PROTOCOLO DE GESTIÓN DE FAUNA ACUÁTICA...
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FERROVIAL AGROMÁN S.L.
PROTOCOLO
Protocolos de actuación2014
PROTOCOLO DE GESTIÓN PROTOCOLO DE GESTIÓN DE FAUNA ACUÁTICA DE FAUNA ACUÁTICA DURANTE LAS LABORES DEDURANTE LAS LABORES DERESTAURACIÓN RESTAURACIÓN AMBIENTAL DEL RÍO AMBIENTAL DEL RÍO SEGURA EN LA CIUDAD DE SEGURA EN LA CIUDAD DE MURCIAMURCIA
Ref: DT2014/016
PROTOCOLO DE GESTIÓN DE FAUNA
ACUÁTICA DURANTE LAS LABORES DE
RESTAURACIÓN AMBIENTAL DEL RÍO
SEGURA EN LA CIUDAD DE MURCIAPROTOCOLO
Ref: DT2014/016
PROMOTORFERROVIAL AGROMÁN S.L.
COORDINADORAlberto Perán Rex (Lcdo. Biología)
AUTORES:
Pedro Alfonso Miñano Alemán
COLABORA:
Dpto. Zoología y Antropología FísicaGrupo de Investigación E0A0-04:
Zoología básica y aplicada a la gestión y la conservación
Dr. Francisco J. Oliva PaternaDra. Mar Torralva ForeroDr. David Verdiell Cubedo
MURCIA, MARZO 2014
MURCIA
Polígono Industrial Oeste
C/ Uruguay, s/n - Parc 8/27 Nave 31
30820 Alcantarilla (MURCIA)
Tfno: 968 845 265 / Fax: 968 894 354
CANARIAS
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La Laguna. 38206 S/C Tenerife.
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COMUNIDAD VALENCIANA
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03201 Elche (Alicante).
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autores.
índice
1. PROTOCOLO DE EXTRACCIÓN Y TRANSLOCACIÓN DE FAUNA ACUÁTICA pag. 1
1.1. OBJETIVO pag. 1
1.2. ALCANCE pag. 1
1.3. DOCUMENTACIÓN DE REFERENCIA pag. 2
1.4. DEFINICIONES pag. 2
1.5. RESPONSABILIDADES pag. 3
1.6. EQUIPAMIENTO pag. 4
1.6.1. MATERIAL GENERAL pag. 4
1.6.2. PESCA ELÉCTRICA pag. 5
1.6.3. REDES ACTIVAS Y TRAMPAS PASIVAS pag. 5
1.6.4. MANIPULACIÓN FAUNA ACUÁTICA pag. 5
1.7. PROTOCOLOS DE EXTRACCIÓN FAUNA ACUÁTICA pag. 6
1.7.1. DESCRIPCIÓN METODOLÓGICA DE LOS PROCEDIMIENTOS DE EXTRACCIÓN Y CAPTURA pag. 8
1.8. PROTOCOLOS DE MANEJO Y TRANSLOCACIÓN DE EJEMPLARES pag. 15
1.8.1. GENERALIDADES pag. 15
1.8.2. SELECCIÓN DE PUNTOS DE SUELTA Y LIBERACIÓN pag. 18
1.8.3. CONTROL SANITARIO pag. 19
1.8.4. ANESTÉSICOS pag. 19
1.8.5. FAUNA EXÓTICA pag. 19
1.9. CONDICIONES DE SEGURIDAD pag. 19
1.9.1. SEGURIDAD PESCA ELÉCTRICA pag. 20
1.9.2. PESCA ELÉCTRICA DESDE EMBARCACIONES pag. 20
1.10. ARCHIVO DE DOCUMENTOS Y REGISTROS pag. 21
1.11. REFERENCIA A PROCEDIMIENTOS O INSTRUCCIONES pag. 21
1.12. ANEXO- FLUJO DE TRABAJO pag. 22
2. PROTOCOLO DE VIGILANCIA AMBIENTAL Y GESTIÓN DE MORTANDADES pag.
23
2.1. OBJETIVO pag. 23
2.2. ALCANCE pag. 23
2.3. DOCUMENTACIÓN DE REFERENCIA pag. 23
2.4. DEFINICIONES pag. 24
2.5. RESPONSABILIDADES pag. 25
2.6. EQUIPAMIENTOS Y TOMA DE MUESTRAS pag. 26
2.6.1. MATERIAL GENERAL pag. 26
2.6.2. MATERIAL VARIO pag. 27
2.6.3. ENVASES pag. 27
2.6.4. EQUIPOS pag. 28
2.7. PROTOCOLOS pag. 29
2.7.1. GENERALIDADES pag. 29
2.7.2. VIGILANCIA Y PREVENCIÓN DE MORTANDADES pag. 29
2.7.3. RETIRADA Y GESTIÓN DE EJEMPLARES pag. 31
2.7.4. PROTOCOLO DE INVESTIGACIÓN pag. 32
2.8. CONTROL DE CALIDAD pag. 35
2.8.1. IDENTIFICACIÓN Y REGISTRO pag. 35
2.8.2. CUSTODIA Y ENTRADA EN EL LABORATORIO pag. 35
2.8.3. CONTROLES Y BLANCOS pag. 36
2.9. CONDICIONES DE SEGURIDAD pag. 36
2.10. ARCHIVO DE DOCUMENTOS Y REGISTROS pag. 37
2.11. REFERENCIA A PROCEDIMIENTOS O INSTRUCCIONES pag. 37
3. PROTOCOLO DE GESTIÓN DE FAUNA ACUÁTICA EXÓTICA pag. 39
3.1. OBJETIVO pag. 39
3.2. ALCANCE pag. 39
3.3. DOCUMENTACIÓN DE REFERENCIA pag. 40
3.4. DEFINICIONES pag. 40
3.5. RESPONSABILIDADES pag. 41
3.6. EQUIPAMIENTO pag. 42
3.6.1. MATERIAL GENERAL pag. 42
3.6.2. MANIPULACIÓN Y EUTANASIA DE FAUNA EXÓTICA pag. 43
3.7. PROTOCOLO O PROCEDIMIENTO DE MANIPULACIÓN Y EUTANASIA pag. 44
3.7.1. GENERALIDADES pag. 44
3.7.2. ESPECIES AFECTADAS: pag. 44
3.7.3. PROCEDIMIENTO DE MANIPULACIÓN Y EUTANASIA pag. 45
3.7.4. METODOLOGÍA DE MANIPULACIÓN Y EUTANASIA pag. 46
3.8. MANEJO Y ELIMINACIÓN DE CADÁVERES pag. 50
3.8.1. GENERALIDADES pag. 50
3.9. CONDICIONES DE SEGURIDAD pag. 50
3.9.1. SEGURIDAD EN LOS PROCEDIMIENTOS DE EXTRACCIÓN pag. 51
3.10. REFERENCIA A PROCEDIMIENTOS O INSTRUCCIONES pag. 51
4. PROTOCOLO DE GESTIÓN DE RESIDUOS ORGÁNICOS DE ORIGEN ANIMAL pag.
53
4.1. OBJETIVOS pag. 53
4.2. ALCANCE pag. 53
4.3. DOCUMENTACIÓN DE REFERENCIA pag. 53
4.4. DEFINICIONES pag. 54
4.5. RESPONSABILIDADES pag. 55
4.6. METODOLOGIA pag. 55
4.6.1. GENERALIDADES pag. 55
4.6.2. CONDICIONES DE SEGURIDAD pag. 57
4.6.3. EQUIPAMIENTO PARA LA MANIPULACIÓN DE RESIDUOS SANDACH pag. 57
4.7. PROCEDIMIENTO DE RETIRADA DE BAJAS pag. 59
4.7.1. REGISTRO DE ACTUACIÓN: pag. 60
4.7.2. DOCUMENTOS DE LA RECOGIDA pag. 60
4.7.3. CUSTODIA HASTA RETIRADA pag. 61
4.8. ARCHIVO DE DOCUMENTOS Y REGISTROS pag. 61
4.9. REFERENCIA A PROCEDIMIENTOS O INSTRUCCIONES pag. 61
4.10. ANEXO- FLUJO DE TRABAJO pag. 62
5. ANEXO. DESINFECCIÓN DE EQUIPOS pag. 63
5.1. VACIADO DEL AGUA, INSPECCIÓN VISUAL Y ELIMINACIÓN DE RESTOS ADHERIDOS pag. 63
5.2. LIMPIEZA Y DESINFECCIÓN pag. 63
5.3. SECADO pag. 64
6. CONTROL DE CAMBIOS pag. 65
1. PROTOCOLO DE EXTRACCIÓN YTRANSLOCACIÓN DE FAUNA ACUÁTICA
1.1. OBJETIVO
El presente procedimiento tiene por objeto describir la metodología seguida por el
personal de TAXON Estudios Ambientales, S.L. en las actuaciones de extracción, control
y translocación de la fauna acuática presente en los recintos de dragado durante las
obras de Restauración Ambiental del Río Segura en la Ciudad de Murcia promovidas por
la Confederación Hidrográfica del Segura y adjudicadas a Ferrovial Agromán S.L...
El objetivo de la extracción y translocación es la disminución de la densidad y retirada
ejemplares de fauna piscícola y otros vertebrados acuáticos (ej. galápagos) del interior
de los recintos de dragado. De este modo, se evitarán las mortandades masivas de los
ejemplares que pudieran quedar retenidos en el interior de dichos recintos durante las
actuaciones de dragado (desecación, drenaje, extracción de sedimentos u otras). Para
la consecución de este objetivo se emplearán diversos procedimientos
complementarios entre sí de manera que se asegure la máxima efectividad en la
extracción y control. La translocación hace referencia a las acciones de manipulación y
transporte de los ejemplares capturados a otros sectores del río que serán
consensuados previamente con el Servicio de Biodiversidad Caza y Pesca Fluvial de la
CARM, siempre de acuerdo con la normativa existente.
1.2. ALCANCE
El procedimiento tiene como objetivo definir las directrices metodológicas que permitan
la extracción, control y translocación de ejemplares de la fauna acuática en los recintos
del dragado inmerso en el “Proyecto de Recuperación Ambiental del Río Segura en la
ciudad de Murcia”.
Abarca los siguientes temas:
• Identificación del equipo de muestreo y metodología.
• Procedimiento con pesca eléctrica.
• Procedimiento con redes activas.
• Procedimiento con trampas pasivas.
• Manipulación y translocación de ejemplares.
• Control de la calidad y seguridad.
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1.3. DOCUMENTACIÓN DE REFERENCIA
• Orden de 13 de mayo de 2013, de la Consejería de Presidencia, por la que se
regula el ejercicio de la pesca fluvial para la temporada 2013/2014 y
reglamentaciones para la conservación de la fauna ictícola de la Comunidad
Autónoma de la Región de Murcia (BORM nº 113, 18/5/2013)
• Real Decreto 630/2013, de 2 de agosto, por el que se regula el Catálogo español
de especies exóticas invasoras (BOE Nº 185, 3 de agosto de 2013)
• Real Decreto 1628/2011, de 14 de noviembre, por el que se regula el listado y
catálogo español de especies exóticas invasoras.
• Real Decreto 1082/2009, de 3 de julio, por el que se establecen los requisitos de
sanidad animal para el movimiento de animales de explotaciones cinegéticas,
de acuicultura continental y de núcleos zoológicos, así como de animales de
fauna silvestre.
• Ley 42/2007, de 13 de diciembre, del Patrimonio Natural y de la Biodiversidad.
• Ley 7/2003, de 12 de noviembre, de Caza y Pesca Fluvial de la Región de Murcia.
• Ley 7/1995, de 21 de abril, de la fauna silvestre, caza y pesca fluvial.
• UNE-EN14011:2003. Calidad del agua. Muestreo de peces con electricidad.
• UNE-EN 14757:2006. Calidad del Agua. Muestreo de peces con redes de agalla
con diferente luz de malla.
• EN 14962:2004 Directrices para el campo de aplicación y selección de métodos
de muestreo de peces.
• Protocolos de muestreo y análisis para ictiofauna. Serie Metodología para el
establecimiento el Estado Ecológico según la Directiva MARCO del Agua. 2005.
Confederación Hidrográfica del Ebro (Ministerio de Medio Ambiente).
• LIFE-Trachemys (2012). Guía metodológica para la captura y manejo de
galápagos. Informes LIFE Trachemys nº 8. Conselleria d’Infraestructures, Territori
i Medi Ambient. 31 pp.
1.4. DEFINICIONES
Control: la acción de la autoridad competente o la autorizada o supervisada por
ésta, destinada a reducir el área de distribución, limitar la abundancia y
densidad o impedir la dispersión una especie.
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Especie nativa o autóctona: la existente dentro de su área de distribución y
de dispersión natural.
Especie exótica o alóctona: se refiere a especies, subespecies o taxones,
incluyendo sus partes, gametos, semillas, huevos o propágulos que pudieran
sobrevivir o reproducirse, introducidos fuera de su área de distribución natural y
de su área potencial de dispersión, que no hubiera podido ocupar sin la
introducción directa o indirecta, o sin el cuidado del hombre.
Especie exótica con potencial invasor: especie exótica que podría
convertirse en invasora en España, y en especial aquella que ha demostrado ese
carácter en otros países o regiones de condiciones ecológicas semejantes.
Especie exótica invasora: especie exótica que se introduce o establece en un
ecosistema o hábitat natural o semi natural, y que es un agente de cambio y
amenaza para la diversidad biológica nativa, ya sea por su comportamiento
invasor, o por el riesgo de contaminación genética.
Erradicación: proceso tendente a la eliminación de toda la población de una
especie.
Gestor SANCDACH autorizado: establecimientos autorizados en toda la UE
para la gestión de los distintos subproductos de origen animal no destinados al
consumo humano
SANDACH: acrónimo de Subproducto Animal No Destinado Al Consumo
Humano.
Translocación: accion de transporte de poblaciones animales a otra localidad
diferentes del punto de captura.
1.5. RESPONSABILIDADES
La Dirección de Obra del proyecto de Dragado es responsable de comunicar al
Responsable Técnico de Muestreo (RTM) de Taxon Estudios Ambientales el inicio de la
creación de los diferentes recintos de dragado y coordinar con éste las fechas previstas
para su desagüe y cierre de manera que se otorgue margen temporal suficiente para la
realización de los despesques.
La Dirección de Obra velará por que todo el personal de la misma conozca y cumpla
con los protocolos de gestión de fauna en los casos de hallazgo de ejemplares o
cadáveres durante el transcurso de la actuación.
El RTM de TAXON Estudios Ambientales, S.L. debe coordinar e instruir al equipo de
muestreo sobre los objetivos y requerimientos del proceso antes de llegar al área de
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trabajo. Así mismo será responsable de cumplimentar todos los documentos
relacionados con la recogida y gestión de ejemplares, así como de informar al
coordinador del proyecto de todas las incidencias ocurridas durante los procedimientos
(observaciones, localización, desviaciones, conflictos, etc.). También será responsable
de la comprobación y mantenimiento de todo el equipo necesario para los
procedimientos garantizando su disponibilidad.
Todo el personal del Área de Muestreo (AM) o trabajo debe cumplir con los
requerimientos especificados en el Manual de Riesgos Laborales de Taxon,
especialmente en relación con normas y equipos de seguridad en el trabajo, manejo de
sustancias tóxicas y peligrosas (Formol, ácidos, etc..) y manipulación de ejemplares.la
recogida y custodia del material biológico hasta su recogida por gestor autorizado
Cuando el procedimiento de extracción y control de ejemplares requiera del uso de
embarciones, el AM debe contar con al menos una persona con las titulaciones
necesarias para el patronaje de la embarcación. El resto de perosnal debe tener los
conocimientos necesarios de seguridad, bien porque tengan la titulación necesaria o
porque hayan sido instruidos por el responable técnico.
Todo el personal de campo debe estar familiarizado con los procedimientos descritos en
este documento para la manejo de metodología, recolección y manipulación de
ejemplares.
En el caso de completar con toma de muestras de los ejemplares, el técnico encargado
de realizar la toma será el responsable también de su conservación, transporte y
custodia desde el momento de la toma hasta su entrega en el Laboratorio.
1.6. EQUIPAMIENTO
El equipamiento básico para la realización de la toma de muestra se compone tanto de
los equipos mínimos necesarios para la toma de ejemplares, como de los envases y
diverso material auxiliar.
1.6.1. Material general
• Embarcación adecuada a las condiciones de los recintos de trabajo.
• Salvavidas (embarcaciones y aguas vadeables profundas).
• Botas altas o vadeadores (material no conductor de la electricidad).
• Redes de cierre, profundímetro, cuerdas y boyas para fijar transectos.
• Contenedores para especies nativas.
• Contenedores para especies exóticas.
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• Botiquín, equipo de primeros auxilios.
• Extintor, para el uso en zonas con riesgo de incendio por proximidad delgenerador eléctrico.
• Cámara fotográfica.
• Neveras.
1.6.2. Pesca eléctrica
• Conductivímetro para medir conductividad y ajustar la intensidad del
convertidor de corriente.
• Sacaderas o salabres
• Guantes de alta tensión
• Grupo electrógeno
• Transformador de corriente
• Pértiga o ánodo
• Rollo de cable
• Cátodo y cables de conexión
• Alargador
1.6.3. Redes activas y trampas pasivas
• Red de arrastre de longitud adecuada.
• Red de cierre para recintos.
• Trampas minnow y nasas
• Etiquetas
1.6.4. Manipulación fauna acuática
• Sacaderas y salabres
• Cubos de goma o plásticos (10-12 L) para trasladar los peces hasta los
contenedores.
• Contenedores para peces de diferentes tamaños para su traslado. Sus
dimensiones deben ser las adecuadas para evitar elevadas densidades durante
el traslado.
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• Contenedores de rejilla, que permitan el paso del agua a través. Funcionan como
vivero para mantener los peces en buenas condiciones hasta que son devueltos
al río.
• Oxigenador y caudalímetros: para evitar la asfixia de los peces durante el
traslado debido al agotamiento del oxígeno en el agua de la cuba de traslado.
• Hielo o refrigerantes, especialmente durante el verano para evitar un shock
térmico a la fauna.
Fotografía 1.1: Ejemplar de barbo (Luciobarbus sclateri) capturado
(Fotografía: Dpto. Zoología y Antropología Física).
1.7. PROTOCOLOS DE EXTRACCIÓN FAUNA ACUÁTICA
La operación de extracción y control se ejecutará de forma individualizada para cada
recinto y tendrá una duración aproximada de cuatro días en función del número total de
procedimientos empleados y la efectividad de las metodologías. La secuencia de
operaciones prevista es la siguiente (ver esquema en ANEXO I):
1. Inicialmente la Dirección de Obra comunicará al Responsable Técnico de
Muestreo de TAXON (RTM), con al menos cuatro días de antelación, la creación
de cada recinto de dragado.
2. El RTM de TAXON coordina con la Dirección de Obra las condiciones y permisos
de acceso al recinto y las localizaciones más adecuadas para la colocación de
los contenedores de forma que no se obstaculice el resto de la obra
3. El RTM de TAXON avisará a la empresa gestora de residuos SANDACH para la
colocación en las inmediaciones de los contenedores homologados.
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4. El primer día el personal del AM de TAXON realiza una primera campaña de
evacuación de fauna mediante el uso de redes de arrastre y cerco. Realizando
diversas pasadas hasta cubrir todo el recinto y verificar la efectividad de la
actuación. Al término procede al cierre del recinto con una red plomada para
evitar la re-entrada de la fauna evacuada.
5. Colocación de las nasas y sistemas de trampeo elegido (ver más adelante) para
la captura selectiva de galápagos y otra fauna que pudiera quedar escondida
entre la vegetación y rizomas.
6. Al día siguiente se revisarán las nasas y trampas y procederá a la realización de
nuevos despesques mediante el uso de pesca eléctrica. Los ejemplares
capturados serán transferidos a contenedores provisionales para su
determinación y gestión según se detalla en el apartado de PROTOCOLOS DE
MANEJO Y TRANSLOCACIÓN DE EJEMPLARES.
7. El responsable técnico de muestreo de TAXON avisa a la Dirección de Obra del
término de las operaciones de despesque para que puedan proceder al desagüe
del recinto.
8. Se procede al desagüe del recinto en presencia del personal de muestreo de
TAXON que de forma coordinada debe proceder a la retirada de las redes de
cierre del mismo.
9. Una vez finalizado el desagüe el personal de muestreo de TAXON revisa el
recinto para asegurar que no ha quedado atrapada fauna acuática de
consideración en el mismo, y en tal caso procede a su rescate. Para esta
operación dadas las dificultades de acceso por el grado de enfangamiento la
dirección de obra puede facilitar el acceso mediante la maquinaria de que
disponga (ej. excavadoras)
10. El Responsable Técnico de Muestreo de TAXON dejará a la dirección de obra unos
contenedores adecuados para depositar los galápagos y otra fauna que al
permanecer enterrada pueda ir apareciendo durante las operaciones de
dragado. Así mismo comunicará a TAXON tales hallazgos para que proceda a su
identificación y gestión. En el caso de localización de cadáveres, estos pueden
ser depositados directamente por el personal de la obra en los contenedores
SANDACH situados al efecto.
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1.7.1. DESCRIPCIÓN METODOLÓGICA DE LOS procedimientos de
extracción Y CAPTURA
En este apartado se exponen las directrices metodológicas para el desarrollo de los
distintos procedimientos. Su aplicación está condicionada por la profundidad en los
recintos, la conductividad del agua y las especies a capturar.
El rescate de la fauna acuática no implica necesariamente su captura, en ocasiones es
preferible su evacuación directa del tramo o recinto afectado. Los procedimientos de
extracción son variados y complementarios, y deben ser seleccionados específicamente
a los objetivos de cada proyecto y en función de las condiciones ambientales y
logísticas presentes en cada situación.
REDES ACTIVAS
A) Descripción
Se trata de redes de tamaño y luz de malla variables, generalmente <1 cm, que se
puede emplear en ríos de poca profundidad (< 1 m) y escasa corriente, también en
zonas litorales de embalses o lagunas siempre que el tipo de sustrato lo permita. La red
suele ir provista en el lado superior de una línea de boyarines y en el opuesto de una
línea de fondeo, garantizando así que ocupa toda la columna de agua.
B) Preparación del equipo y organización de la extracción
Previamente a la utilización de esta metodología se extenderá por completo la red en la
orilla y se comprobará que no existe rotura o nudo que pudiera afectar su eficacia y
operatividad.
C) Procedimiento con redes activas
Cuando el objetivo sea la evacuación de fauna del interior de recintos, la ejecución de
los arrastres se realizará en dirección a la abertura o punto de fuga predeterminado,
obligando a los peces a abandonar el recinto a través de esta abertura. La red debe
extenderse a lo ancho de toda la sección del río a evacuar, evitando los tramos
inhábiles para el arrastre (zonas de vegetación, troncos, raíces, etc.). Si la profundidad
lo permite ocupará también toda la columna de agua, para lo que dispondrá de
flotadores en superficie y de una línea plomada en su base de modo que vaya próxima
al fondo evitando así el escape de ejemplares. Para su arrastre puede ser necesario el
apoyo de una embarcación desde la que se operará con uno de los extremos de la red,
mientras que el otro extremo será manejado desde el dique longitudinal.
Una alternativa a dicha forma de proceder es la utilización de la red en secciones
semicirculares. El operario que está en la orilla mantiene fija su posición y desde la
embarcación, una vez desplegada la red de forma perpendicular al dique longitudinal,
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se realiza el arrastre trazando una línea curva en dirección a este último. Una vez en el
dique, se levanta la red desde la orilla tirando de su extremo inferior y se extraen los
ejemplares capturados. Esta operación se repetirá a lo largo de toda la longitud del
recinto.
Fotografía 1.2: Muestreo con red de arrastre en este caso operada sin embarcación (Fotografía:
Dpto. Zoología y Antropología Física).
La utilización de salabres y sacaderas podrá resultar efectiva para la captura de
ejemplares de otros vertebrados (ej. aves en fase juvenil, aves con escasa movilidad,
galápagos, etc.). Estos serán utilizados por los operarios en momentos o zonas
específicas de cada recinto de dragado en función de la necesidad concreta.
D) Conflictos
La efectividad de esta metodología se verá afectada por el tipo de sustrato sobre el que
se realice el arrastre. Es recomendable su utilización en zonas libres de guijarros, raíces,
troncos y ramas sumergidas que impidan o dificulten la operación de arrastre. También
la densidad de fangos en los recintos de trabajo puede dificultar la operación.
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PESCA ELÉCTRICA
A) Descripción
El fundamento de la pesca eléctrica consiste en crear un campo eléctrico dentro la
masa de agua de manera que los peces que se encuentran dentro de éste se vean
forzados a nadar hacia el ánodo (galvanotaxia), y una vez próximos sufran una
relajación muscular y una pérdida de sentido (galvanonarcosis), lo que facilita su
captura.
La realización de la pesca eléctrica requiere tener en cuenta aspectos de seguridad en
la manipulación de los equipos y procedimientos. Descripción en apartado 6.6.
B) Preparación del equipo y organización de la extracción
El primer paso consiste en la toma de medidas de conductividad y temperatura del
agua para determinar la intensidad a la que debe operar el convertidor/transformador
de corriente (en aguas de baja conductividad es necesaria mayor intensidad).
A continuación, se procederá al montaje y conexión de los componentes estáticos del
equipo de pesca eléctrica, teniendo presente que el generador y el convertidor se
situarán en el dique longitudinal en una localización adecuada que permita actuar tanto
aguas arriba como aguas abajo, abarcando la máxima superficie posible. En función de
la extensión del recinto de dragado, habrá que realizar desplazamientos de los
componentes estáticos para poder abarcar la totalidad del recinto. Previo a la conexión
de componentes deberá desplegarse la pértiga (ánodo) en la orilla del recinto con un
cable suficientemente largo que facilite la progresión de la pesca en el mismo. El
cátodo debe quedar ubicado en un punto intermedio de la superficie de pesca para
limitar las fluctuaciones de la intensidad de corriente.
Los contenedores para los ejemplares capturados se dispondrán a lo largo del dique
longitudinal, próximos a la orilla, con agua lo más limpia posible y en zona sombreada
siempre que sea posible. Cuando sea usada embarcación, ésta también debe disponer
de contenedores para las capturas.
B) Procedimiento de Pesca eléctrica en zonas vadeables
El equipo de trabajo estará compuesto por, al menos, cuatro operarios adecuadamente
equipados con vadeadores y guantes aislantes (alta tensión), portando uno de ellos el
ánodo. La acción de este operario contará con la ayuda de otros dos que colaborarán
en el proceso de captura y manipulación de ejemplares. Para ello, dispondrán cada uno
de una sacadera de mano (luz de malla de 5 mm máximo) y un recipiente óptimo para
el transporte de los peces. El cuarto operario será el encargado de las misiones
auxiliares relativas a la seguridad y manipulación de los equipos (ej. desconexión
inmediata en caso de accidente, etc.).
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Se realizarán barridos con el ánodo y desplazamientos suaves abarcando cuadrantes de
pesca y la totalidad de hábitats en el ancho fluvial. En función de la fase de actuación,
evacuación de la fauna antes del cierre de los recintos o en la revisión y rescate de
ejemplares atrapados en los recintos, los cuadrantes de pesca se ajustarán a las
necesidades de actuación del cada recinto. En zonas de difícil acceso por fangos, los
barridos de pesca se desarrollarán con ayuda de embarcación con los criterios descritos
en el apartado referente a zonas no vadeables.
Es recomendable trabajar con voltajes inferiores a los 400-500 V e intensidades no
superiores a 2 A. No obstante estos parámetros serán ajustados en función de la
conductividad y temperatura del agua.
Fotografía 1.3: Algunos componentes del equipo de pesca eléctrica; generador,
convertidor/transformador y bobina de cable conectada a salabre (Fotografía: Dpto.
Zoología y Antropología Física).
D) Pesca eléctrica desde embarcación en zonas no vadeables
La embarcación debe incluir contenedores para los peces y asegurar la operatividad del
personal encargado de realizar la pesca. Se recomienda que sean tres operarios los que
realicen su actividad desde la embarcación, uno de ellos portando el ánodo, otro
provisto de sacadera para captura y manejo de ejemplares y un tercero para maniobrar
la embarcación. Otro operario debe estar siempre próximo a los componentes estáticos
del equipo (generador y transformador) y estará encargado de las misiones auxiliares
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relativas a la seguridad y manipulación de los equipos (ej. desconexión inmediata en
caso de accidente, etc.).
Las actuaciones de barrido serán similares a las descritas en el apartado sobre zonas
vadeables. El movimiento de la embarcación podrá controlarse, si es necesario,
mediante cuerdas desde la orilla. Es necesario que la embarcación esté preparada para
la realización de la pesca y el operario portador del ánodo debe evitar totalmente el
contacto con material metálico de la propia embarcación.
Los peces capturados se depositarán en primer lugar en los contenedores de la
embarcación y se mantendrán en estos evitando densidades excesivas que puedan
conllevar la muerte de los ejemplares por asfixia. Para ello ser realizará de forma
periódica el trasvase de ejemplares a los contenedores situados en la orilla o viveros
sumergidos convenientemente alejados de la zona de pesca.
C) Conflictos
La eficacia de esta metodología puede verse reducida significativamente si la
conductividad del agua es muy elevada (> 1500 µS/cm), así como si ésta presenta una
gran turbidez que dificulte la detección visual y captura de los ejemplares. Además, la
efectividad sobre ejemplares de talla pequeña (< 10 cm) podría ser inferior respecto a
los ejemplares de mayor talla.
Fotografía 1.4: Muestreo con pesca eléctrica. (Fotografía TAXON)
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TRAMPAS
A) Descripción
El uso de estas trampas es opcional en función de la efectividad obtenida en los pasos
previos y de las condiciones del medio. Por ello será necesario elegir el modelo y diseño
óptimo en función de las especies a capturar y el tipo de ambiente, con el fin de
optimizar el esfuerzo.
• Trampas tipo minnow y nasas: El uso de estas metodologías está
recomendado para zonas litorales poco profundas y de escasa corriente, y
permiten la captura de peces de talla pequeña (< 15 cm de longitud), así como
la captura de otros vertebrados acuáticos objetivo de la extracción,
principalmente herpetofauna (ej. galápagos y culebra de agua). Es
recomendable dejar siempre una parte de la trampa fuera del agua para evitar
la muerte de herpetofauna por ahogamiento. Es recomendable su utilización
durante un periodo de captura de 12 a 24 horas.
• Trampas flotantes: Son específicas para los galápagos. Consisten en un
bastidor de tubo de PVC al que envuelve una red en forma de bolsa. La parte
superior permanece abierta y es atravesada por una tabla basculante y dos
pequeñas rampas que conectan la tabla con el agua. El funcionamiento se basa
en la necesidad de termorregulación que presentan los galápagos y que les
obliga a permanecer bajo el sol hasta que adquieren una temperatura corporal
lo suficientemente alta como para comenzar su actividad. Así, las tortugas
suben a la trampa por las rampas para solearse, pero al alcanzar la tabla
basculante caen al interior de la trampa, de donde no pueden salir. Una de las
ventajas de este tipo de trampas es que la profundidad de la masa de agua no
es obstáculo para su emplazamiento siempre que se disponga de algún tipo de
embarcación para su colocación y revisión. Otra ventaja es que debido a su gran
selectividad el intervalo de revisión no es tan importante como con las nasas.
Generalmente se revisan semanalmente en la época de mayor actividad de los
galápagos y cada 15 días o mensualmente, el resto del año.
• Trampas con cebo: También específicas para galápagos. Se trata de otro
modelo de trampa flotante consistente en un bastidor de forma de caja,
completamente recubierto de malla plástica que impide que las capturas
puedan escapar. La parte superior posee una plancha de poliestireno extruido,
que permite que la trampa se mantenga en la superficie, provista de una
abertura que permite a la fauna respirar. En dos extremos opuestos de la caja
existen sendas aberturas con embudos de red que permiten a la fauna entrar,
pero impide que pueda salir. En el interior de la trampa debe colocarse un cebo,
generalmente pescado, que sirva de reclamo para que las tortugas se
PROTOCOLO DE EXTRACCIÓN Y TRANSLOCACIÓN DE FAUNA ACUÁTICA 13
introduzcan en la trampa. La efectividad de estas trampas es alta mientras
permanezca el cebo en su interior, pero al terminarse éste, pierde
completamente su efecto, por lo que las revisiones deben realizarse con una
frecuencia de 4-5 días.
B) Preparación del equipo y organización de la extracción
Previamente a la instalación de las trampas y/o nasas debe confirmarse que se
encuentran en buen estado, es decir, que no presentan roturas en la malla y que
dispongan de su correspondiente sujeción y etiquetado. Podrán cebarse o no.
C) Procedimiento con trampas en recintos cerrados
El procedimiento de extracción y control de fauna con trampas pasivas puede utilizarse
tanto en la fase de evacuación previa al cierre de los recintos, como en la fase posterior
al cierre con redes de dichos recintos. Podrá ser recomendable su colocación posterior a
la aplicación de los procedimientos con redes activas y pesca eléctrica en la
evacuación.
En general para la captura de peces, las trampas pasivas se instalan al atardecer y se
revisan a primera hora de la mañana. No obstante, en función del objetivo de captura
en los recintos (ej. galápagos) o de las características del recinto de trabajo, el tiempo
de pesca podrá ser variable. Es recomendable un periodo de captura mínimo de 12 a
24 horas.
El número de trampas a utilizar por recinto de trabajo será adecuado en función de sus
características. Es recomendable la utilización de un número aproximado a las 15
trampas por recinto.
Es recomendable dejar siempre una parte de la trampa fuera del agua para evitar la
muerte por ahogamiento de otros vertebrados acuáticos diferentes a los peces (ej.
herpetofauna). También para la captura de galápagos puede ser recomendable el
cebado.
Procedimiento opcional con trampas en tramo de ejecución de obra
El procedimiento de extracción y control de fauna con trampas pasivas también podrá
utilizarse en zonas externas a los recintos de dragado durante la ejecución completa de
la obra. En estos casos, el objetivo principal será la reducción de densidades del tramo
de obra de vertebrados acuáticos diferentes a los peces, principalmente herpetofauna.
La aplicación de este procedimiento será evaluada en función de las primeras
actuaciones en los recintos.
Serán utilizadas trampa pasivas óptimas para la herpetofauna. Es recomendable dejar
siempre una parte de estas trampas fuera del agua para evitar la muerte por
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ahogamiento de estos vertebrados. También para la captura de galápagos puede ser
recomendable el cebado.
C) Conflictos
La efectividad de esta metodología puede verse reducida si las entradas quedan
obstruidas por acúmulos de hojas y/o raíces. También si quedan parcialmente
enterradas en el sustrato si este presenta consistencia limosa, como es el caso de la
zona de trabajo.
Fotografía 1.5: Uso de nasas, derecha detalle de la nasa izquierda ejemplo de su colocación en el medio
((Fotografías: Dpto. Zoología y Antropología Física).
1.8. PROTOCOLOS DE MANEJO Y TRANSLOCACIÓN DE
EJEMPLARES
1.8.1. GENERALIDADES
PECES
Los ejemplares capturados mediante las distintas metodologías se depositan
inicialmente en viveros ubicados directamente en el agua o contenedores de plástico
asegurando una oxigenación adecuada.
Para la manipulación puede ser conveniente el uso de un producto anestésico que los
relaje y facilite el trabajo. No obstante, esto será dependiente del tipo y tiempo de
manipulación pues es muy importante controlar el tiempo de exposición al anestésico.
Los ejemplares deberán ser identificados a nivel de especie, clasificados y separados en
función de su carácter exótico o autóctono. La identificación se realizará “in situ”
mediante la observación de caracteres morfológicos externos. Si existen dudas en la
identificación de alguna especie o ejemplar, se conservarán algunos individuos para su
posterior análisis en el laboratorio.
PROTOCOLO DE EXTRACCIÓN Y TRANSLOCACIÓN DE FAUNA ACUÁTICA 15
Los ejemplares identificados de las especies de peces nativos [barbo gitano
(Luciobarbus sclateri) y anguila (Anguilla anguilla)[ y de especies pescables
consideradas no nocivas por el Servicio de Biodiversidad Caza y Pesca fluvial [carpa
común (Cyprinus carpio) y boga del tajo (Pseudochondrostoma polylepis)] serán
evaluados en relación a su estado sanitario y translocados a localidades consensuadas
con dicho Servicio.
El traslado se realizará en contenedores con agua fresca y oxigenada con una tasa de
carga o capacidad de transporte evaluada en función del tamaño de los ejemplares,
temperatura y duración del transporte. Se utilizará agua del mismo río para rellenar los
contenedores, siempre y cuando no presente un exceso de sedimentos o sólidos en
suspensión. El transporte de los ejemplares debe realizarse preferiblemente en aguas
que se encuentren en el rango de 15ºC a 20ºC. La aclimatación a los contenedores de
transporte debe hacerse de forma gradual. Deberá vigilarse periódicamente el estado
de dichos ejemplares y en época estival puede resultar conveniente enfriar el agua
mediante barras refrigerantes, manteniendo una temperatura no superior a la indicada.
El traslado debe efectuarse el mismo día de recogida para reducir el tiempo de
permanencia en contenedores. Los contenedores deben presentan un sistema de
suministro de oxígeno mediante difusores. El oxígeno disuelto es dependiente del
tamaño de los peces, especie, temperatura del agua y nivel de actividad de los peces.
Los peces con niveles de stress elevado van a consumir más OD. El stock de transporte
puede sufrir pérdidas con niveles de oxígeno disuelto inferiores a 5 mg/l.
Los individuos se deben mantener tranquilos durante el transporte. Es conveniente que
se mantengan a oscuras, a salvo de ruidos repentinos y movimientos bruscos. La tasa
de carga o capacidad de transporte será evaluada en función del tamaño de los
ejemplares, temperatura y duración del transporte.
Los individuos transportados se aclimatarán gradualmente al agua en la que van a ser
liberados. Para ello es conveniente su traslado a un vivero ubicado en el cauce fluvial
antes de la suelta hasta observar una natación y respiración normales. En el caso de
existir una notable diferencia en las condiciones ambientales (ej. conductividad o
temperatura) puede procederse a la sustitución progresiva del agua del tanque de
transporte por agua del medio receptor para evitar un choque térmico y el consiguiente
aturdimiento.
Los ejemplares identificados de las especies de peces exóticas [ejemplos: pez sol
(Lepomis gibbosus), lucioperca (Sander lucioperca), alburno (Alburnus alburnus),
gambusia (Gambusia holbrooki), etc.] consideradas nocivas por el Servicio de
Biodiversidad Caza y Pesca fluvial serán gestionadas de acuerdo con las actuaciones
especificadas en el protocolo de gestión de fauna exótica. Dicho Servicio no autoriza la
devolución al medio acuático de ejemplares de estas especies y, en consecuencia,
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serán sacrificadas y gestionadas como SANDACH.
OTROS VERTEBRADOS
Los ejemplares identificados de especies de galápagos nativos [galápago leproso
(Mauremys leprosa)] serán evaluados en relación a su estado sanitario y translocados a
localidades consensuadas con dicho el Servicio de Biodiversidad Caza y Pesca fluvial.
En el caso de detectar ejemplares heridos o hembras grávidas se entregarán al Centro
de Recuperación de Fauna del Valle.
Los ejemplares identificados de especies de galápagos exóticos (ejemplos: galápago de
Florida (Trachemys scripta elegans), tortuga de orejas amarillas (Trachemys scripta
scripta), Graptemys sp., Pseudemys sp., etc.] consideradas nocivas por el Servicio de
Biodiversidad Caza y Pesca fluvial serán gestionadas de acuerdo con las actuaciones
especificadas en el protocolo de gestión de fauna exótica. Dicho Servicio no autoriza la
devolución al medio acuático de ejemplares de estas especies y, en consecuencia,
serán sacrificadas y gestionadas como SANDACH.
Los ejemplares identificados de otros vertebrados nativos [ejemplos: culebra viperina
(Natrix natrix), anfibios, aves acuáticas, etc.] serán liberados en puntos próximos al
punto de captura, siempre fuera del recinto de dragado y en zonas con efectos futuros
mínimos durante la ejecución de la obra.
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Fotografía 1.6: Ejemplar de galápago leproso (Mauremys leprosa) , especie nativa de la zona de trabajo
(Fotografía: Dpto. Zoología y Antropología Física).
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1.8.2. SELECCIÓN DE PUNTOS DE SUELTA Y LIBERACIÓN
La translocación de los ejemplares debe ser previamente comunicada a la
administración, en el caso de la CARM el Servicio de Biodiversidad Caza y Pesca fluvial,
al que debe solicitarse permiso de pesca y translocación.
De acuerdo a las indicaciones de este Servicio, los ejemplares de fauna íctica autóctona
capturados pueden ser liberados en la zona de la Contraparada. En el caso de los
galápagos leprosos la translocación puede ser en el tramo superior de la zona de
actuación, con límite máximo en Archena por tener una calidad de aguas
prácticamente similar.
Para los galápagos se seleccionarán localidades que presenten condiciones de hábitat
adecuadas no sólo en relación al medio acuático, sino también a las orillas, presencia
de soleaderos (playazos, rocas, etc.), tramos arenosos que faciliten la excavación de
nidos, y vegetación que faciliten su ocultación.
1.8.3. CONTROL SANITARIO
Antes de efectuar la liberación de los ejemplares, una muestra representativa de éstos
deberá ser sometida a un control sanitario por técnico competente para determinar la
carga parasitaria, presencia de enfermedades potencialmente contagiosas y caso de
detectarse alguna de las Enfermedades de Declaración Obligatoria comunicarlo a las
autoridades. En caso de existir riesgo de transmisión de nuevas enfermedades deberá
procederse al sacrificio de los ejemplares capturados.
Las bajas accidentales acontecidas durante la pesca, manipulación y traslado, así como
los ejemplares sacrificados serán gestionadas como residuos SANDACH.
1.8.4. ANESTÉSICOS
Para facilitar el trabajo y evitar que los ejemplares se autolesionen durante la
manipulación puede ser aconsejable el uso de un anestésico. Los anestésicos de peces
más utilizados con resultados satisfactorios son: Tricaina-metano-sulfonato
(denominado MS-222) o bien el aceite esencial de clavo de olor (euglenol). El producto
se añade a los depósitos de agua en la cantidad adecuada (por ejemplo, unos 10-30
mg/L en el caso de MS-222).
1.8.5. FAUNA EXÓTICA
La gestión de estas especies es objeto de un protocolo específico que debe ser
consultado para su manipulación.
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1.9. CONDICIONES DE SEGURIDAD
En este punto se relacionan las medidas de seguridad que deben aplicar los operarios
durante los procedimientos descritos.
Evitar la realización de los procedimientos en zonas peligrosas y con situaciones
ambientales desfavorables. Las condiciones de luz durante los procedimientos deben
ser tales que aseguren la detección de cualquier contingencia, una buena
caracterización visual del entorno, no recomendándose continuar con la toma cuando
sea necesario el empleo de luz artificial. Así mismo, es conveniente tener en cuenta las
condiciones meteorológicas con el fin de garantizar la seguridad del personal y equipos.
El personal operario evaluara las condiciones del recinto para realizar los
procedimientos bien vadeando o trabajando desde embarcación. La embarcación
estará debidamente equipada con las medidas de seguridad correspondientes
(chalecos salvavidas, radioteléfono, etc.). Así mismo el propio personal utilizará la
vestimenta adecuada a las condiciones imperantes (vadeador, botas de agua, traje de
agua, etc).
Para evitar intoxicaciones accidentales durante la manipulación de ejemplares, los
tomadores de muestra usarán guantes desechables y el vestuario adecuado para su
protección. Si se sospecha de la presencia de enfermedades de declaración obligatoria
deberán emplear trajes de bioseguridad desechables. En cuanto a normas de higiene
personal a observar, se puede citar la necesidad de lavarse adecuadamente tras una
toma de muestras, y antes de realizar otras actividades que puedan facilitar la
intoxicación accidental (beber, comer, contacto con mucosas, etc.).
1.9.1. Seguridad pesca eléctrica
Cabe señalar que, siempre y cuando se desarrolle con cierta precaución, la pesca
eléctrica no supone peligro alguno. Sin embargo, existen ciertas premisas que todo
operario debe conocer y tener en cuenta al hacer uso de esta técnica:
• Es muy recomendable aplicar esta metodología con el asesoramiento y
supervisión de expertos en la materia.
• Trabajar con botas y guantes en buen estado. Llevar recambios por si se
producen roturas.
• Comprobar previamente todo el equipo y revisar que los cables estén en
perfecto estado.
• Graduar el tipo de corriente y la intensidad en función de la conductividad del
agua, para evitar la electrocución de los peces. Se recomienda trabajar con
voltajes entre 200-400 V e intensidades inferiores a 2 A.
PROTOCOLO DE EXTRACCIÓN Y TRANSLOCACIÓN DE FAUNA ACUÁTICA 19
• Es conveniente que un operario esté siempre próximo al generador y al
transformador, para desconectarlo inmediatamente en caso de que se produzca
algún accidente, o bien para regular o modificar la intensidad y voltaje,
respectivamente.
• Realizar la pesca siempre aguas arriba, evitando en la medida de lo posible
enturbiar el agua ya que esto dificulta la captura de los peces.
1.9.2. Pesca eléctrica desde embarcaciones
• El generador se fijará a la embarcación de forma que se evite su balanceo .
• Se dispondrá de une extintor a bordo.
• El personal dispondrá de chalecos salvavidas en todo el tiempo.
1.10. ARCHIVO DE DOCUMENTOS Y REGISTROS
El Responsable Técnico de Muestreo es responsable de la guarda y custodia de los
diferentes documentos y registros asociados a la toma de muestra. Se elaborará una
ficha de registro del procedimiento de extracción y control por recinto de trabajo.
1.11. REFERENCIA A PROCEDIMIENTOS O INSTRUCCIONES
• Protocolo de gestión de fauna exótica.
• Protocolo de Gestión de Residuos biológicos (SANDACH)
• UNE-EN14011:2003. Calidad del agua. Muestreo de peces con electricidad.
• UNE-EN 14757:2006. Calidad del Agua. Muestreo de peces con redes de agalla
con diferente luz de malla
• EN 14962:2004 Directrices para el campo de aplicación y selección de métodos
de muestreo de peces
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1.12. ANEXO- FLUJO DE TRABAJO
PROTOCOLO DE EXTRACCIÓN Y TRANSLOCACIÓN DE FAUNA ACUÁTICA / Protocolo extracción y translocación fauna acuática / DT2014/016
CREACIÓN DEL RECINTO DE DRAGADO
EVACUACIÓN FAUNA ACUÁTICA1:
1)REDES ACTIVAS2) PESCA ELÉCTRICA
CONTROL Y EXTRACCION DE FAUNA ACUÁTICA1:
1) REDES ACTIVAS2)PESCA ELÉCTRICA3) TRAMPAS PASIVAS
CERRADO CON REDES DEL RECINTO
DESAGÜE Y CERRADO DEFINITIVO RECINTOS
REVISIÓN Y RESCATE DE EJEMPLARES ATRAPADOS
IDENTIFICACIÓN EJEMPLARES CAPTURADOS
DRAGADO DEL RECINTO
REVISIÓN ESTADO SANITARIO
ANESTESIADO Y SACRIFICIO
(PROTOCOLO DE GESTIÓN DE EXÓTICAS)
(Autóctona)
(Exótica)
(LibreEfermedadescontagiosas) TRASLADO Y
SUELTA EN OTRA LOCALIDAD DEL MISMO TRAMO
GESTIÓN COMO SANDACH
(PROTOCOLO DE GESTIÓN DE RESIDUOS)
TRASLADO Y SUELTA EN OTRA LOCALIDAD DEL MISMO TRAMO
(PresenciaEfermedadescontagiosas)
CENTRO DE RECUPERACIÓN
DE FAUNAHembrás grávidasEjemplares heridos
(galápagos)
(1Procedimientos complementarios)
22
2. PROTOCOLO DE VIGILANCIAAMBIENTAL Y GESTIÓN DEMORTANDADES
2.1. OBJETIVO
El presente procedimiento tiene por objeto describir la metodología seguida por el
personal de TAXON Estudios Ambientales, S.L., en el proceso de retirada y gestión de
ejemplares, toma de muestras biológicas y análisis de aguas en episodios de
mortandad de fauna piscícola. Este Protocolo de Trabajo Normalizado cubre la retirada,
manipulación y gestión de los cadáveres, así como la toma de muestras para la
realización de análisis toxicológicos, patológicos o histopatológicos concretos, y el
manejo de las muestras desde su toma hasta su llegada al laboratorio.
Este protocolo se realiza para su aplicación en el contexto de las obras de Restauración
Ambiental del Río Segura en la Ciudad de Murcia promovidas por la Confederación
Hidrográfica del Segura y adjudicadas a Ferrovial Agromán S.L.
2.2. ALCANCE
El procedimiento tiene como objetivo definir las directrices metodológicas que permitan
la retirada de fauna y toma de muestras de ejemplares de peces y muestras de agua
ante la aparición de episodios de mortandad en tramos del río Segura en el contexto
del desarrollo del “Proyecto de Recuperación Ambiental del Río Segura en la ciudad de
Murcia”.
Abarca los siguientes temas:
• Identificación del equipo y metodología.
• Procedimiento con retirada de cadáveres y toma de muestras.
• Manipulación y gestión de ejemplares.
• Control de la calidad y seguridad en el procedimiento.
2.3. DOCUMENTACIÓN DE REFERENCIA
• Protocolo de Toma de Muestras y Envío al Laboratorio en Peces. Dirección
General de Recursos Agrícolas y Ganaderos. Secretaría General de Agricultura y
Alimentación. Ministerio de Medio Ambiente, Medio Rural y Marino.
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• Field Manual for the Investigation of Fish Kills. U.S. Fish & Wildlife Serv. Res. Publ.
No. 177, Washington, D.C.
• Collection and Submission of Samples for Fish-Kill Investigation and Toxic-
Substance Analysis. Pierce II R.A, May T.W., Hicks Ch.E. University of Missouri
Extension, 2011.
• Real decreto 1528/2012, de 8 de noviembre, por el que se establecen las
normas aplicables a los subproductos animales y los productos derivados no
destinados al consumo humano.
• El Reglamento (CE) Nº 1069/2009 , del Parlamento Europeo y del Consejo y el
Reglamento (UE) Nº 142/2011, de la Comisión, constituyen desde el 4 de marzo
de 2011 el marco legal comunitario aplicable a los subproductos animales no
destinados al consumo humano y los productos derivados de los mismos,
(SANDACH).
2.4. DEFINICIONES
Cadena de Custodia: Documento/s asociado/s de forma inseparable a la
muestra desde el momento de su toma hasta su eliminación, quedando en el
mismo registrados los responsables de cada uno de los procesos al tiempo que
van desarrollándose éstos.
Gestor SANCDACH autorizado: Establecimientos autorizados en toda la UE
para la gestión de los distintos subproductos de origen animal no destinados al
consumo humano.
Muestra: Cantidad representativa (propiedades de la muestra idénticas a la de
la población) y estable (propiedades de la muestra inalterables desde su
obtención hasta la realización del ensayo), subconjunto de una población, que
se obtiene para determinar en ella los valores de ciertas propiedades, que
posteriormente se utilizan para realizar inferencias respecto a las propiedades
de la población de la que se obtiene la muestra.
Muestra puntual: Muestra discreta tomada de un agua en función del
momento y/o del emplazamiento. Se trata de una muestra obtenida usando una
botella hidrográfica, una bomba o un balde.
Muestras replicadas: Serie de muestras tomadas de forma simultánea, en el
mismo punto de muestreo y siguiendo el mismo procedimiento, tomadas para
recoger la variabilidad natural del punto de muestreo.
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Muestra compuesta: Dos o más muestras o submuestras de un mismo sitio,
mezcladas en proporciones adecuadas (discreta o continuamente), que
analizadas como una muestra única, a partir de la cual se puede obtener el valor
medio de la característica deseada del punto muestreado.
Muestreador o tomamuestras: Conjunto de dispositivos empleados para
obtener una muestra de agua (Botellas hidrográficas, bombas de succión, balde,
etc.).
Punto de toma de muestra: Estación de muestreo, lugar preciso desde el que
se obtiene la muestra representativa del agua a valorar. Vendrá definida al
menos por su posición geográfica (coordenadas UTM) y profundidad.
Punto de referencia o control: Punto de toma de muestra seleccionado para
representar las condiciones ambientales naturales de un área determinada.
Punto de impacto: Punto de toma de muestra seleccionado para representar
las condiciones ambientales alteradas por efecto de actividades humanas en un
área determinada.
SANDACH: Acrónimo de Subproducto Animal No Destinado Al Consumo
Humano.
Submuestra: Cantidad representativa y estable que se obtiene de una muestra
homogénea. Cada uno de los envases de que se compone una muestra puntual.
Parte alícuota de una muestra.
Toma de muestra. proceso de obtención de la muestra a ensayar con el
objetivo de asegurar la validez del resultado evitando errores debidos a
contaminación, degradación, etc. de las muestras a ensayar.
2.5. RESPONSABILIDADES
La decisión de iniciar una campaña de recogida y/o investigación de mortandades es
responsabilidad del Coordinador del Trabajo quien previamente se coordinará con el
Director de Obra.
El técnico encargado de la vigilancia y prevención de mortandades es responsable de la
viglancia y detección de mortandades en el río. También es responsable de las recibir
alertas ciudadanas que se reciban a través de los cauces publicitados en las campaña
informativa y página web ( teléfono, mail o web). Actúa bajo la supervisión del RTM pero
debe comunicar al Coordinador de Proyecto las incidencias detectadas.
PROTOCOLO DE VIGILANCIA AMBIENTAL Y GESTIÓN DE MORTANDADES 25
El Responsable Técnico de Muestreo de TAXON Estudios Ambientales, S.L. debe
coordinar el muestreo en el campo según las instrucciones del Coordinador del
Laboratorio. Debe instruir al equipo de muestreo sobre los objetivos y requerimientos
del trabajo antes de llegar al área de trabajo. Así mismo será responsable de
cumplimentar todos los documentos relacionados con la recogida y gestión, así como
de informar al coordinador del proyecto y del laboratorio de todas las incidencias
ocurridas durante la toma de muestra (observaciones, localización, desviaciones, etc.).
Todo el personal del Área de Muestreo (AM) debe cumplir con los requerimientos
especificados en el Manual de Riesgos Laborales de Taxon, especialmente en relación
con las normas y equipos de seguridad en el trabajo, y el manejor de sustancias tóxicas
y peligrosas (Formol, ácidos, etc..).
Cuando las tareas de retirada de bajas requieran del uso de embaraciones, el AM debe
contar con, al menos, una persona a bordo con las titulaciones necesarias para el
patronaje de la embarcación. El resto de personal debe tener los conocimientos
necesarios de seguridad, bien porque tengan la titulación necesaria o porque hayan
sido instruidos por los técnicos de la AM.
Todo el personal de campo debe estar familiarizado con los procedimientos estándar
descritos en este documento para la recolección y el procesamiento de aguas, incluídas
aquellas que requieren tratamientos especiales.
El técnico encargado de realizar la toma de muestra será el responsable también de su
conservación, transporte y custodia desde el momento de la toma hasta su entrega en
el Laboratorio.
También será responsable de la comprobación y mantenimiento de todo el equipo
necesario para la toma de muestra, garantizando su disponibilidad. En el caso de los
equipos portátiles para la determinación de parámetros in situ (sondas
multiparamétricas, etc.) se encargará de su mantenimiento, verificación y calibración
según figura en las correspondientes Instrucciones Técnicas.
2.6. EQUIPAMIENTOS Y TOMA DE MUESTRAS
El equipamiento básico para la retirada de ejemplares y la realización de la toma de
muestra se compone tanto de los equipos mínimos necesarios para la toma de
ejemplares, como de los envases y diverso material auxiliar necesario para las
muestras biológicas y de aguas.
2.6.1. Material general
En este apartado se describe de forma resumida el material auxiliar necesario para la
toma de muestras:
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• Equipos de protección individual (EPIs).
• Medio de transporte con capacidad de almacenamiento de material y
contenedores de fauna.
• Sacaderas o salabres.
• Embarcación adecuada a las condiciones de los recintos de trabajo.
• Salvavidas (embarcaciones y aguas vadeables profundas).
• Contenedores.
• Red de arrastre de longitud adecuada.
• Arnés, cuerda de seguridad, elementos de amarre y mosquetones.
• Gafas de seguridad, botas de seguridad, guantes desechables.
• Botas altas o vadeador, guantes de goma, traje de agua.
• Pértiga, embudo y recipiente muestreador.
• Mascarillas y media máscara con filtros.
• Botiquín.
2.6.2. Material vario
• Cámara fotográfica, GPS, sonda de profundidad, teléfono portátil.
• Sondas multiparamétricas.
• Registros para la toma de muestra.
• Material para identificar muestras (bolígrafo, lápiz, rotulador indeleble,
pegatinas, etc.).
• Envases para las muestras, embudos, bolsas de plástico fuerte, frascos
lavadores, etc.
• Recipientes aislantes, neveras, hielo, acumuladores de frío, etc.
2.6.3. Envases
Para la toma de cadáveres de peces se deben utilizar contenedores y bolsas de
plástico.
• Contenedores. El contenedor debe ser estanco, de forma que no sea posible la
pérdida de líquidos, permaneciendo la tapa constantemente cerrada. Debe tener
una capacidad adecuada en función de la cantidad de cadáveres detectados en
PROTOCOLO DE VIGILANCIA AMBIENTAL Y GESTIÓN DE MORTANDADES 27
cada mortandad y la frecuencia de recogida. Además, se procederá a un manejo
adecuado del mismo, es decir, es imprescindible que todos los cadáveres estén
dentro del contenedor y no alrededor del mismo. Una frecuencia de recogida
alta puede facilitar que no se produzca esta práctica, por ello ésta debe ser
como máximo cada 48 horas. Es importante precisar su localización.
• Bolsas de plástico. Cuando la retirada de los SANDACH no es inmediata
resulta conveniente la utilización de bolsas de plástico, desechables, resistentes
y de cierre seguro para evitar problemas de bioseguridad y malos olores. Las
bolsas a su vez deben deposistarse en el contenedor o punto de recogida, se
procede al vaciado de la bolsa en el camión y se almacenan las bolsas de
plástico utilizadas para su posterior destrucción y evitar de esta forma su
reutilización.
Para la toma de muestras de agua se recomienda el empleo de envases nuevos de
vidrio topacio (dada la naturaleza orgánica de muchos tóxicos, su rápida degradación
con la luz solar, así como la posible presencia de metales pesados).
2.6.4. Equipos
Equipos para la toma de muestras de agua
Los equipos que se utilicen serán función de los parámetros a determinar, y se hallarán
comprendidos en los siguientes:
• Directamente mediante la botella o recipiente que se va a enviar al laboratorio.
• Contenedor metálico o de plástico (cubo) y sistema de sujeción (cabos, cadena,
etc.) que permita el manejo desde altura (especialmente útil en arquetas).
Equipos para la determinación de parámetros in situ
Se dispone de los siguientes equipos para la medida de parámetros in situ:
• Medidores portátiles o sistemas multiparamétricos portátiles para la
determinación de pH, conductividad, oxígeno disuelto, temperatura, salinidad,
potencial redox, etc. (ver sus correspondientes Instrucciones de Trabajo).
• Disco de Secchi
2.7. PROTOCOLOS
2.7.1. generalidades
El objetivo de la gestión de mortandades consiste en la aplicación de metodologías que
permitan la retirada de cadáveres de fauna del medio acuático y su posterior gestión
como residuo.
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La gestión de cadáveres está regulada a través del Real Decreto 1528/2012, de 8 de
noviembre, por el que se establecen las normas aplicables a los subproductos animales
y los productos derivados no destinados al consumo humano (SANDACH), cuyo objetivo
es garantizar que, durante su gestión, no se generan riesgos para la salud humana, la
sanidad animal o el medio ambiente y especialmente para garantizar la seguridad de la
cadena alimentaria humana y animal. El transporte y gestión de este tipo de residuos
sólo puede ser realizado por empresas autorizadas y registradas.
Cualquier tratamiento de los cadáveres diferente a los aplicables a subproductos
SANDACH serán consensuados previamente con el Servicio de Biodiversidad Caza y
Pesca Fluvial de la CARM, siempre de acuerdo con la normativa existente.
De forma complementaría se realizarán las tomas de muestras biológicas y de aguas
necesarias para investigar sobre las posibles causas de mortandad. Esta toma de
muestras se debe llevar a cabo con máximo cuidado dada la posible presencia de
tóxicos en el agua, así como por la presencia y manipulación de animales muertos.
El personal del Área de Muestreo de Taxon es el encargado de la recolección de
muestras, su procesamiento y transporte hasta el laboratorio. La muestra de agua debe
ser homogénea y representativa, no deben modificarse sus características, desde la
propia toma hasta que se haya concluido su análisis.
2.7.2. VIGILANCIA Y PREVENCIÓN DE MORTANDADES
El técnico encargado de la vigilancia e inspección (TVI) realiza diariamente (lunes a
viernes) y durante el periodo de dragado un recorrido del curso del río tanto aguas
arriba de la zona de actuación (hasta el azud del Malecón), como aguas abajo (al
menos dos kilómetros), prolongando este recorrido en función de criterios “de visu”
como la turbidez, hallazgos previos, etc. cuanto sea preciso para incluir toda el posible
área de afección. Las primeras inspecciones permitirán acotar más precisamente este
tramo.
También revisará diariamente los comunicados de ciudadanos sobre hallazgos o
episodios de mortandad vía teléfono, mail o página web., Estará encargado informar y
responder a las cuestiones planteadas por éstos.
Comprobará la disposición de barreras antiturbidez durante las fases de generación de
sólidos en suspensión, y la no disminución del caudal del río a unos niveles que
comprometan la supervivencia de la fauna.
Como apoyo para su labor irá equipado de una sonda de conductividad y temperatura,
cámara fotográfica y dispositivos GPS. Así como con el material portátil necesario para
una investigación preliminar, la recogida de ejemplares muertos y la toma de muestras
de tejidos y agua.
PROTOCOLO DE VIGILANCIA AMBIENTAL Y GESTIÓN DE MORTANDADES 29
Rellenará diariamente un parte inspección y, en caso de localizar un episodio de
mortandad, el parte incluirá también los siguientes aspectos que facilitarán una
primera valoración del episodio:
Sobre la fecha del evento y tramo afectado:
• Datos de identificación del punto de toma (localidad, coordenadas, etc.).
• Tipo de muestras (matriz y procedencia).
• Datos cronológicos de la toma de muestra: fecha y hora.
• Identificación del operario que toma la muestra.
• Metodología de la toma de muestras y técnica de conservación aplicada.
• Descripción del entorno del punto de toma de muestra (vertidos, residuos
urbanos/industriales, ganado, etc.) y de las condiciones meteorológicas.
• Apreciaciones visuales (presencia/ausencia de espumas, residuos flotantes,
hidrocarburos, aspecto, etc.).
• Determinaciones in situ mediante equipos portátiles.
Sobre las características f/q
Determinaciones realizadas mediante examen visual:
• Presencia/ausencia de espumas.
• Presencia/ausencia de residuos flotantes.
• Presencia/ausencia de hidrocarburos visibles.
• Transparencia (m). Mediante el uso del disco de Secchi.
Determinaciones efectuadas mediante equipos portátiles:
• Temperatura.
• pH.
• Conductividad.
• Oxígeno disuelto
Sobre la gravedad del episodio
• Número aproximado de peces afectados,
• Localización de los ejemplares muertos,
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• Comportamiento de ejemplares vivos,
• Especies y estados de desarrollo afectados,
• Tramo afectado, Lo que implica la búsqueda otras posibles zonas de
retención de cadáveres.
• Cercanía a núcleos urbanos y zonas protegidas
Toda la información será reflejada en la Ficha de Campo de Toma de muestra de peces -
mortandad (FR/TX/08-11).Comunicará inmediatamente con el Coordinador del proyecto
el hallazgo de ejemplares muertos, trasladándole toda la información recogida.
El Coordinador decidirá la gravedad del episodio y la necesidad de realizar una recogida
de ejemplares. Avisará de esta necesidad al Director de Obra el cual debe dar el visto
bueno.
En caso de organizarse una campaña de investigación o recogida el TVI guiará al
equipo de muestreo de TAXON hasta la zona de recogida, Para ello localiza posibles
áreas de acceso al tramo afectado y, finalmente, colaborará en las labores de retirada
de fauna e investigación de causas.
2.7.3. RETIRADA Y GESTIÓN DE EJEMPLARES
Una vez aprobada la actuación de retirada y/o investigación de un episodio de
mortalidad de fauna acuática, ésta se ejecutará de forma individualizada para cada
punto o tramo en el que sea detectado La operación deberá realizarse con la mayor
celeridad posible, siendo recomendable actuar en un periodo de tiempo inferior a las 12
horas desde el aviso de presencia de mortandad. La secuencia de operaciones prevista
es la siguiente:
1. Acceso al tramo afectado según indicaciones del TVI.
2. Retirada de ejemplares mediante los medios extractivos más efectivos en
función de las características físicas del punto o tramo afectado, a decidir caso
por caso por el responsable técnico de muestreo de Taxon (RTM).
3. Se completará la toma de muestras bióticas y de aguas iniciada por el TVI.
4. Se vigilará y revisará el tramo afectado para asegurar que no ha quedado
atrapada fauna acuática de consideración en el mismo, y en tal caso proceder a
su retirada.
5. Los ejemplares retirados se depositarán en contenedores estancos o bolsas de
plástico y serán trasladados a los contenedores de obra de residuos SANDACH
homologados, donde se almacenarán hasta su posterior retirada por empresa
PROTOCOLO DE VIGILANCIA AMBIENTAL Y GESTIÓN DE MORTANDADES 31
autorizada.
6. Si el volumen de residuos retirado así lo requiere el RTM avisará a la empresa
gestora de residuos sandach para la disposición de contenedores adicionales, o
retirada el mismo día.
7. Se realizarán visitas de control una vez finalizada la retirada, al menos durante
los siguientes 2 días. La aparición de ejemplares muertos puede ser continua
durante las horas posteriores a la detección y retirada de cadáveres.
La retirada de ejemplares se realizará mediante los medios extractivos que resulten
más efectivos según las características del tramo afectado (profundidad, corriente,
etc.). Podrán utilizarse diferentes metodologías (extracción manual, sacaderas, redes
de arrastre, etc). La extracción se podrá realizar desde la orilla y, si fuera necesario, con
la ayuda de una embarcación que permita la retirada de los ejemplares alejados de la
misma. Los operarios irán provistos de vadeadores y guantes de protección que les
permitan manipular con seguridad los ejemplares retirados.
La descripción detallada de los procedimientos y metodologías de extracción se
detallan en el documento DT 2014/016 PROTOCOLO DE EXTRACCIÓN Y CONTROL DE
FAUNA ACUÁTICA DURANTE LAS LABORES DE RESTAURACIÓN AMBIENTAL DEL RÍO
SEGURA EN LA CIUDAD DE MURCIA.
2.7.4. protocolo de INVESTIGACIÓN
Toda mortandad detectada en la fauna acuática no ha de ser forzosamente debida a la
actuación de dragado. Habitualmente se están produciendo eventos de mortalidad
debido a otros vertidos, epidemias y/o episodios de clima extremo. Por este motivo
puede ser conveniente complementar la actuación de recogida con una investigación
sobre las posibles causas del episodio que permita determinar su origen. Para ello es
muy importante recoger la información necesaria con inmediatez, por lo que esta
actuación se plantea de forma conjunta a la retirada.
TOMA DE MUESTRAS DE AGUAS.
La obtención de una muestra implica que no debe deteriorarse o contaminarse antes
de llegar al laboratorio, para lo que se recomienda tener presente las siguientes
consideraciones:
➢ El personal que toma la muestra debe manipular el material de muestreo con
guantes de protección.
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➢ Todo el material empleado en la toma de sucesivas muestras (botellas,
embudos, recipientes de muestreo, sondas, etc.) se debe lavar cuidadosamente
entre tomas con abundante agua destilada para evitar la contaminación
provocada por los residuos de muestras anteriores.
➢ La toma de muestras de aguas se realiza llenando el recipiente hasta el máximo
volumen, evitando la presencia de cámara de aire o burbujas en el interior
(excepto en el caso de muestras que se vayan a congelar), de esta manera se
reduce la interacción con la fase gaseosa y se minimiza la agitación de la
muestra durante su transporte.
➢ Si se observa la presencia de partículas grandes o materiales groseros, tales
como hojas o detritos, se debe descartar la muestra y tomar una nueva.
➢ Al tomar la muestra, debe evitarse la contaminación procedente del lugar de
muestreo durante la toma, como por ejemplo el arrastre accidental de tierras y
lodos del fondo.
➢ Se evitará tocar la muestra con los dedos o los guantes, así como la superficie
interna de los recipientes, incluidos los tapones.
➢ Es esencial almacenar y transportar los recipientes vacíos con sus tapas
debidamente ajustadas para evitar su contaminación.
➢ Los recipientes deberán ir debidamente etiquetados.
➢ Durante el transporte los recipientes se mantendrán en posición vertical y se
introducirán en refrigeradores portátiles o en neveras rígidas con hielo lo antes
posible, debiendo permanecer refrigeradas hasta su entrega en el laboratorio.
➢ Los envases se deben enjuagar con agua de donde se va a tomar la muestra.
➢ No fumar durante la toma de muestra.
➢ En todo caso habrán de tenerse en cuenta las condiciones de seguridad.
TOMA DE MUESTRAS DE PECES.
Se recogerán dos grupos de muestra para análisis de compuestos orgánicos e
inorgánicos, respectivamente. Cada grupo estará compuesto por un número
comprendido entre 3 y 6 individuos adultos moribundos o que presenten conducta
alterada. De no encontrarse ejemplares vivos, se recogerán ejemplares que muestren
signos de muerte reciente (coloración del cuerpo característica, no pálida, apariencia
normal de mucus sin agregados, o branquias de color rojo). Si tampoco son detectados
ejemplares de muerte reciente se tomarán ejemplares a criterio del técnico.
Si se detectan ejemplares juveniles afectados se recogerán 5 ejemplares para su
análisis, aún vivos a ser posible.
TOMA MANUAL DE MUESTRAS DE AGUA
PROTOCOLO DE VIGILANCIA AMBIENTAL Y GESTIÓN DE MORTANDADES 33
Las muestras se toman directamente con el envase colector de la muestra (recipientes
sin conservante o reactivos) o bien a través de dispositivos que requieren tanto el
manejo como la presencia del técnico muestreador en el momento en que se realiza la
recogida (uso de pértiga, botellas hidrográficas, etc.). Dichos dispositivos deberán
cumplir con los mismos condicionantes de material y limpieza que los envases
empleados para el muestreo.
De igual forma que con los peces, se tomarán dos grupos de muestras:
• Análisis de compuestos orgánicos: 3 muestras en diferentes puntos del tramo
afectado. Se utilizarán envases de vidrio topacio. La muestra se tomará sin
realizar ningún enjuague o lavado en campo.
• Análisis de compuestos inorgánicos: 3 muestras en los mismos puntos que los
anteriores. Se utilizarán envases de plástico. Al tomar la muestra de forma
manual, el recipiente colector deberá lavarse, al menos, tres veces con agua del
mismo punto a muestrear, excepto cuando se tome directamente en un envase
estéril, el recipiente contenga algún conservante o reactivo previamente
adicionado.
Tratamiento, transporte y conservación
Muestras de peces
Los ejemplares adultos recogidos para análisis de contaminantes orgánicos serán
lavados con agua limpia y envueltos en papel de aluminio con la cara opaca hacia el
pez. Serán introducidos directamente en neveras con hielo y mantenidas a 4°C ±
0,5°C.
Los ejemplares destinados a análisis inorgánicos serán lavados con agua limpia e
introducidos directamente en bolsas de plástico resistente, debidamente etiquetadas, a
las que se les adicionará hielo. Las bolsas serán transportadas en neveras con hielo y
mantenidas a 4°C ± 0,5°C.
Muestras de agua
Serán transportadas en neveras con hielo y mantenidas a 4°C ± 0,5°C. Los envases
transportados en el interior de las neveras se dispondrán de manera que se prevenga
las fracturas de los mismos (alternando material plástico con vidrio, o mediante
material amortiguador).
El sistema de transporte empleado debe asegurar el mantenimiento de las condiciones
originales de la muestra durante el periodo de tiempo que dure el mismo.
El sistema de transporte empleado por Taxon asegura la entrega de las muestras en el
laboratorio el mismo día de la toma, de forma que, generalmente, las submuestras se
acondicionan una vez que han llegado al laboratorio.
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La conservación necesaria para asegurar la estabilidad de las muestras consistirá, de
forma general, en mantenerlas refrigeradas (4°C ± 0,5°C) y en oscuridad
inmediatamente después de que hayan sido tomadas y durante su transporte hasta el
laboratorio. Para ello, se introducirán en nevera rígida portátil junto a bolsas de hielo o
acumuladores de frío, de manera que durante el transporte la muestra se mantenga a
temperaturas inferiores a la observada durante el proceso de toma.
Las muestras que por exigencias analíticas precisen de algún tipo de conservante
químico, recibirán el mismo antes de cerrar los envases, y se consignarán en la ficha de
muestreo. En estos casos se utilizarán las condiciones de conservación de muestra que
el laboratorio de referencia indique.
2.8. CONTROL DE CALIDAD
2.8.1. Identificación y registro
En el momento de la toma de muestras biológicas y de aguas, cada una las muestras
quedará identificada mediante un código único de Identificación.
El Número de muestra se anotará en la Ficha Muestreo. Peces. Mortandad (FR/TX/08-
11), y en la etiqueta de muestreo; así mismo, se incluirá en el resto de documentos
relacionados con ella (boletín de análisis, faxes, actas entrega de muestras, etc.), para
asegurar la trazabilidad de la muestra en todo momento.
Este código permanecerá registrado en la muestra, incluso cuando ésta esté
compuesta de varios recipientes.
2.8.2. CUSTODIA Y ENTRADA EN EL LABORATORIO
Una cadena de custodia es un documento o documentos asociados de forma
inseparable a la muestra desde el momento de su toma hasta su desaparición y que
permite seguir la trazabilidad de la misma; en dichos documentos se registran los
responsables de cada uno de los procesos “sufridos” por la muestra (toma,
conservación, transporte, entrada en el laboratorio y análisis), así como datos propios
de la misma (origen, cronología, número de muestra, tratamiento de conservación,
etc.) junto al nombre y firma del tomador de muestra.
En el caso del Laboratorio los documentos que conforman la cadena de custodia son:
• Etiqueta de muestreo. Para asegurarse de que cada muestra o envase esté
inequívocamente identificada deberá ir acompañada de su correspondiente
identificación mediante etiqueta adherida al envase.
PROTOCOLO DE VIGILANCIA AMBIENTAL Y GESTIÓN DE MORTANDADES 35
• Ficha Muestreo. Peces. Mortandad (FR/TX/08-11). En estos documentos se hacen
constar los datos de campo que se consideran de interés sobre cada una de las
muestras. Debe ser cumplimentada por el tomador de muestra y acompañará a
la muestra hasta su entrega al laboratorio donde se cumplimentarán los campos
de “recepción en laboratorio” de la Ficha Muestreo. Se entregará copia firmada
por el laboratorio al tomador.
2.8.3. CONTROLES Y BLANCOS
Como control de calidad, para descartar cualquier efecto de contaminación externa y/o
cruzada que pudiera darse durante el proceso de toma de muestra, en cada serie de
muestreo se realizará un control consistente en analizar un blanco de muestreo
constituido por agua ultra-pura.
Dicho blanco de muestreo seguirá el mismo tratamiento que una muestra real, es decir,
se llevará al punto de muestreo y permanecerá destapado durante el proceso de toma
de muestra; posteriormente será transportado en las mismas condiciones que las
muestras “reales”.
2.9. CONDICIONES DE SEGURIDAD
En este punto se relacionan las medidas de seguridad que deben aplicar los operarios
durante los procedimientos descritos.
Evitar la realización de los procedimientos en zonas peligrosas y con situaciones
ambientales desfavorables. Las condiciones de luz durante los procedimientos deben
ser tales que aseguren la detección de cualquier contingencia, una buena
caracterización visual del entorno, no recomendándose continuar con la toma cuando
sea necesario el empleo de luz artificial. Así mismo, es conveniente tener en cuenta las
condiciones meteorológicas con el fin de garantizar la seguridad del personal y equipos.
El personal operario evaluara las condiciones del punto o tramo en el que se detecta la
mortalidad para realizar los procedimientos bien vadeando o trabajando desde
embarcación. La embarcación estará debidamente equipada con las medidas de
seguridad correspondientes (chalecos salvavidas, radioteléfono, etc.). Así mismo el
propio personal utilizará la vestimenta adecuada a las condiciones imperantes
(vadeador, botas de agua, traje de agua, etc).
Para evitar intoxicaciones accidentales durante la retirada de ejemplares y la toma y
manipulación de las muestras, los operarios usarán guantes desechables y el vestuario
adecuado para su protección. Si se sospecha de la existencia de vapores tóxicos, la
muestra solo se tomará en lugares bien ventilados o mediante el uso obligatorio de
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máscaras adecuadas.
En cuanto a normas de higiene personal a observar, se puede citar la necesidad de
lavarse adecuadamente tras una toma de muestras, y antes de realizar otras
actividades que puedan facilitar la intoxicación accidental (beber, comer, contacto con
mucosas, etc.).
2.10. ARCHIVO DE DOCUMENTOS Y REGISTROS
El Responsable Técnico de Muestreo es responsable de la guarda y custodia de los
diferentes documentos y registros asociados a la toma de muestra.
2.11. REFERENCIA A PROCEDIMIENTOS O INSTRUCCIONES
• PG/TX/08. Procedimiento General de Manejo de Muestras
• FR/TX/08-11. Ficha Muestreo. Peces – Mortandad.
• FR/TX/08-10. Condiciones Conservación Muestras
• PG/TX/12. Procedimiento General de No Conformidades y Reclamaciones
• PNT/TX/09-26. Determinación Temperatura "in situ"
• PNT/TX/09-12. Determinación O2 "in situ"
• IT/TX/09-11-01. Sonda pH ECOSAN
• IT/TX/09-11-02. Sonda pH PC Ibérica
• IT/TX/09-22-01. Sonda Multiparamétrica CTD SBE-19+
• IT/TX/09-22-02. Sonda Multiparamétrica YSI 6920
• IT/TX/09-23-01. Instrumento RBR TR1060, XR-420 y DUO
• IT/TX/09-23-02. Instrumento CT SBE-37IMP
• IT/TX/04-10 Datalogger HOBO
PROTOCOLO DE VIGILANCIA AMBIENTAL Y GESTIÓN DE MORTANDADES 37
3. PROTOCOLO DE GESTIÓN DE FAUNAACUÁTICA EXÓTICA
3.1. OBJETIVO
El presente procedimiento tiene por objeto describir la metodología seguida por el
personal de TAXON Estudios Ambientales, S.L. en las actuaciones de gestión,
manipulación y eutanasia de la fauna exótica extraída de los recintos de dragado
durante las obras de Restauración Ambiental del Río Segura en la Ciudad de Murcia
promovidas por la Confederación Hidrográfica del Segura y adjudicadas a Ferrovial
Agromán S.L.
El Real Decreto 630/2013, de 2 de agosto, por el que se regula el Catálogo Español de
Especies Exóticas Invasoras, prohíbe la liberación de especies, subespecies o razas
exóticas cuando éstas sean susceptibles de competir con las especies silvestres
autóctonas, alterar su pureza genética o los equilibrios ecológicos. Por tanto, los
ejemplares de las especies animales incluidas en dicho Catálogo que sean capturados,
retenidos o extraídos de los recintos de dragado no podrán ser devueltos al medio.
Este procedimiento estará consensuado previamente con el Servicio de Biodiversidad
Caza y Pesca Fluvial de la CARM, y se realizará siempre de acuerdo con el resto de
normativa existente.
3.2. ALCANCE
El procedimiento tiene como objetivo definir las directrices metodológicas que permitan
la gestión, manipulación y eutanasia de ejemplares de la fauna acuática exótica
presente en los recintos del dragado.
Abarca los siguientes temas:
• Identificación del equipo de muestreo y metodología.
• Procedimiento de extracción de los ejemplares (DT 2014/016 PROTOCOLO DE
EXTRACCIÓN Y CONTROL DE FAUNA ACUÁTICA DURANTE LAS LABORES DE
RESTAURACIÓN AMBIENTAL DEL RÍO SEGURA EN LA CIUDAD DE MURCIA).
• Manipulación, eutanasia o traslado de ejemplares.
• Control de la calidad y seguridad.
PROTOCOLO DE GESTIÓN DE FAUNA ACUÁTICA EXÓTICA 39
3.3. DOCUMENTACIÓN DE REFERENCIA
• Ley 32/2007, de 7 de noviembre, para el cuidado de los animales, en suexplotación, transporte, experimentación y sacrificio.
• Real Decreto 630/2013, de 2 de agosto, por el que se regula el Catálogo españolde especies exóticas invasoras (BOE Nº 185, 3 de agosto de 2013)
• Real Decreto 1628/2011, de 14 de noviembre, por el que se regula el listado ycatálogo español de especies exóticas invasoras.
• Real Decreto 1082/2009, de 3 de julio, por el que se establecen los requisitos desanidad animal para el movimiento de animales de explotaciones cinegéticas,de acuicultura continental y de núcleos zoológicos, así como de animales defauna silvestre.
• REAL DECRETO 54/1995, DE 20 DE ENERO, SOBRE PROTECCION DE LOSANIMALES EN EL MOMENTO DE SU SACRIFICIO O MATANZA. (BOE del 15 defebrero). Modificado por Real Decreto 731/2007, de 8 de junio, por el que semodifican determinadas disposiciones para su adaptación a la normativacomunitaria sobre piensos, alimentos y sanidad de los animales (BOE 20 dejunio)
• Recomendaciones para la eutanasia de Animales de Experimentación: Partes 1 y2. DGXI de la Comisión Europea, utilizado en el desarrollo de la Directiva86/609/EEC del 24 de Noviembre de 1986, relativa a la aproximación de lasdisposiciones legales, reglamentarias y administrativas de los Estados miembrosrespecto a la protección de los animales utilizados para experimentación y otrosfines científicos (Nº L358, ISSN 0378-6978).
• Ley 42/2007, de 13 de diciembre, del Patrimonio Natural y de la Biodiversidad.
• Ley 7/2003, de 12 de noviembre, de Caza y Pesca Fluvial de la Región de Murcia.
• Ley 7/1995, de 21 de abril, de la fauna silvestre, caza y pesca fluvial.
• LIFE-Trachemys (2012). Guía metodológica para la captura y manejo degalápagos. Informes LIFE Trachemys nº 8. Conselleria d’Infraestructures, Territorii Medi Ambient. 31 pp.
3.4. DEFINICIONES
Aturdimiento: todo procedimiento que, cuando se aplique a un animal,provoque de inmediato un estado de inconsciencia que se prolongue hasta quese produzca la muerte
Control: la acción de la autoridad competente o la autorizada o supervisada porésta, destinada a reducir el área de distribución, limitar la abundancia ydensidad o impedir la dispersión una especie.
Especie nativa o autóctona: la existente dentro de su área de distribución yde dispersión natural.
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Especie exótica o alóctona: se refiere a especies, subespecies o taxones,incluyendo sus partes, gametos, semillas, huevos o propágulos que pudieransobrevivir o reproducirse, introducidos fuera de su área de distribución natural yde su área potencial de dispersión, que no hubiera podido ocupar sin laintroducción directa o indirecta, o sin el cuidado del hombre.
Especie exótica con potencial invasor: especie exótica que podríaconvertirse en invasora en España, y en especial aquella que ha demostrado esecarácter en otros países o regiones de condiciones ecológicas semejantes.
Especie exótica invasora: especie exótica que se introduce o establece en unecosistema o hábitat natural o semi natural, y que es un agente de cambio yamenaza para la diversidad biológica nativa, ya sea por su comportamientoinvasor, o por el riesgo de contaminación genética.
Erradicación: proceso tendente a la eliminación de toda la población de unaespecie.
Eutanasia: esta palabra significa muerte buena y debe considerarse como unprocedimiento de matanza humanitario con el mínimo de dolor y estrés para elanimal.
Gestor SANCDACH autorizado: establecimientos autorizados en toda la UEpara la gestión de los distintos subproductos de origen animal no destinados alconsumo humano
Matanza: todo procedimiento que provoque la muerte de un animal.
Sacrificio: muerte del animal por sangradoSANDACH: acrónimo deSubproducto Animal No Destinado Al Consumo Humano.
Sujeción: la aplicación al animal de todo procedimiento concebido para limitarsus movimientos a fin de facilitar el aturdimiento o el sacrificio eficaces.
3.5. RESPONSABILIDADES
El RTM de TAXON Estudios Ambientales, S.L. debe coordinar e instruir al equipo de
muestreo sobre los objetivos y requerimientos del proceso antes de llegar al área de
trabajo. Así mismo será responsable de cumplimentar todos los documentos
relacionados con la recogida y gestión de ejemplares, así como de informar al
coordinador del proyecto de todas las incidencias ocurridas durante los procedimientos
(observaciones, localización, desviaciones, conflictos, etc.). También será responsable
de la comprobación y mantenimiento de todo el equipo necesario para los
procedimientos garantizando su disponibilidad.
El RTM debe coordinar con la persona encargada de los sacrificios, preferiblemente un
veterinario, los muestreos, identificación y sacrificio para que transcurra el menor
tiempo posible desde su captura hasta el sacrificio. Asimismo velará por las condiciones
de conservación de los ejemplares capturados para reducir al máximo su estrés.
PROTOCOLO DE GESTIÓN DE FAUNA ACUÁTICA EXÓTICA 41
Todo el personal del Área de Muestreo (AM) o trabajo debe cumplir con los
requerimientos especificados en el Manual de Riesgos Laborales de Taxon,
especialmente en relación con normas y equipos de seguridad en el trabajo, manejo de
sustancias tóxicas y peligrosas (Formol, ácidos, etc.) y manipulación de ejemplares.la
recogida y custodia del material biológico hasta su recogida por gestor autorizado.
Toda persona que intervenga en la conducción, estabulación, sujeción, aturdimiento,
sacrificio o matanza de animales deberá poseer la preparación y destreza necesarias
para llevar a cabo estos cometidos de forma humanitaria y eficaz.
Cuando el procedimiento de extracción de ejemplares requiera del uso de embarciones,
el AM debe contar con al menos una persona con las titulaciones necesarias para el
patronaje de la embarcación. El resto de personal debe tener los conocimientos
necesarios de seguridad, bien porque tengan la titulación necesaria o porque hayan
sido instruidos por el responable técnico.
Todo el personal de campo debe estar familiarizado con los procedimientos descritos en
este documento para la manejo de metodología, recolección y manipulación de
ejemplares.
En el caso de completar con toma de muestras de los ejemplares, el técnico encargado
de realizar la toma será el responsable también de su conservación, transporte y
custodia desde el momento de la toma hasta su entrega en el Laboratorio
correspondiente.
3.6. EQUIPAMIENTO
El equipamiento básico para la realización de la toma de muestra se compone tanto de
los equipos mínimos necesarios para la toma de ejemplares, como de los envases y
diverso material auxiliar.
3.6.1. Material general
• Embarcación adecuada a las condiciones de los recintos de trabajo.
• Salvavidas (embarcaciones y aguas vadeables profundas).
• Botas altas o vadeadores.
• Redes de cierre, profundímetro, cuerdas y boyas para fijar transectos.
• Contenedores para especies exóticas.
• Botiquín, equipo de primeros auxilios.
• Anestésicos seleccionados para el sacrificio de ejemplares.
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• Extintor, para el uso en zonas con riesgo de incendio por proximidad delgenerador eléctrico.
• Cámara fotográfica.
• Neveras.
• Sistema de aireación de contenedores.
3.6.2. Manipulación y eutanasia de fauna exótica
• Sacaderas y salabres
• Cubos de goma o plásticos (10-12 L) para trasladar los peces hasta loscontenedores.
• Contenedores para peces de diferentes tamaños para su traslado. Susdimensiones deben ser las adecuadas para evitar elevadas densidades duranteel traslado.
• Contenedores de rejilla, que permitan el paso del agua a través. Funcionan comovivero para mantener los peces en buenas condiciones hasta que son devueltosal río
• Anestésicos.
• Hielo o refrigerantes.
Fotografía 3.1: Ejemplares de perca sol (Lepomis gibbosus) (Fotografía: Dpto. Zoología yAntropología Física). Ejemplar de tortuga de florida (Trachemys scripta elegans) (Fotografíatomada del Informe LIFE-Trachemys, nº10).
PROTOCOLO DE GESTIÓN DE FAUNA ACUÁTICA EXÓTICA 43
3.7. PROTOCOLO O PROCEDIMIENTO DE MANIPULACIÓN YEUTANASIA
3.7.1. GENERALIDADES
• Los procedimientos detallados para la captura y extracción de la fauna acuática
exótica objeto del presente protocolo se detallan en el documento DT 2014/016
PROTOCOLO DE EXTRACCIÓN Y CONTROL DE FAUNA ACUÁTICA DURANTE LAS
LABORES DE RESTAURACIÓN AMBIENTAL DEL RÍO SEGURA EN LA CIUDAD DE
MURCIA.
• Los animales capturados serán procesados lo antes posible. Si no puede evitarse
el retraso de la operación, se les protegerá de las inclemencias del tiempo y se
les proporcionará una ventilación y temperatura adecuada.
• Se mantendrán separados los animales susceptibles de dañarse entre sí (ej.
cangrejos y/o galápagos predadores del resto de peces).
• No se causará a los animales agitación, dolor o sufrimiento evitables durante las
operaciones de traslado, conducción, estabulación, sujeción, aturdimiento y
matanza.
• Los instrumentos y equipamiento utilizado para aturdir y sacrificar deben estar
seleccionados de manera que la actuación sea rápida y eficaz.
• En caso de que los métodos utilizados no causaren la muerte instantánea, se
adoptarán las medidas oportunas para que su sedación o aturdimiento, y , en
todo caso, para que la muerte acontezca con la mayor rapidez posible.
• Todos los métodos de eutanasia son susceptibles de ejecutarse incorrectamente,
y por ello, el personal responsable de la eutanasia debe estar adecuadamente
formado para su realización efectiva y humanitaria, preferiblemente un
veterinario o, en caso de fauna menor (ej. invertebrados y especies de pequeño
tamaño), o empleo de métodos no químicos por personal con formación.
3.7.2. Especies afectadas:
Peces: Los ejemplares identificados de las especies de peces exóticas
[ejemplos: pez sol (Lepomis gibbosus), lucioperca (Sander lucioperca), alburno
(Alburnus alburnus), gambusia (Gambusia holbrooki), etc.] consideradas nocivas
por el Servicio de Biodiversidad Caza y Pesca fluvial serán objeto del presente el
protocolo de gestión de fauna exótica.
Galápagos exóticos: Los ejemplares identificados de especies de galápagos
exóticos (ejemplos: galápago de Florida (Trachemys scripta elegans), tortuga de
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orejas amarillas (Trachemys scripta scripta), Graptemys sp., Pseudemys sp.,
etc.] consideradas nocivas por el Servicio de Biodiversidad Caza y Pesca fluvial
también serán gestionados de acuerdo con las actuaciones especificadas en
este protocolo.
Otros componentes de fauna exótica: Los ejemplares identificados de otras
especies de fauna exótica (ejemplos: Cangrejo rojo o americano (Procambarus
clarkii), Almeja asiática (Corbicula fluminea), etc.] consideradas nocivas por el
Servicio de Biodiversidad Caza y Pesca fluvial también serán gestionados de
acuerdo con las actuaciones especificadas en este protocolo.
La Dirección General del Medio Natural de la CARM no autoriza la devolución al medio
acuático de ejemplares de los tres grupos de especies descritos y, en consecuencia,
serán sacrificadas y gestionadas como SANDACH.
3.7.3. PROCEDIMIENTO DE MANIPULACIÓN Y EUTANASIA
La manipulación y eutanasia se ejecutará mayormente el periodo de actuación de la
extracción y control específico realizada en cada recinto de dragado. La secuencia de
operaciones prevista es la siguiente:
1. El RTM de TAXON coordina con la persona encargada de la matanza las fechas y
horarios de las actuaciones para que transcurra el menor tiempo posible entre la
captura y la matanza.
2. El RTM de TAXON se asegura previamente de la disponibilidad de contenedores
SANDACH homologados
3. Se realizan las capturas según DT 2014/016 PROTOCOLO DE EXTRACCIÓN Y
CONTROL DE FAUNA ACUÁTICA DURANTE LAS LABORES DE RESTAURACIÓN
AMBIENTAL DEL RÍO SEGURA EN LA CIUDAD DE MURCIA.
4. Se procede a la identificación de los ejemplares y su clasificación según se trate
de especies exóticas o nativas.
5. Los ejemplares de exóticas con destino a la matanza son almacenados en
contenedores adecuados para su mantenimiento y custodia hasta sacrificio de
acuerdo a los requisitos de bienestar animal.
6. Caso de transcurrir más de un día hasta matanza el RTM velará por las
condiciones de almacenamiento y custodia, así como por el bienestar animal de
los ejemplares capturados hasta su matanza.
PROTOCOLO DE GESTIÓN DE FAUNA ACUÁTICA EXÓTICA 45
7. Una vez personado el veterinario o persona responsable de la matanza se
procede a la eutanasia de los ejemplares de acuerdo a las metodologías
expuestas en el apartado 7.3 del presente documento.
8. Una vez confirmada la muerte de los ejemplares, los cadáveres y residuos serán
depositados en los contenedores SANDACH.
9. El RTM de TAXON avisará a la empresa gestora de residuos SANDACH para la
retirada de los contenedores homologados
3.7.4. METODOLOGÍA DE MANIPULACIÓN Y EUTANASIA
En este apartado se exponen las directrices metodológicas para el desarrollo de los
distintos procedimientos. Su aplicación está condicionada por el grupo faunístico objeto
de manipulación y eutanasia.
Los procedimientos de eutanasia son variados y deben ser seleccionados
específicamente. El personal encargado debe tener formación en la ejecución más
adecuada de los mismos.
PECES EXÓTICOS
A) Descripción de métodos físicos y químicos seleccionados
• La concusión es un método físico adecuado para grandes ejemplares. Esta
técnica implica un golpe en la parte trasera de la cabeza y, si lo realiza personal
experimentado, es un método humanitario de eutanasia. Se debe confirmar la
muerte destruyendo el cerebro.
• La dislocación cervical es un método útil para ejemplares pequeños y
medianos. Se introduce un instrumento (palo, pinzas, etc.) por la boca, se
inmoviliza al ejemplar con la otra mano y se desplaza el instrumento
dorsalmente. El estrés producido por la manipulación en ejemplares grandes
obliga a trabajar con individuos anestesiados en estos casos.
• La congelación rápida (ej. inmersión en nitrógeno líquido) con ejemplares
anestesiados también es otro método viable. Con individuos anestesiados se
estudiará la posibilidad de matanza con dióxido de carbono.
• Los métodos químicos más comunes para la eutanasia consisten en la
sobreexposición de los ejemplares a anestésicos, ya que estos son agentes que
producen la ausencia de percepción y permiten, por tanto, la matanza animal en
ausencia de sufrimiento y dolor.
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Todos los peces son sensibles a los cambios en los parámetros físico-químicos del agua
(temperatura, gases disueltos, salinidad, pH, etc.), pero unas especies son mucho más
tolerantes que otras a los cambios en alguno de estos parámetros. Por ello, a menos
que se conozca la respuesta de las especies, es recomendable realizar la eutanasia en
el mismo tipo de agua que sea habitual para la especie. Se reducirá el nivel de agua
para asegurar una sedación rápida, pero no demasiado para no producir angustia antes
de añadir el agente. De este modo también se reduce la cantidad total de sustancia a
utilizar. La dosificación en contenedores es siempre preferible a la inyección ya que esta
última implica manipulación del pez y esto le produciría estrés. Los contenedores que
se utilicen deben permitir al personal observar los peces y reaccionar rápidamente si
hay signos de sufrimiento.
A menudo la temperatura del agua altera la eficacia del fármaco y la inducción es
generalmente más rápida a temperaturas más altas. Sin embargo, no se debe elevar la
temperatura hasta niveles que puedan provocar estrés a los peces. Generalmente se
utilizan para la eutanasia agentes anestésicos al doble o al triple de la dosis anestésica
recomendada.
La sobreexposición a un anestésico se manifiesta primeramente por el cese de los
movimientos respiratorios, seguido de la sobreextensión espasmódica o
ensanchamiento de los opérculos. Al principio, estos procesos se producen cada 15-30
segundos y después a intervalos más largos. Cuando los intervalos entre espasmos son
aproximadamente de 1 minuto, en pocos minutos se producirá la parada cardiaca y la
muerte.
En todos los casos debe confirmarse la muerte. Se puede reconocer la muerte por el
cese de la respiración (movimiento opercular) y el cese del latido cardiaco (palpación).
Cuando sea posible, se debe confirmar la muerte por destrucción del cerebro.
B) Empleo de Anestésicos
La eficacia de los anestésicos dependerá de factores biológicos (especie, peso, tamaño,
etc.) y ambientales (temperatura, pH, conductividad del agua, etc.). Por tanto, la
elección del tipo de anestésico a emplear se realizará en función de su eficacia, pero
también según su disponibilidad, facilidad de uso y seguridad del manipulador.
Los anestésicos más empleados para el sacrificio humanitario en peces son los
siguientes:
• Tricaína metano sulfonato (MS-222 tamponado): el uso de MS-222 es un
método de eutanasia humanitario y seguro para peces. Es soluble tanto en agua
salada como dulce, pero necesita ser neutralizado con bicarbonato, imidazol,
fosfato ácido de sodio, o hidróxido sódico para reducir la irritación y el daño
tisular. La efectividad del MS-222 varia con la especie, tamaño, temperatura y
PROTOCOLO DE GESTIÓN DE FAUNA ACUÁTICA EXÓTICA 47
dureza del agua. El MS-222 no es estable a la luz solar y las soluciones
almacenadas se deberán guardar en botellas de vidrio ámbar u opacas. Se
puede utilizar junto con quinaldina o sulfato de quinaldina lo que lo hace mas
eficaz, necesitándose menores cantidades que si se utilizasen cualquiera de los
agentes por separado. Concentración mínima recomendada: 160 mg/l.
• Aceite de clavo (Eugenol): El aceite de clavo es un producto natural obtenido
por destilación de tallos, flores y hojas trituradas de la planta del clavo cuyo
principal ingrediente activo es el eugenol (70-90 % del total). Por ser una
sustancia empleada como aditivo alimentario puede ser utilizado con garantías
de seguridad por los manipuladores. Concentración mínima recomendada:
80 mg/l.
• Benzocaina (etil aminobenzoato): este agente, disuelto en acetona o alcohol
etílico antes de añadirlo al agua del tanque, es un método efectivo y
humanitario para sacrificar peces. Actúa deprimiendo el sistema nervioso
central. Posee eficacia pH-independiente, pero reduce el pH del agua del tanque,
por lo que deberá tamponarse a pH 7.5 para reducir la irritación. El tiempo de
descomposición en agua es de unas 4 horas lo que hace que sea
medioambientalmente seguro y además lo es para el personal. Se ha de
confirmar la muerte por medios físicos. Concentración efectiva
recomendada: 200 mg/l.
• Etomidato y metomidato: Ambos son agentes hipnóticos no-barbituricos que
actúan deprimiendo el sistema nervioso central. Son de actuación relativamente
rápida y están considerados como agentes humanitarios para la matanza de
peces. Son altamente solubles en agua.
GALÁPAGOS EXÓTICOS
Los instrumentos y equipamiento utilizado para aturdir y sacrificar deben estar
seleccionados de manera que la actuación sea rápida y eficaz.
El aturdimiento mediante enfriamiento reduce sus procesos metábólicos y locomotores
facilitando la manipulación previa a la eutanasia. Para ello se dispondrán los ejemplares
en contenedores con un volumen mínimo de agua con hielo hasta alcanzar una
temperatura aproximada no superior a 5 ºC (estas temperaturas pueden incluso matar
a algunas especies tropicales). La anestesia de los ejemplares también podrá realizarse
mediante el uso de tranquilizantes y analgésicos.
A) Descripción de métodos físicos y químicos seleccionados
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• La concusión que implica un golpe en la parte trasera de la cabeza o la
decapitación siempre que lo realice personal experimentado. Los ejemplares
deben ser aturdidos o insensibilizados antes de la misma, ya que son muy
resistentes a la anoxia. Debe realizarse con individuos totalmente anestesiados,
es un método válido de eutanasia. Se debe confirmar la muerte destruyendo el
cerebro. Este método será realizado principalmente con ejemplares pequeños.
• La congelación rápida (ej. inmersión en nitrógeno líquido) con ejemplares
anestesiados también podría ser otro método viable.
• Los métodos químicos con agentes inyectables son métodos efectivos. La
administración de una dosis de pentabarbital sódico (2-3 mL) administrada en el
seno venoso postoccipital (ej. inyección de Doletal®) es un método efectivo y
humanitario para la eutanasia de reptiles. La vía intravenosa puede ser utilizada
si el personal tiene experiencia previa pero si no es así es recomendable la vía
intraperitoneal, aunque actúa más despacio. No se inyectará por vía
intracardiaca o intrapulmonar ya que están consideradas dolorosas e irritantes.
Concentración efectiva recomendada: 200 mg/kg.
Fotografía 3.2: procedimiento de eutanasia mediante inyección
en seno venoso postoccipital (Fotografía tomada de los Informes
LIFE-Trachemys, nº10)
En los galápagos la retracción de la cabeza y la protección del caparazón pueden
dificultar la eutanasia. Además, al tratarse de animales poiquilotermos, están
adaptados a las fluctuaciones de su temperatura corporal y su sistema nervioso central
es menos sensible a un descenso en la tensión de oxígeno y, en consecuencia, tienen
una prolongada tolerancia a la hipoxia. Dado que es difícil determinar en los reptiles
cuando están inconscientes o muertos se recomienda confirmar la muerte por
destrucción del cerebro. Frecuentemente, pero no siempre, la falta de respuesta de la
PROTOCOLO DE GESTIÓN DE FAUNA ACUÁTICA EXÓTICA 49
membrana nictitante implica la falta de consciencia. El rigor mortis y la ausencia
prolongada de latido cardiaco y/o circulación son indicadores fiables de la muerte.
3.8. MANEJO Y ELIMINACIÓN DE CADÁVERES
3.8.1. Generalidades
Deben evaluarse los posibles riesgos hacia los humanos cuando se conozca que los
animales son portadores de agentes zoonósicos.
Los ejemplares capturados mediante las distintas metodologías se depositan
inicialmente en viveros ubicados directamente en el agua o contenedores de plástico
asegurando una oxigenación adecuada.
Para la manipulación puede ser conveniente el uso de un producto anestésico que los
relaje y facilite el trabajo. No obstante, esto será dependiente del tipo y tiempo de
manipulación pues es muy importante controlar el tiempo de exposición al anestésico.
Los ejemplares deberán ser identificados a nivel de especie, clasificados y separados en
función de su carácter exótico o autóctono. La identificación se realizará “in situ”
mediante la observación de caracteres morfológicos externos. Si existen dudas en la
identificación de alguna especie o ejemplar, se conservarán algunos individuos para su
posterior análisis en el laboratorio.
Los ejemplares identificados de peces, galápagos y otros componentes de fauna exótica
serán incluidos en los depósitos dispuestos para el proceso de eutanasia mediante
métodos físicos o químicos en función de la logística desarrollada en cada recinto de
trabajo.
Una vez se haya confirmado la muerte de los ejemplares estos se depositarán en los
contenedores para material SANDACH.
3.9. CONDICIONES DE SEGURIDAD
En este punto se relacionan las medidas de seguridad que deben aplicar los operarios
durante los procedimientos descritos.
Evitar la realización de los procedimientos en zonas peligrosas y con situaciones
ambientales desfavorables. Las condiciones de luz durante los procedimientos deben
ser tales que aseguren la detección de cualquier contingencia, una buena
caracterización visual del entorno, no recomendándose continuar con la toma cuando
sea necesario el empleo de luz artificial. Así mismo, es conveniente tener en cuenta las
condiciones meteorológicas con el fin de garantizar la seguridad del personal y equipos.
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Para evitar intoxicaciones accidentales durante la manipulación de ejemplares, los
tomadores de muestra usarán guantes desechables y el vestuario adecuado para su
protección. Si se sospecha de la presencia de enfermedades de declaración obligatoria
deberán emplear trajes de bioseguridad desechables. En cuanto a normas de higiene
personal a observar, se puede citar la necesidad de lavarse adecuadamente tras una
toma de muestras, y antes de realizar otras actividades que puedan facilitar la
intoxicación accidental (beber, comer, contacto con mucosas, etc.).
3.9.1. Seguridad en los procedimientos de extracción
Los procedimientos detallados sobre la seguridad en la captura y extracción de la fauna
acuática exótica objeto del presente protocolo se detallan en el documento DT
2014/016 PROTOCOLO DE EXTRACCIÓN Y CONTROL DE FAUNA ACUÁTICA DURANTE LAS
LABORES DE RESTAURACIÓN AMBIENTAL DEL RÍO SEGURA EN LA CIUDAD DE MURCIA.
3.10. REFERENCIA A PROCEDIMIENTOS O INSTRUCCIONES
• PROTOCOLO DE EXTRACCIÓN Y CONTROL DE FAUNA ACUÁTICA DURANTE LAS
LABORES DE RESTAURACIÓN AMBIENTAL DEL RÍO SEGURA EN LA CIUDAD DE
MURCIA.
• PROTOCOLO DE GESTIÓN DE RESIDUOS BIOLÓGICOS (SANDACH).
PROTOCOLO DE GESTIÓN DE FAUNA ACUÁTICA EXÓTICA 51
4. PROTOCOLO DE GESTIÓN DERESIDUOS ORGÁNICOS DE ORIGENANIMAL
4.1. OBJETIVOS
El presente procedimiento tiene por objeto describir la metodología seguida, por el
personal de TAXON Estudios Ambientales, S.L. en el proceso de gestión de subproductos
animales no aptos para el consumo humano (en adelante SANDACH) recogidos de
medios acuáticos (peces, galápagos, cangrejos, etc.) ante la aparición episodios de
mortandad o por requerimientos específicos de la actuación. Este Protocolo de Trabajo
Normalizado cubre la manipulación de bajas hasta su entrega a gestor autorizado
El personal del Área de Muestreo de Taxon es el encargado de la recolección de
muestras, y su custodia hasta recogida por gestor autorizado.
4.2. ALCANCE
Este protocolo es de aplicación, única y exclusivamente para la gestión de los residuos
SANDACH derivados de las acciones de rescate de fauna acuática, sean consecuencia
de su sacrificio (caso de fauna exótica), o por bajas producidas durante su
manipulación. También se incluyen la gestión de residuos de origen animal procedentes
de episodios de mortalidad masivas acontecidos en el río.
4.3. DOCUMENTACIÓN DE REFERENCIA
• Protocolo de despesque y translocación de fauna acuática
• Protocolo de gestión de fauna exótica exóticas
• Protocolo de gestión urgente de mortandades
• Real decreto 1528/2012, de 8 de noviembre, por el que se establecen las
normas aplicables a los subproductos animales y los productos derivados no
destinados al consumo humano.
• El Reglamento (CE) Nº 1069/2009 , del Parlamento Europeo y del Consejo y el
Reglamento (UE) Nº 142/2011, de la Comisión, constituyen desde el 4 de marzo
de 2011 el marco legal comunitario aplicable a los subproductos animales no
destinados al consumo humano y los productos derivados de los mismos,
(SANDACH).
• Real Decreto 1628/2011, de 14 de noviembre, por el que se regula el listado y
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catálogo español de especies exóticas invasoras.
4.4. DEFINICIONES
Cadena de Custodia: Documento/s asociado/s de forma inseparable a la
muestra desde el momento de su toma hasta su eliminación, quedando en el
mismo registrados los responsables de cada uno de los procesos al tiempo que
van desarrollándose éstos.
Control: la acción de la autoridad competente o la autorizada o supervisada por
ésta, destinada a reducir el área de distribución, limitar la abundancia y
densidad o impedir la dispersión una especie.
Especie nativa o autóctona: la existente dentro de su área de distribución y
de dispersión natural.
Especie exótica o alóctona: se refiere a especies, subespecies o taxones,
incluyendo sus partes, gametos, semillas, huevos o propágulos que pudieran
sobrevivir o reproducirse, introducidos fuera de su área de distribución natural y
de su área potencial de dispersión, que no hubiera podido ocupar sin la
introducción directa o indirecta, o sin el cuidado del hombre.
Especie exótica con potencial invasor: especie exótica que podría
convertirse en invasora en España, y en especial aquella que ha demostrado ese
carácter en otros países o regiones de condiciones ecológicas semejantes.
Especie exótica invasora: especie exótica que se introduce o establece en un
ecosistema o hábitat natural o semi natural, y que es un agente de cambio y
amenaza para la diversidad biológica nativa, ya sea por su comportamiento
invasor, o por el riesgo de contaminación genética.
Erradicación: proceso tendente a la eliminación de toda la población de una
especie.
Gestor SANCDACH autorizado: establecimientos autorizados en toda la UE
para la gestión de los distintos subproductos de origen animal no destinados al
consumo humano
SANDACH: acrónimo de Subproducto Animal No Destinado Al Consumo
Humano.
Translocación: accion de transporte de poblaciones animales a otra localidad
diferentes del punto de captura.
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4.5. RESPONSABILIDADES
El Responsable Técnico de Muestreo de TAXON Estudios Ambientales, S.L. debe
coordinar la recogida y custodia del material biológico hasta su recogida por gestor
autorizado. Debe instruir al equipo de muestreo sobre los objetivos y requerimientos del
proceso antes de llegar al área de trabajo. Así mismo será responsable de
cumplimentar todos los documentos relacionados con la recogida y gestión y de
informar al coordinador del proyecto de todas las incidencias ocurridas durante la toma
de muestra (observaciones, localización, desviaciones, etc.).
Todo el personal del Área de Muestreo (AM) debe cumplir con los requerimientos
especificados en el Manual de Riesgos Laborales de Taxon, especialmente en relación
con las normas y equipos de seguridad en el trabajo, y el manejor de sustancias tóxicas
y peligrosas (Formol, ácidos, etc..).
Cuando las tareas de retirada de bajas requieran del uso de embarcaciones, el AM debe
contar con al menos una persona a bordo con las titulaciones necesarias para el
patronaje de la embarcación. El resto de la tripulación debe tener los conocimientos
necesarios de seguridad en el mar, bien porque tengan la titulación necesaria o porque
hayan sido instruidos por los técnicos de la AM.
Todo el personal de campo debe estar familiarizado con los procedimientos estándar
descritos en este documento para la recolección y el procesamiento de aguas marinas,
incluídas aquellas que requieren tratamientos especiales.
El técnico encargado de realizar la toma de muestra será el responsable también de su
conservación, transporte y custodia desde el momento de la toma hasta su entrega en
el Laboratorio.
También será responsable de la comprobación y mantenimiento de todo el equipo
necesario para la operación garantizando su disponibilidad.
4.6. METODOLOGIA
4.6.1. Generalidades
Durante las operaciones de despesque y translocación de fauna acuática pueden
generarse volúmenes destacables de residuos SANDACH procedentes bien del sacrificio
intencionado de exóticas o de bajas accidentales acontecidas durante su manipulación
y traslado. En su gran mayoría se tratará de especies de fauna exótica que no hayan
podido evacuarse de los recintos de dragado durante los arrastres y cercos. En otros
casos las bajas pueden proceder de las operaciones de translocación o de episodios de
mortandad súbita acontecidos por causas naturales o fruto de algún evento de
contaminación ambiental. Su acumulación en determinados diques y remansos del
PROTOCOLO DE GESTIÓN DE RESIDUOS ORGÁNICOS DE ORIGEN ANIMAL 55
cauce fluvial supone un riesgo ambiental y sanitario por lo que debe procederse a su
retirada según el Protocolo de Gestión de Mortandades y a su procesamiento según el
presente protocolo..
En relación al sacrificio de exóticas debe recordarse que el Real Decreto 1628/2011, de
14 de noviembre, por el que se regula el listado y catálogo español de especies
exóticas invasoras, prohíbe la liberación de especies subespecies o razas exóticas
cuando éstas sean susceptibles de competir con las especies silvestres autóctonas,
alterar su pureza genética o los equilibrios ecológicos. Por tanto Los ejemplares de las
especies animales incluidas en el Catálogo de exóticas que sean capturados, retenidos
o extraídos de la naturaleza por cualquier procedimiento, no podrán ser devueltos al
medio natural excepto por razones de investigación.
Por su parte la Orden de 13 de mayo de 2013, por la que se regula el ejercicio de la
pesca fluvial para la temporada 2013/2014 y reglamentaciones para la conservación de
la fauna ictícola de la Comunidad Autónoma de la Región de Murcia señala que las
“especies exóticas Lucioperca (Sander lucioperca), Lucio (Esoxlucius), Alburno
(Alburnus alburnus), Perca sol (Lepomis gibbosus) y Gambusia (Gambusia holbrooki) ...,
al considerarse especies nocivas para los ecosistemas acuáticos de la Región de Murcia
y potencialmente invasoras de los mismos, no se autoriza la devolución a las aguas de
cualquier ejemplar que pudiera capturarse de las citadas especies”.
Tras consulta al Servicio de Biodiversidad Caza y Pesca Fluvial, la actuación
recomendada es el sacrifico controlado de la toda la fauna exótica capturada, a
excepción de aquellas especies pescables consideradas no nocivas [carpa común
(Cyprinus carpio) y boga del tajo (Pseudochondrostoma polylepis)] que serán evaluados
en relación a su estado sanitario y translocados a localidades consensuadas con dicho
Servicio.
La gestión de estos cadáveres está regulada a través del Real Decreto 1528/2012, de 8
de noviembre, por el que se establecen las normas aplicables a los subproductos
animales y los productos derivados no destinados al consumo humano (SANDACH),
cuyo objetivo es garantizar que durante su gestión no se generan riesgos para la salud
humana, la sanidad animal o el medio ambiente y especialmente para garantizar la
seguridad de la cadena alimentaria humana y animal.
Según esta reglamentación los SANDACH generados durante este tipo de operaciones
se clasificarían como categoría C2 donde se incluyen:
e) Animales o partes de animales que no sean los mencionados en el artículo 4,
que mueran sin ser sacrificados para el consumo humano, incluidos los animales
sacrificados para erradicar una enfermedad epizoótica;
El transporte y gestión de este tipo de residuos sólo puede ser realizado por empresas
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autorizadas y registradas. Por lo que resulta obligado la contratación de sus servicios de
manera previa a la ejecución de acciones de rescate y translocación.
4.6.2. Condiciones de seguridad
En este punto se relacionan las medidas de seguridad que deben observar el personal
que lleve a cabo la toma de muestras según lo especificado en el presente
procedimiento.
Es conveniente evitar, en la medida de lo posible la toma de muestras en zonas
peligrosas y con situaciones ambientales desfavorables.
El personal encargado de la toma de muestras se desplazará hasta el punto de toma
bien vadeando el cuerpo de agua, si es posible, o bien en una embarcación
debidamente equipada con las medidas de seguridad correspondientes (chalecos
salvavidas, radioteléfono, bengalas,...etc). Así mismo el propio personal utilizará la
vestimenta adecuada a las condiciones imperantes (vadeador, botas de agua, traje de
agua, etc).
Las condiciones de luz en el momento de la recogida deben ser tales que aseguren la
detección de cualquier contingencia así como una buena caracterización visual del
entorno, no admitiéndose continuar con la toma cuando sea necesario el empleo de luz
artificial. Así mismo, es conveniente tener en cuenta las condiciones meteorológicas
con el fin de garantizar la seguridad del personal y de los equipos.
Para evitar intoxicaciones accidentales durante la toma y manipulación de las
muestras, los tomadores de muestra usarán guantes desechables y el vestuario
adecuado para su protección. Si se sospecha de la presencia de enfermedades de
declaración obligatoria deberán emplear trajes de bioseguridad desechables.
En cuanto a normas de higiene personal a observar, se puede citar la necesidad de
lavarse adecuadamente tras una toma de muestras, y antes de realizar otras
actividades que puedan facilitar la intoxicación accidental (beber, comer, contacto con
mucosas, etc.).
4.6.3. Equipamiento para la MANIPULACIÓN DE RESIDUOS
SANDACH
El equipamiento básico para la realización de la toma de muestra se compone tanto de
los equipos mínimos necesarios para la toma de ejemplares, como de los envases y
diverso material auxiliar.
PROTOCOLO DE GESTIÓN DE RESIDUOS ORGÁNICOS DE ORIGEN ANIMAL 57
Material general
En este apartado se describe de forma resumida el material auxiliar necesario para la
toma de muestras:
• Trajes de bioseguridad (caso enfermedades de declaración obligatoria)
• Mascarillas y media máscara con filtros.
• Papel secamanos y disolución desinfectante.
• Botiquín.
Envases
• Contenedores: El contenedor debe ser estanco, de forma que no sea posible la
pérdida de líquidos, permaneciendo la tapa constantemente cerrada. Debe tener
una capacidad adecuada en función de los kilos de cadáveres generados en
cada explotación y la frecuencia de recogida. Además, se procederá a un
manejo adecuado del mismo, es decir, es imprescindible que todos los
cadáveres estén dentro del contenedor y no alrededor del mismo. Una
frecuencia de recogida alta puede facilitar que no se produzca esta práctica, por
ello ésta debe ser como máximo cada 48 horas. Es importante precisar su
localización.
• Bolsas de plástico: cuando la retirada de los SANDACH no es inmediata
resulta conveniente la utilización de bolsas de plástico, desechables, resistentes
y de cierre seguro para evitar problemas de bioseguridad y malos olores. Las
bolsas a su vez deben deposistarse en el contenedor o punto de recogida, se
procede al vaciado de la bolsa en el camión y se almacenan las bolsas de
plástico utilizadas para su posterior destrucción y evitar de esta forma su
reutilización.
Material vario
• Cámara fotográfica, GPS, sonda de profundidad, teléfono portátil.
• Bolígrafo, lápiz, rotulador indeleble, pegatinas, …
• Envases para el transporte de los ejemplares hasta contenedor adecuado
• Recipientes aislantes, neveras, hielo, acumuladores de frío, …
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4.7. PROCEDIMIENTO DE RETIRADA DE BAJAS
En todos los casos la retirada y almacenamiento de bajas debe efectuarse lo antes
posible tras el sacrificio o recogida en el mismo lugar de captura. Para su traslado hasta
el contenedor dispuesto al efecto se emplearán bolsas de plástico o recipientes
estancos adecuados para su vertido directo al contenedor. El Responsable Técnico de
Muestreo velará por que no queden restos o ejemplares sin recoger.
Procedentes de las actuaciones de extracción y translocación de fauna
acuática
1. Inicialmente la Dirección de Obra comunicará al Responsable Técnico de
Muestreo de TAXON (RTM), con al menos cuatro días de antelación, la creación
de cada recinto de dragado.
2. El RTM de TAXON coordina con la Dirección de Obra las condiciones y permisos
de acceso al recinto y las localizaciones más adecuadas para la colocación de
los contenedores de forma que no se obstaculice el resto de la obra.
3. El RTM de TAXON avisará a la empresa gestora de residuos SANDACH para la
colocación de los contenedores homologados en las localizaciones acordadas
con la Dirección de Obra. Confirma su instalación y vela por que estén
convenientemente señalizados.
4. La bajas de la extracción y sacrificio son almacenadas en los contenedores.
5. Finalizada la campaña de extracción y translocación el RTM o persona delegada
comunica a la empresa gestora de residuos para la retirada de contenedores,
firma y guarda copia de la ficha de retirada.
6. Al menos un contenedor de residuos debe quedar en el recinto de obra, para la
retiradas de ejemplares muertos hallados durante la inspección del río aguas
abajo o durante las labores de dragado.
Procedentes de episodios de mortandad masiva aguas abajo.
1. El encargado de vigilancia fluvial de mortandades localiza un acúmulo de peces
muertos aguas abajo de la zona de dragado y dentro de su zona de influencia.
Avisa al RTM para que disponga de un grupo de recogida de los cadáveres
hallados.
2. El grupo de recogida se persona en el tramo del río afectado y recoge los
ejemplares, almacenándolos provisionalmente en bolsas de plásticos o
contenedores.
3. Traslada las bajas al contenedor de la zona de obra y avisa a la empresa gestora
PROTOCOLO DE GESTIÓN DE RESIDUOS ORGÁNICOS DE ORIGEN ANIMAL 59
para su recogida.
4. El RTM o persona delegada firma y guarda copia de la ficha de retirada.
En estos casos puede ser conveniente analizar las causas del hallazgo pues puede
deberse a otro tipo de vertidos. Para ello se apartarán algunos de los ejemplares
recogidos de acuerdo al protocolo PN/TX/09-28 de TOMA DE MUESTRAS PECES.
INVESTIGACIÓN EPISODIOS DE MORTANDAD.
En el caso de gestión de exóticas resulta tambíen conveniente el análisis de algunos
ejemplares de acuerdo al mencionado protocolo para examen de carga parasitaria o
detección de enfermedades de declaración obligatoria.
Procedentes de hallazgos fortuitos durante la obra.
Durante las labores de dragado pueden encontrarse cadáveres de ejemplares no
recogidos durante los despesques debido a su inaccesibilidad, hallarse enterrados en el
fango (ej. galápagos) o reentrada. En tales casos los operarios de obra pueden proceder
directamente a su retirada y depósito en el contenedor SANDACH avisando al RTM de
este tipo de hallazgos.
4.7.1. Registro de actuación:
Se elaborará una ficha registro de cada actuación de retirada de ejemplares
Ficha de retirada de bajas. En estos documentos se hacen constar los datos de campo
que se consideran de interés sobre cada una de las muestras. Debe ser cumplimentada
por el tomador de muestra “in situ”.
4.7.2. Documentos de la recogida
El gestor de los SANDACH requerirá el cumplimentado de una ficha de recogida en la
que normalmente incluirá la siguiente información:
• Fecha en la que el material sale de la explotación.
• Nombre del establecimiento o explotación de la que sale el residuo.
• Descripción del material.
• Cantidad. Nº aproximado de peces afectados.
• Localización de los ejemplares muertos
• Lugar de origen y destino.
• Nombre y dirección del transportista y matrícula del vehículo.
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• Nombre y dirección del consignatario y, en su caso número de autorización.
El documento comercial deberá presentarse por triplicado: el original irá al destino final
(el consignatario deberá conservarlo), una copia será para el productor y la otra para el
transportista. Los documentos comerciales se deberán conservar durante un periodo
mínimo de dos años para su eventual presentación a las autoridades competentes.
4.7.3. Custodia hasta retirada
Deberá precisarse la localización geográfica de los contenedores de residuos SANDACH.
Estas ubicaciones serán seleccionadas para garantizar la custodia de los mismos, bien
en el interior de recintos cerrados, o zonas dotadas de algún tipo de vigilancia
(cámaras, seguridad privada, etc.).
A la retirada por gestor autorizado se rellenará la ficha de recogida.
4.8. ARCHIVO DE DOCUMENTOS Y REGISTROS
En este caso los impresos y registros son proporcionados por la empresa gestora de los
SANDACH.
El Responsable Técnico de Muestreo es responsable de la guarda y custodia de los
diferentes documentos y registros asociados a la toma de muestra.
4.9. REFERENCIA A PROCEDIMIENTOS O INSTRUCCIONES
• Protocolo de despesque y translocación de fauna acuática fluvial (TAXON, 2014).
• Protocolo de Gestión de fauna exótica (TAXON, 2014)
• Protocolo de Gestión de episodios de mortandad. (TAXON, 2014)
• Protocolos de muestreo y análisis para ictiofauna. Serie Metodología para el
establecimiento el Estado Ecológico según la Directiva MARCO del Agua. 2005.
Confederación Hidrográfica del Ebro (Ministerio de Medio Ambiente).
• LIFE-Trachemys (2012). Guía metodológica para la captura y manejo de
galápagos. Informes LIFE Trachemys nº 8. Conselleria d’Infraestructures, Territori
i Medi Ambient. 31 pp.
PROTOCOLO DE GESTIÓN DE RESIDUOS ORGÁNICOS DE ORIGEN ANIMAL 61
4.10. ANEXO- FLUJO DE TRABAJO
Traslado y translocación fauna
autóctona
Sacrificio especies exóticas
Episodios de mortandad
Hallazgos fortuitosdurante obra
(Protocolo de extracción y translocacion de fauna
acuática)
(Protocolo de gestión de fauna exótica)
(Protocolo devigilancia y control de mortandades)
Colocación de contenedores
sandach en recinto de obra
Depósito y custodia de residos sandach
Retirada contenedores por gestor autorizado
bajas
PROTOCOLO DE GESTIÓN DE RESIDUOS ORGÁNICOS DE ORIGEN ANIMAL / Protocolo extracción y translocación fauna acuática / DT2014/016
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5. ANEXO. DESINFECCIÓN DE EQUIPOS
En aquellas ocasiones en las que se tenga que acudir a dos o más estaciones de
muestreo localizadas en diferentes cauces o cuerpos de agua en un tiempo inferior a 10
días, se procederá a asegurar la desinfección de todos lo equipos que hayan entrado en
contacto con el agua para evitar posible contaminación biológica. Se prestará especial
atención tras la realización de trabajos en cuerpos de agua en los que se haya
constatado la presencia de especies invasoras especialmente dañinas.
El protocolo de desinfección de los equipos constará de tres fases:
5.1. VACIADO DEL AGUA, INSPECCIÓN VISUAL Y ELIMINACIÓN DE
RESTOS ADHERIDOS
• En el mismo lugar de muestreo, pesca o baño se procederá al minucioso vaciado
del agua acumulada en los equipos utilizados.
• Se inspeccionará visualmente todo el equipo para la eliminación de ejemplares
de cualquier especie que sean visibles y restos de vegetación acuática adherida.
• Los guantes de látex y el material desechable utilizado (pipetas, papel, etc.) se
guardarán en una bolsa para ser depositados en el contenedor adecuado una
vez hayan finalizado los trabajos.
5.2. LIMPIEZA Y DESINFECCIÓN
Las artes de pesca (redes, nasas, etc.), equipos de muestreo y todos los complementos
de baño deben ser desinfectados por inmersión o fumigación con una solución
desinfectante de 5 mg de cloro libre por litro.
Para conseguir la solución de agua clorada se empleará agua procedente de la red de
abastecimiento mezclada con lejía en la proporción que a continuación se indica para
obtener una concentración de 5 mg de cloro libre por litro (teniendo en cuenta que un
litro de lejía doméstica tiene aproximadamente 35 gramos de cloro activo o libre).
Volumen de agua tratada Volumen de lejía
10 litros 1,5 ml ó 30 gotas
100 litros 15 ml o una cucharada sopera
1 m3 150 ml
Anexo. Desinfección de equipos 63
5.3. SECADO
En el caso de que el equipo no vaya a utilizarse antes de diez días, se debe secar
manualmente en la medida de las posibilidades y posteriormente dejar secar al sol al
menos 10 días; se ampliará el plazo a 20 días si las condiciones de temperatura y
humedad relativa del lugar lo requieren, antes de volver a utilizarlo en otra masa de
agua.
Anexo. Desinfección de equipos
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6. CONTROL DE CAMBIOS
PROTOCOLO DE GESTIÓN DE FAUNA ACUÁTICA DURANTE LAS LABORES DE RESTAURACIÓN AMBIENTAL DEL RÍO SEGURA EN LA CIUDAD DE MURCIA DEPROTOCOLO
HOJA DE REGISTRO DE MODIFICACIONES
REVISIÓN FECHA MODIFICACIÓN REALIZADA
0 Mar 2014 Emisión inicial del protocolo
En Murcia, marzo de 2014
Fdo. Alberto Javier Perán Rex
Lcdo. en Biología
Control de cambios 65