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NOMBRE: CALZADA TORRES YENI MATRÍCULA: 200221640 TELÉFONO: 5842-04-51 LICENCIATURA: BIOLOGÍA DIVISIÓN: CIENCIAS BIOLÓGICAS Y DE LA SALUD UNIDAD UNIVERSITARIA: IZTAPALAPA TRIMESTRE LECTIVO: 04-I TÍTULO DEL PROYECTO: “ACTIVIDAD INSECTICIDA DE Sanvitalia fruticosa Y SU RELACIÓN CON EL HERBIVORISMO” ASESORES: M en C. Elisa Vega Ávila Biol. Ma. Del Carmen Herrera Fuentes LUGAR DE REALIZACIÓN: Las especies vegetales se colectaron en Zapotitlán de las Salinas, Puebla. La investigación se realizó en el laboratorio de Ecología animal (AS-) del Departamento de Biología y en el laboratorio de Hematología Experimental (S-254) del Departamento de Ciencias de la Salud. CLAVE DE REGISTRO: B.025.03
NOMBRE: Calzada Torres Yeni MATRICULA: 200221640 LICENCIATURA: Biología TÍTULO DEL PROYECTO: “ACTIVIDAD INSECTICIDA DE Sanvitalia fruticosa Y SU RELACIÓN CON EL HERBIVORISMO” CLAVE DE REGISTRO: B.025.03 FECHA DE ENTREGA: 21 de Junio 2004 ASESORES: M en C. Elisa Vega Ávila Biol. María del Carmen Herrera Fuentes
Resumen
Algunas plantas actúan como insecticidas, por lo que han sido aprovechadas por la humanidad para proteger a las cosechas del ataque de depredadores. En estudios recientes, se ha comprobado que los metabolitos secundarios de plantas con efectos insecticidas, pueden actuar inhibiendo la alimentación de insectos o bien perturbando el crecimiento, desarrollo, reproducción y comportamiento de los mismos.
Se utilizo como material vegetal a Sanvitalia fruticosa, fue colectada en Zapotitlán de las Salinas, Puebla. La planta se limpió de impurezas, secó, trituro y se extrajeron los diferentes compuestos de la planta con hexano, cloroformo, acetona, metanol y agua por maceración.
La actividad biológica se evaluó mediante la alimentación forzada de Tenebrio
molitor, durante 7 días esto se realizo por triplicado en tres eventos independientes con cada uno de los extractos. También se realizó un estudio fitoquímico para determinar los compuestos asociados a la actividad biológica.
En los resultados obtenidos Sanvitalia fruticosa presentó actividad antialimentaria
con los extractos metanolico y acetonico principalmente. Asimismo se observó cambios sobre el sistema de regulación del desarrollo larvario y sobre la ecdisis, ya que en el extracto cloroformico hubo mayor número de mudas, por lo que acelero el ciclo vital de Tenebrio molitor.
En el análisis fitoquímico se identifico compuestos del tipo terpenoide, esteroides
saponinas y taninos, por lo que a dichos metabolitos se les podría atribuir la actividad antialimentaria.
ACTIVIDAD INSECTICIDA DE Sanvitalia fruticosa Y SU RELACIÓN CON EL HERBIVORISMO.
INTRODUCCIÓN Hoy en día la protección de cultivos de plantas y la conservación de granos y semillas
almacenados, contra las plagas de insectos es un problema relevante para el desarrollo
de la agricultura.
El control de plagas es muy importante por los daños que causan a las plantas cultivadas
en las diferentes fases de su desarrollo. Existen diversos métodos para controlarlas,
entre ellos se encuentran los siguientes:
Métodos mecánicos. En este caso el hombre se valía de sus dedos para eliminar los
insectos que atacaban sus cultivos, ya que cuando las plantas presentaban ataque de
hongos, estás eran arrancadas a mano para destruirlas y así eliminar la enfermedad. Otro
de los procedimientos mecánicos de combate es el empleo de trampas para atrapar tanto
insectos como roedores.
Métodos físicos. En los que intervienen medios físicos, como el calor, frío,
esterilización por el agua caliente y el vapor. El empleo de agua a presión y las
inundaciones como en el caso del control de roedores.
Métodos Culturales. Son técnicas sencillas en las que interviene el desarrollo de
variedades de plantas resistentes, el empleo de cultivos trampa, el aumento de vigor de
las plantas, la rotación de cultivos, las labores necesarias para la siembra como son:
barbechos, rastreado y pulverización del suelo, etc.
Métodos químicos. Se realizan mediante la aplicación a los cultivos o productos
cosechados, de sustancias químicas sintéticas o naturales.
Métodos Biológicos. Muchas plagas de insectos son atacadas y destruidas por otros
insectos, ácaros o también por enfermedades causadas por hongos, bacterias y virus. El
aislamiento y cultivo de estos parásitos y depredadores en laboratorios adecuados, así
como su liberación y propagación en las zonas plagadas, constituye el método de
combate biológico artificial.
Todos los métodos se utilizan en mayor o menor medida. Sin embargo es probable que
el empleo de insecticidas sistémicos unidos al método biológico artificial, sea en el
futuro uno de los mejores procedimientos para la destrucción de las plagas agrícolas
(Ramírez, 1982).
Por ello es necesario desarrollar nuevos plaguicidas de menor riesgo al ambiente y a la
salud humana, desde tiempo inmemorial el hombre ha aprovechado tradicionalmente la
actividad biológica de algunas plantas para su aplicación como insecticidas.
Actualmente los campesinos continúan empleando diversas plantas para el combate de
plagas, por lo que se considera que el agente ideal que protege los cultivos es un
compuesto que repele o mata a las plagas y previene su desarrollo. (Costa, 1994)
Los fumigantes e insecticidas utilizados en el control de plagas en los productos
almacenados y en los cultivos no cumplen con los criterios anteriores; por ello, se
buscan nuevas plantas con actividad insecticida o nuevas alternativas antialimentarias.
Los metabolitos secundarios con propiedades antialimentarias pueden causar cambios
fisiológicos en el desarrollo del insecto. La inhibición de la alimentación probablemente
es el modo de acción más estudiado de los compuestos vegetales como insecticidas, ya
que un inhibidor de la alimentación es considerado como aquel compuesto, que luego
de una pequeña prueba, el insecto se deja de alimentar y muere por inanición (Forsth,
1998). Dentro de los metabolitos secundarios con actividad antialimentaria se
encuentran los taninos, alcaloides y los triterpenos (Lara, 1996). Estos últimos poseen
diferentes propiedades biológicas como son: actividad antifúngica, alelopática y
protección contra herbívoros; además se les ha atribuido propiedades antialimentarias
que pueden hacer que se les utilice como insecticidas de origen vegetal (Rosenthal and
Janzen 1979).
Investigaciones recientes sobre ecología, química, fisiología y bioquímica de insectos,
en especial el estudio de las interacciones entre planta e insecto han revelado que los
insecticidas naturales causan los siguientes efectos sobre las plagas:
I. Repelencia en larvas y adultos
II. Inhibición de la alimentación
III. Suspensión de ovoposición
IV. Bloqueo de la muda en larvas
V. Bloqueo del desarrollo y crecimiento
VI. Causa esterilidad en las hembras.
Como se observa, la mayoría de los efectos causados por insecticidas vegetales
son fisiológicos por lo que el insecto tiene que adquirirlos a través de su alimentación.
(Solórzano, 1993). El efecto de un insecticida vegetal, sobre todo el contenido de sus
ingredientes activos, depende de algunos factores como lo son la especie y variedad de
la planta, época de recolección, influencia del ambiente (clima, suelo, enfermedades),
parte cosechada de la planta, forma de preparación, forma de extracción y aplicación del
insecticida.
La utilización de extractos vegetales para el control de plagas tiene la ventaja de no
provocar contaminación debido a que estas sustancias son degradadas rápidamente en el
medio, de tal manera que las plantas nos proporcionan compuestos que son una
alternativa para la preparación de nuevos insecticidas (Cooperación, 1991)
Sanvitalia fruticosa “Ojo de gallo” (Argueta, 1994)
Características Botánicas y Distribución en México
Esta planta es originaria de México y pertenece a la familia Asteraceae. Habita
en climas cálido, semicálido, seco y templado, desde 8 hasta 2750m. Se localiza en
zonas áridas y semiáridas en el sur de México, específicamente en el Valle de Zapotitlán
Tehuacán, Puebla. Se encuentra en cultivos abandonados, a orillas de caminos, en zonas
urbanas o con vegetación perturbada de bosques tropicales caducifolios y
subcaducifolios, matorral xerófilo, pastizal, bosque espinoso. (Ramírez, 1996)
Es una planta herbácea, rastrera, de hasta 25 cm de largo; tallos pubescentes,
ramificados; hojas lanceolado-ovaladas, de 2 a 6 cm de largo por 1 a 2.5 cm de ancho.
Las flores están agrupadas en cabezuelas solitarias, en el extremo de las ramas, de dos
colores, las de la periferia amarillas (líguladas), las del centro (tubulares) casi negras.
Los frutos son dos aquenios de dos tipos: los de las flores liguladas con vilano de tres
aristas, los de las flores tubulares, comprimidos con vilano de 0 a 2 aristas.
El fruto seco comprimido por parte dorsal y ventral, alado, de 3 mm de largo por 1.7
mm de ancho, color café. En la orilla del ala tiene pequeños y cortos pelos, superficie
con pequeños tubérculos y en el ápice del fruto dos cerdas, una larga de 1.2 mm y una
corta de 0.5 mm (García L., E. 1995).
Etnobotánica
La planta completa se usa contra la diarrea, indigestión, disentería, vómito y
trastornos digestivos. Para corregir la presencia de sangre en la orina y detener el flujo
sanguíneo. Para el vómito se hierve toda la planta y se toma como té. Para las reumas en
alcohol se aplica localmente; al igual que para hinchazones y piquete de alacrán. Para la
indigestión y las enfermedades biliosas, se utilizan las hojas.
Las hojas son usadas para sanar la dislocación de huesos, astillas en pies,
inflamación de testículos. La raíz se usa como catártico, se emplea además para aliviar
calentura, mal de orín, riñón, comezón de encías, mal de ojo, enfermedades
respiratorias, se considera antioftálmico y calmante nervioso (Gómez, 1997).
En el municipio de Arroyo seco, Qro., la utilizan junto con el elotillo para sacar
pronto la placenta y en Landa de Matamoros Qro., la usan como forraje para las reces.
FIGURA 1. Sanvitalia fruticosa
Figura 2. Flores de Sanvitalia fruticosa
Tenebrio molitor cultivado es un buen modelo para estudiar la actividad insecticida de
los extractos vegetales, debido a que este insecto tiene hábitos alimenticios muy
variados; además, tiene un ciclo de vida corto que puede ser manejado perfectamente en
los estudios de laboratorio además de que presentan característas de voracidad (Borror
1981).
a) La clasificación de Tenebrio molitor de acuerdo a Borror et al (1981) es:
Phylum: Artropoda
Subphylum: Unirramia
Clase: Insecta
Orden: Coleóptera
Suborden: Polyphaga
Superfamilia: Tenebrionoidea
Familia: Tenebrionidae
Genero: Tenebrio
Especie: Tenebrio molitor
b) Figura 5. Ciclo de vida de Tenebrio molitor
Huevecillos 14 días
7-10 días
2-3 semanas
OBJETIVO GENERAL Identificar los compuestos activos presentes en Sanvitalia fruticosa y su efecto
biológico sobre Tenebrio molitor.
OBJETIVOS ESPECIFICOS
I. Extraer los diversos metabolitos de la planta de acuerdo a la solubilidad con los
disolventes:
Hexano
Cloroformo
Acetona
Metanol
Agua.
II. Evaluar la actividad antialimentaria e insecticida de los extractos.
III. Determinar los grupos de compuestos a través de pruebas fitoquímicas
cualitativas asociados a la actividad biológica.
METODOLOGIA
Se realizó una salida a la zona de Zapotitlán de las Salinas Puebla, en el mes de
julio del 2003. El área donde se colectó la planta cuenta con una superficie de 86.74
Km2 , se encuentra ubicada dentro de las coordenadas 18°20” de latitud Norte y 97°28”
de longitud Oeste. Está enclavado en la sierra del mismo nombre que forma el límite
suroeste del Valle de Tehuacán en el estado de Puebla, México (Vite et al; 1992).
El clima determinado para el valle de Zapotitlán de las Salinas, Pue.
corresponde a un clima seco con régimen de lluvias en verano, con dos máximas de
lluvias separadas por dos estaciones secas. La vegetación corresponde al matorral
espinoso (Zavala, 1982).
Figura 3. Mapa de la ubicación del área de colecta
La planta se limpió de impurezas (otras plantas y tierra), se secó protegida de la
luz y polvo, finalmente se molió empleando una licuadora.
Obtencion de los extractos
Se tomaron 500 g de la planta triturada y se colocaron en un matraz balón con
2.5 L de hexano. El matraz se tapó y cubrió con papel aluminio para protegerlo de la
luz. Se dejo macerar durante 48 horas a temperatura ambiente. Posteriormente se filtró
y evaporó el hexano empleando un rotavapor.
La planta residual se dejó secar a temperatura ambiente en una campana de
extracción para eliminar restos del disolvente anterior (hexano), una vez seca la planta
se procesó de la manera anterior, adicionando como segundo disolvente cloroformo,
como tercer, cuarto y quinto disolvente acetona, metanol y agua respectivamente, este
último se concentro empleando un baño Maria.
Cada uno de los extractos se colocó en frascos de vidrio previamente tarados y
se calculó el rendimiento de cada extracto.
Actividad Antialimentaria e Insecticida
La actividad biológica se evaluó mediante la alimentación forzada de Tenebrio
molitor, utilizando larvas de la misma etapa de desarrollo (segunda etapa larvaria).
Para ello las larvas se pusieron a dieta 3 horas antes de realizar las pruebas alimentarias.
Se probaron los extractos a una concentración de 1% p/p disolviendo 0.10g de cada
uno de los extractos (hexanico, cloroformico, acétonico, metanolico, acuoso) en 2 ml de
acetona (disolvente que se evapora a temperatura ambiente).
Se colocaron en cajas Petri, 10 g de harina y se impregnó con los 2 ml de solución
del extracto. Se dejaron las cajas abiertas a temperatura ambiente, durante 24 horas a fin
de eliminar la acetona empleada para disolver los extractos.
A fin de evaluar el efecto del disolvente (acetona) se empleó un control que contenía
10 g de harina/2 ml de acetona. Como segundo control positivo se empleó sólo harina.
Posteriormente se coloco en cada caja 10 larvas (previa dieta) y se evaluó cada 24
horas los cambios en el peso.
Se realizó un primer experimento, el cual duró 43 días (gráfica 1), y como se observó
que los cambios mas importantes se llevaban dentro de los primeros 7 días se decidió
hacer los experimentos solo durante este lapso de tiempo por triplicado y en tres eventos
independientes con cada uno de los extractos.
Análisis Fitoquímico de los Extractos
Se tomaron alícuotas de cada uno de los extractos y se realizaron diluciones en los
disolventes adecuados con el fin de solubilizar e identificar la presencia de: alcaloides,
saponinas, esteroles y terpenos, taninos, flavonoides y cumarinas, cuyas pruebas se
describen a continuación (Rizk, 1982, Al-Yahya, 1986, Kapoor, 1969).
Alcaloides: Se tomó 0.1g de cada uno de los extractos y se disolvió con 5ml de HCl
2.0 M, se calentó en un baño maría y se filtró. Se colocaron 1.5 ml del filtrado en
tres tubos de ensaye, los cuales se marcaron como A1, A2 y A3. Al tubo A1 no se le
adicionó nada, al tubo A2 se le adicionaron 0.2 ml del reactivo de Mayer y al tubo
A3 se le adicionaron 0.2 ml del reactivo de Wagner. Ambos reactivos forman un
precipitado que indica la presencia de alcaloides.
Saponinas: Se disolvió en un tubo de ensaye 0.3 g del extracto con agua caliente y
se agitó vigorosamente por algunos minutos. La formación de espuma por algunos
minutos considera positiva la prueba , como se muestra a continuación:
No espuma La prueba es negativa
Espuma < 1 cm La prueba es ligeramente positiva
Espuma de 2 cm La prueba es positiva
Espuma > 2 cm La prueba es fuertemente positiva
Esteroles y Terpenos: Se disolvió una porción de cada extracto con 1 ml de
cloroformo, enseguida se agregó 1 ml de anhídrido acético dejando resbalar por las
paredes del tubo, se dejó reposar en frío. Posteriormente se añadieron 1 o 2 gotas de
ácido sulfúrico concentrado: la aparición de un anillo color azul en la interfase se
considera positiva.
Taninos: Se tomo una porción de cada uno de los extractos y se disolvió con 10 ml
de cloruro de sodio al 0.85% caliente, se filtró y dividió en dos partes iguales. A una
parte se le adicionó solamente solución de gelatina 1% a una segunda porción se le
adicionó cloruro férrico. Debido a que los taninos precipitan proteínas y forman
complejos coloridos con Fe 3+; es por eso que se utiliza el cloruro férrico para
corroborar la presencia de taninos (Harbone, 1989).
Flavonoides: Se tomó una porción de cada extracto y se diluyo con etanol
posteriormente una tira de papel filtro se impregnó con cada extracto diluido y se
dejó secar a temperatura ambiente, enseguida se sometió a la acción de vapores de
amoníaco (hacerlo en la campana), la aparición de colores amarillo ocre se
considera positiva para flavonoides.
Cumarinas: 0.2 g de cada uno de los extractos se colocaron con 1 ml de agua a baño
maría durante 5 minutos, posteriormente se colocó en la parte superior una tira de
papel filtro impregnado con NaOH 0.1 M. Esta tira se observó bajo luz ultravioleta.
La aparición de manchas amarillas fosforecentes nos indica que la prueba es
positiva.
ACTIVIDADES REALIZADAS El proyecto del servicio social se desarrolló durante seis meses, en los cuales se llevaron
las siguientes actividades:
Revisión de la información bibliográfica que apoyó el proyecto.
Colecta de la planta de estudio.
Obtención de los diferentes extractos.
Realización de pruebas antialimentarias, fitoquímicas y antibacterianas.
Se analizaron los resultados obtenidos.
Se elaboro el reporte final del servicio Social.
OBJETIVOS Y METAS ALCANZADAS Objetivos. Los objetivos que se plantearon al inicio fueron:
Obtener la planta y elaborar los extractos.
Realizar las pruebas de actividad antialimentaria.
Detectar las familias de compuestos presentes en los extractos. Metas alcanzadas Se cubrieron los objetivos presentados en el anteproyecto del Servicio Social, por lo
tanto se considera que las metas alcanzadas fueron del 100%.
RESULTADOS Los resultados de la prueba biológica realizada con los diferentes extractos se observan
en la gráfica 2. En el eje de las “Y” se encuentran valores positivos (aumento de peso) y
negativos (disminución de peso). El % de incremento de peso es la media de los tres
experimentos.
Como se puede observar la prueba de actividad antialimentaria mostró
resultados favorables en la mayoría de los extractos. La mayor actividad la presentó el
extracto metanolico, seguido por el extracto de acetona. Los extractos obtenidos con
cloroformo y agua mostraron una débil actividad antialimentaria. El extracto hexánico a
partir del cuarto día, presentó una actividad similar a la de los controles positivos.
EFECTO DE LOS EXTRACTOS DE Sanvitalia fruticosa SOBRE LA ALIMENTACIÓN DE Tenebrio molitor
-5-4-3-2-101234
1 2 3 4 5 6 7 8
Tiempo (Días)
% In
crem
ento
de
Peso
Control harinaControl harina+acetonaHexanoCloroformoAcetona Metanol Acuoso
En la Tabla 1 se muestran los tipos de compuestos presentes en los diferentes extractos
de Sanvitalia fruticosa.
EXTRACTO ALCALOIDES
MR WR
SAPONINAS
ESTEROLES Y
TERPENOS
TANINOS
CUMARINAS FLAVONOIDES
Hexano -- -- -- -- -- -- --
Cloroformo -- -- -- -- -- -- --
Acetona -- -- -- + -- -- --
Metanol -- -- + + + -- --
Acuoso -- -- ++ -- + -- --
Tabla 1. MR: Reactivo de Mayer, WR: Reactivo de Wagner, ++: Abundante, +: Ligera presencia, --: No
presencia.
Como se puede observar, los extractos obtenidos de la planta completa de
Sanvitalia fruticosa que presentaron mayor cantidad de compuestos, fueron el acuso que
presentó mayor cantidad de saponinas y poca presencia de taninos, por otra parte en el
extracto metanólico se observó ligera presencia de saponinas, taninos, esteroles y
terpenos estos últimos se detectaron en ligera presencia en el extracto acetonico.
EFECTOS DE LOS DIVERSOS EXTRACTOS SOBRE EL DESARROLLO DE
LAS LARVAS DE Tenebrio molitor.
Durante los experimentos realizados se observó que hubo cambios sobre el
sistema de regulación del desarrollo larvario y sobre la ecdisis. El primer experimento
sobre actividad antialimentaria se monitoreo durante 43 días y se decidio realizar los
siguientes dos experimentos hasta el día 7 ya que el cambio de mudas era muy evidente.
En la mayoría de los extractos los tenebrios empezaron a cambiar de muda a
partir del sexto día. En el extracto de cloroformo hubo quince cambios de mudas en un
tiempo muy corto, lo cual indica que acelero el ciclo vital esto se corrobora debido que
conforme transcurría el tiempo se observó que tres larvas cambiaron a estado adulto en
el día 27, 34 y 41, respecto al control de harina que en el día 40 solo una larva paso a
estado adulto, en los demás extractos las larvas no llegaron a estado adulto y el número
de mudas presentes fueron menores.
El que tuvo menor número de mudas fue el extracto de hexano. Lo anterior se
resume en la Tabla 2 donde se muestra el número de mudas presentes por día y la
cantidad total de larvas que pasaron a estado adulto en cada extracto.
Tabla 2. Efecto de los Extractos sobre el Desarrollo de las Larvas de Tenebrio molitor Día 6 Día 8 Día 11 Día 22 Día 33 Día 35 Día 38 Día 39 Total de
adultos Control harina 2 mudas 1 mudas 1 muda 1 muda 1muda 1 Control harina+acetona
1muda 1 muda 1 muda 0
Hexano 1 muda 0 Cloroformo 3 mudas 2 mudas 4 mudas 3 mudas 2 mudas 1 muda 3 Acetona 1 muda 1 muda 1 muda 0 Metanol 1 muda 1 muda 0 Acuoso 2 mudas 1 muda 0
DISCUSIÓN Y CONCLUSIÓNES
El ciclo de vida de T. molitor se divide en cuatro fases: huevecillo, larva, pupa y
escarabajo. En la vida silvestre este ciclo puede variar de 6 a 12 meses, mientras que
con parámetros adecuados de temperatura, humedad, nutrición e iluminación este ciclo
puede reducirse de 10 a 12 semanas (Borror, 1981).
Las larvas crecen hasta 25 milímetros antes de convertirse en pupas. Después de
convertirse en pupas, los adultos emergen en dos o tres semanas. Entre los siete y diez
días, la hembra pone huevos. En aproximadamente catorce días, los huevos eclosionan y
las larvas comienzan a comer y a desarrollarse.
El cambio de mudas constante se puede deber a que los compuestos estén
afectando su desarrollo, como en el caso de los extractos de acetonico y metanolico,
donde se observo que disminuyeron de peso.
Por otra parte, no se observaron larvas muertas durante el desarrollo del
experimento, por lo que no existe actividad insecticida. Ya que la planta también
presenta usos medicinales se evalúo la actividad antibacterianas de los extractos sobre
las bacterias Sataphylococcus aureus, Escherichia coli SOS, Escherichia coli ATCC,
Salmonella thyphy, Bacillus subtilis, Proteus mirabilis y se encontró que ningunos de
los extractos tuvo activiadad antibacteriana. Los compuestos químicos presentes en la
planta parecen actuar sobre los receptores gustativos del insecto, ya que inhiben su
alimentación. Por lo que los resultados obtenidos demuestran que Sanvitalia fruticosa
no presenta actividad insecticida, pero si antialimentaria en solo dos extractos
(metanolico y acetonico), esta actividad quizás se deba a la presencia de terpenos que se
detectaron en el estudio fitoquímico, ya que las referencias bibliográficas indican que
este tipo de compuestos posé actividad insecticida (Rosenthal, 1979).
El extracto acuoso tuvo abundante presencia de saponinas, las cuales se han
empleado como detergentes naturales debido a que son sustancias que rebajan la tensión
superficial y producen espuma al contacto con el agua. Las saponinas son compuestos
de tipo terpenoide o esteroidal unidos a azúcares, que tiene características de lisar los
eritrocitos además de presentar las actividades biológicas como son anti-inflamatoria,
actividad contra los moluscosida, fungistatita, tóxico y espermaticida (Sotheeswaran, S.
1989). Asimismo dados los antecedentes de la planta en estudio y experimentos más
detallados permitan detectar alguna actividad biológica importante para el tratamiento y
control de algunas enfermedades.
Cabe señalar, que un insecto también puede rechazar una planta como sustrato al
detectar la presencia de sustancias que afecten su crecimiento y desarrollo, en forma
similar que con la presencia de sustancias tóxicas y son de suponer reacciones de índole
diversa frente a las complejas mezclas de metabolitos presentes, no ya en cada planta,
sino en partes diferenciadas de la misma, como se ha puesto de manifiesto con raíces,
semillas y hojas, debido a su distinta composición (Helmut, F 1997).
A pesar de que los extractos procedentes de S. fruticosa no mataron a las larvas,
dos de ellos tuvieron efecto sobre la disminución del peso por lo que estos actúan
limitando el desarrollo del insecto, lo que en un proceso a largo plazo conllevara a una
disminución en la población de insectos.
Con todo lo anterior podemos decir que las plantas producen metabolitos
secundarios, que si bien no son necesarios en las rutas metabólicas si son de vital
importancia para mantener la integridad de la planta ya que evitan que sean destruidas
parcial o totalmente por plagas como son los hongos y los insectos. Dado que se usó la
planta completa, es posible que los compuestos que actuaron sobre la alimentación de T.
molitor se encuentren presenten de manera importante en la raíz y que estos compuestos
se difundan y de esta manera repelen a los insectos evitando que la planta les sirva de
alimento ya que se pudo constatar que las hojas estaban completas.
CRITERIOS DE EVALUACIÓN Se acordó evaluar el servicio social mediante la obtención de resultados experimentales
y la entrega de un informe final. Por lo que el trabajo realizado cubrió el 100% de los
objetivos propuestos.
APÉNDICE.
Preparación De Reactivos.
Cloruro Férrico. Se colocan 50 ml de agua destilada en un matraz volumétrico y se
adiciona 1.0 g de FeCl3.6H2O. Se disuelve y afora con agua destilada hasta la marca.
Gelatina 1% p/v. En un matraz volumétrico de 100 ml se colocan 50 ml de agua
destilada y se adiciona 1.0 g de gelatina. Se disuelve y afora con agua destilada hasta la
marca. Mezclar la disolución.
NaCl 0.85 % p/v. En un matraz volumétrico de 100 ml se colocan aproximadamente 50
ml de agua destilada y se disuelven 0.85 g de NaCl. Se afora con agua destilada hasta la
marca y se homogeniza.
Ácido clorhídrico 2.0 M. Se coloca en un matraz volumétrico de 100 ml
aproximadamente 50.0 ml de agua destilada y readiciona resbalando por la pared 16.7
ml de HCl concentrado ( pureza = 37 %, ρ = 1.18 g/ml). Mezclar con cuidado y aforar
hasta la marca con agia destilada.
Hidróxido de sodio 0.10 M. Se coloca en un matraz volumétrico de 100 ml
aproximadamente 50 ml de agua y se adiciona 0.40 g de NaOH. Se disuelve y afora con
agua destilada hasta la marca.
Reactivo de Wagner. Se disuelven en 70 ml de agua destilada 2.0 g de KI y 1.27 g de
I2. Aforar con agua destilada hasta un volumen de 100 ml.
Reactivo de Mayer. Preparar por separado las soluciones de HgCl2 y KI. Se disuelve
60 ml de agua destilada 1.358 g de HgCl2. Disolver en 10 ml de agua destilada 5.0 g de
KI. Posteriormente se mezclan las disoluciones anteriores y se aforan con agua destilada
hasta un volumen de 100 ml.
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FIRMA DEL ALUMNO _____________________
Calzada Torres Yeni
FIRMA ASESORES _______________________ ___________________________________ M En C. Elisa Vega Ávila Biol. María del Carmen Herrera Fuentes