0

5

10

15

20

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


El anhídrido carbónico se produce mediante la respiración nocturna de las

algas. Aun antes de que las actividades del hombre contribuyesen

significativamente al contenido de CO2 en la atmósfera, la respiración de la vida

animal, que es también un proceso consumidor de combustible, introdujo el

CO2 en el aire. Las plantas que contienen clorofila utilizan el anhídrido

carbónico para construir material celular como los carbohidratos. Este proceso

se llama fotosíntesis debido a que necesita fotones de energía del Sol para la

reacción.

Clorofila

6CO2 + 6H2O (CH2O)6 + 6O2

O C6H12O6 (glucosa) + 6O2

Epilimnion

El anhídrido carbónico se disuelve en el agua, reacciona con ella para formar

ácido carbónico, el cual se disocia en iones hidrógeno y en ion bicarbonato,

siguiendo la reacción:

CO2 + H2O H2CO3 H+ + HCO3-

Anhídrido Carbónico promedio = 4.53 mg/l.

La elevada producción del fitoplancton en el mes de agosto/2002 y en

marzo/2003, coadyuvo a la mayor concentración de CO2. En los meses en el

cual el oxigeno disuelto no es detectado, se debe fundamentalmente a su

transformación en carbonatos y bicarbonatos.

Termoclina

La acción de las bacterias anaeróbicas se llama fermentación y es la causa de

la formación del CO2 en las capas profundas también se forman otros

subproductos como amoniaco, sulfuro de hidrógeno, etc.


El aumento de este parámetro a partir de los meses de Noviembre,

Diciembre/2002 y Enero, Febrero, Marzo, Mayo/2003, es debido

sustancialmente al mayor grado de eutrofización y por ende las condiciones

anaeróbicas que facilitan la acción de las bacterias anaeróbicas para la

posterior descomposición y la subsecuente formación de CO2.

Hipolimnion

Los valores de mayor concentración determinados en los meses de Marzo,

Abril, Mayo y Junio/2003, se explica en primer término por los procesos de

fermentación anteriormente explicados, y a la desestratificación producida por

la circulación durante este lapso. Figura No. 26.


Figura No. 26

Anidrido Carbonico

05

10152025

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


4.1.2. Estación de Muestreo: Mitad.

4.1.2.1. Temperatura – Ph.

El mayor incremento de temperatura se produjo en los meses de Enero,

Febrero, Marzo, Abril/2003, relacionados con la estación climática normal de la

época.

Epilimnion

Temperatura promedio = 27.8 °C.

El promedio de temperatura de 27.8 °C incide mayormente en las reacciones

químicas y biológicas que se producen en el agua en este punto de muestreo.

Termoclina

En el mes de julio/2002, incidieron dos factores: la fuerte estación lluviosa

anterior y la ausencia de sol, producidas en los meses posteriores a la

finalización de las lluvias y el segundo: a la renovación o cambio de agua del

embalse por varias ocasiones.

Temperatura promedio = 26.4 °C. Hipolimnion

En los meses de Julio/2002, Mayo y Junio/2003, se reportaron temperaturas

menores por la presencia de agua de lluvia que tienen una mayor densidad lo

que ocasiono el desplazamiento del agua del fondo hacia a las capas

superiores. Figura No. 27.

Temperatura promedio = 26.0 °C.

Figura No. 27

Temperatura

222426283032

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

°C


Los valores superficiales de Ph durante los meses de estudio muestran valores

promedio de 8.4, en los valores detectados se observa un comportamiento

similar con la estación de muestreo anterior (Cola), es decir, una actividad

química y biológica mayor, respecto de los estratos medio y de fondo.

Epilimnion Ph promedio = 8.4

En los meses Enero, Abril, Mayo y Junio/2003, la producción de algas presenta

una tendencia de incremento por situaciones de carácter climatológico como es

el caso de la intensidad de rayos solares y concentración de nutrientes.

Termoclina Ph promedio = 7.6

En las observaciones mensuales se registraron valores menores, por la

disminución de la penetración de la luz en la zona intermedia y en el fondo lo

que implica la menor actividad química y biológica en este nivel.

Hipolimnion

Los valores en el fondo revelan Ph menores a los anteriores, y como es de

conocimiento la penetración de la luz no llega a este estrato, razón por la cual

la formación de iones carbonatos y bicarbonatos son relativamente menores y

por ende el menor Ph. Figura No. 28.

Ph promedio = 7.4

Figura No. 28


6,57

7,58

8,59

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03



La medición de la transparencia a través del disco secchi presenta valores

característicos de aguas eutrofizadas, especialmente en el mes de

Agosto/2002, cuyo valor corresponde a 0.5 pfm donde tuvo incidencia los

rayos solares en el transcurso de este mes. En cuanto al mes de Mayo/2003 el

valor medido de transparencia correspondió a 0.54 pfm y en el mes de

junio/2003 se obtuvo la menor medición que es de 0.4 pfm

Las transparencias obtenidas en los dos últimos meses del periodo en estudio,

también fue afectada por las partículas en suspensión presentes, por la

dispersión de las mismas del fondo hacia la capa superiores y la turbiedad

proveniente de los tributarios y del entorno del vaso de la presa. Figura No. 29.

Figura No. 29

Transparencia

0,40,50,60,70,80,9

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

pfm


Epilimnion

El comportamiento de las algas se altero en los meses de julio del 2002 y

marzo y junio/2003, especialmente por el incremento de los valores de fosfatos

y nitratos.

En estos meses, el fosfato presentan valores de 0.5 mg/l; 0.6 mg/l y 0.65 mg/l,

respectivamente, esto es, como consecuencia de las aportaciones y lavado de

los suelos que conducen los nutrientes al embalse. De esta manera se explica

el incremento exagerado del fitoplancton en este lugar del embalse.

Para el nitrato se presenta una situación similar de resultados, es decir 0.5

mg/l; 0.57 mg/l y 0.6 mg/l, respectivamente. Figura No. 30.

Figura No. 30


0100000200000300000400000500000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Mitad 1

De acuerdo a los resultados presentados en el grafico, dentro del lapso del mes

de julio, octubre/2002 hasta abril/2003, no hubo mayor producción de

fitoplancton por la ausencia de rayos solares y el ambiente fresco presente en

toda la región nos permite concluir, que el efecto resultante se inscribió en la

desaceleración de la actividad química y biológica del agua.

Termoclina

La actividad bacteriana en este estrato aumenta con la carga contaminante,

cuando estos son biodegradables, teniendo a reducir el nivel de oxígeno. La

penetración de la luz es efectivamente mucho menor que en la capa superficial,

y que es la causa fundamental del comportamiento menor de producción de

algas. Figura No. 31.

Figura No. 31


020000400006000080000

100000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Mitad 2

Debido a la mayor radiación presente en los meses de Agosto/2002 y Enero,

Marzo/2003, fué la causa de la mayor actividad biológica en este nivel. Es decir

se produjo mayor formación de algas.

Hipolimnion

El ciclo de producción biológica se ajusta estrechamente a los cambios

ambientales. Parte del fitoplancton sedimenta y parte es devorado por el

zooplancton. Los animales del plancton tienen la costumbre de comer en las

capas superficiales y de excretar en las profundas, por los que contribuyen al

transporte vertical hacia abajo de la materia orgánica. Figura No. 32

Figura No. 32


01000020000300004000050000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02 Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Mitad 3

La cantidad de plancton vegetal o fitoplancton, que se produce es proporcional

a la cantidad de nutrientes disponibles, mas los que llegan con los afluentes,

procedentes del lavado de los suelos de la cuenca. De esta manera podemos

explicar la mayor cantidad de algas producidas en el mes de septiembre/2002.

La composición cuantitativa conscerniente a las Cianophytas en la estación de

muestreo Mitad tiene las siguientes consideraciones:

La Agmenellum Quadridyplicatum tiene como característica encontrarse en

aguas contaminadas como las del fondo del embalse ricas en materia

alimenticia compuestas primordialmente de nitrógeno orgánico. Figura No. 33.

Figura No. 33


02000400060008000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Mitad 1Mitad 2Mitad 3

La Oscillatoria Subtilissima, se encuentra en la zona de menor contaminación y

su mayor crecimiento se produce en el mes de Agosto/2002. Figura No. 34

Figura No. 34


0

10000

20000

30000

40000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Las algas verde-azules (Cianophytas), son los grupos de algas que más

frecuentemente se encuentran en las aguas que contienen detritos orgánicos.

La Anabaenopsis Raciborskii, es un organismo que se encuentra tanto en la

zona menos contaminada desde Julio hasta Diciembre/2002, y en la zona

contaminada de mayor material orgánico desde Enero hasta Junio/2003. Cabe

destacar que en Febrero y Marzo las lluvias caídas provocaron su disminución.

Figura No.35.

Figura No. 35


0100000200000300000400000500000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


El análisis de las Clorophytas o algas verdes tiene como principal especie a la

Chlorella Vulgare, y que se encuentra sus valores aumentado en el fondo por la

presencia importante de nutrientes (fosfatos) y la disminución del nivel del

embalse. Figura No. 36

Figura No. 36

Chlorella Vulgare

050000

100000150000200000250000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


La Chlamidomona Globosa acentúa su presencia en la zona de mayor

contaminación orgánica, el nitrógeno es el principal nutriente para su

desarrollo, también tiene incidencia la disminución del nivel del embalse. Figura

No. 37.

Figura No.37


05000

1000015000200002500030000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Las Chrisophytas, como la Synedra Acus se encuentran presentes en la zona

de menor contaminación y desapareciendo en zona de contaminación por

materiales orgánicos. Figura No. 38.

Figura No.38

Synedra Acus

0100020003000400050006000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml



El fósforo se encuentra en mucho de los minerales comunes, como la apatita,

en forma de fosfato (PO4----3). Puesto que los compuestos fosfatados se

emplean ampliamente como fertilizantes, es común que el aporte de fosfatos

en los lodos sean provenientes de desechos agrícolas de los cultivos de la

zona.

Epilimnion

El fosfato es la causa principal del crecimiento excesivo de algas, lo cual

conlleva a la eutrofización del embalse.

Fosfatos promedio = 0.45 mg/l

La mencionada eutrofización se manifiesta con la alta producción de algas, y

elevada concentración de fosfato en el mes de agosto/2002, Marzo y

Junio/2003.

Termoclina

Los fosfatos detectados con una concentración de 0.68 mg/l, correspondiente a

Marzo/2003, tiene relación con el movimiento o dispersión del sedimento del

fondo donde gran parte se encuentra presente producto de la actividad

biológica en la superficie y la subsecuente precipitación de las sales de

fosfatos.


Hipolimnion

Hay que destacar dos hechos muy importantes; el primero el llenado de la

presa y la consiguiente evacuación y el segundo el bajo nivel que se produce

en la época de estiaje.

El fosfato para el primer caso que corresponde al mes de julio/2002 con un

valor de 0.65 mg/l, tiene como causa principal el aporte de afluentes y lavado

de suelo, para el segundo caso que corresponde a Diciembre/2002 su

incremento de 0.6 mg/l se explica porque la reducción del nivel del embalse

alcanza su mayor grado. Figura No. 39.

Fosfato promedio = 0.38 mg/l

Figura No. 39

Fosfatos

00,20,40,60,8

1

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Las formas de nitrógeno presentes se refieren a que su introducción, es por un

lado mediante el uso de fertilizantes y por otro lado por el proceso del ciclo del

nitrógeno.

Epilimnion

La concentración de nitrato 0.5 mg/l en el mes de Agosto/2002, tiene como

causa en primer termino, el escurrimiento de los suelos y con ello el arrastre de

los fertilizantes utilizados en la agricultura y en segundo termino por la

nitrificación mediante la acción bacteriana. Para los meses de Marzo y

Junio/2003, considero fundamentalmente a la circulación del agua y a la

nitrificación biológica, los factores mas destacados en el incremento en su

concentración, cuyos valores corresponde a 0.72 mg/l y 0.6 mg/l

respectivamente.

Nitratos promedio = 0.41 mg/l Termoclina

En las aguas de esta zona intermedia los meses de Marzo y Junio/2003, sus

valores resultantes es una consecuencia de la gran actividad química y

biológica producida en la capa superior, Y cuyos valores corresponden a 0.75

mg/l y 0.53 mg/l respectivamente..

Nitratos promedio = 0.37 mg/l Hipolimnion

La acción de las bacterias nitrificantes, como es el caso de las nitrosomas y

las nitrobacter, es la causa principal del elevado valor de nitratos en Octubre

del 2002 y en Enero del 2003, como también el nitrógeno orgánico formado en

el fondo. Figura No. 40.

Nitratos promedio = 0.56 mg/l

Figura No. 40

Nitratos

0

0,5

1

1,5

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


4.1.2.4. N–Amoniacal – Nitritos.

El amoniaco es el producto natural de descomposición de los compuestos

orgánicos nitrogenados. Estos compuestos se originan inicialmente como

materia proteica vegetal la cual puede transformarse en proteínas animales. El

regreso de este material proteico al ambiente mediante la muerte, o a través de

desechos, produce los compuestos nitrogenados en el ambiente, que entonces

se descomponen para producir amoniaco.

Epilimnion

Como producto de la fuerte estación invernal del año 2002, el mes de agosto

del mismo año presenta ausencia de amoniaco, debido a su oxidación total por

la actividad biológica transformándolo en nitrato y nitrógeno gaseoso. Como es

un compuesto presente en la oxidación biológica, generalmente se encuentra

en menor cantidad.

N-Amoniacal promedio = 0.05 mg/l Termoclina

El amoniaco es uno de los compones transitorios en el agua puesto que es

parte del ciclo del nitrógeno y se ve influido por la actividad biológica. En el mes

de Agosto/2002, Enero, Abril y Junio/2003, esta actividad fue nula por un lado y

muy disminuida para el otro. Se obtuvieron valores de 0.0 mg/l para Agosto y

Enero y de 0.01 mg/l para Abril y Junio en cada caso.

N-Amoniacal promedio = 0.04 mg/l

Hipolimnion

La concentración de 0.16 mg/l corresponde al mes de agosto/2002 y es la mas

alta respecto a los meses en estudio. Esto explica la intensidad de la actividad

reductora en el fondo, por parte de bacterias desnitrficantes transformando los

nitratos a amoniaco y luego a nitrógeno orgánico. Figura No. 41.

N-Amoniacal promedio = 0.07 mg/l

Figura No. 41

N-Amoniacal

0

0,05

0,1

0,15

0,2

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Algunos materiales en el agua son transitorios como es el caso de los nitritos,

debido a que tienden a ser oxidado o reducido, ya sea mediante la actividad

biológica, o directamente.

Epilimnion

La disminución o nula actividad biológica producidas probablemente por el

efecto dilución de las aguas lluvias para los meses Julio/2002, Febrero, Marzo,

Abril y Mayo/2003 y en lo referente a los meses de Agosto, Septiembre,

Octubre Noviembre Diciembre/2002 y Enero/2003, los valores encontrados en

un rango de 0.055 a 0.099 mg/l, revela el avance paulatino del proceso de

eutrofización mediante el aumento de las reacciones químicas y biológicas.

Nitritos promedio = 0.03 mg/l Termoclina

Los nitritos presentan un cuadro similar al del epilimnion, su mayor formación

corresponde al mes de Agosto y Septiembre del 2002 con valores de 0.12 mg/l

y 0.10 mg/l, esto claramente nos indica el avance de la contaminación y la

subsiguiente formación de subproductos como el nitrito, debido al aporte de

nutrientes causantes de eutrofización del embalse de Poza Honda.

Nitritos promedio = 0.11 mg/l Hipolimnion

Los nitritos tuvieron en el mes de Febrero y Junio/2003, su mayor valor que se

sustenta por la intensidad de los rayos solares y la consecuente velocidad de

las reacciones químicas y biológicas. Para el caso de Julio/2002, Marzo, Abril y

Mayo/2003 nuevamente debo hacer hincapié en la estación lluviosa que se

presento en los antedichos meses. Figura No. 42

Nitritos promedio = 0.04 mg/l

Figura No. 42

Niritos

0

0,05

0,1

0,15

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Toma # 1 (superficial)Toma #2 (8mt)Toma # 3 (16mt)

4.1.2.5. Hierro – manganeso. Epilimnion

El hierro registra valores altos en los meses de Enero/2003: 0.1 mg/l,

Abril/2003: 0.12 mg/l, Mayo/2003: 0.39 mg/l. en lo conscerniente al mes de

Enero la disminución del nivel del embalse facilita el aumento de su valor en el

mencionado mes, en el caso de abril y Mayo es consecuencia directa de la

presencia de lluvias, del viento, en la remoción del hierro del fondo hacia las

capas superiores

Hierro promedio = 0.10 mg/l Termoclina

En ausencia de oxígeno, el hierro es bastante soluble y existe en el estado

ferroso y puede estar presente en limos y arcillas. En Septiembre/2002 el valor

de 0.12 mg/l encontrado obedece sustancialmente, a lo expuesto

anteriormente, es decir aumenta su solubilidad.

En Mayo y Junio/2003 el movimiento de las aguas por la circulación ocasiono

el incremento también en estos meses a valores de 0.12 mg/l.

Hierro promedio = 0.08 mg/l Hipolimnion

La estación invernal del 2002 fue intensa y las lluvias se presentaron hasta el

mes de Julio/2002, el hierro se incremento a 0.25 mg/l, cae en Agosto para

luego incrementarse en Septiembre y paulatinamente ir disminuyendo hasta el

mes de Abril/2003 donde se produce un incremento considerable en los tres últi

meses posteriores en estudio, cuyos valores corresponden a 0.33, 0.28 y 0.32

mg/l, debido a la dispersión del sedimento y las condiciones anaeróbicas del

fondo. Figura No. 43

Hierro promedio = 0.17 mg/l

Figura No. 43

Hierro

00,10,20,30,40,5

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Hay evidencias que indica que el manganeso se encuentra en aguas

superficiales tanto en suspensión en estado cuadrivalente, como en estado

trivalente formando un complejo soluble, relativamente estable.

Epilimnion

En Julio/2002, Enero, Febrero, Marzo, Abril, Mayo y Junio/2003, el manganeso

se determina con valores relativamente altos de los restantes meses la

disminución del nivel del embalse, la dispersión del sedimento del fondo en la

zona lluviosa explica esta situación.

Manganeso promedio = 0.22 mg/l

Termoclina

Situación parecida a la anterior, se presenta en esta zona intermedia, las

condiciones climáticas, la circulación del agua, el aporte de los tributarios nos

conducen a explicar la situación del manganeso en esta muestra.


Hipolimnion

Las aguas profundas que contienen anhídrido carbónico y no contienen

oxígeno disuelven el mineral reduciéndolo a oxido y transformándolos en

bicarbonatos solubles. A partir de Noviembre/2002 la concentración de

manganeso es de 0.14 mg/l, y empieza a incrementarse hasta alcanzar su

mayor valor en Abril/2003, cuyo valor es de 0.43 mg/l.

Por lo anteriormente expuesto en los últimos meses del año 2002 el aumento

se debe a la disminución del nivel del embalse y al aumento de la eutrofización.

En lo que respecta a los meses subsiguientes, el sedimento de fondo que por

los cambios de temperatura y el inicio de la estación lluviosa dispersan los

lechos de fondo hacia las capas superiores aumento su concentración. Figura

No. 44.


Figura No. 44

Manganeso

00,10,20,30,40,5

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


4.1.2.6. Materia Orgánica - Ácido Sulfhídrico.

Ciertos materiales orgánicos presentes en el agua por las descargas agrícolas

(como los residuos de pesticidas), ejercen un efecto muy significativo sobre la

vida del embalse. Aun cuando el efecto, como sucede con los peces muertos,

tiene como consecuencia, el afectar la reproducción o destruir la cadena

alimenticia.

Epilimnion

El mayor aumento de materia orgánica se reflejo en Agosto/2002 y continuo

con esta tendencia aunque algo menor hasta el mes de Abril y posteriormente

Junio/2003. En los meses anteriormente descrito, es el mes de Agosto, el que

presenta mayor concentración (12.3 mg/l), valor que esta correlacionado con la

producción del fitoplancton del mes antes mencionado.

El ambiente nublado y el descenso de la temperatura, incidió en la disminución

de materia orgánica en los meses restantes, a excepción de Julio/2002, cuyo

valor se vio influido por la intensa estación lluviosa del 2002.

Materia Orgánica = promedio 9.84 mg/l

Termoclina

El promedio menor determinado en este nivel, es menor que el anterior, debido

a la desaceleración de la formación de fitoplancton, ante mínima o nula

penetración de luz en este nivel.

Materia Orgánica promedio = 7.67 mg/l Hipolimnion

En general en el fondo de esta estación de muestreo, los promedios de materia

orgánica muestran un comportamiento similar a la zona intermedia, destacando

la ausencia total de luz que incide en la formación de concentraciones menores

de materia orgánica. Figura No. 45.

Materia Orgánica promedio = 5.75 mg/l

Figura No. 45

Materia Organica

0

5

10

15

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


El ácido sulfhídrico según los promedios muestra un comportamiento acorde,

con el avance de la eutrofización.

Epilimnion

A partir del mes de Enero/2003 se detecto 4.26 mg/l; incrementándose en el

mes de febrero a 5.54 mg/l, para luego en el mes de marzo alcanzar el valor

de 5.53 mg/l.

En mayo y Junio/2003, los valores empiezan a descender motivados por la

estación lluviosa que finalmente origino el llenado del vaso de la presa de Poza

Honda.

Ácido Sulfhídrico promedio = 2.05 mg/l

Termoclina

El promedio de ácido sulfhídrico corresponde al valor de 1.58 mg/l,

probablemente las bacterias reductoras del azufre, no encontraron las

condiciones idóneas para realizar o completar la reducción a SH2, o por la

propia capacidad de difundirse a las capas superiores.

Ácido Sulfhídrico promedio = 1.58 mg/l Hipolimnion

Los promedios encontrados en el fondo, son mayores a los niveles superiores,

debido fundamentalmente a las condiciones anaeróbicas y por la acción

reductora de las bacterias del azufre que reducen este, hasta alcanzar a formar

el gas sulfhídrico.

El mes de Enero/2003 (8.65 mg/l), muestra la mayor producción de gas

sulfhídrico, que refleja las condiciones del fondo por la descomposición de la

materia orgánica en el verano del 2002. Figura No. 46.

Ácido Sulfhídrico promedio = 2.50

Figura No.46

Acido Sulfhidrico

02468

10

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


4.1.2.7. Oxígeno Disuelto – Anhídrido Carbónico.

La mayor concentración de oxigeno en la capa superficial se debe

exclusivamente, a la actividad fijadora de oxigeno de las algas en los procesos

biológicos que allí se realizan.

En tal virtud la situación en las capas inferiores es a la inversa, puesto que el

consumo de oxigeno por parte de bacterias, la oxidación de la materia orgánica

explican el déficit de oxigeno en el fondo.

Epilimnion

Cuando los contanimantes son biodegradables aumenta la carga contaminante

por la actividad bacteriana tendiendo a reducir el nivel de oxigeno disuelto en la

zona trofogena del embalse; sin embargo, el factor compensante es la

presencia de algas que producen oxígeno durante la fotosíntesis en el día, y

producen con frecuencia en los días brillantes y soleados, cayendo durante la

noche cuando el proceso se restringe.

Oxígeno Disuelto =promedio 11.75 mg/l Termoclina

El oxígeno disuelto disminuye notoriamente en este estrato, indiscutiblemente

por la presencia de reductores y deficiente actividad biológica, tal situación no

se ajusta a la desarrollada en Abril/2003, cuyo valor alcanza su máximo nivel

de 3.6 mg/l O2, como consecuencia del aporte de aguas lluvias que

normalmente viajan hacia el fondo del embalse.

Oxígeno Disuelto promedio = 0.50 mg/l Hipolimnion

La fermentación ocasionada por las bacterias anaeróbicas cuyo subproducto

son dióxido de carbono, hidrógeno, amoniaco y sulfuro de hidrógeno. La

acumulación continua de vegetación en descomposición provoca las

condiciones anaerobias del hipolimnion. Figura No. 47.

Oxígeno Disuelto promedio = 0.03 mg/l

Figura No. 47

Oxigeno Disuelto

05

1015

20

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Epilimnion

El anhídrido carbónico producido en los meses de julio y agosto/2002 de 6.0 y

8.0 mg/l, confirma la actividad biológica apoyada por el régimen de luz, y la

notoria producción de algas.

La actividad biológica en los meses subsiguientes no tuvo el mismo eco, por

cuanto el régimen de luz fue irregular, la transformación a carbonatos y

bicarbonatos y la circulación completa del embalse en los meses

especialmente de la estación invernal, ocasiono que el anhídrido carbónico no

sea detectado.

Anhídrido Carbónico promedio = 4.1 mg/l Termoclina

El anhídrido carbónico a medida que aumenta la profundidad, el oxígeno es

consumido en las reacciones de oxidación y reducción por las bacterias con la

consecuente formación de CO2.

El valor de 13.0 mg/l detectado en enero del 2003 esta relacionado con la

mayor concentración de material biodegradable, y que en cierto modo revela el

desarrollo del proceso de eutrofización.

Anhídrido Carbónico promedio = 5.07 mg/l

Hipolimnion

La descomposición de la materia orgánica, los procesos de oxido reducción

consumen el oxigeno disuelto, creando condiciones anaeróbicas del agua.

Evidentemente que la producción de algas esta coligada con la del anhídrido

carbónico como lo explica el siguiente comentario: En los meses de Enero,

Febrero, Marzo y Abril/2003, encontramos la mayor formación de CO2,

explicándose que la mayor parte de las algas muertas sedimentan para luego

descomponerse en CO2 y otros subproductos. Figura No. 48.


Figura No. 48

Anidrido Carbonico

05

101520253035

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


4.1.3. Estación de Muestreo: Castillo. 4.1.3.1. Temperatura – Ph.

La temperatura es una manifestación de la energía cinética molecular dentro de

un cuerpo. El termino temperatura se utiliza para conocer el grado relativo de

calentamiento o enfriamiento. La temperatura del embalse de Poza Honda esta

gobernada por la vegetación, las condiciones climatológicas y el grado de

mezcla existente.

La importancia de la determinación de la temperatura se debe a la relación que

guarda este parámetro con las relacciones químicas, el cambio de propiedades

físicas y con una mayor complejidad, con las reacciones biológicas que se

producen en el agua del embalse.

Epilimnion

En el epilimnion la temperatura de los meses Enero, Marzo, Abril y Mayo/2003

se encuentran notoriamente incrementados y alcanza su mayor valor en Abril

que corresponde a 31°C. Las condiciones climatológicas es la razón

fundamental de la situación en anteriormente descrita.

Los meses de Julio, Agosto, Septiembre, Octubre, Noviembre y

Diciembre/2002, Febrero y Junio/2003 como se ha mencionado anteriormente,

el régimen de luz fue irregular al presentarse días nublados en su mayoría, y

con ello incidiendo en temperaturas menores en los meses arriba descritos.

Temperatura promedio = 28.36 °C

Termoclina

El valor promedio de la temperatura de 26.51 °C, es un indicador de la

reducción de la actividad biológica por factores plenamente identificados los

mismos que se han detallados en el transcurso del estudio.


Conforme la situación del clima cambia, los resultados serán mayores en un

caso y menores en el otro.

Los días nublado prevalecieron en los meses de Julio, Septiembre, Octubre,

Noviembre y Diciembre/2002 y la temperatura promedio media registro 26.5°C

aproximadamente. Situación diferente sufrieron los meses de Enero y

Marzo/2003 cuyo valor oscilo entre 27.8 °C y 26.9 °C.

Hipolimnion

La temperatura del mes de Julio/2002 se incremento paulatinamente hasta el

mes de enero/2003. Inicialmente se midió 25.6 °C y se alcanzo el valor de 27.0

°C en este lapso. El aumento de la población de algas como la transición

climática son factores que regulan la temperatura en el fondo.

En los meses de Febrero (26.0 °C), Marzo (26.2 °C), la circulación del agua

propia de la estación invernal, produjo el descenso de la temperatura. Figura

No. 49.


Figura No. 49

Temperatura

2426283032

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

°C


El aumento del ph en el epilimnion, como consecuencia del anhídrido carbónico

producido por las algas en la fotosíntesis, contribuye a que precipiten minerales

que contienen fósforo, uno de los nutrientes más importantes.

Epilimnion

Los valores de Ph medidos en Julio (7.4), Octubre (7.8), Noviembre (7.4) y

Diciembre (7.6), es el resultado de la menor actividad química y biológica por el

descenso de la temperatura ante la ausencia de días soleados en la Cuenca de

Poza Honda.

A partir del mes de Enero Hasta Junio/2003, la estación invernal se hizo

presente y con ello el aumento de la temperatura del agua.

Ph promedio = 8.18 Termoclina

El comportamiento del Ph durante este periodo, fue incrementándose durante

el avance de los meses

Ph Promedio = 7.58

Hipolimnion

Según los valores medidos dentro del periodo en estudio, la temperatura en el

fondo disminuye, y que luego va aumentando paulatinamente hasta alcanzar

valores mayores en la estación lluviosa y soleada.

Como podemos observar al aumentar la temperatura en el verano la diferencia

entre las aguas superficiales y la del fondo aumenta, dejando claramente

establecida la zona intermedia que es la termoclina. Figura No. 50.

Ph promedio = 7.42

Figura No. 50


6

7

8

9

10

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03



La transparencia medida a través de disco secchi alcanzo su valor mayor de

1.12 pfm como ya se ha mencionado la fuerte estación lluviosa que precedió al

inicio de este estudio, propicio esta transparencia, por el efecto dilución

provenientes de las precipitaciones. Figura No. 51.

Transparencia promedio = 0.73 pfm

Figura No. 51

Transparencia

0,4

0,60,8

1

1,2

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

pfm


Epilimnion

Las características de la zona trofógena (influencia de la luminosidad), se

acentúa en los meses de mayor producción de fitoplancton que corresponden a

Julio/2002 con 115.536 cel/ml, Agosto/2002 con 121.000 cel/ml, Octubre/2002

con 107.200 cel/ml, Diciembre/2002 con 92.147 cel/ml, destacándose que en

Septiembre, Noviembre/2002, Enero/2003, la intensidad de luz fue menor y la

producción de algas fue de 27.159 cel/ml; 11.017 cel/ml; y 310 cel/ml

respectivamente.

La situación en el mes de Julnio/2003, dista de las anteriores por razones de

evacuación de las aguas y las precipitaciones, su valor corresponde a 132

cel/ml

Cabe destacar el hecho de que las concentraciones de nutrientes son muy

importantes, y no es menos cierto que sin la presencia de la luminosidad, el

crecimiento no es proporcional a la presencia de fosfatos y nitratos. Figura No.

52.

Epilimnion promedio = 4318181 cel/ml

Figura No. 52


020000400006000080000

100000120000140000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Castillo 1

Termoclina

El valor promedio resultante corresponde al de 27235 cel/ml, inferior al de la

zona trofogena, sin embargo en el mes de Mayo/2003 que es de 68000 cel/ml,

se produce un repunte por la circulación que causa un reabastecimiento de

materia alimenticia de las zonas profundas a las capas superficiales y con esto

a la zona de producción. Figura No. 53.

Termoclina promedio = 27235 cel/ml

Figura No. 53


0

20000

40000

60000

80000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel /ml

Castillo 2

Hipolimnion

La ausencia de luminosidad en la zona trofolitica, incuestionablemente es la

causa del descenso del fitoplancton medido, empero la situación en el mes de

Mayo/2003 (64250 cel/ml) es similar al de la zona intermedia por el

reabastecimiento de materia alimenticia desde el fondo hacia la capa

superficial.

En el inicio del periodo en estudio se puede observar muy notoriamente el

incremento paulatino del fitoplancton, para luego descender con la caída de las

primeras lluvias. Figura No. 54.

Hipolimnion promedio =21912 cel/ml

Figura No. 54


010000200003000040000500006000070000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Castillo 3

Las Cianophytas en la estación de muestreo Castillo, se encuentran presente

como en las muestras anteriores. La Agmenellum Quadriduplicatum qon mayor

cantidad de células en el fondo por existir allí materia alimenticia y revela su

condición propia de crecer en aguas contaminadas, a la inversa sucede en las

capas superficiales donde se encuentra en menor cantidad por existir menos

contaminación. Figura No. 55.

Figura No. 55

Agmenellu Quadriduplicatum

05000

1000015000200002500030000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02 Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Castllo 1castillo 2Castillo 3

La Oscillatoria Subtilissima se encuentra ubicada en la zona denominada de

contaminación menor y desaparece en la zona de mayor contaminación.

Figura No. 56.

Figura No. 56


0100020003000400050006000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02 Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Castillo 1Castillo 2Castillo 3

El organismo Anabaenopsis Raciborskii sensible a la presencia de materia

orgánica conteniendo nitrógeno provoca su mayor desarrollo en las

denominadas zonas de contaminación. Figura No. 57.

Figura No. 57


020000400006000080000

100000120000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02 Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


La Chlorella Vulgare perteneciente a la familia de las Clorophytas al igual que

las anteriores, presentan un mayor desarrollo en aguas contaminadas y su

disminución se efectúa al producirse la descarga por el túnel de fondo o el

rebose por el vertedero.. Figura No. 58.

Figura No. 58

Chlorella Vulgare

02000400060008000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02 Nov-02

Dic-02 Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


La Chlamidomona Globosa se encuentra presente en la zona de contaminación

con mayor número de células lo que indica su afinidad con la materia orgánica

dispersa en el agua. Figura No. 59

Figura No. 59


0

5000

10000

15000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02 Nov-02

Dic-02 Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml



Los fosfatos están presentes en el agua como fosfato ácido (HPO4- 2) y fosfatos

de ácido (H2PO4- 0), o al aumentar el ph en la forma de ortofosfato

Efecto del Ph sobre la distribución de diferentes especies de Fosfato

H2PO4- 1 HPO- 2 PO4- 3

100 80 60 40 20 0

5 6 7 8 9 10 11

También encontramos fosfatos condensados y fosfatos con enlaces orgánicos.

Pueden encontrarse en forma soluble, en partículas de detritus o en el cuerpo

de organismos acuáticos.

Estas formas de fosfatos llegan al agua por varias fuentes. En aguas usadas en

lavanderías se agregan grandes cantidades de fosfatos ya que este es uno de

principales constituyentes de los agentes limpiadores comerciales. Los

ortofosfatos aplicados en agriculturas como fertilizantes, llegan a las aguas del

embalse arrastrado por las lluvias y afluentes. Los fosfatos orgánicos son

formados principalmente en procesos biológicos.

Epilimnion

Los fosfatos se encuentran incrementados en los meses de Noviembre,

Diciembre/2002, Enero, Febrero, Marzo y Abril/2003, la reducción del nivel del

embalse y la posterior circulación del mismo determinaron su mayor

concentración cuyos valores corresponden 0.3 mg/l, 0.3 mg/l, 0.25, mg/l 0.45

mg/l ,0.53 mg/l y 0.38 mg/l respectivamente.


Termoclina

Los fosfatos detectados a partir de Noviembre/2002, hasta Marzo/2003,

mantiene un promedio de 0.4 mg/l. Simultáneamente a esta situación, la cota

alcanzo niveles críticos que se prolongo hasta Enero/2003 y que incidió en los

resultados del análisis de fosfato.


Hipolimnion

Los fosfatos en el fondo aumentaron su concentración en Enero/2003, hasta

Abril/2003. El inicio de la estación invernal promovió que los sedimentos de

fondo, conteniendo fosfato orgánico más el aporte del fósforo utilizado en la

agricultura alcanzo valores de 0.57, 0.57, 0.48 y 0.40 mg/l respectivamente.

Para el caso de Julio/2002, donde se alcanza la mayor concentración de 0.63

mg/l, obedece a las condiciones del clima y el arrastre del fósforo por las

lluvias, como consecuencia de la aplicación de este, como fertilizante por los

agricultores, que en el inicio de cada estación invernal lo utilizan en la

agricultura. Figura No. 60.


Figura No. 60

Fosfatos Totales

0,20,30,40,50,60,7

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Epilimnion

Los nitratos muestran valores, que denotan un aumento a partir del mes de

Septiembre/2002, hasta Abril/2003, y que esta relacionado con el descenso del

nivel de la cota del embalse. Ambos factores aceleran la eutrofización que

dificultan el tratamiento del agua para su potabilización.

Nitratos promedio 0.34 mg/l Termoclina

En el mes de Diciembre la cota alcanzo su menor nivel, y los valores de nitratos

aumentaron, alcanzando una media de 0.4 mg/l hasta Abril/2003. Debemos

resaltar que a fines del mes de Abril se produjo el primer rebose de las aguas

por el vertedero, luego de lo cual influyo en la disminución en su concentración

de este parámetro.

Nitratos promedio = 0.32 mg/l Hipolimnion

Las consideraciones anteriormente anotadas rigen la concentración de este

parámetro en la zona del fondo. En el mes de Noviembre se detecta 1.0 mg/l, y

en Enero 1.7 mg/l, este irregular comportamiento se debe a los cambios

producidos en el agua por factores ambientales y del nivel en el embalse.

Figura No. 61.

Nitratos promedio = 0.54 mg/l

Figura No. 61

Nitratos

0

0,5

1

1,5

2

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


4.1.3.4. Nitrógeno Amoniacal – Nitritos.

Epilimnion

Para el caso del nitrógeno amoniacal se encuentran valores de 0.1 mg/l, y 0.11

mg/l en los meses de Septiembre y Octubre/2002. Esta cifra representa las

más altas concentraciones, y evidencian un mayor grado de contaminación

química.

Nitrógeno Amoniacal promedio = 0.07 mg/l Termoclina

En la zona intermedia donde la fotosíntesis disminuye ostensiblemente, el

nitrógeno amoniacal reponta valores menores comparado con la zona de

producción.

Nitrógeno Amoniacal promedio = 0.05 mg/l Hipolimnion

La acción de las bacterias desnitrificantes fue mayor en los meses de Febrero y

Abril/2003, con valores de 1.03 mg/l y 1.03 mg/l para ambos casos. El

sedimento del fondo, conteniendo nitrógeno orgánico fue removido por la

circulación hacia las capas superiores. Figura No. 62

Nitrógeno Amoniacal promedio = 0.23 mg/l

Figura No. 62

N-Amoniacal

00,20,40,60,8

11,2

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Epilimnion

Los nitritos a partir de Agosto/2002, hasta Febrero/2003, se presentan con un

incremento paulatino, para luego en los meses de Marzo, Abril y Mayo/2003

desaparecer, debido al efecto dilución de las aguas por la acción de las lluvias

que en aquel entonces se producían con mayor intensidad.

Nitritos promedio = 0.03 Termoclina

En Agosto/200 el mes que tuvo mayor luminosidad y por ende mayor actividad

en la zona de producción, creo las condiciones propicias para la acción de las

bacterias desnitrificantes al producir mayor concentración de amoniaco 0.11

mg/l.

En los meses de Marzo, Abril y Mayo los nitritos no se detectaron( 0.0 mg/l) por

las mejores condiciones del agua..


Hipolimnion

La desaparición de los nitritos del fondo, sirven como indicador de la circulación

y renovación del agua en los meses de Marzo Abril y Mayo/2003. Solo en

Junio/2003 el incremento (0.15 mg/l) es notable por el reinicio de la actividad

biológica. Figura No. 63


Figura No. 63

Nitritos

00,050,1

0,150,2

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


4.1.3.5 Hierro – Manganeso.

El hierro existe en el suelo, principalmente como oxido férrico que es insoluble.

En algunas partes se encuentra como carbonato ferroso (siderita), que es

ligeramente soluble. El anhídrido carbónico, puede disolver cantidades

apreciables de carbonato ferroso, conforme la siguiente reacción:

FeCO3 + CO2 + H2O F++ + 2HCO3-

De la misma manera que se disuelven los carbonatos de calcio y magnesio.

Sin embargo, también existen problemas en sitios donde hay compuestos

férricos insolubles. Siempre que se tenga oxígeno disuelto no sucederá la

dilución de cantidades apreciables de hierro, aun en presencia de anhídrido

carbónico. En cambio, bajo condiciones anaerobias, se reduce el hierro férrico

a ferroso.

En la capa superficial del embalse, debido a su Ph y concentración de oxígeno

disuelto, el hierro introducido es rápidamente oxidado y convertido en forma

insoluble, pero cuando lo hace la materia orgánica en el cuerpo de agua, esta

abate el oxigeno disuelto creando las condiciones propicias para la reducción.

Epilimnion

El hierro en los meses de noviembre y diciembre/2002, que es la fase final del

estiaje se detecto 0.11 y 0.13 mg/l de hierro, y que representan los valores mas

altos de este periodo y que esta relacionado con la gran actividad química y

biológica consumidora de oxigeno y los niveles bajos del embalse.

Hierro promedio = 0.07 mg/l Termoclina

Al igual que la muestra anterior son los meses de noviembre y Diciembre los

que presentan mayor concentración 0.11 y 0.13 mg/l.

Hierro promedio = 0.08 mg/l Hipolimnion

El problema del hierro se correlaciona con la estatificación del embalse, por las

condiciones anaeróbicas en el fondo el hierro se encuentra solubilizado en los

lodos béntales. Cuando se produce la circulación se distribuye por todo el

embalse provocando problemas, que se solucionan hasta que haya

transcurrido suficiente tiempo para su oxidación y sedimentación por efectos

naturales. Figura No. 64.

Hierro promedio = 0.13 mg/l

Figura No. 64

Hierro

00,050,1

0,150,2

0,250,3

0,35

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Toma #1 (superficial)Toma # 2 (8mt)Toma # 3 (16mt)

El manganeso existe en el suelo principalmente como bióxido de manganeso,

que es muy insoluble en el agua que contiene bióxido de carbono bajo

condiciones anaeróbicas (reducción), se reduce el bióxido de manganeso de

valencia + 4 a + 2 y entra en solución.

Mn-+4O 2 + 2e -- Mn-+2O - 2e –

En el agua superficial una parte de manganeso se encuentra en forma

suspendida, debido a su ph y concentración de oxígeno disuelto, el manganeso

introducido es rápidamente oxidado y convertido a su forma soluble.

El manganeso al igual que el hierro produce problemas cuando llega a

condiciones anaerobias en las capas inferiores. Se encuentra solubilizado en

los lodos béntales y se distribuye por todo el embalse provocando problemas

que se solucionan hasta alcanzar su oxidación y posterior su sedimentación.

Epilimnion

El descenso del nivel de las aguas y el movimiento de los lodos del fondo,

contribuyen a la elevación del manganeso desde Enero (0.2 mg/l), Febrero

(0.25 mg/l), Marzo (0.39 mg/l) y Abril (0.52 mg/l).

El arrastre de material del suelo por las fuertes lluvias del invierno del 2002

provocaron el aumento del manganeso en Julio del mismo año (0.24 mg/l).


Termoclina

En este estrato el comportamiento del manganeso se presenta con

incrementos mensuales y que alcanza su mayor valor en los meses de Enero,

Febrero y Marzo/2003 propias de la transición climática y el bajo nivel del

embalse.

Manganeso promedio 0.12 mg/l Hipolimnion

En Abril/2003 se producen dos hechos importantes: Las lluvias se presentaron

con mayor continuidad por un lado, y la circulación que provoco el movimiento

de los lodos béntales en el fondo, fue la causa del incremento a 0.4 mg/l de Mn.

Figura No. 65.


Figura No. 65

Manganeso

00,10,20,30,40,50,6

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


4.1.3.6. Materia Orgánica – Ácido Sulfhídrico.

Si durante el periodo de estratificación del embalse que es la época de mayor

productividad, y que corresponde desde Abril hasta Octubre, se transporta

desde el epilimnion al hipolimnion una cantidad mayor de materia orgánica,

parte de esta, no podrá oxidarse e ir a posarse en el sedimento. Esta materia

orgánica que se incorpora al sedimento, confiere a este un color característico.

Dicha tonalidad, sirve para fechar la época de transición de la estación de

verano a la estación de invierno.

Epilimnion

Debido a la gran producción de algas en Agosto/2002 se detecto el mayor valor

de materia orgánica (11.0 mg/l) durante este periodo. En los meses de Mayo y

Junio/2003, la materia orgánica disminuye en su concentración por el inicio de

la estación lluviosa, y el rebose del agua en la presa a fines de Abril/2003.


Termoclina

El análisis de los resultados siempre tiene como factores influyentes, la

estación climática y el nivel del agua en el embalse. En virtud de esta situación

Julio/2002, presenta el valor mas bajo en relación a los demás meses en

estudio, por la continuidad de las lluvias de la estación invernal precedente.

Noviembre y Diciembre/2002 la materia orgánica disminuyo en su

concentración, por cuanto en aquel entonces el nivel del embalse bajo

ostensiblemente e influyo en la misma. Con respecto a Marzo, Abril, Mayo y

Junio/2003, la disminución de su concentración esta relacionada con el llenado

del vaso de la presa.

Materia Orgánica promedio 0 5.97 mg/l

Hipolimnion

El mes de Agosto/2002, tuvo su más alto valor de 8.1 mg/l, como ya se ha

indicado este mes tuvo la mayor actividad biológica y con la consecuente

formación de materia orgánica.

En lo que respecta a los meses de Septiembre, Octubre, Noviembre/2002, la

materia orgánica disminuyo, debido a la ausencia de rayos solares y

esporádicas precipitaciones que afectaron el desrrollo de la Fotosintésis

durante este lapso. Figura No. 66.


Figura No. 66

Materia Organica

0

5

10

15

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Epilimnion

Es evidente que las lluvias causan un efecto beneficioso en la calidad del agua

en Poza Honda. Bajo esta premisa, se desprende que en los meses

Agosto/2002 y Junio/2003, en ambos casos las lluvias fueron el factor

determinante para la remoción de ácido sulfhídrico.

Sin embargo en ausencias de estas, es Febrero/2003 (3.62 mg/l), donde se

detecta la mayor concentración, por la natural presencia de las bacterias

reductoras del azufre en la fase final del proceso de eutrofización.

Ácido Sulfhídrico promedio = 2.55 mg/l Termoclina

La natural migración del gas sulfhídrico de escapar a las capas superiores es la

condición que se impone en esta zona para la determinación de SH2.

Ácido Sulfhídrico promedio = 1.59

Hipolimnion

Las condiciones anaeróbicas en el fondo facilitan la labor de las bacterias

reductoras del azufre y que su actividad se incrementa a medida que avanza la

eutrofización produciendo mayor concentración de ácido sulfhídrico.

En los meses de Septiembre/2002(5.57 mg/l), Enero (5.54 mg/l), Marzo (4.68

mg/l) y Abril (4.89 mg/l), son las mayores concentraciones medidas durante

este periodo. Figura No. 67

Figura No. 67

Acido Sulfhidrico

0123456

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


4.1.3.7 Oxígeno Disuelto – Anhídrido Carbónico.

Epilimnion

La zona de producción tuvo su menor concentración en Noviembre (3.0 mg/l),

y Diciembre/2002 (4.4 mg/l), ante la mayor demanda de oxígeno disuelto

producto del mayor grado de Eutrofización y la menor actividad biológica

formadora del fitoplancton.

Con la llegada de las lluvias la concentración de oxigeno disuelto aumentó, y el

mayor régimen de luz permitieron una mayor formación de fitoplancton a partir

de Enero/2003.

Cabe destacar que en Septiembre/2002, el oxígeno disuelto alcanzo la mayor

concentración, debido a la importante presencia de algas en la zona superficial.

Oxígeno Disuelto = promedio 9.1 mg/l Termoclina

El valor promedio de oxígeno disuelto en la termoclina, esta en relación

proporcional con la actividad biológica, es decir el déficit de oxígeno disuelto

medido implica penetración de luz menor y por ello reducción del fitoplancton.

Oxígeno Disuelto promedio = 0.31 mg/l Hipolimnion

La descomposición de la materia orgánica requiere oxígeno disuelto para su

oxidación y con la consecuente desaparición del mismo en el fondo. Figura No.

68.

Oxígeno Disuelto promedio = 0.03 mg/l

Figura No. 68

Oxigeno disuelto

0

5

10

15

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Toma # 1 (uperficial)Toma # 2 (8mt)Toma # 3 (16mt)

Epilimnion

La mayor formación de anhídrido carbónico se produjo en Agosto (10.6 mg/l) y

Septiembre (17.1 mg/l), resultados que denotan el mayor crecimiento de algas

durante el periodo en estudio, factores como la irradiación influyeron en la

formación en este lapso.

La notoria ausencia en los meses lluviosos, esta relacionado directamente con

la baja actividad de la fotosíntesis y partículas dispersas en el vaso de la presa.

Anhídrido Carbónico promedio = 6.44 mg/l Termoclina

En las zonas más profundas el anhídrido carbónico producto de materia

orgánica en descomposición, aumenta su concentración con respecto al del

epilimnión.


Hipolimnion

La mayor producción de anhídrido carbónico en este estrato, se realiza por

consumo del oxígeno disuelto por los organismos presentes y que es uno de

los principales agentes corrosivos en la disolución de minerales de las

estructuras geológicas.

Las mayores concentraciones de anhídrido carbónico se obtienen desde Enero

hasta Abril/2003 que luego desaparece por la circulación y desestratificación

del embalse provocado por las lluvias y rebose del nivel de la cota del embalse.

Figura No. 69.


Figura No. 69

Anhidrido Carbónico

05

1015202530

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


4.1.4. Planta de Tratamiento.

4.1.4.1. Agua Cruda. 4.1.4.1.1. Color – Algas.

El agua que, falta de aire disuelto y, por lo tanto, de oxigeno, es desabrida,

adquiere un gusto agradable con la aeración, que libera el sulfuro de hidrógeno

y algunas sustancias volátiles como las desprendidas por el crecimiento de las

algas o por la descomposición de las materias orgánicas que comunican olor y

sabor.

El color del agua cruda de la Planta de Tratamiento esta relacionado

directamente con la densidad de algas presentes. En los meses de

Diciembre/2002, Marzo y Abril/2003, nos indica claramente que existe una

importante cantidad de fitoplancton acompañada de partículas dispersas razón

por la cuál se determinó el valor de 58 U de Color

Debido a la gran producción algal en el mes de Agosto/2002, el valor detectado

correspondió a 45 U de Color, Figura No. 70.

Figura No. 70

Color

0

20

4060

80

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

U(Pt/Co)

Agua Cruda

Las algas son habitantes comunes y normales de aguas pocos profundas, y se

encuentran en todo suministro de agua expuestas a la luz del sol. A la mayoría

de los operadores de las plantas purificadoras las algas les son conocidas de

manera general los olores y sabores. A demás tienen, importancia por otros

motivos, entre los cuales se cuenta su capacidad para modificar el Ph, la

alcalinidad, el color, la turbiedad y últimamente por su influencia en la

radiactividad del agua. Figura No. 71.

Figura No. 71

Producción Total de Algas

020000400006000080000

100000120000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Agua Cruda

La producción mayor de algas en el agua cruda de la Planta de Tratamiento, se

encuentra ubicada en la zona de contaminación del periodo en estudio..

Las precipitaciones producidas en los meses Enero, Febrero, Marzo y

Abril/2003, disminuyeron la población algal.

Algas promedio = 27099 cel/ml

Composición Cualitativa del Fitoplancton en la Planta de Tratamiento

La amplia distribución de las algas en los abastecimientos de agua, junto con

su exclusiva combinación características, permite que ejerzan su acción en

muchos lugares y de diferentes maneras, además de las actividades descritas,

las algas han sido responsables de producir limo, de impartir color al agua, de

corroer el hormigón y los metales, de reducir la potabilidad del agua tratada, en

virtud de su presencia en el sistema de distribución, de obstaculizar el

tratamiento químico del agua y de causar enfermedades.

Del grupo de la familia de las Cianophytas en el agua cruda el organismo que

se destaca por su mayor población de individuos es la Anabaenopsis

Raciborskii, en Septiembre y Octubre/2002 del estiaje. Es una alga que imparte

sabor y olor a herbáceo. Figura No. 72.

En este sentido, Whipple afirma que “cuando el número de organismos sea menos de 500 por ml no habrá trastornos; entre 1000 y 2000 apreciable; entre 2000 y 3000 considerable; por encima de 3000, el problema será grave”.

Cianophytas Euglenophytas Clorophytas Pirrophytas Chrisophytas (diatomeas)

Chorococcus Minor

Phacus SP Chorella Vulgare

Perisinium Sp

Cocconeis SP


Euglena Acus Ankistrodemus Falcatus

Synedra Acus






Amphyprora SP



Nitzschia Gracilis

Anapcys SP Diatoma Vulgare

Spirulina Subsalsa

Figura No. 72


020000400006000080000

100000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Agua Cruda

La Chlorella Vulgare se encuentra en mayor número en el mes de Septiembre

hasta Diciembre/2002.La captación de las aguas en la Planta de Tratamiento,

se las realiza entre la zona superior y la zona intermedia del Embalse, las

mismas que estan relacionadas con el comportamiento de la mencionada alga

en el agua cruda de la Planta de Tratamiento. Figura No. 73.

Figura No. 73

Chlorella Vulgare

02000400060008000

10000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Agua Cruda

4.1.4.1.2. Materia Orgánica – Demanda de Cloro.

La materia orgánica que ingresa a la Planta de Tratamiento contiene valores

que aumentan colateralment con el avance de la eutrofización y que alcanza su

máximo valor de 8.0 mg/l, cuando en el embalse se esta produciendo el

proceso de circulación.

Puesto que el material orgánico constituye una parte significativa del suelo, y

ya que es utilizado por los organismos acuáticos para construir sus cuerpos y

producir alimentos, es inevitable encontrar productos orgánicos solubles en

agua provenientes del metabolismo, en todas las fuentes de agua. No existe

mucha información acerca de los compuestos orgánicos específicos en el agua

cruda. Figura No. 74.

Figura No. 74

Materia organica

456789

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Cruda


La demanda de cloro consiste en introducir el cloro en el agua, a partir de este

instante se irán produciendo sucesivamente diversas reacciones químicas. Es

conveniente que estos mecanismos se conozcan a la perfección antes de

proceder a una operación de desinfección.

Evolución de la cantidad de cloro residual

en función de la cantidad de cloro introducido

Fase AB: El cloro introducido en el agua se combina inmediatamente con la

materia orgánica. Consecuentemente, el residual medido se mantiene en cero.

Mientras no se destruya estos compuestos, no se producirá la desinfección.

Fase BB: A partir del punto B, el cloro se combina con compuestos

nitrogenados. Entonces ya se puede medir una cantidad de cloro residual.

Estas concentraciones no corresponden realmente al cloro activo, sino a

cloraminas que reaccionan igual que el cloro con los reactivos de los aparatos

de medición. Se trata de productos orgánicos complejos, por lo general de olor

fuerte, y muy poco desinfectantes.

Fase B’C: Cuando se añade más cloro residual que se mide con los aparatos

ordinarios de medición, va en descenso. En realidad el cloro introducido ha

servido para destruir los compuestos formados durante la fase BB”. El agua no

huele tan mal sin estar desinfectada.

Cloro Medido B’ Cloro Introducido A B C Demanda de cloro Cloro residual

A partir del punto C, el cloro introducido está finalmente disponible para cumplir

su función de desinfectante.

En conclusión, los primeros miligramos de cloro introducidos no garantizan la

desinfección. De hecho, antes de que ésta pueda garantizar realmente una

acción eficaz, se deberá agregar una cantidad variable de desinfectante para

que se produzca todas las reacciones químicas secundarias. Esta cantidad de

denominada: Demanda de Cloro.

La desinfección debe realizarse en aguas de una buena calidad química (en las

aguas que la demanda de cloro sea mínima), con objeto de limitar al máximo

las reacciones secundarias, generadoras de subproductos6. Por otra parte, la

presencia de partículas coloidales protege a los microorganismos de la acción

desinfectante del cloro.

Antes de iniciar la desinfección, deben realizarse pruebas sistemáticas para

determinar la cantidad de cloro que se debe agregar para lograr superar la fase

de las reacciones secundarias.

Por ejemplo, algunas veces puede ser necesario introducir 5 ó 10 mg de cloro

por cada litro de agua, para poder obtener el término del tratamiento 0.5 mg/l

de cloro activo, ya que el resto del desinfectante es consumido por las

impurezas y productos disueltos.

La demanda de cloro durante el periodo de estudio, muestra sin lugar a duda el

avance paulatino de la eutrofización y que en forma manifiesta se incrementa

notoriamente a 10 mg/l a partir del mes de Enero hasta Junio/2003, donde

alcanza la mayor demanda de cloro (13 mg/l).

El aumento de la concentración del material orgánico disuelto y partculado,

propio del proceso de la circulación, precipitaciones, viento y en parte la

disminución del nivel del embalse.

La Planta de Tratamiento consta de las siguientes unidades: Aeración por

cascada, pre-cloración, clarificación en unidades tipo pulsator, filtración rápida y

post-cloración. Esta Planta tiene capacidad para potabilizar aguas superficiales

que contengan exceso de materia en suspensión y una limitada concentración

de gases disueltos (la Motta, 1983). Figura No. 75.

Figura No. 75

Demanda de cloro mensual

0

5

10

15

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Cruda

4.1.4.1.3. Ph – Temperatura.

El Potencial Hidrógeno, registrado en los meses de Agosto de 7.7, Noviembre

/2002 de 7.47 y Mayo/2003 de 7.53, denotan la mayor actividad biológica en el

agua cruda proveniente del embalse de Poza Honda. Figura No. 76.

Figura No. 76


7

7,2

7,4

7,6

7,8

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

Agua Cruda

La temperatura en la captación de la planta de tratamiento, muestra valores

estables, esto obedece a que el agua recibida proviene de la zona intermedia y

superior del embalse. Figura No. 77

Figura No. 77

Temperatura

2424,5

2525,5

26

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

°C

Agua Cruda

4.1.4.1.4. Oxigeno Disuelto.

El oxigeno disuelto de Octubre/2002 que es de 1.0 mg/l, nos indica claramente

la difusión del oxigeno por la importante actividad biológica producida en ese

lapso. En lo que respecta a los meses de Diciembre/20002 y Enero/2003 los

valores detectados obedecen a la caída de las lluvias que por su densidad

viajan hacia el fondo del embalse y posteriormente a la Planta de Tratamiento.

En los meses de Marzo, Abril, Mayo y Junio/2003, la concentración de oxigeno

disuelto no es detectada, a pesar de que el agua es sometida al proceso de

aeración por cascada esto nos indica claramente la magnitud de reductores

contenidos en el agua cruda. Figura No. 78.

Figura No. 78

Oxigeno Disuelto

00,20,40,60,8

11,2

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Oxigeno Disuelto

4.1.4.2. Agua Tratada.

4.1.4.1.1. Color – Algas.

El color del agua cruda esta implícitamente relacionada con el número

poblacional de algas y la turbiedad del agua. El tratamiento convencional

aplicado en la Planta de Tratamiento cumple con las normas de calidad de

agua potable al reducir las unidades de color en el agua tratada.

42.65 U (Pt /Co) promedio anual agua cruda

7.58 x 100 7.58 U (Pt /Co) promedio anual agua tratada = = 18% 42.65 Es decir que la remoción del color, se la efectúa en un 18 % mediante el

tratamiento con la pre-cloración, coagulación y filtración, destacando que el

valor pernisible para este parámetro en agua potable es de 100 U (Pt/Co).

El comentario correspondiente a la mayor presencia de color, esta en relación

directa con el valor medido en los meses Diciembre/2002, Enero, Febrero,

Marzo/2003 del agua cruda, donde se produce la mayor presencia de algas y

por efecto propio de la estación climática, esta situación incide en la remoción

del color en la Planta de Tratamiento. Figura No. 79.

Figura No.79

Color

468

101214

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

U(Pt/Co)

Agua Tratada

Las algas son removidas por la Planta de Tratamiento en el orden del 36%,

como a continuación se detalla:

27.099 cel/ml promedio agua cruda

9.729 x 100 9.729 cel/ml promedio agua tratada = = 36% 27.099

El número de células detectadas en el agua tratada sobrepasa el valor de 500

cel/ml, lo que nos indica claramente la influencia del proceso de eutrofización

en la Planta de Tratamiento. Figura No. 80.

Figura No. 80

Producción Total de Algas

020000400006000080000

100000120000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Agua Tratada

Las algas verde-azules, entre ellas, la anabaenopsis raciborskii manifiesta en

septiembre/2002, el mayor número de individuos en el agua tratada. Este

resultado refleja que la planta de tratamiento en cada una de sus unidades

resultó insuficiente en la remoción de dicho organismo. Figura No. 81

Figura No. 81


02000400060008000

10000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Agua Tratada

Las algas verdes como la Chlorella Vulgare también en el mes de Septiembre

se encuentran en forma significativa en el agua tratada, secundando a las

anteriores.

En Abril/2003 se produce su reaparición con 192 cel/ml, el efecto de las aguas

lluvias en el agua cruda ocasionaron la disminución para luego desaparecer en

los meses restantes, esta situación incidió directamente en la medición del

agua tratada. Figura No. 82

Figura No. 82

Chlorella Vulgare

010002000300040005000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Agua Tratada

4.1.4.1.2. Materia Orgánica – Trihalometanos.

El cloro es un buen desinfectante en el agua de bebida y da excelente

resultados contra las bacterias generalmente responsables de las

enfermedades transmitidas por el agua. El cloro se combina químicamente de

un modo casi instantáneo con la materia orgánica del agua, y en esa forma

combinada pierde su acción desinfectante. Por consiguiente, debe añadirse

suficiente cantidad del producto de la demanda de cloro del agua, además de

la dosis necesaria para obtener una acción bactericida (Nalco, 1979).

Algunos materiales orgánicos son realmente solubles, pero muchos de ellos,

ciertamente la materia húmica, están presente en forma coloidal y puede

eliminarse por coagulación.

El agua tratada contiene 3.15 mg/l de materia orgánica, en relación al promedio

del agua cruda que corresponde a 6.35 mg/l. Entonces el porcentaje de

remoción corresponde a 50% deducido de la siguiente forma:

6.35 mg/l promedio agua cruda

3.15 x 100 3.15 mg/l promedio agua tratada = = 50% 6.35

El valor detectado no incluye a la materia orgánica particulada y que con el

restante 50% que no fue oxidado, eleva su concentración especialmente en

época de transición climática y sus efectos subsecuentes. Figura No. 83.

Figura No. 83

Materia Organica

22,5

33,5

44,5

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Tratada

Particular mención se realiza al incremento paulatino desde el mes de

Noviembre/2002 hasta Febrero/2003, siendo el mes de Enero/2003 el de mayor

concentración en el agua tratada con un valor de 4.0 mg/l.

Los Trihalometanos para su formación requieren condiciones como se

describen a continuación:

1) Tiempo de contacto

2) Dosis de cloro

3) Cloro residual

4) Ph

5) Temperatura

6) Concentración de Materia orgánica

La dosis de cloro elevada, el cloro residual, el tiempo de contacto, el Ph, la

temperatura entre 3°C a 40 °C y concentración de materia orgánica son

factores determinantes para la formación de los trihalometanos. Figura No. 84

Figura No. 84

Trihalometanos

05

10152025

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

ug/l

Agua Tratada

A partir de Diciembre/2002, cuando la disminución del nivel en el embalse se

hace ostensible y la dispersión de los sedimentos orgánicos, que conlleva

materia orgánica disuelta y suspendida, causa el incremento de la demanda de

cloro y la consiguiente formación de Trihalometanos. En Febrero/2003 alcanza

su mayor valor, correspondiente a 23.0 ug/l, que luego en Marzo/2003 no es

detectado.

En Abril, Mayo y Junio/2003 la tendencia a aumentar se manifiesta siendo

Mayo su mayor valor de 20.0 ug/l.

Sin embargo el valor permisible en aguas potables, de acuerdo a las guías de

Calidad de la Organización Mundial de la Salud (OMS), es de 200 ug/l.

La fuente principal de cloroformo y THM en aguas potables es la interacción

química entre el cloro agregado para la desinfección y otros propósitos, en las

sustancias húmicas y fúlvicas naturales, y otros precursores producidos por la

descomposición orgánica normal o por el metabolismo de la biota acuática ,

comúnmente presentes en las fuentes de agua utilizadas para ser

potabilizadas. Dado que los precursores orgánicos naturales se encuentran

más comúnmente en las aguas superficiales, aguas potables provenientes de

fuentes superficiales presentan mayor posibilidad de contener THM que los

provenientes de fuentes subterráneas (con notables excepciones).

4.1.4.1.3. Ph – Temperatura.

El Ph es un parámetro muy importante, ya que de el depende la distribución de

las especies de cloro, así como de los precursores. La producción de

cloroformo aumenta al incrementarse el ph (Stevens et al., 1975). Figura No.

85.

Figura No. 85

Potencial Hidrogeno

6,9

7

7,1

7,2

7,3

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

Agua Tratada

Los valores menores medidos de ph, obedece fundamentalmente a la

aplicación de cloro y sulfato de aluminio en la potabilización.

Los limites máximo permnisible fluctuan entre 6 y 9.

Estos mismos autores también estudiaron la influencia de la temperatura en los

límites de 3 a 40 °C, en la velocidad de reacción de cloroformo encontrando

que la velocidad aumenta al incrementarse la temperatura.

La temperatura medida a partir de los meses de Diciembre/2002 hasta

Febrero/2003 se encuentra incrementada respecto de los restantes meses a

excepción de Junio/2003 que alcanza el mayor valor de 26 °C. Figura No. 86

Figura No. 86

Temperatura

25,225,425,625,8

2626,2

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

°C

Agua Tratada

4.1.4.1.4. Cloro Residual Libre – Cloro Residual Combinado.

El termino cloro libre se refiere a la suma de ácido hipocloroso y el ión

hipoclorito. Debido a que HOCL es un desinfectante más eficaz que el OCL- ,

mientras que el hipoclorito es más eficaz que el cloro combinado (cloraminas).

Las guías de calidad recomiendan que la desinfección se lleve a cabo con un

Ph menor de 8.0 y a una concentración de cloro libre residual mayor de 0.5

mg/l. figura No. 87.

Figura No.87

Cloro Residual Libre

0

0,5

1

1,5

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Tratada

El cloro residual libre durante el periodo de estudio, su comportamiento denota

una concentración mayor a partir de Julio hasta Diciembre/2002, promedio de

1.0 mg/l aproximadamente. Sin embargo empieza a descender desde

Enero/2003 hasta alcanzar su menor valor en Junio/2003 de 0.1 mg/l.

La situación arriba descrita esta en función de la calidad del agua cruda que

ingresa a la planta de tratamiento, mientras en Julio/2002 hasta

Diciembre/2002 las demandas de cloro fue menores, se detecto cloros

residuales libre altos. En los meses de Mayo y Junio/2003, en que los niveles

de cloro residual libre son bajos, es debido a la reacción con el material

organico especialmente nitrogenado, para formar cloraminas y compuestos de

nitrógeno orgánico. .

Las cloraminas se forman mediante la reacción de cloro y el amoniaco o las

aminas orgánicas. Las mono-, di- y las tricloraminas se forman de acuerdo con

la relación de la concentración de cloro y amoniaco, donde influye el Ph y la

temperatura del agua. Las reacciones sucesiva:

NH3 + HOCI NH2 + H2O

NH2CI + HOCI NHCI2 + H2O

NHCI2 + HOCI NCI3 + .H2O

Los compuestos de cloro y nitrógeno se denominan cloro residual combinado.

Figura No. 88

Figura No. 88

Cloro Residual Combinado

00,5

11,5

22,5

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Tratada

El cloro residual combinado manifiesta una mayor presencia en el mes de

Enero/2003 probablemente por la interacción del cloro con compuestos

orgánicos, los mismos que disminuyen en Junio/2003 por la alta demanda de

cloro producida al final del periodo en estudio

4.1.4.1.5. Oxigeno Disuelto

El oxigeno disuelto del agua tratada con respecto del agua cruda, contiene

mayor oxigeno disuelto (O2), por la acción de la pre-cloración y post-cloración y

por el paso del agua en las diferentes unidades de tratamiento. Figura No. 89.

Figura No. 89

Oxigeno Disuelto

55,5

66,5

77,5

8

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

AguaTratada

CAPITULO V

Conclusiones y Recomendaciones.

5.1 Conclusiones.

• La causa principal de la Eutrofización del Embalse de Poza Honda, es

el aporte continuo de nutrientes, y mientras no cese o disminuya en

mayor o menor medida, no terminaran los problemas inherentes a la

Eutrofización. Los nutrientes particularmente nitratos y fosfatos

estimulan el desarrollo de organismos fotosintéticos, primordialmente

algas, las cuales predominan sobre otros organismos acuáticos.

• El aporte de nutrientes se realiza a través de escorrentía y drenaje de

las laderas, es posible que la fertilidad del suelo suponga una

contribución relativamente importante de nutrientes. La ganadería es

una fuente importante de nutrientes (fosfatos), y el aporte se lo realiza

cuando el ganado se introduce y defeca en la franja de terreno que

temporalmente queda descubierto por el descenso del nivel del agua, en

la época de estiaje.

• El número de habitantes, al parecer no representa un importante aporte

de nutrientes.

• Debido a la eutrofización, la mayor parte del contenido del vaso posee

elementos reductores que mediante procesos anaeróbicos de

descomposición se obtienen subproductos. La descomposición de

materia orgánica produce ácido sulfhídrico un gas corrosivo que imparte

olor desagradable al agua. El hierro y el manganeso son reducidos a

forma soluble en las mismas condiciones, afectando la calidad del agua

para el tratamiento de agua potable, especialmente en los meses

correspondientes a los meses del estiaje.

• Las algas acumuladas en el fondo del embalse, forman una capa

extensa de sedimento orgánico que debido a la falta de abastecimiento

de oxigeno en los estratos profundo, se descomponen anaeróbicamente

generando amonio, gas sulfhídrico y otros productos secundarios. El

resultado final de .los procesos descritos es un desequilibrio ecológico

caracterizado por una capa superficial aeróbica en la que predomina las

algas; bajo esta capa, un ambiente común extenso con escaso nivel de

oxigeno y finalmente en el fondo condiciones anaeróbicas que excluyen

a las demás especies.

• Una de las principales razones que hace importante a las algas, es su

capacidad de generar grandes cantidades de materia orgánica. El

contaje de algas correspondiente al mes de Agosto/2002 alcanzo la

mayor producción desde el inicio de esta campaña de investigación las

causas de esta situación se señalan a continuación:

1. La mayor irradiación del sol y al régimen de luz en la zona de

producción.

2. Como resultado de la fuerte estación invernal del 2002, derivo en un

mayor aporte de nutrientes al embalse.

• Las algas son responsables de la calidad del agua en los tres niveles

de profundidad mientras en la toma superficial, se detectan Ph alcalinos

superiores a 8, producto de la actividad biológica. Se exceptúa el mes

de Noviembre, debido a la disminución del Ph por la escasez o nula

luminosidad y presencias de lluvias en toda la zona de influencia de

Poza Honda. En la zona intermedia y de fondo, la actividad biológica

disminuye por la escasez de luz y consecuentemente la reducción de

los valores de ph y Oxigeno.

• La temperatura del agua de Poza Honda, esta gobernada por la

vegetación, las condiciones climatológicas y el grado de mezclado

existente y los cambios que se producen se relacionan directamente

con las actividades del hombre. La importancia de la temperatura se

debe a la relación que guarda con las reacciones químicas el cambio

en las propiedades físicas y con una mayor complejidad en las

reacciones biológicas.

• Circulaciones completas, que son producidas por la influencia del

viento y la afluencia de grandes cantidades de agua a través de los

afluentes, y en la mayoría durante la época de lluvias, llevaron a una

alteración completa de la calidad del agua en las diferentes

profundidades. Estas circulaciones son la causa del reabastecimiento

de materia alimenticia de las zonas profundas a las capas superficiales

y con esto a la zona de producción.

• Como el volumen de producción del plancton, no solamente es

determinado por la oferta de sustancias alimenticias en el embalse,

sino también por el volumen de luz, especialmente durante la época de

lluvia como consecuencia del enturbiamiento del embalse provocados

por los muy turbios afluentes, la luz es el factor mínimo y el volumen

de la producción del plancton es reducido.

• El alga dominante en el embalse de Poza Honda pertenece al grupo de

las Cianophytas, entre ellas la Anabaenopsis Raciborskii. Esta especie

ejerce un dominio permanente sobre las demás, por la capacidad de

fijar el nitrógeno atmosférico, de emigrar en la columna de agua para

perfeccionar la absorción de luz, resistencia al zooplancton de los

herbívoros y ventajas sobre las restantes especies en el uso de

carbono inorgánico.

La actividad de la Anabaenopsis Raciborskii disminuye principalmente

al final del verano y empezando el lluvioso, se reproduce por la oferta

mayor de nutrientes debido al periodo de circulación del embalse.

La Clorophyta, Chlorella Vulgare secunda en importancia a la

Anabaenopsis Raciborskii, su mayor número poblacional de individuos

se produce en la etapa final del proceso de eutrofización, debido al

aumento de la concentración del fósforo, lo que confirma su presencia

como alga de aguas contaminadas.

• La desestratificación se produce por el incremento significativo de

caudales en invierno.

• Otro indicador del proceso de eutrofización, es el incremento mensual

de la demanda de cloro en el agua cruda en la Planta de Tratamiento y

que alcanza su mayor dosis a partir del mes de Diciembre/2002 hasta

Junio/2003 y esto se debe a la existencia de una amplia gama de

materiales en suspensión que es la parte viva del plancton y otra

desprovista de vida.

La importancia ecológica suele ser indirecta, por absorción de luz por

servir de vehículo a sustancias orgánicas que se absorben en la

superficie de las partículas. La formación de gas sulfhídrico, amonio,

manganeso y hierro coadyuvan a las elevadas demanda de cloro.

• La interacción química entre el cloro agregado para la desinfección y

otros propósitos, con las sustancias humicas y fúlvicas naturales, y otros

precursores producidos por la descomposición orgánica normal o por el

metabolismo de la biota acuática, comúnmente presente en el agua

cruda para ser potabilizada, es producida en mayor medida por el efecto

circulación del embalse a partir del mes de Diciembre/2002, Enero,

Febrero, Mayo y Abril/2003 donde se detecta valores de Trihalometanos

a excepción del mes de Marzo y Junio/2003 que su reporte es negativo

por el incremento en la intensidad de las lluvias.

• La dosis de cloro, el cloro residual, y el tiempo de contacto en el

tratamiento y en el sistema de distribución, son factores determinantes

junto con la concentración de los precursores en la cantidad total o

terminal de cloroformo.

• Las guías sobre “calidad del agua potable” publicadas en 1994 por la

OMS, fijan valores guías para diversos subproductos de la desinfección.

Para algunos compuestos, entre ellos el cloroformo el nivel guía de la

Organización Mundial de la Salud (OMS), se ha calculado a partir de la

siguiente probabilidad:

El riesgo de obtener solo un caso adicional de cáncer, en un grupo de

población de 100 mil individuos que beben dos litros de agua diario por

persona durante 70 años este riesgo es extremadamente pequeño.

El nivel guía correspondiente al cloroformo corresponde a 200 ug/l para

un riesgo de 10-5.

La máxima concentración detectada en el agua potable es de 23 ug/l,

valor que se encuentra dentro de los niveles permisibles de valores guía

de la OMS.

5.2. Recomendaciones

• Control de vertidos de nutrientes provenientes del uso agrícola y

pecuario. • Trasvase de aguas La Esperanza – Poza Honda, para mejorar o reducir

la velocidad de la eutrofización. Sin embargo, deberá definirse las

características físicas, químicas y biológicas del embalse de La

Esperanza.

• Otra alternativa es la precipitación química del fósforo de los efluentes

usando cal o alumbre.

• Las lagunas de oxidación también han sido utilizada con éxito. Se

promueve al crecimiento de las algas para remover el nitrógeno y el

fósforo de lo efluentes antes de entrar al embalse.

Para contrarrestar los efectos de la eutrofización/contaminación, en la zona de

influencia a la cota 87, desde donde se conduce el agua a la Planta de

Tratamiento, se recomienda las siguientes medidas:

• Aeración forzada en la influencia de la torre de toma. La inyección del

aire, nos permite controlar a los precursores orgánicos antes de la

cloración. Por esta vía, gran parte de la materia orgánica será oxidada

por el oxígeno disuelto en el medio líquido.

El hierro y el manganeso de su estado soluble, será oxidado a su

estado insoluble por la acción del oxigeno disuelto. Los gases disueltos

en el agua entre ellos: ácido sulfhídrico, anhídrido carbónico y los

compuestos orgánicos volátiles serán removidos.

En virtud de esta situación las propiedades organolépticas del agua

tendrán mejores condiciones, y la disminución de la carga de

reductores, y consecuentemente de la eliminación del mal olor y sabor.

El objetivo primordial es alcanzar mediante el ensayo de demanda de

cloro dosis menores y baja concentración de materia orgánica y evitar la

formación de compuestos órganoclorados en el agua potable

• Aplicación de sulfato de cobre es práctica general aplicar un algicida

como el sulfato de cobre, debido a los inconvenientes que produce en la

muerte de las especies acuáticas su aplicación deberá ser efectiva

cuando la concentración de algas supere los 500 cel/ml.

La dosis utilizada para el control de algas corresponde a 2 mg/l, cuando

la alcalinidad total sea mayor a 50 mg/l.

• Implementación de inyección de aire al agua cruda en la cascada de

aeración de la planta de tratamiento, para tratar de oxidar en mayor

medida la materia orgánica, y en general disminuir la carga de

reductores que reaccionan con el cloro en la pre-cloración.

• Otra alternativa de desinfección es la aplicación de permanganato de

potasio, mediante el cual la materia orgánica es totalmente oxidada y no

produce trihalometanos. Preservando el agua tratada con cloro residual

mediante la post-cloración.

No se recomienda la aplicación de ozono, bióxido de cloro y cloraminas

por formar subproductos que aun no se han determinado sus

características.

• Aplicación de carbón activado o piedra pómez, tienen la particularidad

de remover una amplia gama de compuestos orgánicos mediante la

absorción. De esta forma se podrá eliminar la presencia de

trihalometanos y de malos olores y sabores.

• Una medida útil para la remoción de trihalometanos en un 95% es

someter al agua de bebida a una temperatura de 100-95 °C por un lapso

de 5 minutos.

• La presencia de algas en el agua tratada depende de varios factores:

Ø Velocidad de filtración.

Ø Reducción del tamaño de las partículas de arena.

En cuanto a la velocidad de filtración, se sugiere realizar la jornada de

filtración y la velocidad de los mismos. La mayor parte de los

microorganismos acuáticos que llegan a los filtros de arena son

generalmente detenidos en la capa superior de 1.5 cm, así sucede

especialmente cuando los organismos abundan en el agua. Muy pocos

organismos penetran en la cama del filtro y otros se desintegran

rápidamente al ponerse en contacto con la arena.

Cuanto mas prolongada es la jornada de filtración, mayor es el

porcentaje de microorganismos que pueden penetrar en la capa superior

de 1.5 cm.

La reducción del tamaño de las partículas de arena, se produce por la

Fricción continua entre si en el lavado de los filtros, por lo que se deberá

revisar la granulometría de la arena. Estas recomendaciones deberán

ser complementadas evitando la penetración de la luz en todos los

reservorios y línea de conducción.

• Para definir las características físicas, químicas y biológicas del agua en

el Embalse se recomienda la implementación.del Laboratorio de Poza

Honda

• Para definir las características físicas, químicas y biológicas en la Planta

de Tratamiento se recomienda la implementación del Laboratorio con la

• incorporación de parámetros como carbono orgánico total (COT);

trihalometanos (THM) y nitrógeno orgánico (NTK)

JULIO 2002 ANÁLISIS FISICO QUÍMICO DEL EMBALSE DE POZA HONDA

MUESTRAS: COLA PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (8 MT) TOMA # 3 (16 MT) PH 8.60 7.40 7.20 Temperatura 27.00 oC 26.00 oC 25.50 oC Transparencia 0.54 mt --- --- Conductividad 189.30 micromhos/cm 189.60 micromhos/cm 189.80 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 370.00 mg/l 283.00 mg/l 240.00 mg/l Fosfatos Totales 0.18 mg/l 0.47 mg/l 0.67 mg/l Polifosfatos 0.44 mg/l 0.37 mg/l 0.53 mg/l Monoacido Fosfatos 0.03 mg/l 0.09 mg/l 0.13 mg/l Nitratos 0.20 mg/l 0.52 mg/l 0.71 mg/l Nitritos 0.00 mg/l 0.01 mg/l 0.00 mg/l Silice 10.00 mg/l 10.00 mg/l 11.00 mg/l N. Amoniacal 0.07 mg/l 0.10 mg/l 0.06 mg/l Hierro 0.10 mg/l 0.12 mg/l 0.13 mg/l Manganeso 0.09 mg/l 0.08 mg/l 0.17 mg/l Acido Sulfhidrico 0.43 mg/l 1,065 mg/l 0.85 mg/l Anhidrido Carbonico 0.00 mg/l 3.25 mg/l 5.00 mg/l Materia Organica 7.60 mg/l 6.50 mg/l 7.70 mg/l Alcalinidad Total 83.00 mg/l 84.00 mg/l 85.00 mg/l Alcalinidad Simple 19.80 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 1.42 mg/l 1.42 mg/l 1.42 mg/l Dureza Total 82.00 mg/l 85.00 mg/l 83.00 mg/l Oxigeno Disuelto 12.50 mg/l 0.30 mg/l 0.00 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 23.20 mg/l 26.80 mg/l 30.40 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 29.00 mg/l 33.50 mg/l 38.00 mg/l OBSERVACIONES: 09H45 Recolección de muestras, ambiente nublado

ANÁLISIS FISICO QUÍMICO DEL EMBALSE DE POZA HONDA

MUESTRAS: MITAD PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (12 MT) TOMA # 3 (24 MT) PH 8.60 7.6 7.2 Temperatura 26.50 oC 25.9 oC 25.40 oC Transparencia 0.50 mt --- --- Conductividad 187.40 micromhos/cm 176.4 micromhos/cm 153.40 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 108.00 mg/l 150.00 mg/lt 50.00 mg/l Fosfatos Totales 0.11 mg/l 0.09 mg/l 0.63 mg/l Polifosfatos 0.08 mg/l 0.07 mg/l 0.59 mg/l Monoacido Fosfatos 0.02 mg/l 0.02 mg/l 0.14 mg/l Nitratos 0.12 mg/l 0.09 mg/l 0.74 mg/l Nitritos 0.00 mg/l 00.00 mg/l 0.00 mg/l Silice 8.00 mg/l 11.00 mg/l 11.00 mg/l N. Amoniacal 0.90 mg/l 0.07 mg/l 0.07 mg/l Hierro 0.09 mg/l 0.08 mg/l 0.25 mg/l Manganeso 0.27 mg/l 0.05 mg/l 0.10 mg/l Acido Sulfhidrico 0.85 mg/l 0.64 mg/l 1.07 mg/l Anidrido Carbonico 6.0 mg/l 4.75 mg/l 3.00 mg/l Materia Organica 7.10 mg/l 7.6 mg/l 7.20 mg/l Alcalinidad Total 88.00 mg/l 90.00 mg/l 80.80 mg/l Alcalinidad Simple 5.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 2.84 mg/l 2.84 mg/l 2.84 mg/l Dureza Total 77.00 mg/l 74.00 mg/l 73.00 mg/l Oxigeno Disuelto 16.20 mg/l 0.30 mg/l 0.00 mg/l Demanda Bioquimica Oxigeno 20.70 mg/l 26.90 mg/l 28.40 mg/l Demanda Quimica Oxigeno 28.80 mg/l 33.60 mg/l 35.50 mg/l OBSERVACIONES: 10h15 Recolección de muestras, ambiente nublado

ANÁLISIS FISICO QUÍMICO DEL EMBALSE DE POZA HONDA COTA: 105.10 mt.

MUESTRAS: CASTILLO PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (14 MT) TOMA # 3 (27 MT) PH 8.40 7.50 7.20 Temperatura 27. 90 oC 26.00 oC 25.60 oC Transparencia 1.12 mt --- --- Conductividad 182.20 micromhos/cm 171.40 micromhos/cm 180.20 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 178.00 mg/l 175.00 mg/l 172.00 mg/l Fosfatos Totales 0.22 mg/l 0.29 mg/l 0.63 mg/l Polifosfatos 0.17 mg/l 0.23 mg/l 0.50 mg/l Monoacido Fosfatos 0.04 mg/l 0.05 mg/l 0.12 mg/l Nitratos 0.24 mg/l 0.32 mg/l 0.79 mg/l Nitritos 0.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Sílice 10.00 mg/l 9.00 mg/l 10.00 mg/l N. Amoniacal 0.09 mg/l 0.09 mg/l 0.14 mg/l Hierro 0.07 mg/l 0.07 mg/l 0.15 mg/l Manganeso 0.24 mg/l 0.07 mg/l 0.08 mg/l Acido Sulfhidrico 0.00 mg/l 0.21 mg/l 0.63 mg/l Anhidrido Carbonico 7.00 mg/l 4.00 mg/l 5.00 mg/l Materia Organica 9.60 mg/l 2.85 mg/l 5.60 mg/l Alcalinidad Total 8.80 mg/l 87.00 mg/l 80.00 mg/l Alcalinidad Simple 3.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 1.42 mg/l 2.84 mg/l 1.42 mg/l Dureza Total 73.00 mg/l 74.00 mg/l 75.00 mg/l Oxigeno disuelto 6.40 mg/l 0.60 mg/l 0.00 mg/l Demanda Bioquímica de Oxígeno 18.50 mg/l 21.30 mg/l 24.80 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 23.10 mg/l 26.60 mg/l 31.00 mg/l OBSERVACIONES: 11h30 Recolección de muestras, con resplandor

ANALISIS BIOLOGICO DEL EMBALSE DE POZA HONDA

TIPO DE ANALISIS: CUALITATIVO Y CUANTITATIVO DEL FITOPLANCTON

MUESTRAS COLA 1 COLA 2 COLA 3 MITAD 1 MITAD 2 MITAD 3 CAST 1 CAST 2 CAST 3 CIANOPHYTAS Chorococcus Minor ----- ----- ----- ----- 50 cel/ml 48 cel/ml 432 cel/ml ----- ----- Agmenellum Quadriduplicatum ---- ---- ---- ----- 40 cel/ml ----- ----- 40 cel/ml 80 cel/ml Oscillatoria Subtilissima ---- ---- 16 cel/ml 10 cel/ml 90 cel/ml 208 cel/ml 160 cel/ml 13 cel/ml 16 cel/ml Anabaenopsis Raciborkii 80 cel/ml ----- 80 cel/ml 10 cel/ml 360 cel/ml 784 cel/ml 9698 cel/ml 160 cel/ml 416 cel/ml EUGLENOPHYTAS Phacus SP ---- ----- ---- ----- ----- ----- ----- --------- ----- CLOROPHYTAS Chlorella Vulgare ---- ---- ---- ----- 200 cel/ml ----- ----- ----- ----- Ankistrodemus Falcatus ---- ---- ---- ----- ----- ----- ----- ----- ----- CHRISOPHYTAS (Diatomeas) Cocconeis SP ----- ----- ----- 10 cel/ml 10 cel/ml ----- 2288 cel/ml ----- ----- Synedra Acus ---- ---- ---- ----- 120 cel/ml 240 cel/ml 208 cel/ml 13 cel/ml 96 cel/ml Achnantes Microcephala ---- ---- ---- ----- 420 cel/ml 176 cel/ml 2800 cel/ml 120 cel/ml 192 cel/ml Amphyprora SP ----- ----- ----- ----- ----- ----- ----- ----- ----- Nitzschia Gracilis ---- ---- ---- ----- 90 cel/ml 32 cel/ml ----- 173 cel/ml 144 cel/ml TOTAL 80 cel/ml ---- 96 cel/ml 30 cel/ml 1380 cel/ml 1488 cel/ml 15536 cel/ml 519 cel/ml 944 cel/ml

ANALISIS FISICO- QUIMICO DE LA PLANTA DE TRATAMIENTO GUARUMO MUESTRAS AGUA CRUDA MUESTRAS AGUA TRATADA

PH 7.20 PH 6.95 Temperatura 25.00 °C Temperatura 25.50 o C Color 28.00 U (Pt /Co) Color 5.00 U (Pt /Co) Turbiedad 7.70 UNT Turbiedad 0.80 UNT Conductividad 186.20 micromhos/cm Conductividad 194.50 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos (STD) 232.00 mg/l Solidos Totales Disueltos 152.00 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.10 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.08 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.08 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.04 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.02 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.07 mg/l Nitratos (NO3) 0.11 mg/l Nitratos (NO3) 0.08 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.00 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.00 mg/l Sílice (SiO2) 12.00 mg/l Sílice (SiO2) 5.00 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.08 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.06 mg/l Hierro (Fe++) 0.11 mg/l Hierro (Fe++) 0.05 mg/l Manganeso (Mn++) 0.09 mg/l Manganeso (Mn++) 0.03 mg/l Ácido Sulfhídrico (SH2) 0.53 mg/l Acido Sulfhidrico (SH2) 0.00 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 5.00 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 0.00 mg/l Materia Orgánica (O2 ) 4.90 mg/l Materia Organica (O2 ) 2.20 mg/l Dureza Total (TH) 70.00 mg/l Dureza Total (TH) 91.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 82.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 64.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Cloruros (Cl- ) 4.20 mg/l Cloruros (Cl- ) 7.10 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 0.60 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 5.60 mg/l Demanda de Cloro (CL) 3.00 mg/l Trihalometanos 0.00 ug/l como CH3 Cl Cloro Libre 1.00 mg /l Cloro Total > 1.30 mg /l

ANÁLISIS BIOLÓGICO DE LA PLANTA DE TRATAMIENTO GUARUMO

RESULTADO DE ANÁLISIS: CUALITATIVO Y CUANTITATIVO DEL FITOPLANCTON

MUESTRAS AGUA CRUDA AGUA TRATADA CIANOPHYTAS Chorococcus Minor ---------- ---------- Agmenellum Quadriduplicatum 240 cel/ml ---------- Oscillatoria Subtilissima 427 cel/ml 48 cel/ml Anabaenopsis Raciborskii 187 cel/ml 80 cel/ml EUGLENOPHYTAS Phacus SP 53 cel/ml ---------- CLOROPHYTAS Chlorella Vulgare 53 cel/ml ----------- Ankistrodemus Falcatus ---------- 48 cel/ml CHRISOPHYTAS (Diatomeas) Cocconeis SP ---------- ---------- Synedra Acus ---------- 480 cel/ml Achnantes Microcephala 133 cel/ml 16 cel/ml Amphyprora SP ---------- 16 cel/ml Nitzschia Gracilis 213 cel/ml 80 cel/ml TOTAL 1.306 cel/ml 768 cel/ml

AGOSTO 2002

ANÁLISIS FISICO QUÍMICO DEL EMBALSE DE POZA HONDA MUESTRAS: COLA PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (8 MT) TOMA # 3 (16 MT) PH 8.48 7.50 7.33 Temperatura 27.10 oC 26.00 oC 25.80 oC Transparencia 0.78 mt -- --- Conductividad 179.60 micromhos/cm 189.30 micromhos/cm 193.30 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 356.00 mg/l 344.00 mg/l 348.00 mg/l Fosfatos Totales 0.31 mg/l 0.30 mg/l 0.50 mg/l Polifosfatos 0.24 mg/l 0.24 mg/l 0.40 mg/l Monoacido Fosfatos 0.06 mg/l 0.06 mg/l 0.10 mg/l Nitratos 0.33 mg/l 0.34 mg/l 0.55 mg/l Nitritos 0.07 mg/l 0.06 mg/l 0.16 mg/l Sílice 10.00 mg/l 10.00 mg/l 11.00 mg/l N. Amoniacal 0.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Hierro 0.00 mg/l 0.00 mg/l 0.25 mg/l Manganeso 0.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Acido Sulfhidrico 0.00 mg/l 0.43 mg/l 1.92 mg/l Anhidrido Carbonico 9.00 mg/l 6.00 mg/l 7.00 mg/l Materia Organica 11.80 mg/l 5.90 mg/l 7.70 mg/l Alcalinidad Total 88.00 mg/l 76.00 mg/l 82.00 mg/l Alcalinidad Simple 19.80 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 1.42 mg/l 1.42 mg/l 1.42 mg/l Dureza Total 94.00 mg/l 89.00 mg/l 79.00 mg/l Oxigeno de Disuelto 10.00 mg/l 0.10 mg/l 0.00 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 23.50 mg/l 28.70 mg/l 31.20 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 29.30 mg/l 35.80 mg/l 39.00 mg/l OBSERVACIONES: 10h30 Recolección de muestras, ambiente nublado


MUESTRAS: MITAD PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (8 MT) TOMA # 3 (16 MT) PH 8.19 7.51 7.35 Temperatura 28.00 oC 27.00 oC 26.00 oC Transparencia 0.74 mt --- --- Conductividad 173.80 micromhos/cm 178.00 micromhos/cm 182.20 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 386.00 mg/l 390.00 mg/l 384.00 mg/l Fosfatos Totales 0.80 mg/l 0.30 mg/l 0.20 mg/l Polifosfatos 0.64 mg/l 0.24 mg/l 0.16 mg/l Monoacido Fosfatos 0.16 mg/l 0.06 mg/l 0.04 mg/l Nitratos 0.50 mg/l 0.33 mg/l 0.22 mg/l Nitritos 0.06 mg/l 0.12 mg/l 0.06 mg/l Sílice 12.00 mg/l 13.00 mg/l 11.00 mg/l N. Amoniacal 0.00 mg/l 0.00 mg/l 0.16 mg/l Hierro 0.01 mg/l 0.01 mg/l 0.03 mg/l Manganeso 0.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Acido Sulfhidrico 1.70 mg/l 0.64 mg/l 1.06 mg/l Anhídrido Carbonico 8.00 mg/l 5.00 mg/l 8.00 mg/l Materia Organica 12.35 mg/l 8.30 mg/l 5.40 mg/l Alcalinidad Total 89.00 mg/l 80.00 mg/l 72.00 mg/l Alcalinidad Simple 36.20 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 2.84 mg/l 2.84 mg/l 2.84 mg/l Dureza Total 92.00 mg/l 83.00 mg/l 83.00 mg/l Oxigeno Disuelto 9.10 mg/l 0.20 mg/l 0.00 mg/l Demanda Bioquimica de Oxigeno 18.40 mg/l 21.80 mg/l 22.50 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 23.00 mg/l 27.25 mg/l 28.12 mg/l OBSERVACIONES: 11H20 Recolección de muestras, ambiente soleado


MUESTRAS: CASTILLO PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (8 MT) TOMA # 3 (16 MT) PH 7.42 7.20 7.20 Temperatura 27.00 oC 26.00 oC 25.50 oC Transparencia 0.84 mt --- --- Conductividad 175.40 micromhos/cm 186.20 micromhos/cm 178.10 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 334.00 mg/l 232.00 mg/l 176.00 mg/l Fosfatos Totales 0.29 mg/l 0.25 mg/l 0.39 mg/l Polifosfatos 0.23 mg/l 0.25 mg/l 0.31 mg/l Monoacido Fosfatos 0.05 mg/l 0.05 mg/l 0.03 mg/l Nitratos 0.32 mg/l 0.20 mg/l 0.43 mg/l Nitritos 0.0 6 mg/l 0.11 mg/l 0.07 mg/l Silice 11.00 mg/l 11.00 mg/l 12.00 mg/l N. Amoniacal 0.00 mg/l 0.00 mg/l 0.15 mg/l Hierro 0.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Manganeso 0.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Acido Sulfhidrico 0.43 mg/l 0.64 mg/l 1.28 mg/l Anhidrido Carbonico 10.00 mg/l 6.00 mg/l 8.00 mg/l Materia Organica 11.00 mg/l 5.80 mg/l 8.10 mg/l Alcalinidad Total 83.00 mg/l 82.00 mg/l 76.00 mg/l Alcalinidad Simple 0.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 1.42 mg/l 1.42 mg/l 1.42 mg/l Dureza Total 84.00 mg/l 88.00 mg/l 72.00 mg/l Oxigeno Disuelto 8.40 mg/l 0.20 mg/l 0.10 mg/l Demanda Bioquimica de Oxigeno 24.80 mg/l 28.30 mg/l 30.70 mg/l Demanda Quimica de oxigeno 31.00 mg/l 35.30 mg/l 38.30 mg/l OBSERVACIONES: 11h50 Recolección de muestras, ambiente soleado.



MUESTRAS COLA 1 COLA 2 COLA 3 MITAD 1 MITAD 2 MITAD 3 CAST 1 CAST 2 CAST 3 CIANOPHYTAS

Agmenellum Quadriduplicatum 1600 cel/ml 32 cel/ml 16 cel/ml 1400 cel/ml --------- 347 cel/ml 800 cel/ml 48 cel/ml 16 cel/ml Oscillatoria Subtilissima 2900 cel/ml 144 cel/ml 640 cel/ml 7800 cel/ml 36241 cel/ml 1040 cel/ml 5000 cel/ml 2656 cel/ml 1376 cel/ml Anabaenopsis Raciborkii 33.000cel/ml 4496 cel/ml 320 cel/ml 36.200 cel/ml 13052cel/ml 5360cel/ml 400cel/ml 1808cel/ml 4960cel/ml CLOROPHYTAS Chlorella Vulgare 40.800cel/ml 176cel/ml ----------- 27.200cel/ml 34205cel/ml 27cel/ml 6600cel/ml 192cel/ml ----------- Scenedesmus Cuadricauda ------------ ------------ ----------- 200 cel/ml ------------ 107cel/ml ----------- ----------- ----------- Scenedesmus jaranensis ----------- ----------- ----------- ----------- ----------- ----------- ----------- ----------- ----------- Chlamidomona Globosa 37200cel/ml 1296 cel/ml ----------- 17800cel/ml 1052cel/ml 107cel/ml 10000cel/ml 320cel/ml 16cel/ml Ankistrodemus Falcatus ------------ ------------ ----------- ------------ ------------ 27 cel/ml --------- ---------- ---------- PIRROPHYTAS Peridinium SP 8.200 cel/ml 16 cel/ml 32cel/ml 6000 cel/ml 201 cel/ml ----------- 8400cel/ml 128cel/ml ---------- CHRISOPHYTAS (Diatomeas) Synedra Acus 4400cel/ml 768 cel/ml 608 cel/ml 4800cel/ml 3368cel/ml 1413cel/ml 10000cel/ml 4496cel/ml 1808cel/ml Achnantes Microcephala 70800cel/ml 304 cel/ml 32 cel/ml 91400cel/ml 4842cel/ml 587cel/ml 79.200cel/ml 2298cel/ml ----------- Diatoma Vulgare ------- ------- --------- 200cel/ml 201cel/ml 80cel/ml --------- ----------- ----------- Nitzschia Gracilis 400cel/ml -------- --------- --------- -------- 80cel/ml 600cel/ml 112 cel/ml ----------- TOTAL 199300 cel/ml 7232 cel/ml 1648cel/ml 193000cel/ml 93242 cel/ml 9175 cel/ml 121.000 cel/ml 12688 cel/ml 8704 cel/ml


PH 7.70 PH 7.20 Temperatura 25.00 o C Temperatura 25.50 o C Color 45.00 U (Pt /Co) Color 8.00 U (Pt /Co) Turbiedad 18.00 UNT Turbiedad 1.10 UNT Conductividad 187.70 micromhos /cm Conductividad 197.60 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos (STD) 83.00 mg/l Solidos Totales Disueltos 144.00 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.20 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.15 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.16 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.12 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.04 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.03 mg/l Nitratos (NO3) 0.35 mg/l Nitratos (NO3) 0.15 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.07 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.07 mg/l Sílice (SiO2) 9.00 mg/l Sílice (SiO2) 4.00 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.00 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.00 mg/lit Hierro (Fe++) 0.12 mg/l Hierro (Fe++) 0.12 mg/l Manganeso (Mn++) 0.00 mg/l Manganeso (Mn++) 0.10 mg/l Ácido Sulfhídrico (SH2) 0.21 mg/l Acido Sulfhidrico (SH2) 0.00 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 6.25 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 0.00 mg/l Materia Orgánica (O2 ) 6.80 mg/l Materia Organica (O2 ) 3.60 mg/l Dureza Total (TH) 82.00 mg/l Dureza Total (TH) 90.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 80.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 80.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Cloruros (Cl- ) 7.10 mg/l Cloruros (Cl- ) 9.90 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 0.00 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 6.40 mg/l Demanda de Cloro (CL) 4.00 mg/l Trihalometanos 0.00 ug/licomo CH3 Cl Cloro Libre 1.00 mg /l Cloro Total > 1.30 mg /l



MUESTRAS AGUA CRUDA AGUA TRATADA CIANOPHYTAS Agmenellum Quadriduplicatum 160 cel/ml ---------- Oscillatoria Subtilissima ----------- 160 cel/ml Anabaenopsis Raciborkii 1600 cel/ml 400 cel/ml CLOROPHYTAS Chlorella Vulgare ------------ ----------- Scenedesmus Cuadricauda ------------- ----------- Scenedesmus jaranensis 48 cel/ml ----------- Chlamidomona Globosa ------------- --------- Ankistrodemus Falcatus ---------- ---------- PIRROPHYTAS Peridinium SP 160 cel/ml ------------ CHRISOPHYTAS (Diatomeas) Synedra Acus 2576 cel/ml ----------- Achnantes Microcephala 528 cel/ml ------------ Diatoma Vulgare 16 cel/ml 27 cel/ml Nitzschia Gracilis ----------- -------------- TOTAL 4560 cel/ml 587 cel/ml

SEPTIEMBRE 2002

ANÁLISIS FISICO QUÍMICO DEL EMBALSE DE POZA HONDA MUESTRAS: COLA PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (6 MT) TOMA # 3 (12 MT) PH 8.24 7.61 7.35 Temperatura 28.00 oC 26.00 oC 26.00 °C Transparencia 0.72 mt -- --- Conductividad 186.50 micromhos/cm 199.50 micromhos/cm 198.40 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 266.00 mg/l 192.00 mg/l 204.00 mg/l Fosfatos Totales 0.40 mg/l 0.40 mg/l 0.60 mg/l Polifosfatos 0.32 mg/l 0.32 mg/l 0.48 mg/l Monoacido Fosfatos 0.08 mg/l 0.08 mg/l 0.12 mg/l Nitratos 0.35 mg/l 0.40 mg/l 0.35 mg/l Nitritos 0.06 mg/l 0.05 mg/l 0.12 mg/l Sílice 10.00 mg/l 12.00 mg/l 11.00 mg/l N. Amoniacal 0.07 mg/l 0.07 mg/l 0.10 mg/l Hierro 0.08 mg/l 0.18 mg/l 0.32 mg/l Manganeso 0.18 mg/l 0.16 mg/l 0.07 mg/l Acido Sulfhidrico 0.45 mg/l 0.21 mg/l 1.92 mg/l Anhídrido Carbonico 8.00 mg/l 3.25 mg/l 5.00 mg/l Materia Organica 10.95 mg/l 7.20 mg/l 4.80 mg/l Alcalinidad Total 90.00 mg/l 82.00 mg/l 100.00 mg/l Alcalinidad Simple 13.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 1.42 mg/l 2.84 mg/l 0.00 mg/l Dureza Total 88.00 mg/l 90.00 mg/l 79.00 mg/l Oxigeno Disuelto 8.70 mg/l 0.60 mg/l 0.20 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 27.50 mg/l 29.80 mg/l 33.50 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 34.30 mg/l 37.20 mg/l 41.80 mg/l OBSERVACIONES: 10h30 Recolección de muestras, ambiente nublado.


MUESTRAS: MITAD PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (8 MT) TOMA # 3 (15 MT) PH 8.31 7.60 7.35 Temperatura 28.00 oC 26.30 oC 26.00 oC Transparencia 0.70 mt --- --- Conductividad 181.20 micromhos/cm 153.40 micromhos/cm 196.20 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 286.00 mg/l 280.00 mg/l 304.00 mg/l Fosfatos Totales 0.45 mg/l 0.30 mg/l 0.30 mg/l Polifosfatos 0.36 mg/l 0.24 mg/l 0.24 mg/l Monoacido Fosfatos 0.09 mg/l 0.06 mg/l 0.06 mg/l Nitratos 0.49 mg/l 0.29 mg/l 0.21 mg/l Nitritos 0.06 mg/l 0.10 mg/l 0.05 mg/l Sílice 7.00 mg/l 11.00 mg/l 12.00 mg/l N. Amoniacal 0.07 mg/l 0.05 mg/l 0.05 mg/l Hierro 0.08 mg/l 0.12 mg/l 0.23 mg/l Manganeso 0.18 mg/l 0.09 mg/l 0.06 mg/l Acido Sulfhidrico 0.85 mg/l 0.64 mg/l 2.56 mg/l Anhídrido Carbonico 11.00 mg/l 4.20 mg/l 12.80 mg/l Materia Organica 10.60 mg/l 6.10 mg/l 4.70 mg/l Alcalinidad Total 79.00 mg/l 76.00 mg/l 75.00 mg/l Alcalinidad Simple 25.80 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 1.42 mg/l 1.42 mg/l 0.00 mg/l Dureza Total 84.00 mg/l 87.00 mg/l 77.00 mg/l Oxigeno Disuelto 10.00 mg/l 0.2.00 mg/l 0.10 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 24.70 mg/l 26.50 mg/l 29.30 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 30.87 mg/l 32.68 mg/l 36.60 mg/l OBSERVACIONES: 11H15 Recolección de muestras, ambiente nublado


MUESTRAS: CASTILLO PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (11 MT) TOMA # 3 (21 MT) PH 8.63 7.55 7.31 Temperatura 28.00 oC 26.20 oC 26.00 oC Transparencia 0.74 mt --- --- Conductividad 198.2 micromhos/cm 199.50 micromhos/cm 197.50 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 298.00 mg/l 142.00 mg/l 456.00 mg/l Fosfatos Totales 0.40 mg/l 0.30 mg/l 0.30 mg/l Polifosfatos 0.32 mg/l 0.24 mg/l 0.24 mg/l Monoacido Fosfatos 0.08 mg/l 0.06 mg/l 0.06 mg/l Nitratos 0.44 mg/l 0.31 mg/l 0.35 mg/l Nitritos 0.06 mg/l 0.09 mg/l 0.10 mg/l Sílice 9.00 mg/l 11.00 mg/l 10.00 mg/l N. Amoniacal 0.10 mg/l 0.07 mg/l 0.05 mg/l Hierro 0.06 mg/l 0.05 mg/l 0.19 mg/l Manganeso 0.16 mg/l 0.11 mg/l 0.06 mg/l Acido Sulfhidrico 0.21 mg/l 4.47 mg/l 5.57 mg/l Anhídrido Carbonico 17.10 mg/l 16.00 mg/l 18.80 mg/l Materia organica 10.20 mg/l 5.80 mg/l 4.50 mg/l Alcalinidad Total 75.00 mg/l 76.00 mg/l 76.00 mg/l Alcalinidad Simple 25.80 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 0.50 mg/l 0.50 mg/l 0.00 mg/l Dureza Total 88.00 mg/l 84.00 mg/l 75.00 mg/l Oxigeno Disuelto 13.00 mg/l 0.10 mg/l 0.00 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 25.80 mg/l 25.70 mg/l 31.60 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 32.25 mg/l 32.10 mg/l 39.50 mg/l OBSERVACIONES: 11h30 Recolección de muestras, con resplandor

ANALISIS BIOLOGICO DEL EMBALSE DE POZA HONDA TIPO DE ANALISIS: CUALITATIVO Y CUANTITATIVO DEL FITOPLANCTON

MUESTRAS COLA 1 COLA 2 COLA 3 MITAD 1 MITAD 2 MITAD 3 CAST 1 CAST 2 CAST 3

CIANOPHYTAS

Chroococcus Minor ----- ----- ----- ----- ----- ----- ----- ----- ----- Anacystis SP 1333 cel/ml 1000 cel/ml ----- ----- ----- ----- 211 cel/ml ----- ----- Agmenellum Quadriduplicatum 1600 cel/ml ----- 10526 cel/ml 500 cel/ml 800 cel/ml 7368 cel/ml ----- 7091 cel/ml 25077 cel/ml

Oscillatoria Formosa ----- 3400 cel/ml ----- ----- ----- ----- ----- ----- ----- Oscillatoria Subtilissima 267 cel/ml ----- ----- ----- ----- ----- 211 cel/ml ----- ----- Spirulina Subsalsa 433 cel/ml ----- ----- 1000 cel/ml ----- ----- ----- ----- ----- Anabaenopsis Raciborkii 31733 cel/ml 4200 cel/ml 1053 cel/ml 58500 cel/ml 800 cel/ml 1053 cel/ml 2105 cel/ml 182 cel/ml 462 cel/ml CLOROPHYTAS Chlorella Vulgare ----- 600 cel/ml ----- 8500 celml ----- 22737 cel/ml 7158 cel/ml ----- ----- Scenedesmus Cuadricauda 1867 cel/ml ----- ----- ----- ----- ----- 421 cel/ml ----- ----- Chlamidomona Globosa 2935 cel/ml ----- 211 cel/ml 8000 cel/ml 2200 cel/ml 1474 cel/ml 5895 cel/ml 1273 cel/ml ----- PIRROPHYTAS Peridinium SP 2400 cel/ml 400 cel/ml ----- 2000 cel/ml 2200 cel/ml 1263 cel/ml 6947 cel/ml ----- 462 cel/ml CHRISOPHYTAS (Diatomeas) Synedra Acus 267 cel/ml 400 cel/ml 2316 cel/ml 750 cel/ml 2600 cel/ml 3789 cel/ml 2316 cel/ml 2909 cel/ml 2923 cel/ml Achnantes Microcephala 2267 cel/ml ------- 4000 cel/ml 1250 cel/ml 1800 cel/ml 2947 cel/ml 1684 cel/ml ----- ----- Diatoma Vulgare ----- ----- ----- ----- 10000

cel/ml 6105 cel/ml 211 cel/ml 14364

cel/ml 5846 cel/ml

Nitzschia Gracilis ----- ----- ----- 250 cel/ml 400 cel/ml ----- ----- ----- ----- TOTAL 45.500 cel/ml 10.000 cel/ml 1816 cel/ml 80750

cel/ml 20800 cel/ml

46736 cel/ml

27159 cel/ml

25819 cel/ml

34770 cel/ml


PH 7.30 PH 7.01 Temperatura 25.00 o C Temperatura 25.50 o C Color 28.00 U (Pt /Co) Color 7.00 U (Pt /Co) Turbiedad 22.00 UNT Turbiedad 1.10 UNT Conductividad 187.70 micromhos /cm Conductividad 190.7 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos (STD) 183.00 mg/l Solidos Totales Disueltos 138.00 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.25 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.50 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.20 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.40 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.05 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.10 mg/l Nitratos (NO3) 0.18 mg/l Nitratos (NO3) 0.50 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.06 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.05 mg/l Sílice (SiO2) 11.00 mg/l Sílice (SiO2) 4.00 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.08 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.07 mg/l Hierro (Fe++) 0.07 mg/l Hierro (Fe++) 0.08 mg/l Manganeso (Mn++) 0.10 mg/l Manganeso (Mn++) 0.10 mg/l Ácido Sulfhídrico (SH2) 0.53 mg/l Acido Sulfhidrico (SH2) 0.00 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 10.00 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 0.00 mg/l Materia Orgánica (O2 ) 6.70 mg/l Materia Organica (O2 ) 2.30 mg/l Dureza Total (TH) 80.00 mg/l Dureza Total (TH) 80.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 80.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 56.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Cloruros (Cl- ) 4.97 mg/l Cloruros (Cl- ) 5.68 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 0.00 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 7.4 mg/l Demanda de Cloro (CL) 5.60 mg/l Trihalometanos 0.00 ug/l como CH3 Cl Cloro Libre 1.00 mg /l Cloro Total > 1.50 mg /l



MUESTRAS AGUA CRUDA AGUA TRATADA CIANOPHYTAS Chroococcus Minor -------- 222 cel/ml Anacystis SP -------- ------- Agmenellum Quadriduplicatum 533 cel/ml ------ Oscillatoria Formosa -------- ------ Oscillatoria Subtilissima -------- 222 cel/ml Spirulina Subsalsa -------- ----- Anabaenopsis Raciborkii 80.800 cel/ml 96.000 cel/ml CLOROPHYTAS Chlorella Vulgare 9067 cel/ml 4667 cel/ml Scenedesmus Cuadricauda 1067 cel/ml 222 cel/ml Chlamidomona Globosa 1067 cel/ml --------- PIRROPHYTAS Peridinium SP --------- --------- CHRISOPHYTAS (Diatomeas) Synedra Acus 1600 cel/ml 4222 cel/ml Achnantes Microcephala 800 cel/ml 222 cel/ml Diatoma Vulgare ------- 222 cel/ml Nitzschia Gracilis 533 cel/ml ---------- TOTAL 95.467 cel/ml 105.900 cel/ml

OCTUBRE 2002

ANÁLISIS FISICO QUÍMICO DEL EMBALSE DE POZA HONDA MUESTRAS: COLA PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (5MT) TOMA # 3 (11 MT) PH 8.42 7.43 7.32 Temperatura 28.00 oC 26.40 oC 26.00 oC Transparencia 0.72 mt -- --- Conductividad 196.50 micromhos/cm 199.20 micromhos/cm 198.40 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 214.00 mg/l 232.00 mg/l 250.00 mg/l Fosfatos Totales 0.40 mg/l 0.25 mg/l 0.60 mg/l Polifosfatos 0.32 mg/l 0.20 mg/l 0.12 mg/l Monoacido Fosfatos 0.08 mg/l 0.05 mg/l 0.48 mg/l Nitratos 0.41 mg/l 0.42 mg/l 0.38 mg/l Nitritos 0.06 mg/l 0.05 mg/l 0.12 mg/l Sílice 7.00 mg/l 6.00 mg/l 5.00 mg/l N. Amoniacal 0.07 mg/l 0.07 mg/l 0.10 mg/l Hierro 0.08 mg/l 0.18 mg/l 0.27 mg/l Manganeso 0.18 mg/l 0.16 mg/l 0.05 mg/l Acido Sulfhidrico 1.92 mg/l 0.21 mg/l 0.50 mg/l Anhídrido Carbonico 9.00 mg/l 5.00 mg/l 5.00 mg/l Materia Organica 10.10 mg/l 9.90 mg/l 6.30 mg/l Alcalinidad Total 90.00 mg/l 82.00 mg/l 100.00 mg/l Alcalinidad Simple 13.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 0.70 mg/l 1.42 mg/l 0.00 mg/l Dureza Total 95.00 mg/l 91.00 mg/l 85.00 mg/l Oxigeno Disuelto 14.20 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 25.10 mg/l 29.00 mg/l 33.80 mg/l Demanda Quimica de oxigeno 31.37 mg/l 36.25 mg/l 42.25 mg/l OBSERVACIONES: 9h40 Recolección de muestras, ambiente nublado


MUESTRAS: MITAD PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (7 MT) TOMA # 3 (14 MT) PH 8.45 7.55 7.42 Temperatura 28.00 oC 26.60 oC 26.00 oC Transparencia 0.74 mt --- --- Conductividad 196.40 micromhos/cm 194.80 micromhos/cm 198.70 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 318.00 mg/l 315.00 mg/l 302.00 mg/l Fosfatos Totales 0.35 mg/l 0.30 mg/l 0.50 mg/l Polifosfatos 0.28 mg/l 0.24 mg/l 0.10 mg/l Monoacido Fosfatos 0.07 mg/l 0.06 mg/l 0.40 mg/l Nitratos 0.32 mg/l 0.39 mg/l 1.30 mg/l Nitritos 0.04 mg/l 0.04 mg/l 0.05 mg/l Sílice 7.00 mg/l 5.00 mg/l 5.00 mg/l N. Amoniacal 0.07 mg/l 0.08 mg/l 0.07 mg/l Hierro 0.08 mg/l 0.10 mg/l 0.15 mg/l Manganeso 0.12 mg/l 0.08 mg/l 0.06 mg/l Acido Sulfhidrico 0.85 mg/l 0.21 mg/l 0.64 mg/l Anhídrido Carbonico 0.00 mg/l 5.00 mg/l 4.50 mg/l Materia Organica 10.60 mg/l 7.95 mg/l 5.80 mg/l Alcalinidad Total 88.00 mg/l 91.00 mg/l 95.00 mg/l Alcalinidad Simple 24.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 0.71 mg/l 0.71 mg/l 0.71 mg/l Dureza Total 92 .00 mg/l 90.00 mg/l 88.00 mg/l Oxigeno Disuelto 7.90 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 19.30 mg/l 26.70 mg/l 31.50 mg/l Demanda Quimica de oxigeno 24.10 mg/l 33.30 mg/l 39.30 mg/l OBSERVACIONES: 10H15 Recolección de muestras, ambiente nublado


MUESTRAS: CASTILLO PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (10 MT) TOMA # 3 (20 MT) PH 7.80 7.64 7.37 Temperatura 28.00 oC 27.00 oC 26.00 oC Transparencia 0.74 mt --- --- Conductividad 189.30 micromhos/cm 189.70 micromhos/cm 186.20 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 434.00 mg/l 390.00 mg/l 33.60 mg/l Fosfatos Totales 0.25 mg/l 0.20 mg/l 0.30 mg/l Polifosfatos 0.20 mg/l 0.04 mg/l 0.06 mg/l Monoacido Fosfatos 0.05 mg/l 0.16 mg/l 0.24 mg/l Nitratos 0.31 mg/l 0.22 mg/l 0.36 mg/l Nitritos 0.04 mg/l 0.02 mg/l 0.04 mg/l Silice 8.00 mg/l 7.00 mg/l 7.00 mg/l N. Amoniacal 0.11 mg/l 0.09 mg/l 0.08 mg/l Hierro 0.08 mg/l 0.13 mg/l 0.09 mg/l Manganeso 0.18 mg/l 0.15 mg/l 0.05 mg/l Acido Sulfhidrico 1.70 mg/l 0.43 mg/l 1.07 mg/l Anhídrido Carbonico 6.25 mg/l 4.25 mg/l 4.00 mg/l Materia Organica 9.60 mg/l 5.85 mg/l 3.75 mg/l Alcalinidad Total 87.00 mg/l 88.00 mg/l 87.00 mg/l Alcalinidad Simple 0.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 0.71 mg/l 0.71 mg/l 0.71 mg/l Dureza Total 95.00 mg/l 96.00 mg/l 98.00 mg/l Oxigeno Disuelto 6.30 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 21.30 mg/l 25.60 mg/l 33.40 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 26.60 mg/l 32.00 mg/l 41.70 mg/l OBSERVACIONES: 10h50 Recolección de muestras, ambiente nublado



CIANOPHYTAS

Agmenellum Quadriduplicatum 1800 cel/ml -- 471 cel/ml --- --- --- ----- ---- --- Oscillatoria Subtilissima --- --- 235 cel/ml --- --- --- ----- ---- --- Spirulina Subsalsa 500 cel/ml --- --- --- ----- ---- ---- ---- ---- Anabaenopsis Raciborkii 26750 cel/ml 22501 cel/ml 23529 cel/ml 6453 cel/ml 4448 cel/ml 5696 cel/ml 97400 cel/ml 55059 cel/ml 56059 cel/ml

CLOROPHYTAS Chlorella Vulgare 25750 cel/ml 5827 cel/ 6.588 cel/ml 1867 cel/ml 144 cel/ml --- 4.800 cel/ml 600 cel/ml 632 cel/ml Chlamidomona Globosa 4500 cel/ml --- --- --- --- --- 3600 cel/ml --- --- EUGLENOPHYTAS Euglena Acus --- --- 235 celml ---- --- --- ----- ---- --- PIRROPHYTAS Peridinium SP 1500 cel/ml 70 cel/ml --- --- --- --- 1200 cel/ml --- --- CHRISOPHYTAS (Diatomeas) Synedra Acus 500 cel/ml 327 cel/ml --- --- --- --- --- --- ---- Achnantes Microcephala 1250 cel/ml --- 3294 cel/ml --- --- --- --- --- --- Nitzschia Gracilis 1750 cel/ml 814 cel/ml 706 cel/ml --- --- --- --- --- --- TOTAL 64300 cel/ml 29539 cel/ml 35293 cel/ml 8320 cel/ml 4592 cel/ml 5696 cel/ml 107200

cel/ml 55659 cel/ml 56691 cel/ml


PH 7.32 PH 7.08 Temperatura 25.20 o C Temperatura 25.70 o C Color 32.00 U (Pt /Co) Color 5.00 U (Pt /Co) Turbiedad 12.00 UNT Turbiedad 1.00 UNT Conductividad 196.90 micromhos /cm Conductividad 193.80 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos (STD) 192.00 mg/l Solidos Totales Disueltos 189.00 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.30 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.10 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.24 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.08 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.06 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.02 mg/l Nitratos (NO3) 0.38 mg/l Nitratos (NO3) 0.03 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.04 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.04 mg/l Sílice (SiO2) 8.00 mg/l Sílice (SiO2) 3.00 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.07 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.06 mg/l Hierro (Fe++) 0.08 mg/l Hierro (Fe++) 0.05 mg/l Manganeso (Mn++) 0.15 mg/l Manganeso (Mn++) 0.05 mg/l Ácido Sulfhídrico (SH2) 2.56 mg/l Acido Sulfhidrico (SH2) 0.00 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 0.00 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 0.00 mg/l Materia Orgánica (O2 ) 7.00 mg/l Materia Organica (O2 ) 3.10 mg/l Dureza Total (TH) 78.00 mg/l Dureza Total (TH) 92.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 98.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 70.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Cloruros (Cl- ) 5.60 mg/l Cloruros (Cl- ) 14.20 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 1.00 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 7.20 mg/l Demanda de Cloro (CL) 5.00 mg/l Trihalometanos 0.00 ug/l como CH3 Cl Cloro Libre 1.00 mg /l Cloro Total > 1.40 mg /l



MUESTRAS AGUA CRUDA AGUA TRATADA CIANOPHYTAS Agmenellum Quadriduplicatum 1600 cel/ml --- Oscillatoria Subtilissima --- --- Spirulina Subsalsa 200 cel/ml --- Anabaenopsis Raciborkii 70.200 cel/ml 170 cel/ml CLOROPHYTAS Chlorella Vulgare 5.600 cel/ml -- Chlamidomona Globosa 400 cel/ml --- EUGLENOPHYTAS Euglena Acus 200 cel/ml -- PIRROPHYTAS Peridinium SP --- -- CHRISOPHYTAS (Diatomeas) Synedra Acus --- ---- Achnantes Microcephala 2.000 cel/ml -- Nitzschia Gracilis 1.600 cel/ml ------- TOTAL 81.800 cel/ml 170 cel/ml

NOVIEMBRE 2002 ANÁLISIS FISICO QUÍMICO DEL EMBALSE DE POZA HONDA

MUESTRAS: COLA

PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (6MT) TOMA # 3 ( MT) PH 7.33 7.12 -------------- Temperatura 27.00 oC 26.80 oC -------------- Transparencia 0.72 mt -- -------------- Conductividad 199.70 micromhos/cm 197.80 micromhos/cm -------------- Solidos Totales Disueltos 239.00 mg/l 276.00 mg/l -------------- Fosfatos Totales 0.30 mg/l 0.20 mg/l -------------- Polifosfatos 0.24 mg/l 0.16 mg/l -------------- Monoacido Fosfatos 0.06 mg/l 0.04 mg/l -------------- Nitratos 0.34 mg/l 0.35 mg/l -------------- Nitritos 0.11 mg/l 0.08 mg/l -------------- Sílice 18.00 mg/l 15.00 mg/l -------------- N. Amoniacal 0.06 mg/l 0.05 mg/l -------------- Hierro 0.13 mg/l 0.17 mg/l -------------- Manganeso 0.16 mg/l 0.09 mg/l -------------- Acido Sulfhidrico 0.21 mg/l 1.07 mg/l -------------- Anhídrido Carbonico 0.00 mg/l 6.00 mg/l -------------- Materia Organica 9.20 mg/l 8.35 mg/l -------------- Alcalinidad Total 86.00 mg/l 91.00 mg/l -------------- Alcalinidad Simple 0.00 mg/l 0.00 mg/l -------------- Cloruros 1.42 mg/l 2.84 mg/l -------------- Dureza Total 85.00 mg/l 90.00 mg/l -------------- Oxigeno Disuelto 7.20 mg/l 0.20 mg/l -------------- Demanda Bioquímica de Oxigeno 23.60 mg/l 27.40 mg/l -------------- Demanda Quimica de Oxigeno 29.60 mg/l 34.20 mg/l --------------

OBSERVACIONES: Recolección de muestras ambiente nublado, dia anterior llovió, toma de muestras se efectuó a 500mts antes de la estación de muestreo fijada en razón de descenso de nivel.


MUESTRAS: MITAD PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (7 MT) TOMA # 3 (14 MT) PH 7.45 7.49 7.26 Temperatura 27.00 oC 26.50 oC 26.40 oC Transparencia 0.84 mt --- --- Conductividad 192.20 micromhos/cm 190.70 micromhos/cm 199.80 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 284.00 mg/l 286.00 mg/l 238.00 mg/l Fosfatos Totales 0.40 mg/l 0.30 mg/l 0.20 mg/l Polifosfatos 0.32 mg/l 0.24 mg/l 0.16 mg/l Monoacido Fosfatos 0.08 mg/l 0.06 mg/l 0.04 mg/l Nitratos 0.23 mg/l 0.31 mg/l 0.23 mg/l Nitritos 0.06 mg/l 0.06 mg/l 0.07 mg/l Sílice 15.00 mg/l 14.00 mg/l 17.00 mg/l N. Amoniacal 0.06 mg/l 0.07 mg/l 0.06 mg/l Hierro 0.07 mg/l 0.12 mg/l 0.10 mg/l Manganeso 0.17 mg/l 0.11 mg/l 0.14 mg/l Acido Sulfhidrico 1.07 mg/l 0.64 mg/l 0.64 mg/l Anhídrido Carbonico 0.00 mg/l 4.75 mg/l 6.00 mg/l Materia Organica 9.00 mg/l 7.10 mg/l 5.45 mg/l Alcalinidad Total 87.00 mg/l 89.00 mg/l 88.00 mg/l Alcalinidad Simple 0.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 1.42 mg/l 1.42 mg/l 1.42 mg/l Dureza Total 82.00 mg/l 81.00 mg/l 78.00 mg/l Oxigeno Disuelto 7.40 mg/l 0.30 mg/l 0.00 mg/l Demanda Bioquímica de oxigeno 15.70 mg/l 20.70 mg/l 28.10 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 19.60 mg/l 25.80 mg/l 35.10 mg/l OBSERVACIONES: 11H10 Recolección de muestras, ambiente nublado


MUESTRAS: CASTILLO PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (8 MT) TOMA # 3 (17 MT) PH 7.40 7.55 7.60 Temperatura 27.00 oC 26.50 oC 26.20 oC Transparencia 0.96 mt --- --- Conductividad 198.60 micromhos/cm 195.60 micromhos/cm 195.50 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 268.00 mg/l 144.00 mg/l 136.00 mg/l Fosfatos Totales 0.30 mg/l 0.40 mg/l 0.20 mg/l Polifosfatos 0.24 mg/l 0.08 mg/l 0.16 mg/l Monoacido Fosfatos 0.06 mg/l 0.32 mg/l 0.04 mg/l Nitratos 0.32 mg/l 0.24 mg/l 1.00 mg/l Nitritos 0.05 mg/l 0.05 mg/l 0.06 mg/l Sílice 12.00 mg/l 7.00 mg/l 13.00 mg/l N. Amoniacal 0.07 mg/l 0.06 mg/l 0.08 mg/l Hierro 0.11 mg/l 0.08 mg/l 0.17 mg/l Manganeso 0.15 mg/l 0.13 mg/l 0.15 mg/l Acido Sulfhidrico 0.85 mg/l 0.64 mg/l 1.07 mg/l Anhídrido Carbonico 6.00 mg/l 5.00 mg/l 4.00 mg/l Materia Organica 10.40 mg/l 8.20 mg/l 5.85 mg/l Alcalinidad Total 87.00 mg/l 82.00 mg/l 88.00 mg/l Alcalinidad Simple 0.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 1.42 mg/l 1.42 mg/l 2.84 mg/l Dureza Total 85.00 mg/l 86.00 mg/l 81.00 mg/l Oxigeno Disuelto 1.30 mg/l 0.40 mg/l 0.00 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 23.60 mg/l 25.90 mg/l 30.50 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 29.60 mg/l 32.30 mg/l 38.10 mg/l OBSERVACIONES: 11h31 Recolección de muestras, ambiente nublado



CIANOPHYTAS

Agmenellum Quadriduplicatum 1253 cel/ml ---- ----- 657 cel/ml ---- ---- ---- ---- ---- Spirulina Subsalsa 453 cel/ml ----- ----- --- ----- ---- ---- ---- ---- Anabaenopsis Raciborkii 23574 cel/ml 18554 cel/ml ----- 548 cel/ml 4874 cel/ml 3224 cel/ml 101400 cel/ml 43817 cel/ml 42117 cel/ml

CLOROPHYTAS Chlorella Vulgare 31078 cel/ml 3424 cel/ml ----- 824 cel/ml 98 cel/ml ---- 5755 cel/ml 823 cel/ml 874 cel/ml Scedesmus Cuadricauda ---- ---- ----- ----- ----- ---- ---- ---- 514 cel/ml Chlamidomona Globosa 2892 cel/ml ---- ----- 3405 cel/ml ---- ---- 3023 cel/ml ---- ---- EUGLENOPHYTAS Phacus SP ----- ---- ----- ------- 348 cel/ml ---- ---- ---- ---- PIRROPHYTAS Peridinium SP 723 cel/ml ----- ----- 1500 cel/ml ----- ---- ---- ---- ---- CHRISOPHYTAS (Diatomeas) Synedra Acus 545 cel/ml 229 cel/ml ----- ----- ----- ---- ---- ---- ---- Achnantes Microcephala 1023 cel/ml ---- ----- ----- ----- ---- ---- ---- ---- Nitzschia Gracilis 2054 cel/ml 947 cel/ml ----- ----- ---- ---- ---- ---- ---- TOTAL 61345 cel/ml 23154 cel/ml ----- 6934cel/ml 5320 cel/ml 3224 cel/ml 110178 cel/ml 44640 cel/ml 42991 cel/ml

ANALISIS FISICO- QUIMICO DE LA PLANTA DE TRATAMIENTO GUARUMO

MUESTRAS AGUA CRUDA MUESTRAS AGUA TRATADA PH 7.47 PH 7.11 Temperatura 25.00 o C Temperatura 25.50 o C Color 45.00 U (Pt /Co) Color 8.00 U (Pt /Co) Turbiedad 18.00 UNT Turbiedad 2.30 UNT Conductividad 194.50 micromhos /cm Conductividad 213.00 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos (STD) 215.00 mg/l Solidos Totales Disueltos 189.00 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.25 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.17 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.20 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.13 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.05 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.03 mg/l Nitratos (NO3) 0.16 mg/l Nitratos (NO3) 0.08 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.06 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.08 mg/l Sílice (SiO2) 12.00 mg/l Sílice (SiO2) 10.00 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.07 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.07 mg/l Hierro (Fe++) 0.06 mg/l Hierro (Fe++) 0.04 mg/l Manganeso (Mn++) 0.13 mg/l Manganeso (Mn++) 0.02 mg/l Ácido Sulfhídrico (SH2) 0.11 mg/l Acido Sulfhidrico (SH2) 0.00 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 0.00 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 0.00 mg/l Materia Orgánica (O2 ) 6.80 mg/l Materia Organica (O2 ) 3.60 mg/l Dureza Total (TH) 82.00 mg/l Dureza Total (TH) 90.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 80.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 80.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Cloruros (Cl- ) 7.10 mg/l Cloruros (Cl- ) 9.90 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 0.00 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 6.40 mg/l Demanda de Cloro (CL) 5.60 mg/l Trihalometanos 0.00 ug/licomo CH3 Cl Cloro Libre 1.20 mg /l Cloro Total > 1.50 mg /l



MUESTRAS AGUA CRUDA AGUA TRATADA CIANOPHYTAS Agmenellum Quadriduplicatum 1250 cel/ml 80 cel/ml Spirulina Subsalsa ----- ---- Anabaenopsis Raciborkii 8500 cel/ml 173 cel/ml CLOROPHYTAS Chlorella Vulgare 7500 cel/ml ---- Scedesmus Cuadricauda ----- ----- Chlamidomona Globosa 328 cel/ml 285 cel/ml EUGLENOPHYTAS Phacus SP ---- ---- PIRROPHYTAS Peridinium SP ---- ----- CHRISOPHYTAS (Diatomeas) Synedra Acus 500 cel/ml ----- Achnantes Microcephala 1500 cel/ml 150 cel/ml Nitzschia Gracilis 750 cel/ml 224 cel/ml TOTAL 20.328 cel/ml 547 cel/ml

DICIEMBRE 2002 ANÁLISIS FISICO QUÍMICO DEL EMBALSE DE POZA HONDA

MUESTRAS: COLA PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (5MT) TOMA # 3 ( MT) PH 8.60 7.16 -------- Temperatura 28.80 oC 26.80 oC -------- Transparencia 0.76 mt -- -------- Conductividad 207.20 micromhos/cm 249.60 micromhos/cm -------- Solidos Totales Disueltos 234.00 mg/l 488.00 mg/l -------- Fosfatos Totales 0.40 mg/l 0.60 mg/l -------- Polifosfatos 0.32 mg/l 0.48 mg/l -------- Monoacido Fosfatos 0.08 mg/l 0.12 mg/l -------- Nitratos 0.34 mg/l 0.70 mg/l -------- Nitritos 0.07 mg/l 0.07 mg/l -------- Sílice 14.00 mg/l 15.00 mg/l -------- N. Amoniacal 0.06 mg/l 0.08 mg/l -------- Hierro 0.09 mg/l 0.10 mg/l -------- Manganeso 0.14 mg/l 0.18 mg/l -------- Acido Sulfhidrico 1.28 mg/l 1.07 mg/l -------- anhídrido Carbonico 0.00 mg/l 6.00 mg/l -------- Materia organica 11.00 mg/l 6.90 mg/l -------- Alcalinidad Total 86.00 mg/l 84.00 mg/l -------- Alcalinidad Simple 29.00 mg/l 0.00 mg/l -------- Cloruros 1.42 mg/l 1.42 mg/l -------- Dureza Total 79.00 mg/l 81.00 mg/l -------- Oxigeno Disuelto 14.00 mg/l 0.20 mg/l -------- Demanda Bioquímica de oxigeno 27.70 mg/l 28.90 mg/l -------- Demanda Quimica de Oxigeno 34.60 mg/l 36.10 mg/l -------- OBSERVACIONES: 09H20 ambiente nublado.

ANÁLISIS FISICO QUÍMICO DEL EMBALSE DE POZA HONDA MUESTRAS: MITAD PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (6 MT) TOMA # 3 (15 MT) PH 8.60 7.60 7.40 Temperatura 28.20 oC 26.80 oC 26.40 oC Transparencia 0.84 mt --- --- Conductividad 193.40 micromhos/cm 196.30 micromhos/cm 221.40 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 259.00 mg/l 158.00 mg/l 274.00 mg/l Fosfatos Totales 0.30 mg/l 0.45 mg/l 0.60 mg/l Polifosfatos 0.24 mg/l 0.36 mg/l 0.48 mg/l Monoacido Fosfatos 0.06 mg/l 0.09 mg/l 0.12 mg/l Nitratos 0.38 mg/l 0.49 mg/l 0.45 mg/l Nitritos 0.06 mg/l 0.06 mg/l 0.07 mg/l Sílice 11.00 mg/l 12.00 mg/l 9.00 mg/l N. Amoniacal 0.08 mg/l 0.07 mg/l 0.09 mg/l Hierro 0.10 mg/l 0.08 mg/l 0.07 mg/l Manganeso 0.19 mg/l 0.18 mg/l 0.15 mg/l Acido Sulfhidrico 1.02 mg/l 0.85 mg/l 1.28 mg/l Anhídrido Carbonico 0.00 mg/l 4.00 mg/l 6.00 mg/l Materia Organica 10.90 mg/l 9.10 mg/l 5.85 mg/l Alcalinidad Total 85.00 mg/l 88.00 mg/l 87.00 mg/l Alcalinidad Simple 28.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 1.42 mg/l 1.42 mg/l 1.42 mg/l Dureza Total 78.00 mg/l 77.00 mg/l 82.00 mg/l Oxigeno Disuelto 11.20 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 24.10 mg/l 25.70 mg/l 34.80 mg/l Demanda Quimica de oxigeno 30.10 mg/l 32.10 mg/l 43.50 mg/l OBSERVACIONES: 09H35 Recolección de muestras, ambiente nublado


MUESTRAS: CASTILLO PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (7 MT) TOMA # 3 (16 MT) PH 7.62 7.47 7.38 Temperatura 27.70 oC 26.70 oC 26.30 oC Transparencia 0.90 mt --- --- Conductividad 228.10 micromhos/cm 229.70 micromhos/cm 197.60 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 240.00 mg/l 258.00 mg/l 239.00 mg/l Fosfatos Totales 0.24 mg/l 0.40 mg/l 0.30 mg/l Polifosfatos 0.19 mg/l 0.32 mg/l 0.24 mg/l Monoacido Fosfatos 0.04 mg/l 0.08 mg/l 0.06 mg/l Nitratos 0.37 mg/l 0.44 mg/l 0.36 mg/l Nitritos 0.04 mg/l 0.05 mg/l 0.05 mg/l Sílice 9.00 mg/l 8.00 mg/l 6.00 mg/l N. Amoniacal 0.09 mg/l 0.06 mg/l 0.08 mg/l Hierro 0.13 mg/l 0.09 mg/l 0.08 mg/l Manganeso 0.15 mg/l 0.17 mg/l 0.14 mg/l Acido Sulfhidrico 0.85 mg/l 0.64 mg/l 2.34 mg/l anhídrido Carbonico 10.00 mg/l 8.00 mg/l 4.75 mg/l Materia Organica 11.80 mg/l 8.50 mg/l 6.10 mg/l Alcalinidad Total 86.00 mg/l 88.00 mg/l 87.00 mg/l Alcalinidad Simple 0.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 1.42 mg/l 2.84 mg/l 1.42 mg/l Dureza Total 79.00 mg/l 80.00 mg/l 77.00 mg/l Oxigeno Disuelto 4.40 mg/l 0.40 mg/l 0.00 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 23.40 mg/l 26.30 mg/l 33.50 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 29.2 mg/l 32.80 mg/l 41.80 mg/l OBSERVACIONES: 10h20 Recolección de muestras, ambiente nublado con resplandor



CIANOPHYTAS

Agmenellum Quadriduplicatum 1324 cel/ml --- ---- 207cel/ml ---- ---- 487cel/ml ---- ---- Oscillatoria Subtilissima 125 cel/ml ---- ---- ---- ---- ---- ---- ---- ----- Spirulina Subsalsa 187 cel/ml ---- ---- ---- ---- ---- ---- ---- ---- Anabaenopsis Raciborkii 36749 cel/ml 15240cel/ml ---- 37540cel/ml 5342cel/ml 4000cel/ml 80757cel/ml 50000cel/ml 48523cel/ml CLOROPHYTAS Chlorella Vulgare 22117 cel/ml 7424cel/ml ---- 3807cel/ml 5744cel/ml 8921celml 7500cel/ml 850cel/ml 800cel/ml Chlamidomona Globosa 1758 cel/ml --- ---- 1054cel/ml ---- ---- 2524cel/ml ---- ----- EUGLENOPHYTAS Phacus SP ---- ---- ---- ---- 505cel/ml ---- ---- ---- ----- PIRROPHYTAS Peridinium SP 744 cel/ml ---- ---- 872cel/ml ---- ---- 2838cel/ml ----- ---- CHRISOPHYTAS (Diatomeas) Synedra Acus 750cel/ml --- ---- ---- ---- ---- 615cel/ml ---- ----- Achnantes Microcephala 2000cel/ml --- ---- ---- ---- ---- ---- ----- ---- Nitzschia Gracilis 2524cel/ml 213cel/ml ---- ---- ---- ---- ---- ---- ---- TOTAL 68278cel/ml 22677cel/ml ---- 43480cel/ml 11596cel/ml 12921cel/ml 92197cel/ml 50.850cel/ml 49323cel/ml


MUESTRAS AGUA CRUDA MUESTRAS AGUA TRATADA PH 7.29 PH 7.07 Temperatura 25.00 o C Temperatura 25.80 o C Color 55.00 U (Pt /Co) Color 12.00 U (Pt /Co) Turbiedad 32.00 UNT Turbiedad 2.50 UNT Conductividad 195.80 micromhos /cm Conductividad 197.30 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos (STD) 211.00 mg/l Solidos Totales Disueltos 178.00 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.20 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.10 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.16 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.08 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.04 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.02 mg/l Nitratos (NO3) 0.16 mg/l Nitratos (NO3) 0.08 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.07 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.07 mg/l Sílice (SiO2) 10.00 mg/l Sílice (SiO2) 8.00 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.10 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.05 mg/l Hierro (Fe++) 0.09 mg/l Hierro (Fe++) 0.00 mg/l Manganeso (Mn++) 0.20 mg/l Manganeso (Mn++) 0.05 mg/l Ácido Sulfhídrico (SH2) 0.64 mg/l Acido Sulfhidrico (SH2) 0.00 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 0.00 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 0.00 mg/l Materia Orgánica (O2 ) 6.50 mg/l Materia Organica (O2 ) 3.70 mg/l Dureza Total (TH) 80.00 mg/l Dureza Total (TH) 91.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 116.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 82.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Cloruros (Cl- ) 4.20 mg/l Cloruros (Cl- ) 17.04 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 0.40 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 6.90 mg/l Demanda de Cloro (CL) 9.60 mg/l Trihalometanos < 6.00 ug/l como CH3 Cl Cloro Libre 1.00 mg /l Cloro Total 1.20 mg /l



MUESTRAS AGUA CRUDA AGUA TRATADA CIANOPHYTAS Agmenellum Quadriduplicatum 2500 cel/ml --- Oscillatoria Subtilissima --- ---- Spirulina Subsalsa ---- --- Anabaenopsis Raciborkii 10.500 cel/ml 668 cel/ml CLOROPHYTAS Chlorella Vulgare 4.300 cel/ml --- Chlamidomona Globosa 784 cel/ml --- EUGLENOPHYTAS Phacus SP --- ---- PIRROPHYTAS Peridinium SP ----- ----- CHRISOPHYTAS (Diatomeas) Synedra Acus ---- ---- Achnantes Microcephala 3.500 cel/ml --- Nitzschia Gracilis 5.350 cel/ml 340 cel/ml TOTAL 26.934 cel/ml 1.008 cel/ml

ENERO 2003 ANÁLISIS FISICO QUÍMICO DEL EMBALSE DE POZA HONDA

MUESTRAS: COLA PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (4.5MT) TOMA # 3 ( MT) PH 8.46 7.66 -------- Temperatura 29.00 oC 27.00 oC -------- Transparencia 0.50 mt -- -------- Conductividad 231.80 micromhos/cm 134.00 micromhos/cm -------- Solidos Totales Disueltos 121.00 mg/l 809.00 mg/l -------- Fosfatos Totales 0.26 mg/l 0.50 mg/l -------- Polifosfatos 0.20 mg/l 0.40 mg/l -------- Monoacido Fosfatos 0.05 mg/l 0.10 mg/l -------- Nitratos 0.30 mg/l 1.08 mg/l -------- Nitritos 0.02 mg/l 0.02 mg/l -------- Sílice 12.00 mg/l 20.00 mg/l -------- N. Amoniacal 0.02 mg/l 0.06 mg/l -------- Hierro 0.16 mg/l 0.08 mg/l -------- Manganeso 0.68 mg/l 0.61 mg/l -------- Acido Sulfhidrico 5.32 mg/l 1.20 mg/l -------- anhídrido Carbonico 0.00 mg/l 20.00 mg/l -------- Materia organica 10.40 mg/l 7.50 mg/l -------- Alcalinidad Total 106.00 mg/l 127.00 mg/l -------- Alcalinidad Simple 40.00 mg/l 0.00 mg/l -------- Cloruros 2.84 mg/l 2.84 mg/l -------- Dureza Total 106.00 mg/l 104.00 mg/l -------- Oxigeno Disuelto 15.20 mg/l 7.50 mg/l -------- Demanda Bioquimica Oxigeno 22.70 mg/l 20.40 mg/l -------- Demanda Quimica de Oxigeno 28.30 mg/l 25.50 mg/l -------- OBSERVACIONES: 10H10 ambiente nublado. Sedimento con coloración oscura. Presencia de lluvias, en día anterior a recolección de muestras.


MUESTRAS: MITAD PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (6 MT) TOMA # 3 (12 MT) PH 8.73 7.48 7.34 Temperatura 30.00 oC 27.20 oC 27.00 oC Transparencia 0.64 mt --- --- Conductividad 327.20 micromhos/cm 302.70 micromhos/cm 220.50 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 191.00 mg/l 169.00 mg/l 124.00 mg/l Fosfatos Totales 0.38 mg/l 0.35 mg/l 0.36 mg/l Polifosfatos 0.30 mg/l 0.28 mg/l 0.28 mg/l Monoacido Fosfatos 0.07 mg/l 0.07 mg/l 0.07 mg/l Nitratos 0.39 mg/l 0.33 mg/l 1.40 mg/l Nitritos 0.10 mg/l 0.07 mg/l 0.08 mg/l sílice 15.00 mg/l 16.00 mg/l 22.00 mg/l N. Amoniacal 0.02 mg/l 0.00 mg/l 0.01 mg/l Hierro 0.10 mg/l 0.09 mg/l 0.15 mg/l Manganeso 0.30 mg/l 0.25 mg/l 0.18 mg/l Acido Sulfhidrico 4.26 mg/l 2.34 mg/l 8.85 mg/l anhídrido Carbonico 0.00 mg/l 13.00 mg/l 17.60 mg/l Materia Organica 9.85 mg/l 6.20 mg/l 6.45 mg/l Alcalinidad Total 98.00 mg/l 122.00 mg/l 126.00 mg/l Alcalinidad Simple 35.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 3.55 mg/l 1.42 mg/l 0.00 mg/l Dureza Total 94.00 mg/l 111.00 mg/l 119.00 mg/l Oxigeno Disuelto 15.00 mg/l 0.60 mg/l 0.00 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 20.70 mg/l 28.90 mg/l 30.80 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 25.80 mg/l 36.10 mg/l 38.50 mg/l OBSERVACIONES: 10H35 Recolección de muestras, ambiente semisoleado


MUESTRAS: CASTILLO PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (7 MT) TOMA # 3 (17 MT) PH 8.41 7.66 7.44 Temperatura 30.00 oC 27.80 oC 27.00 oC Transparencia 0.56 mt --- --- Conductividad 381.80 micromhos/cm 394.30 micromhos/cm 429.70 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 210.00 mg/l 217.00 mg/l 236.00 mg/l Fosfatos Totales 0.25 mg/l 0.42 mg/l 0.53 mg/l Polifosfatos 0.20 mg/l 0.33 mg/l 0.42 mg/l Monoacido Fosfatos 0.05 mg/l 0.08 mg/l 0.10 mg/l Nitratos 0.29 mg/l 0.46 mg/l 1.70 mg/l Nitritos 0.07 mg/l 0.05 mg/l 0.05 mg/l Sílice 10.00 mg/l 7.00 mg/l 18.00 mg/l N. Amoniacal 0.02 mg/l 0.01 mg/l 0.03 mg/l Hierro 0.1 mg/l 0.08 mg/l 0.12 mg/l Manganeso 0.20 mg/l 0.15 mg/l 0.13 mg/l Acido Sulfhidrico 1.70 mg/l 1.49 mg/l 5.54 mg/l Anhídrido Carbonico 0.00 mg/l 13.00 mg/l 17.60 mg/l Materia Organica 9.40 mg/l 5.65 mg/l 5.30 mg/l Alcalinidad Total 116.00 mg/l 100.00 mg/l 121.40 mg/l Alcalinidad Simple 14.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 3.55 mg/l 1.42 mg/l 2.84 mg/l Dureza Total 114.00 mg/l 116.00 mg/l 104.00 mg/l Oxigeno Disuelto 10.10 mg/l 0.40 mg/l 0.00 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 19.50 mg/l 21.80 mg/l 29.30 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 24.30 mg/l 27.20 mg/l 36.60 mg/l OBSERVACIONES: 11h10 Recolección de muestras, ambiente nublado




Agmenellum Quadriduplicatum ---- 600cel/ml ----- 941 cel/ml ----- 32 cel/ml 80 cel/ml ---- ----

Anabaenopsis Raciborkii 6.111 cel/ml 90 cel/ml ----- 10.117 cel/ml 44.800 cel/ml 5.376 cel/ml 250 cel/ml 25.866 cel/ml 347 cel/ml

CLOROPHYTAS

Chlorella Vulgare ------ ----- ----- 2.352 cel/ml ----- 16 cel/ml ----- 2.983 cel/ml ----

Chlamidomona Globosa ----- ----- ----- 26.588 cel/ml 11.200 cel/ml ---- ---- --- ---

PIRROPHYTAS

Peridinium SP ----- 40 cel/ml ----- 5.647 cel/ml 533 cel/ml ----- 40 cel/ml ---- 240 cel/ml

CHRISOPHYTAS

(Diatomeas)

Synedra Acus ----- ------ ---- ----- 1.333 cel/ml ---- ---- ---- 987 cel/ml

Achnantes Microcephala ----- ----- ----- 706 cel/ml ----- 64 cel/ml ---- ---- ----

Nitzschia Gracilis ----- ----- ----- ---- ---- ----- ----- ----- ----

TOTAL 6.111 cel/ml 730 cel/ml ---- 46.351 cel/ml 57.866 cel/ml 5.504 cel/ml 370 cel/ml 28.849 cel/ml 1.574 cel/ml


PH 7.35 PH 7.13 Temperatura 25.20 o C Temperatura 25.70 o C Color 58.00 U (Pt /Co) Color 10.00 U (Pt /Co) Turbiedad 12.00 UNT Turbiedad 0.50 UNT Conductividad 229.70 micromhos /cm Conductividad 248.80 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos (STD) 188.00 mg/l Solidos Totales Disueltos 181.00 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.35 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.20 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.28 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.16 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.07 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.04 mg/l Nitratos (NO3) 0.40 mg/l Nitratos (NO3) 0.15 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.02 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.03 mg/l Sílice (SiO2) 17.00 mg/l Sílice (SiO2) 18.00 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.15 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.08 mg/l Hierro (Fe++) 0.15 mg/l Hierro (Fe++) 0.00 mg/l Manganeso (Mn++) 0.35 mg/l Manganeso (Mn++) 0.30 mg/l Ácido Sulfhídrico (SH2) 2.77 mg/l Acido Sulfhidrico (SH2) 0.00 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 0.00 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 0.00 mg/l Materia Orgánica (O2 ) 8.00 mg/l Materia Organica (O2 ) 4.00 mg/l Dureza Total (TH) 80.00 mg/l Dureza Total (TH) 88.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 104.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 82.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Cloruros (Cl- ) 7.10 mg/l Cloruros (Cl- ) 14.20 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 0.80 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 7.00 mg/l Demanda de Cloro (CL) 12.00 mg/l Trihalometanos 23.00 ug/l como CH3 Cl Cloro Libre 1.40 mg/l Cloro Total 2.00 mg/l



MUESTRAS AGUA CRUDA AGUA TRATADA CIANOPHYTAS Agmenellum Quadriduplicatum 1.920cel/ml 384 cel/ml Anabaenopsis Raciborkii 3.916 cel/ml 640 cel/ml CLOROPHYTAS Chlorella Vulgare 424 cel/ml ----- Chlamidomona Globosa 424 cel/ml 384 cel/ml PIRROPHYTAS Peridinium SP ----- ---- CHRISOPHYTAS (Diatomeas) Synedra Acus ---- 3.840 cel/ml Achnantes Microcephala 1.704 cel/ml 128 cel/ml Nitzschia Gracilis 1.704 cel/ml 640 cel/ml TOTAL 10.948 cel/ml 6.016 cel/ml

FEBRERO 2003

ANÁLISIS FISICO QUÍMICO DEL EMBALSE DE POZA HONDA MUESTRAS: COLA PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (6.5MT) TOMA # 3 ( MT) PH 8.58 7.41 -------- Temperatura 29.20 oC 27.30 oC -------- Transparencia 0.50 mt -- -------- Conductividad 316.30 micromhos/cm 320.00 micromhos/cm -------- Solidos Totales Disueltos 174.00 mg/l 176.00 mg/l -------- Fosfatos Totales 0.36 mg/l 0.50 mg/l -------- Polifosfatos 0.28 mg/l 0.40 mg/l -------- Monoacido Fosfatos 0.07 mg/l 0.10 mg/l -------- Nitratos 0.41 mg/l 0.60 mg/l -------- Nitritos 0.05 mg/l 0.05 mg/l -------- Silice 13.00 mg/l 20.00 mg/l -------- N. Amoniacal 0.09 mg/l 0.10 mg/l -------- Hierro 0.15 mg/l 0.16 mg/l -------- Manganeso 0.45 mg/l 0.57 mg/l -------- Acido Sulfhidrico 5.54 mg/l 4.89 mg/l -------- Anhídrido Carbonico 0.00 mg/l 13.10 mg/l -------- Materia Organica 9.60 mg/l 7.90 mg/l -------- Alcalinidad Total 82.80 mg/l 75.20 mg/l -------- Alcalinidad Simple 35.40 mg/l 0.00 mg/l -------- Cloruros 0.00 mg/l 0.00 mg/l -------- Dureza Total 89.00 mg/l 68.00 mg/l -------- Oxigeno Disuelto 16.20 mg/l 9.40 mg/l -------- Demanda Bioquímica de Oxigeno 23.40 mg/l 24.70 mg/l -------- Demanda Quimica de Oxigeno 29.20 mg/l 30.80 mg/l -------- OBSERVACIONES: 10H20 ambiente semisoleado.


MUESTRAS: MITAD PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (7 MT) TOMA # 3 (13 MT) PH 8.60 7.54 7.30 Temperatura 29.00 oC 27.00 oC 26.30 oC Transparencia 0.64 mt --- --- Conductividad 290.90 micromhos/cm 254.50 micromhos/cm 309.00 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 174.00 mg/l 158.00 mg/l 176.00 mg/l Fosfatos Totales 0.47 mg/l 0.39 mg/l 0.52 mg/l Polifosfatos 0.37 mg/l 0.31 mg/l 0.41 mg/l Monoacido Fosfatos 0.09 mg/l 0.07 mg/l 0.10 mg/l Nitratos 0.45 mg/l 0.41 mg/l 0.60 mg/l Nitritos 0.01 mg/l 0.01 mg/l 0.10 mg/l Sílice 13.00 mg/l 15.00 mg/l 20.00 mg/l N. Amoniacal 0.04 mg/l 0.05 mg/l 0.04 mg/l Hierro 0.10 mg/l 0.01 mg/l 0.08 mg/l Manganeso 0.28 mg/l 0.27 mg/l 0.21 mg/l Acido Sulfhidrico 5.54 mg/l 4.89 mg/l 4.68 mg/l Anhídrido Carbonico 0.00 mg/l 0.00 mg/l 13.10 mg/l Materia Organica 9.60 mg/l 8.35 mg/l 7.50 mg/l Alcalinidad Total 82.80 mg/l 73.20 mg/l 76.20 mg/l Alcalinidad Simple 35.40 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 1.42 mg/l 1.42 mg/l 1.42 mg/l Dureza Total 89.00 mg/l 68.00 mg/l 68.00 mg/l Oxigeno Disuelto 6.90 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 18.60 mg/l 23.80 mg/l 29.50 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 23.20 mg/l 29.70 mg/l 36.80 mg/l OBSERVACIONES: 11H00 Recolección de muestras, ambiente soleado


MUESTRAS: CASTILLO PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (8 MT) TOMA # 3 (15 MT) PH 8.40 7.70 7.40 Temperatura 27.30 oC 26.00 oC 25.00 oC Transparencia 0.64 mt --- --- Conductividad 298.18 micromhos/cm 201.80 micromhos/cm 218.00 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 164.00 mg/l 111.00 mg/l 120.00 mg/l Fosfatos Totales 0.45 mg/l 0.42 mg/l 0.57 mg/l Polifosfatos 0.36 mg/l 0.33 mg/l 0.45 mg/l Monoacido Fosfatos 0.09 mg/l 0.08 mg/l 0.11 mg/l Nitratos 0.50 mg/l 0.37 mg/l 0.25 mg/l Nitritos 0.07 mg/l 0.05 mg/l 0.03 mg/l Sílice 10.00 mg/l 7.00 mg/l 18.00 mg/l N. Amoniacal 0.06 mg/l 0.07 mg/l 1.03 mg/l Hierro 0.10 mg/l 0.12 mg/l 0.09 mg/l Manganeso 0.25 mg/l 0.20 mg/l 0.16 mg/l Acido Sulfhidrico 3.62 mg/l 1.91 mg/l 1.92 mg/l Anhídrido Carbonico 0.00 mg/l 13.10 mg/l 20.00 mg/l Materia Organica 9.20 mg/l 6.25 mg/l 4.80 mg/l Alcalinidad Total 94.60 mg/l 84.40 mg/l 89.60 mg/l Alcalinidad Simple 32.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 1.42 mg/l 1.42 mg/l 1.42 mg/l Dureza Total 94.00 mg/l 107.00 mg/l 85.00 mg/l Oxigeno Disuelto 14.20 mg/l 0.50 mg/l 0.00 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 16.80 mg/l 12.70 mg/l 25.40 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 21.00 mg/l 15.80 mg/l 31.70 mg/l OBSERVACIONES: 11h50 Recolección de muestras, ambiente soleado


MUESTRAS AGUA CRUDA MUESTRAS AGUA TRATADA PH 7.29 PH 7.10 Temperatura 25.20 o C Temperatura 25.80 o C Color 32.00 U (Pt /Co) Color 12.00 U (Pt /Co) Turbiedad 27.00 UNT Turbiedad 0.90 UNT Conductividad 298.60 micromhos /cm Conductividad 275.40 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos (STD) 268.00 mg/l Solidos Totales Disueltos 164.00 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.35 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.25 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.28 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.20 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.07 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.05 mg/l Nitratos (NO3) 0.30 mg/l Nitratos (NO3) 0.07 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.02 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.10 mg/l Sílice (SiO2) 9.00 mg/l Sílice (SiO2) 3.00 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.15 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.15 mg/l Hierro (Fe++) 0.18 mg/l Hierro (Fe++) 0.12 mg/l Manganeso (Mn++) 0.35 mg/l Manganeso (Mn++) 0.20 mg/l Ácido Sulfhídrico (SH2) 2.56 mg/l Acido Sulfhidrico (SH2) 0.00 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 0.00 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 0.00 mg/l Materia Orgánica (O2 ) 6.10 mg/l Materia Organica (O2 ) 3.70 mg/l Dureza Total (TH) 85.00 mg/l Dureza Total (TH) 100.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 114.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 86.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Cloruros (Cl- ) 5.60 mg/l Cloruros (Cl- ) 15.62 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 0.00 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 6.00 mg/l Demanda de Cloro (CL) 12.00 mg/l Trihalometanos 16.00 ug/l como CH3 Cl Cloro Libre 1.20 mg /l Cloro Total 1.80 mg /l Cloro Total 0.00 mg/l



MUESTRAS AGUA CRUDA AGUA TRATADA CIANOPHYTAS Agmenellum Quadriduplicatum 781 cel/ml 193 cel/ml Anabaenopsis Raciborkii 1.345 cel/ml 90 cel/ml CLOROPHYTAS Chlorella Vulgare 523 cel/ml ---- Chlamidomona Globosa 671 cel/ml 45 cel/ml EUGLENOPHYTAS Phacus SP 68 cel/ml ----- PIRROPHYTAS Peridinium SP ---- ---- CHRISOPHYTAS (Diatomeas) Synedra Acus --- --- Achnantes Microcephala ---- --- Amphyprora SP 23 cel/ml ---- Nitzschia Gracilis ------- ------ TOTAL 3.411 cel/ml 328 cel/ml

MARZO 2003 ANÁLISIS FISICO QUÍMICO DEL EMBALSE DE POZA HONDA

MUESTRAS: COLA PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (7 MT) TOMA # 3 ( 12 MT) PH 8.86 8.00 7.00 Temperatura 29.50 oC 26.80 oC 26.50 oC Transparencia 0.80 mt -- -- Conductividad 227.50 micromhos/cm 186.30 micromhos/cm 245.40 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 197.00 mg/l 119.00 mg/l 223.00 mg/l Fosfatos Totales 0.60 mg/l 0.63 mg/l 0.65 mg/l Polifosfatos 0.48 mg/l 0.50 mg/l 0.52 mg/l Monoacido Fosfatos 0.12 mg/l 0.12 mg/l 0.13 mg/l Nitratos 0.65 mg/l 0.61 mg/l 0.80 mg/l Nitritos 0.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Silice 3.00 mg/l 6.00 mg/l 10.00 mg/l N. Amoniacal 0.04 mg/l 0.03 mg/l 0.03 mg/l Hierro 0.15 mg/l 0.18 mg/l 0.20 mg/l Manganeso 0.24 mg/l 0.30 mg/l 0.28 mg/l Acido Sulfhidrico 3.84 mg/l 1.06 mg/l 2.77 mg/l Anhidido Carbonico 10.30 mg/l 5.50 mg/l 19.00 mg/l Materia Organica 9.70 mg/l 8.45 mg/l 7.00 mg/l Alcalinidad Total 96.00 mg/l 101.00 mg/l 95.00 mg/l Alcalinidad Simple 39.40 mg/l 2.10 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 1.42 mg/l 1.42 mg/l 2.84 mg/l Dureza Total 103.00 mg/l 109.00 mg/l 115.00 mg/l Oxigeno Disuelto 18.60 mg/l 10.00 mg/l 5.00 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 16.70 mg/l 24.40 mg/l 30.30 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 20.87 mg/l 30.50 mg/l 37.80 mg/l OBSERVACIONES: 10H00 ambiente con resplandor


MUESTRAS: MITAD PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (12 MT) TOMA # 3 (24 MT) PH 8.50 7.85 7.66 Temperatura 29.50 oC 26.20 oC 26.00 oC Transparencia 0.60 mt --- --- Conductividad 199.40 micromhos/cm 197.30 micromhos/cm 226.70 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 196.00 mg/l 194.00 mg/l 223.00 mg/l Fosfatos Totales 0.70 mg/l 0.68 mg/l 0.52 mg/l Polifosfatos 0.56 mg/l 0.54 mg/l 0.41 mg/l Monoacido Fosfatos 0.14 mg/l 0.13 mg/l 0.10 mg/l Nitratos 0.72 mg/l 0.75 mg/l 0.50 mg/l Nitritos 0.00 mg/l 0.00 mg/l 0.02 mg/l Silice 7.00 mg/l 7.00 mg/l 8.00 mg/l N. Amoniacal 0.05 mg/l 0.07 mg/l 0.08 mg/l Hierro 0.08 mg/l 0.08 mg/l 0.09 mg/l Manganeso 0.29 mg/l 0.21 mg/l 0.31 mg/l Acido Sulfhidrico 5.53 mg/l 1.27 mg/l 1.92 mg/l Anhidido Carbonico 0.00 mg/l 20.20 mg/l 29.00 mg/l Materia Organica 9.50 mg/l 8.65 mg/l 4.45 mg/l Alcalinidad Total 78.40 mg/l 78.60 mg/l 85.20 mg/l Alcalinidad Simple 36.20 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 4.26 mg/l 3.55 mg/l 0.00 mg/l Dureza Total 76.00 mg/l 62.00 mg/l 74.00 mg/l Oxigeno Disuelto 12.10 mg/l 0.20 mg/l 0.00 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 18.70 mg/l 19.40 mg/l 28.50 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 23.30 mg/l 24.20 mg/l 35.60 mg/l OBSERVACIONES: 10H40 Recolección de muestras, ambiente nublado con resplandor


MUESTRAS: CASTILLO PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (13 MT) TOMA # 3 (26 MT) PH 8.60 7.72 7.53 Temperatura 29.50 oC 26.20 oC 25.80 oC Transparencia 0.60 mt --- --- Conductividad 454.30 micromhos/cm 229.00 micromhos/cm 214.50 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 570.00 mg/l 126.00 mg/l 118.00 mg/l Fosfatos Totales 0.53 mg/l 0.40 mg/l 0.48 mg/l Polifosfatos 0.42 mg/l 0.32 mg/l 0.38 mg/l Monoacido Fosfatos 0.10 mg/l 0.08 mg/l 0.09 mg/l Nitratos 0.35 mg/l 0.44 mg/l 0.42 mg/l Nitritos 0.01 mg/l 0.01 mg/l 0.01 mg/l Silice 13.00 mg/l 11.00 mg/l 14.00 mg/l N. Amoniacal 0.03 mg/l 0.01 mg/l 0.05 mg/l Hierro 0.10 mg/l 0.15 mg/l 0.10 mg/l Manganeso 0.39 mg/l 0.20 mg/l 0.15 mg/l Acido Sulfhidrico 1.49 mg/l 1.70 mg/l 4.68 mg/l Anhidido Carbonico 0.00 mg/l 20.00 mg/l 27.00 mg/l Materia Organica 9.65 mg/l 5.55 mg/l 3.90 mg/l Alcalinidad Total 102.20 mg/l 100.00 mg/l 121.40 mg/l Alcalinidad Simple 34.20 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 1.42 mg/l 4.26 mg/l 1.42 mg/l Dureza Total 95.00 mg/l 98.00 mg/l 105.00 mg/l Oxigeno Disuelto 12.60 mg/l 0.30 mg/l 0.00 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 14.10 mg/l 24.70 mg/l 30.80 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 17.60 mg/l 30.87 mg/l 38.50 mg/l OBSERVACIONES: 11h30 Recolección de muestras, ambiente con resplandor




Agmenellum Quadriduplicatum 667 cel/ml ----- ----- 667 cel/ml ----- ----- 471 cel/ml ---- -----

Anabaenopsis Raciborkii 10.889 cel/ml 480 cel/ml 145 cel/ml 6.222 cel/ml 2.857 cel/ml 2.896 cel/ml 941 cel/ml 3.833 cel/ml 800 cel/ml

EUGLENOPHYTAS

Phacus SP ------ ------ ------ ------ ------ ----- 471 cel/ml ------ -----

CLOROPHYTAS

Chlorella Vulgare 4.667 cel/ml 192 cel/ml ------ 5.111 cel/ml 1.905 cel/ml ------ 4.471 cel/ml 2.333 cel/ml ------

Scenedesmus Cuadricauda ----- ------ ------ ------ ----- ------ 941 cel/ml ------- -----

Chlamidomona Globosa 48.222 cel/ml 1.296 cel/ml ------ 20.222 cel/ml 24.381 cel/ml ------ 10.824 cel/ml 14.167 cel/ml ------

PIRROPHYTAS

Peridinium SP 2.222 cel/ml 64 cel/ml 73 cel/ml 3.333 cel/ml 2.857 cel/ml ------ ----- 3.000 cel/ml -------

CHRISOPHYTAS

(Diatomeas)

Synedra Acus ----- ----- ----- ----- ----- ---- ---- ---- 432 cel/ml

Achnantes Microcephala ----- ---- ------ 667 cel/ml ----- ----- ---- ----- ------

Nitzschia Gracilis 444 cel/ml ------ 186 cel/ml 444 cel/ml 3.238 cel/ml ----- ---- ----- ------

TOTAL 67.111 cel/ml 2.032 cel/ml 404 cel/ml 36.666 cel/ml 35.238 cel/ml 2.896 cel/ml 18.119 cel/ml 23.333 cel/ml 1.232 cel/ml


MUESTRAS AGUA CRUDA MUESTRAS AGUA TRATADA PH 7.35 PH 7.10 Temperatura 25.20 o C Temperatura 25.70 o C Color 58.00 U (Pt /Co) Color 10.00 U (Pt /Co) Turbiedad 15.00 UNT Turbiedad 1.80 UNT Conductividad 287.70 micromhos /cm Conductividad 265.20 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos (STD) 183.00 mg/l Solidos Totales Disueltos 158.00 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.52 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.28 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.41 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.22 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.10 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.05 mg/l Nitratos (NO3) 0.50 mg/l Nitratos (NO3) 0.18 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.02 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.01 mg/l Sílice (SiO2) 10.00 mg/l Sílice (SiO2) 12.00 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.03 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.01 mg/l Hierro (Fe++) 0.18 mg/l Hierro (Fe++) 0.03 mg/l Manganeso (Mn++) 0.16 mg/l Manganeso (Mn++) 0.05 mg/l Ácido Sulfhídrico (SH2) 0.21 mg/l Acido Sulfhidrico (SH2) 0.00 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 0.00 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 0.00 mg/l Materia Orgánica (O2 ) 6.00 mg/l Materia Organica (O2 ) 3.00 mg/l Dureza Total (TH) 70.00 mg/l Dureza Total (TH) 92.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 104.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 82.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Cloruros (Cl- ) 7.10 mg/l Cloruros (Cl- ) 14.20 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 0.00 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 6.40 mg/l Demanda de Cloro (CL) 9.60 mg/l Trihalometanos 0.00 ug/l como CH3 Cl Cloro Libre 1.20 mg /l Cloro Total 1.80 mg /l



MUESTRAS AGUA CRUDA AGUA TRATADA CIANOPHYTAS Agmenellum Quadriduplicatum ----- ---- Anabaenopsis Raciborkii 464 cel/ml 144 cel/ml EUGLENOPHYTAS Phacus SP 48 cel/ml ----- CLOROPHYTAS Chlorella Vulgare 224 cel/ml ----- Chlorella Cuadricauda ------ ----- Chlamidomona Globosa 16 cel/ml 544 cel/ml PIRROPHYTAS Peridinium SP ------- ------- CHRISOPHYTAS (Diatomeas) Synedra Acus ------- ------- Achnantes Microcephala ------- ------- Nitzschia Gracilis ------- ------- TOTAL 752 cel/ml 688 cel/ml

ABRIL 2003

ANÁLISIS FISICO QUÍMICO DEL EMBALSE DE POZA HONDA MUESTRAS: COLA PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (5 MT) TOMA # 3 ( 10 MT) PH 8.66 7.70 7.29 Temperatura 31.00 oC 27.00 oC 26.20 oC Transparencia 0.62 mt -- -- Conductividad 196.60 micromhos/cm 194.70 micromhos/cm 200.50 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 176.00 mg/l 132.00 mg/l 251.00 mg/l Fosfatos Totales 0.39 mg/l 0.37 mg/l 0.41 mg/l Polifosfatos 0.31 mg/l 0.29 mg/l 0.32 mg/l Monoacido Fosfatos 0.07 mg/l 0.07 mg/l 0.08 mg/l Nitratos 0.62 mg/l 0.50 mg/l 0.56 mg/l Nitritos 0.00 mg/l 0.01 mg/l 0.14 mg/l Silice 11.00 mg/l 11.00 mg/l 12.00 mg/l N. Amoniacal 0.09 mg/l 0.05 mg/l 1.40 mg/l Hierro 0.12 mg/l 0.07 mg/l 0.29 mg/l Manganeso 0.39 mg/l 0.19 mg/l 0.62 mg/l Acido Sulfhidrico 0.85 mg/l 0.42 mg/l 0.63 mg/l Anhidido Carbonico 0.00 mg/l 0.00 mg/l 17.50 mg/l Materia Organica 10.10 mg/l 7.40 mg/l 5.80 mg/l Alcalinidad Total 81.20 mg/l 70.60 mg/l 75.80 mg/l Alcalinidad Simple 51.60 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 1.42 mg/l 1.42 mg/l 2.13 mg/l Dureza Total 81.00 mg/l 70.00 mg/l 69.00 mg/l Oxigeno Disuelto 18.30 mg/l 4.60 mg/l 0.30 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 21.50 mg/l 18.70 mg/l 27.30 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 26.80 mg/l 23.30 mg/l 34.10 mg/l OBSERVACIONES: 12H45, recolección de muestras ambiente soleado


MUESTRAS: MITAD PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (12 MT) TOMA # 3 (25 MT) PH 8.85 7.84 7.49 Temperatura 31.60 oC 26.80 oC 26.20 oC Transparencia 0.66 mt --- --- Conductividad 194.80 micromhos/cm 199.50 micromhos/cm 196.60 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 232.00 mg/l 158.00 mg/l 227.00 mg/l Fosfatos Totales 0.25 mg/l 0.26 mg/l 0.33 mg/l Polifosfatos 0.20 mg/l 0.20 mg/l 0.26 mg/l Monoacido Fosfatos 0.05 mg/l 0.05 mg/l 0.06 mg/l Nitratos 0.57 mg/l 0.53 mg/l 0.39 mg/l Nitritos 0.00 mg/l 0.01 mg/l 0.00 mg/l Silice 13.00 mg/l 13.00 mg/l 8.00 mg/l N. Amoniacal 0.02 mg/l 0.01 mg/l 0.10 mg/l Hierro 0.12 mg/l 0.08 mg/l 0.33 mg/l Manganeso 0.39 mg/l 0.21 mg/l 0.43 mg/l Acido Sulfhidrico 2.76 mg/l 4.89 mg/l 1.27 mg/l Anhidido Carbonico 0.00 mg/l 0.00 mg/l 29.00 mg/l Materia Organica 10.40 mg/l 8.60 mg/l 5.60 mg/l Alcalinidad Total 88.00 mg/l 82.00 mg/l 91.80 mg/l Alcalinidad Simple 45.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 2.84 mg/l 0.71 mg/l 0.71 mg/l Dureza Total 85.00 mg/l 70.00 mg/l 74.00 mg/l Oxigeno Disuelto 17.50 mg/l 3.60 mg/l 0.10 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 23.50 mg/l 24.20 mg/l 27.50 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 29.30 mg/l 30.20 mg/l 34.30 mg/l OBSERVACIONES: 13H00 Recolección de muestras, ambiente intensamente soleado

ANÁLISIS FISICO QUÍMICO DEL EMBALSE DE POZA HONDA COTA: 106.57 mt. (rebose)

MUESTRAS: CASTILLO PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (14 MT) TOMA # 3 (28 MT) PH 8.98 7.78 7.51 Temperatura 31.00 oC 26.60 oC 26.20 oC Transparencia 0.56 mt --- --- Conductividad 186.20 micromhos/cm 175.00 micromhos/cm 187.70 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 290.00 mg/l 232.00 mg/l 185.00 mg/l Fosfatos Totales 0.38 mg/l 0.30 mg/l 0.40 mg/l Polifosfatos 0.30 mg/l 0.24 mg/l 0.32 mg/l Monoacido Fosfatos 0.07 mg/l 0.06 mg/l 0.08 mg/l Nitratos 0.40 mg/l 0.42 mg/l 0.31 mg/l Nitritos 0.01 mg/l 0.01 mg/l 0.01 mg/l Silice 13.00 mg/l 11.00 mg/l 14.00 mg/l N. Amoniacal 0.06 mg/l 0.07 mg/l 1.03 mg/l Hierro 0.11 mg/l 0.08 mg/l 0.22 mg/l Manganeso 0.52 mg/l 0.19 mg/l 0.40 mg/l Acido Sulfhidrico 2.55 mg/l 2.55 mg/l 4.89 mg/l Anhidido Carbonico 0.00 mg/l 0.00 mg/l 21.80 mg/l Materia Organica 9.20 mg/l 6.90 mg/l 6.00 mg/l Alcalinidad Total 86.00 mg/l 82.00 mg/l 93.60 mg/l Alcalinidad Simple 48.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 2.84 mg/l 1.42 mg/l 1.42 mg/l Dureza Total 78.00 mg/l 76.00 mg/l 80.00 mg/l Oxigeno Disuelto 112.40 mg/l 0.50 mg/l 0.10 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 18.30 mg/l 21.70 mg/l 26.50 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 22.80 mg/l 27.10 mg/l 33.10 mg/l OBSERVACIONES: 1h30 Recolección de muestras, ambiente soleado




Agmenellum Quadriduplicatum -------- -------- -------- -------- -------- -------- -------- -------- ---- ---

Anabaenopsis Raciborkii 176 cel/ml 8.576 cel/ml 6.960 cel/ml 688 cel/ml 800 cel/ml 880 cel/ml 1.216 cel/ml 896 cel/ml 896 cel/ml

CLOROPHYTAS

Chlorella Vulgare 128 cel/ml -------- -------- -------- -------- -------- 2.896 cel/ml 176 cel/ml 16 cel/ml

Chlamidomona Globosa -------- 32 cel/ml -------- -------- -------- 16 cel/ml 720 cel/ml 160 cel/ml ----

PIRROPHYTAS

Peridinium SP 976 cel/ml 48 cel/ml 128 cel/ml 208 cel/ml 32 cel/ml 64 cel/ml 688 cel/ml 80 cel/ml 16 cel/ml

CHRISOPHYTAS

(Diatomeas)

Synedra Acus 208 cel/ml 48 cel/ml 384 cel/ml -------- -------- -------- 16 cel/ml 64 cel/ml --------

Achnantes Microcephala -------- 16 cel/ml -------- -------- -------- -------- -------- -------- --------

Nitzschia Gracilis 208 cel/ml 48 cel/ml 384 cel/ml -------- -------- -------- 16 cel/ml 64 cel/ml --------

TOTAL 1.696 cel/ml 8.768 cel/ml 7.856 cel/ml 886 cel/ml 832 cel/ml 960 cel/ml 5.552 cel/ml 1.440 cel/ml 928 cel/ml


MUESTRAS AGUA CRUDA MUESTRAS AGUA TRATADA PH 7.38 PH 7.11 Temperatura 25.00 o C Temperatura 25.50 o C Color 58.00 U (Pt /Co) Color 8.00 U (Pt /Co) Turbiedad 23.00 UNT Turbiedad 1.50 UNT Conductividad 187.70 micromhos /cm Conductividad 191.40 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos (STD) 183.00 mg/l Solidos Totales Disueltos 185.00 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.35 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.20 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.28 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.16 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.07 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.04 mg/l Nitratos (NO3) 0.40 mg/l Nitratos (NO3) 0.27 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.01 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.00 mg/l Sílice (SiO2) 8.00 mg/l Sílice (SiO2) 6.00 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.10 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.05 mg/l Hierro (Fe++) 0.16 mg/l Hierro (Fe++) 0.05 mg/l Manganeso (Mn++) 0.33 mg/l Manganeso (Mn++) 0.17 mg/l Ácido Sulfhídrico (SH2) 0.11 mg/l Acido Sulfhidrico (SH2) 0.00 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 0.00 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 0.00 mg/l Materia Orgánica (O2 ) 5.40 mg/l Materia Organica (O2 ) 2.90 mg/l Dureza Total (TH) 87.00 mg/l Dureza Total (TH) 92.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 108.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 86.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Cloruros (Cl- ) 7.10 mg/l Cloruros (Cl- ) 14.20 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 0.00 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 6.50 mg/l Demanda de Cloro (CL) 12.00 mg/l Trihalometanos < 6.00 ug/l como CH3 Cl Cloro Libre 0.30 mg /l Cloro Total 1.40 mg /l



MUESTRAS AGUA CRUDA AGUA TRATADA CIANOPHYTAS Agmenellum Quadriduplicatum 1.888 cel/ml ----- Anabaenopsis Raciborkii 128 cel/ml 80 cel/ml CLOROPHYTAS Chlorella Vulgare 16 cel/ml 192 cel/ml Chlamidomona Globosa ----- ----- PIRROPHYTAS Peridinium SP 16 cel/ml 64 cel/ml CHRISOPHYTAS (Diatomeas) Synedra Acus 48 cel/ml 25 cel/ml Achnantes Microcephala ------- ------ Nitzschia Gracilis 48 cel/ml 25 cel/ml 2.144 cel/ml 386 cel/ml TOTAL

MAYO 2003

ANÁLISIS FISICO QUÍMICO DEL EMBALSE DE POZA HONDA MUESTRAS: COLA PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (5 MT) TOMA # 3 ( 10 MT) PH 8.73 7.85 7.65 Temperatura 28.50 oC 26.50 oC 25.70 oC Transparencia 0.44 mt -- -- Conductividad 194.20 micromhos/cm 199.80 micromhos/cm 196.10 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 224.00 mg/l 204.00 mg/l 314.00 mg/l Fosfatos Totales 0.25 mg/l 0.20 mg/l 0.22 mg/l Polifosfatos 0.20 mg/l 0.16 mg/l 0.17 mg/l Monoacido Fosfatos 0.05 mg/l 0.04 mg/l 0.04 mg/l Nitratos 0.30 mg/l 0.22 mg/l 0.26 mg/l Nitritos 0.00 mg/l 0.00 mg/l 0.01 mg/l Silice 13.00 mg/l 9.00 mg/l 16.00 mg/l N. Amoniacal 0.10 mg/l 0.08 mg/l 0.08 mg/l Hierro 0.08 mg/l 0.12 mg/l 0.07 mg/l Manganeso 0.27 mg/l 0.09 mg/l 0.11 mg/l Acido Sulfhidrico 0.43 mg/l 3.84 mg/l 5.11 mg/l Anhidido Carbonico 0.00 mg/l 4.00 mg/l 12.20 mg/l Materia Organica 7.00 mg/l 3.80 mg/l 3.90 mg/l Alcalinidad Total 86.00 mg/l 88.00 mg/l 70.00 mg/l Alcalinidad Simple 21.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 2.13 mg/l 1.42 mg/l 1.42 mg/l Dureza Total 85.00 mg/l 80.00 mg/l 75.00 mg/l Oxigeno Disuelto 14.00 mg/l 0.50 mg/l 0.10 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 20.40 mg/l 23.80 mg/l 30.70 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 25.50 mg/l 29.70 mg/l 38.30 mg/l OBSERVACIONES: 9H45, recolección de muestras en día frío y nublado


MUESTRAS: MITAD PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (13 MT) TOMA # 3 (26 MT) PH 8.72 7.78 7.60 Temperatura 27.00 oC 26.10 oC 25.70 oC Transparencia 0.54 mt --- --- Conductividad 190.70 micromhos/cm 192.10 micromhos/cm 199.40 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 194.00 mg/l 162.00 mg/l 235.00 mg/l Fosfatos Totales 0.19 mg/l 0.25 mg/l 0.31 mg/l Polifosfatos 0.15 mg/l 0.02 mg/l 0.24 mg/l Monoacido Fosfatos 0.03 mg/l 0.05 mg/l 0.06 mg/l Nitratos 0.21 mg/l 0.27 mg/l 0.34 mg/l Nitritos 0.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Silice 11.00 mg/l 11.00 mg/l 17.00 mg/l N. Amoniacal 0.09 mg/l 0.08 mg/l 0.11 mg/l Hierro 0.39 mg/l 0.12 mg/l 0.28 mg/l Manganeso 0.25 mg/l 0.08 mg/l 0.14 mg/l Acido Sulfhidrico 0.21 mg/l 1.28 mg/l 2.76 mg/l Anhidido Carbonico 0.00 mg/l 0.00 mg/l 15.70 mg/l Materia Organica 7.70 mg/l 6.20 mg/l 5.60 mg/l Alcalinidad Total 88.00 mg/l 70.00 mg/l 74.00 mg/l Alcalinidad Simple 31.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 1.42 mg/l 1.42 mg/l 1.42 mg/l Dureza Total 94.00 mg/l 79.00 mg/l 84.00 mg/l Oxigeno Disuelto 11.60 mg/l 0.40 mg/l 0.20 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 17.20 mg/l 19.30 mg/l 25.80 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 21.50 mg/l 24.10 mg/l 32.20 mg/l OBSERVACIONES: 10H10 Recolección de muestras, ambiente nublado


MUESTRAS: CASTILLO PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (14 MT) TOMA # 3 (28 MT) PH 8.10 7.58 7.61 Temperatura 30.00 oC 26.90 oC 25.80 oC Transparencia 0.54 mt --- --- Conductividad 197.50 micromhos/cm 180.20 micromhos/cm 229.00 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 191.00 mg/l 136.00 mg/l 321.00 mg/l Fosfatos Totales 0.20 mg/l 0.17 mg/l 0.22 mg/l Polifosfatos 0.16 mg/l 0.13 mg/l 0.17 mg/l Monoacido Fosfatos 0.04 mg/l 0.03 mg/l 0.04 mg/l Nitratos 0.28 mg/l 0.18 mg/l 0.24 mg/l Nitritos 0.00 mg/l 0.01 mg/l 0.01 mg/l Silice 11.00 mg/l 10.00 mg/l 15.00 mg/l N. Amoniacal 0.10 mg/l 0.10 mg/l 0.09 mg/l Hierro 0.07 mg/l 0.06 mg/l 0.15 mg/l Manganeso 0.17 mg/l 0.06 mg/l 0.10 mg/l Acido Sulfhidrico 1.91 mg/l 3.62 mg/l 3.84 mg/l Anhidido Carbonico 0.00 mg/l 0.00 mg/l 9.20 mg/l Materia Organica 7.70 mg/l 4.50 mg/l 6.40 mg/l Alcalinidad Total 84.00 mg/l 78.00 mg/l 73.00 mg/l Alcalinidad Simple 14.00 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 2.84 mg/l 1.42 mg/l 0.00 mg/l Dureza Total 84.00 mg/l 75.00 mg/l 82.00 mg/l Oxigeno Disuelto 9.90 mg/l 0.40 mg/l 0.20 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 15.10 mg/l 18.70 mg/l 30.80 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 18.80 mg/l 23.30 mg/l 38.50 mg/l OBSERVACIONES: 10h40 Recolección de muestras, ambiente con resplandor




Anacystis SP ------ ------ ------ ------ ------ 40 cel/ml ------ ------ --------

Anabaenopsis Raciborkii 73.000 cel/ml 1.860 cel/ml 496 cel/ml 236.800 cel/ml 4.796 cel/ml 407 cel/ml 101.867 cel/ml 68.000 cel/ml 64.250 cel/ml

CLOROPHYTAS

Chlorella Vulgare ------ ------ ------ ------ ------ 107 cel/ml ------ ------ --------

Scenedesmus Cuadricauda ------ ------ ------ ------ ------ ------- ------ ------ --------

Chlamidomona Globosa ------ ------ ------ ------ 16 cel/ml ------ ------ ------ --------

CHRISOPHYTAS

(Diatomeas)

Synedra Acus ---- ----- 16 cel/ml ---- ----- ----- ----- ----- ----

Nitzschia Gracilis ---- ----- 16 cel/ml ---- ----- ----- ----- ----- ----

TOTAL 73.000 cel/ml 1.860 cel/ml 528 cel/ml 236.800 cel/ml 4.812 cel/ml 1.054 cel/ml 101.867 cel/ml 68.000 cel/ml 64.250 cel/ml


MUESTRAS AGUA CRUDA MUESTRAS AGUA TRATADA PH 7.53 PH 7.28 Temperatura 25.00 o C Temperatura 25.60 o C Color 45.00 U (Pt /Co) Color 8.00 U (Pt /Co) Turbiedad 30.00 UNT Turbiedad 0.40 UNT Conductividad 195.00 micromhos /cm Conductividad 197.20 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos (STD) 232.00 mg/l Solidos Totales Disueltos 166.00 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.23 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.10 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.18 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.08 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.04 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.02 mg/l Nitratos (NO3) 0.24 mg/l Nitratos (NO3) 0.17 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.00 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.00 mg/l Sílice (SiO2) 7.00 mg/l Sílice (SiO2) 7.00 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.09 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.22 mg/l Hierro (Fe++) 0.19 mg/l Hierro (Fe++) 0.06 mg/l Manganeso (Mn++) 0.09 mg/l Manganeso (Mn++) 0.04 mg/l Ácido Sulfhídrico (SH2) 0.21 mg/l Acido Sulfhidrico (SH2) 0.00 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 0.00 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 0.00 mg/l Materia Orgánica (al MnO4K) 6.10 mg/l Materia Organica (O2 ) 3.00 mg/l Dureza Total (TH) 80.00 mg/l Dureza Total (TH) 94.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 104.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 86.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Cloruros (Cl- ) 7.10 mg/l Cloruros (Cl- ) 14.20 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 0.00 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 7.10 mg/l Demanda de Cloro (CL) 13.00 mg/l Trihalometanos 20.00 ug/l como CH3 Cl Cloro Libre 0.30 mg /l Cloro Total 1.40 mg /l



MUESTRAS AGUA CRUDA AGUA TRATADA CIANOPHYTAS Anacystis SP ------ ----- Anabaenopsis Raciborkii 30.875 cel/ml 242 cel/ml CLOROPHYTAS Chlorella Vulgare ------ -------- Scenedesmus Cuadricauda ------ -------- Chlamidomona Globosa ------ -------- CHRISOPHYTAS (Diatomeas) Synedra Acus ------ -------- Nitzschia Gracilis ------ -------- TOTAL 30.875 cel/ml 242 cel/ml

JUNIO 2003

ANÁLISIS FISICO QUÍMICO DEL EMBALSE DE POZA HONDA MUESTRAS: COLA PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (6 MT) TOMA # 3 ( 11 MT) PH 8.48 7.65 7.49 Temperatura 28.10 oC 26.70 oC 26.20 oC Transparencia 0.64 mt -- -- Conductividad 190.50 micromhos/cm 187.20 micromhos/cm 196.80 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 152.00 mg/l 191.00 mg/l 198.00 mg/l Fosfatos Totales 0.29 mg/l 0.34 mg/l 0.23 mg/l Polifosfatos 0.23 mg/l 0.27 mg/l 0.18 mg/l Monoacido Fosfatos 0.05 mg/l 0.06 mg/l 0.04 mg/l Nitratos 0.34 mg/l 0.43 mg/l 0.31 mg/l Nitritos 0.07 mg/l 0.06 mg/l 0.10 mg/l Silice 11.00 mg/l 14.00 mg/l 17.00 mg/l N. Amoniacal 0.02 mg/l 0.02 mg/l 0.08 mg/l Hierro 0.13 mg/l 0.13 mg/l 0.23 mg/l Manganeso 0.17 mg/l 0.13 mg/l 0.11 mg/l Acido Sulfhidrico 0.21 mg/l 0.85 mg/l 4.47 mg/l Anhidido Carbonico 0.00 mg/l 0.00 mg/l 23.00 mg/l Materia Organica 11.40 mg/l 7.40 mg/l 7.25 mg/l Alcalinidad Total 86.80 mg/l 62.30 mg/l 75.80 mg/l Alcalinidad Simple 19.20 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 2.13 mg/l 1.42 mg/l 1.42 mg/l Dureza Total 81.00 mg/l 73.00 mg/l 75.00 mg/l Oxigeno Disuelto 13.60 mg/l 0.90 mg/l 0.20 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 21.30 mg/l 22.60 mg/l 29.70 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 26.60 mg/l 28.20 mg/l 37.10 mg/l OBSERVACIONES: 9H55, recolección de muestras ambiente nublado


MUESTRAS: MITAD PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 (12 MT) TOMA # 3 (24 MT) PH 8.73 7.76 7.35 Temperatura 27.00 oC 26.50 oC 25.90 oC Transparencia 0.60 mt --- --- Conductividad 182.30 micromhos/cm 180.10 micromhos/cm 178.30 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 184.00 mg/l 147.00 mg/l 199.00 mg/l Fosfatos Totales 0.37 mg/l 0.24 mg/l 0.15 mg/l Polifosfatos 0.29 mg/l 0.19 mg/l 0.12 mg/l Monoacido Fosfatos 0.07 mg/l 0.04 mg/l 0.03 mg/l Nitratos 0.34 mg/l 0.31 mg/l 0.42 mg/l Nitritos 0.01 mg/l 0.02 mg/l 0.10 mg/l Silice 13.00 mg/l 11.00 mg/l 19.00 mg/l N. Amoniacal 0.02 mg/l 0.01 mg/l 0.08 mg/l Hierro 0.08 mg/l 0.12 mg/l 0.32 mg/l Manganeso 0.25 mg/l 0.08 mg/l 0.15 mg/l Acido Sulfhidrico 0.00 mg/l 1.27 mg/l 3.40 mg/l Anhidido Carbonico 0.00 mg/l 0.00 mg/l 11.40 mg/l Materia Organica 10.50 mg/l 8.00 mg/l 5.00 mg/l Alcalinidad Total 91.00 mg/l 85.00 mg/l 81.00 mg/l Alcalinidad Simple 19.20 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 2.13 mg/l 1.42 mg/l 0.00 mg/l Dureza Total 87.00 mg/l 78.00 mg/l 70.00 mg/l Oxigeno Disuelto 16.20 mg/l 0.30 mg/l 0.00 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 24.60 mg/l 27.60 mg/l 28.50 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 30.75 mg/l 34.50 mg/l 35.60 mg/l OBSERVACIONES: 9H35 Recolección de muestras, ambiente nublado


MUESTRAS: CASTILLO PARÁMETROS TOMA # 1 (SUPERFICIAL) TOMA # 2 ( MT) TOMA # 3 ( MT) PH 8.55 7.61 7.56 Temperatura 27.00 oC 26.30 oC 26.00 oC Transparencia 0.64 mt --- --- Conductividad 185.60 micromhos/cm 182.30 micromhos/cm 181.20 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos 152.00 mg/l 143.00 mg/l 217.00 mg/l Fosfatos Totales 0.18 mg/l 0.25 mg/l 0.36 mg/l Polifosfatos 0.14 mg/l 0.20 mg/l 0.28 mg/l Monoacido Fosfatos 0.03 mg/l 0.05 mg/l 0.07 mg/l Nitratos 0.37 mg/l 0.33 mg/l 0.35 mg/l Nitritos 0.07 mg/l 0.06 mg/l 0.15 mg/l Silice 20.00 mg/l 9.00 mg/l 17.00 mg/l N. Amoniacal 0.02 mg/l 0.05 mg/l 0.05 mg/l Hierro 0.07 mg/l 0.05 mg/l 0.30 mg/l Manganeso 0.22 mg/l 0.06 mg/l 0.26 mg/l Acido Sulfhidrico 0.00 mg/l 0.85 mg/l 1.70 mg/l Anhidido Carbonico 21.00 mg/l 20.00 mg/l 8.10 mg/l Materia Organica 7.35 mg/l 5.85 mg/l 4.10 mg/l Alcalinidad Total 84.00 mg/l 73.90 mg/l 78.00 mg/l Alcalinidad Simple 8.10 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Cloruros 2.13 mg/l 1.42 mg/l 0.00 mg/l Dureza Total 86.00 mg/l 75.00 mg/l 68.00 mg/l Oxigeno Disuelto 8.20 mg/l 0.00 mg/l 0.00 mg/l Demanda Bioquímica de Oxigeno 17.70 mg/l 20.10 mg/l 27.40 mg/l Demanda Quimica de Oxigeno 22.10 mg/l 25.10 mg/l 34.25 mg/l OBSERVACIONES: 10H00 Recolección de muestras, ambiente con resplandor




Anacystis SP ---- ---- ----- ---- ---- --- --- 10.540 cel/ml -----

Agmenellum Quadriduplicatum ---- ---- ----- ---- ---- --- --- ---- ----

Anabaenopsis Raciborkii 54.947 cel/ml 59.333 cel/ml 21.412 cel/ml 398.857 cel/ml 12.480 cel/ml 8.320 cel/ml 13 cel/ml 820 cel/ml 220 cel/ml

CLOROPHYTAS

Chlorella Vulgare ---- ---- ---- 286 cel/ml 40 cel/ml ---- 61 cel/ml 20 cel/ml 160 cel/ml

Chlamidomona Globosa --- --- --- ---- ---- ---- 5 cel/ml 40 cel/ml 160 cel/ml

PIRROPHYTAS

Peridinium SP ---- ---- ---- ------ ---- ---- 53 cel/ml 100 cel/ml -----

CHRISOPHYTAS

(Diatomeas)

Synedra Acus --- ---- ---- --- ---- --- --- 100 cel/ml -----

TOTAL 54.947 cel/ml 59.333 cel/ml 21.412 cel/ml 399.413 cel/ml 12.520 cel/ml 8.320 cel/ml 132 cel/ml 11.620 cel/ml 540 cel/ml


PH 7.11 PH 7.09 Temperatura 25.00 o C Temperatura 26.00 o C Color 28.00 U (Pt /Co) Color 10.00 U (Pt /Co) Turbiedad 7.30 UNT Turbiedad 0.50 UNT Conductividad 189.60 micromhos /cm Conductividad 190.50 micromhos/cm Solidos Totales Disueltos (STD) 151.00 mg/l Solidos Totales Disueltos 153.00 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.31 mg/l Fosfatos (P2O5) 0.10 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.24 mg/l Polifosfatos (P2O5) 0.08 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.06 mg/l Monoacido fosfato (P2O5) 0.02 mg/l Nitratos (NO3) 0.34 mg/l Nitratos (NO3) 0.29 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.03 mg/l Nitritos (NO2 ) 0.00 mg/l Sílice (SiO2) 8.00 mg/l Sílice (SiO2) 6.00 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.07 mg/l N. Amoniacal (NH3) 0.00 mg/l Hierro (Fe++) 0.17 mg/l Hierro (Fe++) 0.03 mg/l Manganeso (Mn++) 0.06 mg/l Manganeso (Mn++) 0.01 mg/l Ácido Sulfhídrico (SH2) 0.00 mg/l Acido Sulfhidrico (SH2) 0.01 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 0.00 mg/l Anhidrido Carbónico (O2 ) 0.00 mg/l Materia Orgánica (al MnO4K) 6.00 mg/l Materia Organica (O2 ) 2.80 mg/l Dureza Total (TH) 67.00 mg/l Dureza Total (TH) 85.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 80.00 mg/l Alcalinidad Total (TAC) 76.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Alcalinidad Simple (TA) 0.00 mg/l Cloruros (Cl- ) 5.60 mg/l Cloruros (Cl- ) 9.90 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 0.00 mg/l Oxigeno Disuelto (O2) 6.40 mg/l Demanda de Cloro (CL) 13.00 mg/l Trihalometanos 0.00 ug/l como CH3 Cl Cloro Libre 0.10 mg /l Cloro Total 0.30 mg /l



MUESTRAS AGUA CRUDA AGUA TRATADA CIANOPHYTAS Anacystis SP 46.222 cel/ml ----- Agmenellum Quadriduplicatum ---- ---- Anabaenopsis Raciborkii 444 cel/ml 112 cel/ml CLOROPHYTAS Chlorella Vulgare ---- ---- Chlamidomona Globosa ---- ---- PIRROPHYTAS Peridinium SP ---- ---- CHRISOPHYTAS (Diatomeas) Synedra Acus ---- ---- TOTAL 46.666 cel/ml 112 cel/ml

Embalse de Poza Honda Análisis/2002/2003

Muestras: Cola


02468

10

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03


Temperatura

010203040

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

°C


Transparencia

00,20,40,60,8

1

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02 Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03


Fosfatos

00,20,40,60,8

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02 Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Polifosfatos

00,10,20,30,40,50,6

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Monoacido Fosfatos

00,10,20,30,40,50,6

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Nitratos

00,20,40,60,8

11,2

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Nitritos

00,050,1

0,150,2

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02 Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


N-Amoniacal

0

0,5

1

1,5

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Hierro

00,10,20,30,4

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Toma # 1 (superficial)Toma # 2 (8mt)Toma 3 3 (16mt)

Manganeso

00,20,40,60,8

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Acido Sulfhidrico

0123456

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Anidrido Carbonico

05

10152025

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Materia Organica

0

5

10

15

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Oxigeno Disuelto

05

101520

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Demanda Bioquimica de Oxigeno

101520253035

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Demanda Quimica de Oxigano

01020304050

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Muestras: Mitad


6,57

7,58

8,59

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02 Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03


Temperatura

222426283032

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

°C


Transparencia

0,40,50,60,70,80,9

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03


Fosfatos Totales

00,20,40,60,8

1

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Polifosfatos

00,10,20,30,40,50,60,7

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Monoacido Fosfatos

00,10,20,30,40,5

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Nitratos

0

0,5

1

1,5

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Niritos

0

0,05

0,1

0,15

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Toma # 1 (superficial)Toma #2 (8mt)Toma # 3 (16mt)

N-Amoniacal

0

0,05

0,1

0,15

0,2

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Hierro

00,10,20,30,40,5

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Manganeso

00,10,20,30,40,5

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Acido Sulfhidrico

02468

10

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Anidrido Carbonico

010203040

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Materia Organica

0

5

10

15

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Oxigeno Disuelto

05

1015

20

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Demanda Bioquimica Oxigeno

152025303540

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Demanda Quimica Oxigeno

01020304050

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Muestras: Castillo


6

7

8

9

10

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02 Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03


Temperatura

2426283032

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

°C


Transparencia

0,40,60,8

11,2

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03


Fosfatos

0,20,30,40,50,60,7

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Polifosfatos

00,10,20,30,40,50,6

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Monoacido Fosfatos

0

0,1

0,2

0,3

0,4

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Nitratos

0

0,5

1

1,5

2

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Nitritos

00,050,1

0,150,2

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


N-Amoniacal

00,20,40,60,8

11,2

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Hierro

00,10,20,30,4

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Toma #1 (superficial)Toma # 2 (8mt)Toma # 3 (16mt)

Manganeso

00,10,20,30,40,50,6

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Acido Sulfhidrico

0123456

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Anidrido Carbonico

05

1015202530

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Materia Organica

0

5

10

15

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Oxigeno disuelto

0

5

10

15

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Toma # 1 (uperficial)Toma # 2 (8mt)Toma # 3 (16mt)

Demanda Bioquimica Oxigeno

101520253035

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Demanda Quimica Oxigeno

1020304050

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l


Análisis Biológico del Embalse de Poza Honda

Chorococcus Minor

00,20,40,60,8

1

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3

Chorococcus Minor

0100200300400500

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02 Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Mitad1Mitad 2MitaD 3

Chorococcus Minor

00,20,40,60,8

1

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml



02000400060008000

1000012000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3


0

2000

4000

6000

8000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Agmenellu Quadriduplicatum

05000

1000015000200002500030000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Castllo 1castillo 2Castillo 3

Oscillatoria SubTilissima

0500

100015002000250030003500

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola1Cola 2Cola 3


0

10000

20000

30000

40000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml



0100020003000400050006000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Anabaenopsis Raciborkii

0

20000

40000

60000

80000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3


0

20000

40000

60000

80000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02 Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml



020000400006000080000

100000120000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Phacus SP

00,20,40,60,8

1

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02 Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3

Phacus SP

0100200300400500600

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Phacus SP

00,20,40,60,8

1

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Chlorella Vulgare

01000020000300004000050000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3

Chlorella Vulgare

050000

100000150000200000250000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Chlorella Vulgare

0

2000

4000

6000

8000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml



00,20,40,60,8

1

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3


05

1015202530

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml



00,20,40,60,8

1

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Cocconeis SP

00,20,40,60,8

1

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3

Cocconeis SP

02468

1012

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Cocconeis SP

0500

1000150020002500

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Synedra Acus

010002000300040005000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3

Synedra Acus

0100020003000400050006000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Synedra Acus

02000400060008000

1000012000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml



0

20000

40000

60000

80000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3


020000400006000080000

100000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml



020000400006000080000

100000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Amphyprora SP

00,20,40,60,8

1

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3

Amphyprora SP

00,20,40,60,8

1

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Amphyprora SP

00,20,40,60,8

1

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Nitzschia Gracilis

0500

10001500200025003000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3

Nitzschia Gracilis

0

1000

2000

3000

4000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Nitzschia Gracilis

0100200300400500600700

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Castillo1Castillo 2Castillo 3


0

500

1000

1500

2000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3


050

100150200250

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml



0100200300400500

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml



00,20,40,60,8

1

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3


00,20,40,60,8

1

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml



00,20,40,60,8

1

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Peridinium SP

02000400060008000

10000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3

Peridinuim SP

01000200030004000500060007000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Peridinium SP

02000400060008000

10000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Diatoma Vulgare

00,20,40,60,8

1

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3

Diatoma Vulgare

02000400060008000

1000012000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Diatoma Vulgare

0

5000

10000

15000

20000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Castillo 1Castllo 2Castillo 3

Anacystis SP

0200400600800

100012001400

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3

Anacystis SP

01020304050

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02 Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Anacystis SP

02000400060008000

1000012000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Castillo 1 Castillo 2Castillo 3


0

1000

2000

3000

4000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3


00,20,40,60,8

1

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Oscillatoris Formosa

00,20,40,60,8

1

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Spirulina Subsalsa

0100200300400500600

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3

Spirulina Subsalsa

0200400600800

10001200

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Spirulina Subsalsa

00,20,40,60,8

1

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml



0100002000030000400005000060000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3


05000

1000015000200002500030000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml



0

5000

10000

15000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Euglena Acus

050

100150200250

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3

Euglena Acus

00,20,40,60,8

1

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Euglena Acus

00,20,40,60,8

1

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Total Producción Algas

050000

100000150000200000250000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Cola 1Cola 2Cola 3


0100000200000300000400000500000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

mitad 1Mitad 2Mitad 3


020000400006000080000

100000120000140000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Planta de Tratamiento Guarumo Agua Cruda/2002/2003


7

7,2

7,4

7,6

7,8

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02 Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

Agua Cruda

Temperatura

2424,5

2525,5

26

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

°C

Agua Cruda

Color

020406080

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

U(Pt/Co)

Agua Cruda

Fosfatos

0

0,2

0,4

0,6

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Cruda

Monoacido fosfatos

00,020,040,060,08

0,10,12

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Cruda

Nitratos

00,10,20,30,40,50,6

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Cruda

Nitritos

00,020,040,060,08

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02 Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Cruda

N-Amoniacal

00,050,1

0,150,2

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Cruda

Hierro

00,050,1

0,150,2

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Cruda

Manganeso

00,10,20,30,4

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Cruda

Acido Sulfhidrico

00,5

11,5

22,5

3

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Cruda

Materia organica

456789

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Cruda

Oxigeno Disuelto

00,20,40,60,8

11,2

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Cruda

Demanda de cloro

0

5

10

15

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Cruda

Agua Tratada/2002/2003

Potencial Hidrogeno

6,9

7

7,1

7,2

7,3

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

Agua Tratada

Temperatura

25,225,425,625,8

2626,2

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

°C

Agua Tratada

Color

468

101214

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

U(Pt/Co)

Agua Tratada

Fosfatos

00,05

0,10,15

0,20,25

0,3

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Tratada

Polifosfatos

00,10,20,30,40,50,6

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Tratada

Monoacido Fosfatos

0

0,05

0,1

0,15

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

(mg/l

Agua Tratada

Nitratos

00,10,20,30,40,50,6

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Tratada

Nitritos

00,020,040,060,080,1

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Tratada

N-Amoniacal

00,050,1

0,150,2

0,25

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Tratada

Hierro

0

0,05

0,1

0,15

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Tratada

Manganeso

00,10,2

0,30,4

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Tratada

Acido Sulfhidrico

00,0020,0040,0060,008

0,010,012

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Tratada

Materia Organica

22,5

33,5

44,5

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Tratada

Oxigeno Disuelto

55,5

66,5

77,5

8

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Tratada

Trihalometanos

05

10152025

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

ug/l

Agua Tratada

Cloro Libre

0

0,5

1

1,5

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02 Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Tratada

Cloro Residual Combinado

00,5

11,5

22,5

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

mg/l

Agua Tratada

Análisis Biológico Planta Guarumo

Chorococcus Minor

050

100150200250

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

Agua CrudaAgua Tratada


0500

10001500200025003000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml



0100200300400500

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml



020000400006000080000

100000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Phacus SP

020406080

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Chorella Vulgare

02000400060008000

10000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml



0102030405060

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Cocconeis SP

00,20,40,60,8

1

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Synedra Acus

010002000300040005000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml



01000200030004000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Amphyprora SP

05

10152025

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Nitzschia Gracilis

0100020003000400050006000

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml



0200400600800

10001200

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml



0102030405060

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml



0200400600800

10001200

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Peridinium SP

050

100150200

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Diatoma Vulgare

050

100150200250

Jul-02 Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Anacystis SP

01000020000300004000050000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml



00,20,40,60,8

1

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Spirulina Subsalsa

050

100150200250

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


Euglena Acus

050

100150200250

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml

agua CrudaAgua Tratada

Total

020000400006000080000

100000120000

Jul-02

Ago-02

Sep-02

Oct-02

Nov-02

Dic-02

Ene-03

Feb-03

Mar-03

Abr-03

May-03

Jun-03

cel/ml


GLOSARIO

Autotrofico: Un organismo que solo necesita bióxido de carbóno y otros nutrientes

inorgánicos, y obtiene la energía de la luz o de la oxidación de compuestos

inorgánicos.

Bentos: fondos y litorales.

Bióticos: Propio de la vida. Dicese del principio vital

Cota: indica la altura de un punto:

Desnitrificación: pasar el nitrógeno de los compúestos organicos a la forma gaseosa.

Estratificación: formación de tres zonas con diferentes temperaturas.

Epilimnion: agua superior caliente circulante.

Eufotica: efecto neto de la fotosíntesis positiva.

Fitoplancton: síntesis de carbohidratos a partir de CO2 y agua, utilizando la energia

de la luz, con ayuda de clorofila.

Hipolimnion: agua inferior fría.

Humus: una masa oscura de plantas y materia orgánica en putrecfacción que dan al

suelo textura blanda y color pardo o negro.

Heterotroficas: organismo que necesita compuestos orgánicos complejos como

fuente de carbono.

OMS: organización mundial de la salud.

OPS: organización panamericana de la salud.

Plancton: pequeños organismos animales o vegetales que flotan libremente.

SPD: sub-productos de desinfección.

Termoclina: diferencia entre el agua superior y las del fondo, zona intermedia.

Trofogena: luminosidad en la zona de producción.

Trofolitica: ausencia de luminosidad en el fondo.

THM: trihalometanos.

Zooplancton: pequeños animales que flotan libremente.

BIBLIOGRAFIA

Ø American Public Health Association, American Water Works Association,

water Pollution.

Ø Arboleda, L. Vargas y H. Correal: Manual de tratamiento de aguas potables,

OMS – UNDP, 1969.

Ø Algas en abastecimiento de aguas, C. Mervin Palmer, 1962.

Ø Biología de los embalses, Ramon Margaleff.

Ø Calidad de agua en lagos y embalses, Josheph H. Sherrard, Universidad

Central del Ecuador.

Ø Degremont, manual tecnico del agua 4ta. edición.

Ø El plancton de la cuenca inferior del rio Daule y algunos aspectos economicos,

Cajas L., M. Prado y Domínguez, Instituto Nacional de Pesca.

Ø Estudio del fitoplancton, Sedgwick – Rafter.

Ø Etapa de nitrificación biológica de la Planta de Tratamiento de Poza Honda,

Rhen – Ruhr Ingenieur – Ges. MBH/Beller Consult GMHH, Acolit, CRM, 1985.

Ø II Encuentro de eutrofización de lagos tropicales, IOS- CRM, 1983.

Ø Standard methods for the examination of water – 15ava edición.

Ø Trihalometanos en aguas potables, chanel ishibaki y Liana Van Der Biest,

Instituto Venezolano de Investigaciones Cientificas, 1969.

Ø WWW. Semarh. Deg.gov.br.

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