EVALUACIÓN DEL EFECTO INSECTICIDA DEL EXTRACTO DE...
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EVALUACIÓN DEL EFECTO INSECTICIDA DEL EXTRACTO DE Amanita muscaria PARA EL CONTROL DE Sarcophaga Carnaria (MOSCA GRIS DE LA CARNE) MEDIANTE ASPERSIÓN E INGESTIÓN EN CONDICIONES DE LABORATORIO. CATHERINE PRIETO BAQUERO JOHAN OSWALDO SOLÓRZANO VILLARREAL UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALDAS FACULTAD DEL MEDIO AMBIENTE Y RECURSOS NATURALES TECNOLOGÍA EN SANEAMIENTO AMBIENTAL BOGOTÁ D.C 2015
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EVALUACIÓN DEL EFECTO INSECTICIDA DEL EXTRACTO DE Amanitamuscaria PARA EL CONTROL DE Sarcophaga Carnaria (MOSCA GRIS DE
LA CARNE) MEDIANTE ASPERSIÓN E INGESTIÓN EN CONDICIONES DELABORATORIO.
CATHERINE PRIETO BAQUERO
JOHAN OSWALDO SOLÓRZANO VILLARREAL
UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALDAS
FACULTAD DEL MEDIO AMBIENTE Y RECURSOS NATURALES
TECNOLOGÍA EN SANEAMIENTO AMBIENTAL
BOGOTÁ D.C
2015
EVALUACIÓN DEL EFECTO INSECTICIDA DEL EXTRACTO DE Amanitamuscaria PARA EL CONTROL DE Sarcophaga Carnaria (MOSCA GRIS DE
LA CARNE) MEDIANTE ASPERSIÓN E INGESTIÓN EN CONDICIONES DELABORATORIO.
CATHERINE PRIETO BAQUERO 20121085049JOHAN OSWALDO SOLÓRZANO VILLARREAL 20121085041
Trabajo de grado en modalidad de proyecto de investigación presentado comorequisito parcial para optar por el título de TECNÓLOGO EN SANEAMIENTO
AMBIENTAL
DIEGO TOMAS CORRADINE MORAMédico Veterinario -M. Sc. Salud Pública
UNIVERSIDAD DISTRITAL FRANCISCO JOSÉ DE CALDAS
FACULTAD DEL MEDIO AMBIENTE Y RECURSOS NATURALES
TECNOLOGÍA EN SANEAMIENTO AMBIENTAL
BOGOTÁ D.C
2015
SEPTIEMBRE 2015, BOGOTÁ D.C
AGRADECIMIENTOS
A nuestros padres y maestros quienes con sus esfuerzos,
inspiran nuestro constante camino de aprendizaje.
INDICE DE IMÁGENES
Imagen 1 SARCOPHAGA CARNARIA - MOSCA GRIS DE LA CARNE ................................................. 20Imagen 2 SARCOPHAGA CARNARIA - MORFOLOGIA ..................................................................... 21Imagen 3 AMANITA MUSCARIA ...................................................................................................... 24Imagen 4 ESPECIMEN A. MUSCARIA ............................................................................................... 28Imagen 5 EVAPORACION DEL ETANOL AL 95% POR MEDIO DEL ROTOVAPOR ............................. 29Imagen 6 TRAMPAS PARA POSTURAS DE HUEVOS ........................................................................ 29Imagen 7 HUEVOS DE SARCOPHAGA CARNARIA ........................................................................... 30Imagen 8 LARVAS ESTADIO 2...........................................................................................................31Imagen 9 ALIMENTACION LARVAS EN CARNE ..……………………………………………………………..……….….31Imagen 10 PUPAS DE SARCOPHAGA CARNARIA ............................................................................ 31Imagen 11 MOSCAS ADULTAS......................................................................................................... 32Imagen 12 BIOENSAYOS CON ADULTOS - 3 REPETICIONES Y GRUPO CONTROL .......................... 33Imagen 13 CARNE IMPREGNADA CON EL EXTRACTO..................................................................... 34Imagen 14 BIOENSAYOS LARVAS - 3 REPETICIONES Y UN CONTROL............................................. 35Imagen 15 VASOS PLASTICOS IMPREGNADOS DEL EXTRACTO...................................................... 35Imagen 16 LARVAS IMPREGNADAS CON EL EXTRACTO ................................................................. 35
INDICE DE TABLAS
Tabla 1 Legislación aplicable ............................................................................................................. 26Tabla 2 Categoría taxonómica – Sarcophaga carnaria............................................................ 28Tabla 3 clasificación científica - Amanita muscaria .................................................................. 33Tabla 4- Métodos de análisis ............................................................................................................ 45Tabla 5 - Análisis de varianza: Formulación. ..................................................................................... 47Tabla 6 - Análisis de varianza: Formulas ........................................................................................... 49Tabla 5 - Ilustración numérica: adultos - aspersión .......................................................................... 58Tabla 7 - Análisis de varianza: Adultos – aspersión........................................................................... 59Tabla 8 - Ilustración numérica: Adultos- ingestión ........................................................................... 68Tabla 10- Análisis de varianza: Adultos ingestión ............................................................................. 69
INDICE DE GRAFICOS
Gráfico 1 - Aspersión adultos: grupo 1.............................................................................................. 52Gráfico 2 Aspersión adultos: Grupo 2 ............................................................................................... 53Gráfico 3 - PROBIT: ADULTOS - ASPERSIÓN ...................................................................................... 54Gráfico 4 - TIEMPOS LETALES: CL 50 ................................................................................................. 55Gráfico 5 - TIEMPOS LETALES: CL 90 ................................................................................................. 57Gráfico 6 - Adultos ingestión: grupo 3 .............................................................................................. 61Gráfico 7 - Descriptivo exploratorio: Adultos – ingestión Grupo 4................................................... 62Gráfico 8 - CURVA PROBIT................................................................................................................. 63Gráfico 9 - TIEMPOS LETALES: CL50 .................................................................................................. 64Gráfico 10 - TIEMPOS LETALES: CL 90 ............................................................................................... 66
INDICE DE ANEXOS
Anexo 1- Tabla de enfermedades ..................................................................................................... 65Anexo 2 - Imagen ciclo de vida y medios de transmisión de enfermedades.................................... 66Anexo 3 - Características insecticidas de Amanita muscaria sobre las moscas. ............................... 67
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RESUMEN
Se evaluó el efecto insecticida del hongo Amanita muscaria, sobre una población
de Sarcophaga Carnaria procedente de las instalaciones de la Universidad
Distrital Francisco José de Caldas - sede vivero. Los bioensayos se realizaron
en el laboratorio de Zoonosis y salud pública de la universidad, por medio de
aspersión e ingestión en moscas de estadio larvario y adulto, llevando un
seguimiento en los diferentes tiempos de exposición frente al extracto cada: 2,12,
24, 48 y 72 horas. De igual manera, se llevó a cabo la utilización del extracto en
diferentes concentraciones para identificar y establecer los tiempos letales de
dicho díptero.
Se comprobó que el extracto de Amanita muscaria requiere ser utilizado por
aspersión en adultos en concentraciones por encima del 50% para lograr una
mayor letalidad, por el método de ingestión en adultos 5000 ppm y en estado
larvario no se presentó ninguna mortalidad frente al extracto.
Por medio de esta implementación se planea controlar eficazmente la plaga de
Sarcophaga carnaria y a su vez que sea amigable con el medio ambiente y la
salud de la comunidad.
Palabras claves: Sarcophaga carnaria, Amanita muscaria, bioinsecticida, mosca,
control biológico, bioensayo, control de vectores.
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ABSTRACT
The insecticidal effect of Amanita muscaria was evaluated on a Sarcophaga
carnaria population from different places of “Universidad Distrital Francisco José
de Caldas – sede vivero”. The Bio-essays was realized in zoonosis and public
health laboratory, through sprinkling and ingestion, in flesh flies, larvae and
adults, with a continuous follow up in different times of the exposition in front of
the extract each: 2,12, 24, 48 y 72 hours. In the same way, the use of the extract
in different concentrations to identify and establish lethal times of the Dipteral.
It was found the extract of Amanita muscaria, needs to be used by spray in adults
in concentrations above 50% for greater lethality, by the method of ingesting 5000
ppm in adults and larval did not show any mortality.
Through this implementation is planned effectively control the plague of
Sarcophaga carnaria and in the same time be friendly to the environment and
health of the community.
Keywords: Sarcophaga carnaria, Amanita muscaria, bioinsecticidal, flesh fly,
biological control, bioessay, vectors control.
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1. INTRODUCCION
El uso de plaguicidas sintéticos es el método más común para el control de
plagas, sin embargo, el uso de estos químicos genera una serie de problemas
ambientales y de salud, además, que su uso indiscriminado ha desarrollado
resistencia en las plagas haciendo cada vez más costoso su control (Ripa &
Rodriguez, 1998).
Las moscas de la carne son consideras como una plaga de importancia primaria
en salud pública, debido a su velocidad de proliferación y notable presencia en
la cotidianidad, puesto que no son los insectos más limpios. Estas, visitan sitios
tales como vertederos, alcantarillas, cúmulos de basura. Se alimentan de
material fecal, flujo de heridas, llagas o úlceras, saliva y de todo tipo de material
húmedo putrefacto tales como pescado, huevos y carnes descompuestas
(Jacobs, 2013).
Amanita muscaria es un hongo que se destaca por su historia, componentes
químicos y el envenenamiento que produce su consumo, caracterizado por las
alteraciones que genera al sistema nervioso central, características que son
revisadas por áreas como: la química, la toxicología y la biología (The British
Mycological Society, 2003). El nombre “muscaria” se refiere a sus propiedades
insecticidas, ya que intoxica a las moscas que se paran sobre la seta. No todos
los autores aceptan esta utilidad insecticida de la seta (ni su relación con la
denominación de la especie). Por ello varios botánicos y naturistas –de diferentes
épocas- han intentado verificar esta hipótesis, sin llegar a algún acuerdo (Revista
Catalana de Micología, 2014). Referentes bibliográficos recientes nos conducen
a realizar ensayos mediante los cuales se pueda llegar a una conclusión acerca
de este hongo y sus características insecticidas verificando hipótesis planteadas
a través de diferentes épocas.
El presente proyecto tiene como objeto la búsqueda del control de la
Sarcophaga carnaria (mosca gris de la carne) mediante el uso de Amanita
muscaria reduciendo a su vez los impactos ambientales y de salud en la
comunidad.
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2. JUSTIFICACION
La mosca gris de la carne se ha establecido como una plaga de importancia a
causa de sus hábitos de vida, puesto que es sospechosa de transmitir a los
humanos, por lo menos, 65 enfermedades, incluyendo la fiebre tifoidea, cólera,
disentería, poliomielitis, enfermedades contagiosas de la piel (en países
tropicales), ántrax, tularemia, lepra y tuberculosis.
Las moscas regurgitan (expelen por la boca, sin vomitar, lo contenido en el
estómago) y excretan donde se posan para descansar, de ese modo, transmiten
mecánicamente organismos de enfermedades (Jacobs, 2013). Los plaguicidas
son sustancias químicas destinadas para matar, repeler, atraer, regular o
interrumpir el crecimiento de plagas en su sentido más amplio (Instituto Nacional
De Seguridad e Higiene En El Trabajo , 1999). El contacto con plaguicidas
sintéticos puede dañar a las personas en algunas circunstancias, por ejemplo, si
el contacto es con altas dosis puede producirse la muerte; pero dosis bajas con
largos períodos de contacto también pueden provocar enfermedades.
Simultáneamente con el aumento del uso de plaguicidas, crecieron
significativamente los accidentes y enfermedades asociadas, según datos de la
OMS, anualmente se intoxican dos millones de personas por exposición directa
o indirecta a plaguicidas. (Organizacion Mundial De La Salud , 2015). El
problema de la contaminación por plaguicidas es cada vez más grave tanto por
la cantidad y diversidad, como por la resistencia a ellos que adquieren algunas
especies, lo que ocasiona que se requiera cada vez mayor cantidad del
plaguicida para obtener el efecto deseado en las plagas.
Adicionalmente, la flora y fauna es afectada cada vez más destruyendo la
diversidad natural de las regiones en que se usan. Del mismo modo pueden
penetrar en el hombre a través de plantas y animales que se consumen como
alimento (González, 2004).
Amanita muscaria, también llamada vulgarmente: matamoscas, es una seta de
las más populares y conocidas, posiblemente por sus colores llamativos y su
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presencia en numerosos cuentos de hadas y duendes, es el prototipo de
seta venenosa. En nuestra actualidad es altamente consumida, por sus efectos
sicoactivos. En partes de Europa se data, es utilizada artesanalmente como
insecticida. Pese a estos hechos, durante muchos años se ha mantenido una
constante discusión acerca de la utilidad de la seta como insecticida, puesto que
no todos los autores aceptan estas afirmaciones como es el caso de G. Wasson.
Se ha intentado verificar esta hipótesis en diferentes épocas, mediante diferentes
ciencias y no se ha llegado a un acuerdo (Revista Catalana de Micología, 2014).
Dicha discusión nos permite dar cabida a la realización de bio-ensayos para
afianzar y esclarecer las suposiciones realizadas a partir del efecto insecticida
de Amanita muscaria sobre la mosca.
Basados en la necesidad de establecer soluciones alternativas para el control de
plagas de importancia en salud pública como lo es Sarcophaga carnaria (Mosca
gris de la carne), se decide evaluar el efecto insecticida de Amanita muscaria
como agente para el control de moscas, inhibiendo el uso de químicos dentro de
su utilización, fundamentando el uso comprometido con el medio ambiente y
salud de la comunidad.
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3. OBJETIVOS
3.1. OBJETIVO GENERAL
Evaluar el efecto insecticida del extracto de Amanita muscaria para el
control de Sarcophaga carnaria (mosca gris de la carne) en larvas y
adultos mediante aspersión e ingestión en condiciones de laboratorio.
3.2. OBJETIVOS ESPECÍFICOS
Identificar en condiciones de laboratorio el método más efectivo:
Aspersión o ingestión, para el control de Sarcophaga carnaria en larvas y
adultos.
Valorar la eficiencia mediante la tasa de mortalidad pasadas 2, 12, 24, 48,
72, horas de la aplicación.
Estimar la eficacia de la aplicación del extracto de Amanita muscaria en
diferentes concentraciones.
Identificar las concentraciones letales (CL50 y CL90) y los tiempos letales
(TL50 y TL90) de la aplicación del extracto de Amanita Muscaria sobre
mosca gris de la carne.
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4. MARCOS DE REFERENCIA
4.1. MARCO LEGAL
Tabla 1 Legislación aplicable
LEY/DECRETO/ RESOLUCION/
ACUERDO
FECHA DE
EXPEDICION
ENTIDAD QUE
LO EXPIDE
QUE SE
REGLAMENTA
Decreto 2257 de 1986
Julio 16 de 1986
Ministerio de Salud, Ministerio de Agricultura
Investigación, prevención y control de la zoonosis
Ley 9 de 1979 Enero 24 de 1979
Ministerio de salud
Medidas sanitarias
Reglamento Sanitario Internacional
2005-2012
Organización Mundial de la Salud
Reforzar la seguridad sanitaria nacional, regional y mundial.
Plan Nacional de Salud Ambiental
(PLANASA)
2000- 2010
Ministerio de
salud, Organización
Panamericana de la Salud y
Organización Mundial de la
Salud
Establece como prioritario la
formulación de planes integrados de acción
sectorial para aumentar la calidad
del agua y su abastecimiento,
ampliar los servicios de eliminación de
desechos y excretas y mejorar la calidad
ambiental y la salud ocupacional.
Decreto 1443 de 2004
Mayo 7 de 2004
Ministerio de Ambiente, Vivienda y Desarrollo Territorial
Establecer medidas ambientales para el manejo de plaguicidas, prevención y manejo seguro de los desechos provenientes de los mismos, para proteger la salud humana y el medio ambiente
Decreto 1843 de 1991
Julio 22 de 1991
Ministerio de Salud, Presidente de la república
Uso y manejo de plaguicidas
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4.2. MARCO CONCEPTUAL
4.2.1. SARCOPHAGA CARNARIA (MOSCA GRIS DE LA CARNE)
4.2.1.1. DEFINICION
Especies de insectos, pertenecientes al orden de los dípteros braquíceros,
conocidas vulgarmente como moscardas de la carne porque sus larvas se
desarrollan en la carroña y el estiércol, así como en los tejidos vivos de las
personas y otros animales.
FUENTE: (Berenguer G. , 2001)
Ley 715 de 2001; Numeral 42.13
Diciembre 21 de 2001
Congreso de Colombia
Competencias conferidas a la Nación como responsable de la dirección del sector salud y del Sistema General de Seguridad Social en Salud en el territorio nacional: "Adquirir, distribuir y garantizar el suministro oportuno de los insumos críticos para el control de vectores"
Imagen 1 SARCOPHAGA CARNARIA - MOSCA GRIS DE LA CARNE
20
Las moscardas de la carne recuerdan a una mosca doméstica grande
(Img.1) y muchas exhiben bandas longitudinales en el tórax y el abdomen. La
mayoría pone huevos, aunque en unas pocas especies, los huevos permanecen
en el abdomen de la hembra hasta que se abren (CENTRO UNIVERSITARIO
DE CIENCIAS BIOLOGICAS Y AGROPECUARIAS, 2014).
4.2.1.2. CATEGORÍA TAXONÓMICA
La categoría taxonómica de la Sarcophaga carnaria (mosca gris de la carne)
es la siguiente:
4.2.1.3. MORFOLOGIA
Los adultos (Img.2) de Sarcophaga carnaria poseen una cabeza con dos ojos
compuestos, un aparato bucal chupador, un par de aristas (órganos sensoriales)
y dos antenas (órgano táctil) pilosas en ambas caras. El mesotórax (parte central
del tórax de la mosca) esta ornado por tres bandas longitudinales oscuras,
compuesto por el prescruto (placa que recubre la parte superior del tórax de la
mosca) el escruto (placa que recubre la parte central del tórax de la mosca) y
escutelo (placa que recubre la parte inferior del tórax de la mosca). El abdomen
presenta un dibujo a cuadros grises y negros, cuyo aspecto cambia con el Angulo
de reflexión de la luz que incide sobre ellas (Berenguer J. G., 2006).
Tabla 2 Categoría taxonómica – Sarcophaga carnaria
Reino Animalia
Filo Arthropoda
Clase Insecta
Orden Diptera
Suborden Brachycera
Infraorden Muscomorpha
Familia Sarcophagidae
(ROINRA sanidad ambiental , 2013)
21
Las larvas de Sarcophaga carnaria poseen un aparato bucal masticador,
lo que les permite alimentarse de carne en descomposición, heridas cutáneas de
humanos y animales, o de secreciones sépticas de orificios naturales (Berenguer
G. , 2001).
FUENTE: (Berenguer G. , 2001)
Por lo general las hembras a diferencia de los machos, tienden a ser mucho más
grandes, poseen dos ojos compuestos menos resaltados y más separados
(agrociencia, 2013).
4.2.1.4. BIOLOGIA - MOSCA GRIS DE LA CARNE
El ciclo biológico puede durar de 30 a 60 días, este periodo depende
directamente de las condiciones ambientales. Por lo general se desarrollan a
temperaturas de 22ºC y 50 % de humedad relativa (Priego, 2009).
Imagen 2 SARCOPHAGA CARNARIA - MORFOLOGIA
22
4.2.1.4.1. Ciclo vital de Sarcophaga carnaria
o Huevos
Los huevos son de forma oval, blancos y de aproximadamente 3 mm de longitud,
son depositados en grupos de 90 a 200 huevos sobre una amplia variedad de
materia en descomposición. Una hembra ovipone entre 5 a 6 veces a lo largo de
su vida. Para su desarrollo los huevos requieren de altas condiciones de
humedad (menor al 50% mayor índice de mortalidad). El tiempo de maduración
oscila entre las 12 y 24 horas después de la postura (Bowman, 2004).
o Larva
En un día el huevo eclosiona a larva (gusano), presentando una forma cilíndrica
con la cabeza cónica representada por un par de ganchos oscuros, son de color
blanco o amarillento pálido, miden de 9.5 a 20 mm en su estado maduro, se
alimentan del material donde fueron puestos ya sea carne en descomposición,
heridas o cadáveres. De 3 a 24 días pasan por tres estados larvales (Tomberlin,
2010). Al tercer estadio la larva busca un punto de menor humedad donde deja
de alimentarse y se prepara para empupar.
o Pupa
Cuando esta lista para convertirse en pupa, la larva se contrae dentro de su
propio tegumento interno, para formar una envoltura de aproximadamente 5 mm
de longitud, tornándose a un color café oscuro. En esta etapa generalmente
duran de 10 a 15 días (Bowman, 2004).
o Adulto
Cuando se ha completado el periodo de pupa, la mosca rompe el extremo del
pupario, expandiéndose hasta secar sus alas y endurecerse por completo. Esto
sucede en 1 hora, alcanzando su completa actividad en unas 15 horas,
quedando así, en condiciones de aparearse. La vida de los adultos dura
23
aproximadamente 4 semanas, pero puede alargarse en temporadas
frías. Tanto las pupas como los adultos inviernan en montones de estiércol o en
otros hábitats en establos, corrales, basureros, etc. (martiradonna ochipinti, soto
vivas, & gonzalez, 2009).
4.2.1.5. HABITOS
Las hembras se sienten atraídas por impulsos olfatorios, causados por los tejidos
necrosados de heridas cutáneas o secreciones sépticas de orificios naturales,
cadáveres, carne o materia en descomposición (Antropología & Forense, 2001).
Estos lugares estimulan las disposiciones de los huevos o las larvas. Los adultos
necesitan de una temperatura y humedad relativamente alta para su
supervivencia (alvarez & lopez, 2003).
Caracterizados por ser dípteros errantes, con vuelos ruidosos y rápidos.
(PRÁCTICAS DE ENTOMOLOGIA AMBIENTAL Y APLICADA, 2004).
Los adultos típicamente son encontrados en el exterior sobre flores o sobre
materiales alimenticios para la larva, como excremento, carne descompuesta,
carroña, materia orgánica vegetal en descomposición, basura y animales
parasitados por ellos como insectos, caracoles y otros invertebrados, tortugas,
seres humanos y otros mamíferos, etc. Los roedores, aves y otros pequeños
animales muertos pueden ser la fuente de moscas en el interior de las
estructuras, mientras la basura y el excremento de perro son la fuente más
común en exteriores.
Son fuertemente atraídas a la carroña o excremento expuesto al aire libre. Los
adultos muestran gran actividad a temperaturas de 24 a 28ºC y prefieren 54 a 56
% humedad relativa. La larva madura generalmente abandona la fuente de
reproducción en busca de sitios más secos para pupar. Por lo tanto
ocasionalmente pueden observarse larvas maduras arrastrándose en el interior
de una estructura (smith, 1996).
24
4.2.2 AMANITA MUSCARIA
4.2.2.1 DEFINICION
Conocida como Mosca-agárico o falsa oronja, es
un hongo (Img.3) basidiomiceto muy común,
caracterizado por las alteraciones que genera al
sistema nervioso central. El epíteto específico
muscaria proviene del latín musca, mosco, y
hace referencia a la interacción que se produce
entre este hongo y los insectos. Paraliza
temporalmente a los insectos que entran en
contacto con la seta. Es un hongo micorrico es
decir, que crece en simbiosis con los demás
seres que se hayan en su entorno,
principalmente en bosques de pinos o eucaliptos,
pero se puede hallar en otros hábitats.
La familia de hongos Amanita posee
características que incluyen propiedades
insecticidas, capacidades toxicas mortales y la
capacidad de causar alucinaciones, narcosis y
otras intoxicaciones. (UNODC united nations
office on drugs and crime , 2000).
Imagen 3 AMANITA MUSCARIA
En la imagen se aprecia un espécimen de
Amanita muscaria, tomado en campo,
cerca al Verjon, Bogotá. FUENTE: AUTOR
25
4.2.2.2 CLASIFICACION CIENTIFICA
4.2.2.3 HABITAT
El hongo suele encontrarse en condiciones de hábitat muy amplias, desde las
regiones más bajas, hasta las zonas de media y alta montaña, siendo éstas
últimas circunstancias las más probables. Aunque vive en todo tipo de bosques,
es más frecuente encontrarla en los de hayas, pinos negros, abetos y abedules.
Crece asociada a las raíces de éstos, con los que intercambia sales minerales y
agua por otras sustancias orgánicas, pudiendo llegar a formar grupos
relativamente numerosos (colombia cultiva , 2010).
4.2.2.4 COMPOSICION QUIMICA
El principio activo más importante de la Amanita Muscaria fresca es el alcaloide
Ácido Iboténico (x-amino-3-hidroxi-5-isoxazolil-acético), al desecarse el hongo
por descarboxilación aparece la Muscazona y el Muscimol (3-hidroxi-5-amino-
metilisoxazol).
La muscazona, un producto de la transposición del Ácido Iboténico, es un
compuesto que podría ser un artefacto originado por los procedimientos de
extracción y su psicoactividad es dudosa. El contenido de Ácido Iboténico en la
Amanita Muscaria varía de un ejemplar a otro, dependiendo de factores como la
altura y el árbol bajo el que crezca. Algunos ejemplares, “flojos”, contienen 0,03%
Tabla 3 clasificación científica - Amanita muscaria
Reino Fungi
Subreino Dikarya
Filo Basidiomiceto
Subfilo Agaricomycotina
Clase Agaricomycetes
Subclase Agaricomycetidae
Orden Agaricales
(linnaeus, magnus, & baptiste, 1984)
26
de alcaloides y otros más potentes contienen hasta 0,1%, sin que sea
posible distinguirlas exteriormente. (cornwall, 2009)
El Muscimol es el más estable y potente en términos de psicoactividad; en
hongos frescos aparece en pocas cantidades mientras que al secarse la seta su
psicoactividad es hasta cinco veces más potente.
Otro compuesto tóxico que encontramos en la Amanita Muscaria es la
muscarina, cuyos niveles de concentración son muy bajos en las variedades
europeas del hongo, sobre el 0,0003%, a diferencia de los especímenes
norteamericanos que contienen niveles bastante mayores. La muscarina es el
compuesto responsable de la salivación, lagrimeo, cefaleas, miosis, alteraciones
visuales y gastrointestinales como náuseas y vómitos.
Durante casi un siglo, la muscarina fue considerada el tóxico principal del
matamoscas, a pesar de las profundas diferencias entre la intoxicación por el
hongo y la intoxicación por muscarina. Según los chamanes siberianos los
ejemplares de amanitas que crecen por encima de 1000 metros de altitud y bajo
abedules, son más ricos en Muscimol y carecen de Muscarina, aunque parece
que este dato no está del todo probado en Europa (Quirce, Vargas, & Maikel,
2005).
Cuando están desecados, los hongos pueden aumentar su potencia durante
varios meses ya que el secado provoca la descarboxilación del ácido iboténico
para dar el más potente muscimol. La mayor concentración de elementos
psicoactivos de la Amanita Muscaria se encuentra en el sombrero (cornwall,
2009).
27
4.2.2.5 CARACTERISTICAS Y PROPIEDADES
Su sabor, al igual que su olor, no son especialmente intensos.
En dosis muy altas, tiene un gran efecto neurotóxico, mientras que si está
seca su potencial alucinógeno es mucho más alto.
En grandes cantidades puede inducir al coma.
Sus principales propiedades son enteógenas, por lo que se ha utilizado
desde tiempos remotos como estimulante.
Administrada por vía oral es también tóxica para el intestino y el hígado,
por lo que si se ingiere inadvertidamente, se debe recurrir a un centro
médico, mostrar el espécimen ingerido y sugerir pruebas de función
hepática para descartar daño permanente.
El efecto neurotóxico está dado por un componente llamado muscimol, un
potente alucinógeno.
El compuesto enteógeno o psicoactivo se llama ácido iboténico y si el
hongo se deja secar se convierte en muscimol. La seta también produce
un alcaloide tóxico llamado muscarina (Fericgla, 2010).
4.2.2.6 SINTOMAS QUE SE PRODUCEN AL INGERIR AMANITA
MUSCARIA
Por lo regular, y sobre todo al principio de la intoxicación, el conocimiento se
mantiene en buenas condiciones, y el afectado coordina bien, se siente feliz y
satisfecho. Luego sobrevienen las alucinaciones. Ve junto a él personas
inexistentes, a quienes habla y comunica sus intimidades; pretende hacerlas
partícipes de sus bienandanzas, de las maravillas y bellezas que contempla. Con
sus dilatadas pupilas, todo cuanto le muestra la realidad se le agranda de manera
tan prodigiosa, que una pequeña concavidad puede antojársele un vaso de agua
o un inmenso lago (UNODC united nations office on drugs and crime , 2000).
28
5. METODOLOGIA
Para el desarrollo del proyecto como estudio experimental en bloques se plantea
la metodología mediante tres fases que permiten desglosar las diferentes
actividades correspondientes al cumplimiento de los objetivos:
Fase de preparación
Fase de experimentación
Fase de análisis
5.1. FASE DE PREPARACION
Fase en la cual se elabora el extracto de Amanita muscaria y se genera el pie de
cría de Sarcophaga carnaria, lo que se considera la materia prima de la
experimentación.
5.1.1. PREPARACION DEL EXTRACTO DE AMANITA MUSCARIA
Se llevó a cabo la recolección de 23
especímenes (Img.4) de Amanita
muscaria en el páramo del Verjon,
localizado al oriente de la ciudad de
Bogotá. Una vez realizada la colecta
se retiró el tallo de los hongos, con
el fin, de prevenir que algún tipo de
larva pudiera afectar el píleo. Así
mismo, se aislaron en papel
periódico con el objetivo de absorber
la mayor cantidad de humedad
presente en los especímenes.
Luego, en el laboratorio, se
fracciona el píleo en 4 partes,
buscando aumentar la superficie de
contacto del hongo con el aire e incrementar la posibilidad de disminuir su alta
humedad.
Imagen 4 ESPECIMEN A. MUSCARIA
Imagen fotográfica de los especímenes de Amanita
muscaria en el laboratorio. FUENTE: AUTOR
29
Se dejaron aproximadamente de 3 a 4 horas en refrigeración para su
posterior secado en un horno de cocina común, bajo una temperatura de 175°c,
durante 2 horas y media; transcurrido este tiempo se pesaron las Amanitas
muscaria obteniendo un total de 2740 grs. Los hongos se licuaron con Etanol al
95% dejando la solución en reposo durante tres días, con el propósito de disolver
los compuestos de la Amanita muscaria con el etanol. La solución se filtró al
vacío utilizando un filtro cualitativo grado tres, reteniendo de esta manera las
partículas de mayor tamaño para dejar una mezcla sin briznas. El líquido
resultante fue sometido a destilación con ayuda de un roto-vapor a 50°c, baño
de maría, con una presión de 140 milibares y a 100 rpm (revoluciones por
minuto), a fin de retirar el solvente de la muestra; el resultado obtenido fue 550
ml de extracto de Amanita muscaria, caracterizado por su olor vegetal
propiamente del hongo, color naranja oscuro (Img.5).
A partir de la obtención del extracto de Amanita muscaria, este se mantuvo en
refrigeración a 4°c en 2 envases color ámbar de 500 ml cada uno (INIFAP, 2005).
5.1.2. CRIA DE SARCOPHAGA CARNARIA
Para establecer la cría de Sarcophaga carnaria en condiciones de laboratorio,
se instalaron tres recipientes plásticos como trampa en los tejados del laboratorio
Imagen 5 EXTRACTO SOMETIDO A DESTILACIÓN
Fotografía del extracto sometido a destilación, se
puede apreciar características como el color. FUENTE: AUTOR.
30
(Img.6) cada uno con dos orificios a los costados de 2.5 cm x 2.5 cm.
Posteriormente, a cada uno se le adiciono una caja de Petri recubierta con agua
y trozos de carne, buscando que al transcurrir tres días o más la carne lograra
un estado de descomposición atrayendo la mosca gris de la carne para su debida
alimentación y oviposición.
Una vez identificada la postura de los huevos (Img.7) en la carne, se llevó a cabo
la disposición de las cajas Petri en jaulas de vidrio, con el fin que eclosionaran
los huevos al cabo de 24 horas.
Imagen 6 TRAMPAS PARA POSTURAS DE HUEVOS
En la fotografía se resaltan las cajas Petri que contienen carne y funcionan como
trampa para la oviposición de Sarcophaga carnaria. FUENTE: AUTOR
Imagen 7 HUEVOS DE SARCOPHAGA CARNARIA
Las flechas señalan los huevos de Sarcophaga carnaria,
sobre la carne puesta como trampa. FUENTE: AUTOR.
31
Luego de presentarse el crecimiento de las larvas (Img. 8), estas se
disponen en recipientes plásticos para facilitar el conteo y posteriormente, en
cajas Petri con trozos de carne para su debida alimentación (Img. 9).
Trascurridos 18 días, las larvas eclosionaron a pupas (Img.10), lo que conllevo
a hacer una distribución de 40 pupas por cada caja Petri y estas ubicarlas en
cada una de las jaulas.
Imagen 10 PUPAS DE SARCOPHAGA CARNARIA
Finalmente, pasados 15 días se presentó la emergencia de las moscas en
estadio adulto (Img. 11), donde se identifican por medio de su morfología y
características (img. 2) para de allí comenzar el pie de cría para experimentación
llevando el mismo procedimiento con los nuevos especímenes identificados.
Imagen 8 LARVAS ESTADIO 2 Imagen 9 ALIMENTACION DE LARVAS EN CARNE
Fotografía del estadio larvario 2, de Sarcophaga
carnaria, aglomeradas principalmente en los
bordes del recipiente plástico. FUENTE: AUTOR.
Se muestran las larvas de Sarcophaga carnaria,
alimentándose de la carne, dentro de las cajas
Petri en las que fueron dispuestas.
FUENTE: AUTOR
Disposición de pupas de Sarcophaga
carnaria, en cajas Petri. FUENTE: AUTOR
32
5.2. FASE DE EXPERIMENTACION
Para determinar la concentración más efectiva del extracto de amanita muscaria
se realizaron 3 grupos de bio-ensayos: 17 tratamientos por aspersión en adultos,
10 tratamientos por ingestión en adultos y 14 tratamientos por aspersión e
ingestión en larvas, cada uno con tres repeticiones y un grupo testigo, en
condiciones de laboratorio con temperatura, humedad ambiental e intensidad
lumínica controladas para un total de 45 bloques, en una distribución como se
esquematiza a continuación:
- Grupo testigo
- tratamiento (n concentración)
Se utilizaron 20 jaulas de vidrio para la realización de los bioensayos en adultos,
con las siguientes medidas 30 cm de largo, 30 cm de alto y 30 cm de ancho, con
5 caras de vidrio de las cuales 3 están pintadas de color blanco, y una cara en
20 moscas
2 repetición
3 repetición
1 repetición
Imagen 11 MOSCAS ADULTAS
Especímenes de Sarcophaga carnaria adulta en
jaulas de cría entomológica.
FUENTE: AUTOR.
33
angeo en donde encuentra la manga. A cada jaula se le hizo la adición de
20 moscas de Sarcophaga carnaria.
Para la realización de los bioensayos en larvas se utilizaron 50 vasos plásticos
cubiertos con tela angeo y bandas de caucho para facilitar el flujo del aire y su
respiración, en cada uno de estos se adicionó 25 larvas en estadio dos.
5.2.1. ENSAYO IN VITRO EN ADULTOS DE SARCOPHAGA CARNARIA
5.2.1.1. ASPERSION
En un inicio las moscas fueron sometidas a pruebas de aspersión en soluciones
del extracto de Amanita muscaria a 250, 500, 750, 1000, 1250, 1500, 2500,
3000, 3500, 4000, 5000 y 5500 ppm diluidas en un litro de agua, cada uno con
tres repeticiones y el grupo control (Img. 12). Como en las 10 primeras
concentraciones evaluadas no se observó ninguna mortalidad y tan solo en las
concentraciones a 5000 y 5500 ppm hubo mortalidades, pero fueron menores al
15% al transcurrir las 72 horas de exposición (Gráfico 1), se incrementaron las
concentraciones al 5%, 25%, 50%, 75% y 100% del extracto a fin de obtener
mejores resultados.
Imagen 12 BIOENSAYOS CON ADULTOS - 3 REPETICIONES Y GRUPO CONTROL
Jaulas de cría entomológica, con especímenes
adultos. FUENTE: AUTOR.
34
5.2.1.2. INGESTION
Se llevó a cabo la alimentación o la prueba de ingestión disponiendo
trozos de carne impregnados en soluciones del extracto de Amanita muscaria
(Img. 13) a 250, 500, 750 y 1000 ppm diluidas en agua, del mismo modo se
realizaron tres repeticiones con cada concentración y se utilizó un grupo
control que se trató solo con trozos de carne impregnados con agua.
Concentraciones correspondientes a 250, 500, 750 y 1000 ppm no
presentaban resultados relevantes (Gráfico 6), razón por la cual se
aumentaron las concentraciones a 1250, 1500, 2000, 2500 3000, 3500, 4000
y 5000 ppm diluidas en un litro de agua con sus respectivas repeticiones y
grupo testigo.
5.2.2. ENSAYO IN VITRO EN LARVAS DE SARCOPHAGA CARNARIA
5.2.2.1. ASPERSION E INGESTION
Para determinar la concentración más efectiva del extracto de Amanita muscaria
en larvas en estadio dos de Sarcophaga carnaria, se realizó la postura de 25
larvas en vasos plásticos, los cuales contenían trozos de carne (Img.11). Se
impregnó la carne con el extracto asperjando todo el vaso aproximadamente con
1ml de la solución equivalente a 20 aspersiones.
Imagen 13 CARNE IMPREGNADA CON EL EXTRACTO
Carne impregnada con el extracto de Amanita muscaria
en cajas Petri, para bioensayos. FUENTE: AUTOR.
35
Se utilizaron concentraciones de 250, 500, 750, 1000, 1250, 1500, 2500,
3000, 5000 ppm, al 50% y 100% del extracto. De igual manera se hicieron tres
repeticiones (Img.12) con cada concentración y se utilizó un grupo control que
se trató solo con agua.
Imagen 15 VASOS PLASTICOS IMPREGNADOS DEL EXTRACTO Imagen 14 BIOENSAYOS LARVAS - 3 REPETICIONES Y UN CONTROL
Imagen 16 LARVAS IMPREGNADAS CON EL EXTRACTO
Recipientes platicos, cubiertos con tela angeo,
contiene larvas, con ensayos in vitro y un control.
FUENTE: AUTOR.
Bioensayos a larvas, en diferentes concentraciones.
FUENTE: AUTOR.
Acercamiento a la aplicación del extracto de Amanita
muscaria, a larvas de Sarcophaga carnaria.
FUENTE: AUTOR.
36
5.3. FASE DE ANALISIS
En esta fase se reúnen los resultados obtenidos de los bioensayos realizados
despreciando los resultados del control puesto que no se obtuvo ninguna
variación de este durante la fase de experimentación, y se analizan de acuerdo
a los 3 métodos de análisis seleccionados (análisis descriptivo exploratorio,
modelo PROBIT, análisis estadístico diseño completamente al azar) que se
aplicaban en base a los resultados obtenidos para cada grupo de bioensayos
según sea el caso de la siguiente manera:
Tabla 4- Métodos de análisis
Descriptivo exploratorio
Modelo PROBIT Análisis estadístico diseño
completamente al azar
LARVAS X
ADULTOS INGESTION X X X
ADULTOS ASPERSION X X X
5.3.1. LARVAS
Se realiza un análisis descriptivo exploratorio, basado en la cantidad de pupas
que eclosionan, en relación a los tratamientos aplicados.
5.3.2. ADULTOS ASPERSION
Se realiza un primer análisis descriptivo exploratorio, en el que se por medio de
graficas se permite una ilustración de los resultados obtenidos en conjunto, se
establecen dos grupos de concentraciones:
Grupo 1: 250, 500, 750, 1000, 1250, 1500, 2500, 3000, 3500, 4000, 5000
y 5500 ppm.
Grupo 2: 5%, 25%, 50%, 75% y 100%.
37
Posterior a este primer análisis, se plantea un segundo análisis tomando los
datos obtenidos del grupo 2, puesto que las características de letalidad y la
cantidad de datos se adecuan para un segundo análisis en el que se procede a
obtener, mediante el programa estadístico IBM SPSS STADISTICS 22, datos
como: CL50, CL90, y TL50 y TL90 para cada una de las concentraciones, con el fin
de identificar estadísticamente las dosis y los tiempos necesarios para lograr una
letalidad del 50% y del 90% de los individuos expuestos, siendo para ciertos
casos los TL proyecciones realizadas por el programa.
Al mismo grupo 2, se realiza finalmente un análisis estadístico con diseño
completamente al azar, para identificar adicionalmente la variabilidad que
responde al siguiente modelo:
𝑌𝑖𝑗 = 𝜇 + 𝜏𝑖 + 𝜀𝑖𝑗
Donde:
Yij = Variable aleatoria observada
µ = Media general
𝜏i = Efecto del i-ésimo tratamiento
𝜀ij = N (0, α2) independiente
i = l,…., t.
j = l,….., r.
t = Número de tratamientos.
r = Número de repeticiones.
Modelo a través del cual se resuelven los siguientes problemas planteados:
1. La estimación de parámetros como: la media general, el efecto del i-ésimo
tratamiento y “N” independiente.
2. El que concierne a las pruebas planteadas con hipótesis acerca del efecto
de los tratamientos aplicados.
38
El método de mínimos cuadrados permite la estimación de los parámetros
del problema 1, mientras que la tabla de análisis de varianza la solución a las
hipótesis. (Martínez, 2009)
Este modelo nos permitirá por medio de un ANOVA descartar o precisar alguna
de las siguientes hipótesis planteadas:
Ho: Los tratamientos usados tienen el mismo efecto.
Ha: Al menos uno de los tratamientos utilizados causa diferentes efectos.
Para la elaboración de la tabla ANOVA se utiliza la siguiente tabla de fórmulas
(Martínez, 2009):
Tabla 5 - Análisis de varianza: Formulación.
TABLA DE ANÁLISIS DE VARIANZA
F. de V. G.L. S.C. C.M. FC
Tratamientos t-1 ∑T2/r-FC SCT/(t-1) CMT/CME
Error t(r-1) Diferencia SCE/t(r-1)
Total rt-1 ∑∑YIJ2-FC
Donde:
Ti = Total del i-ésimo tratamiento.
Yij = Valor de la variable aleatoria.
FC = Factor de corrección.
r, t = Número de repeticiones y tratamientos respectivamente.
5.3.3. ADULTOS INGESTION
En base a los resultados obtenidos se selecciona inicialmente un análisis
descriptivo exploratorio, en el que se por medio de graficas se permite una
39
ilustración de los resultados obtenidos en conjunto, se establecen dos
grupos de concentraciones:
Grupo 3: 250, 500, 750 y 1000 ppm.
Grupo 4: 1250, 1500, 2000, 2500, 3000, 4000 y 5000 ppm
Se decide con los resultados del grupo 4 utilizar el programa estadístico IBM
SPSS STADISTICS 22, para realizar un análisis estadístico correspondiente al
modelo PROBIT con el cual podemos obtener mediante curvas y proyecciones
datos como: CL50, CL90, y TL50 y TL90 para cada una de las concentraciones, con
el fin de identificar estadísticamente las dosis y los tiempos necesarios para
lograr una letalidad del 50% y del 90% de los individuos expuestos.
Posterior al análisis del modelo PROBIT, para el análisis referente variabilidad
aplicada en la investigación, se escoge un diseño completamente al azar, en el
que se establecen dos problemas estadísticos:
1. La estimación de parámetros como: la media general, el efecto del i-ésimo
tratamiento y “N” independiente.
2. El que concierne a las pruebas planteadas con hipótesis acerca del efecto
de los tratamientos aplicados.
El modelo estadístico responde a:
𝑌𝑖𝑗 = 𝜇 + 𝜏𝑖 + 𝜀𝑖𝑗
Donde:
Yij = Variable aleatoria observada
µ = Media general
𝜏i = Efecto del i-ésimo tratamiento
𝜀ij = N (0, α2) independiente
40
i = l,…., t.
j = l,….., r.
t = Número de tratamientos.
r = Número de repeticiones.
El método de mínimos cuadrados permite la estimación de los parámetros del
problema 1, mientras que la tabla de análisis de varianza la solución a las
hipótesis. (Martínez, 2009)
En respuesta de los valores obtenidos en las pruebas se plantea para el ANOVA
la siguiente tabla:
Tabla 6 - Análisis de varianza: Formulas
TABLA DE ANÁLISIS DE VARIANZA
F. de V. G.L. S.C. C.M. FC
Tratamientos t-1 ∑T2/r-FC SCT/(t-1) CMT/CME
Error t(r-1) Diferencia SCE/t(r-1)
Total rt-1 ∑∑YIJ2-FC
Donde:
Ti = Total del i-ésimo tratamiento.
Yij = Valor de la variable aleatoria.
FC = Factor de corrección.
r, t = Número de repeticiones y tratamientos respectivamente.
Tabla que al tomar los datos correspondientes a las pruebas nos permitirá
precisar y rechazar una de las siguientes hipótesis planteadas:
HO: Igualdad del efecto en los tratamientos utilizados.
Ha: Al menos uno de los tratamientos utilizados es diferente.
Se aceptan o se rechaza basado en el criterio de criterio de decisión que es el
F tabulado. (Martínez, 2009)
41
El F tabulado se calcula estableciendo 4 y 10 como los límites y 5% o 1%
como los grados de libertad mediante la fórmula “INV.F.CD”, que devuelve los
valores críticos de la función F, disponible en EXCEL
6. RESULTADOS Y ANALISIS
6.1. ANÁLISIS DESCRIPTIVO EXPLORATORIO: LARVAS
En base a las pruebas realizadas, se observó, que las larvas presentan mayor
resistencia, puesto que al transcurrir las 72 horas de exposición frente al
extracto en sus diferentes concentraciones (incluido el extracto 100% puro), no
se presentaron casos de mortalidad.
Cabe resaltar que el extracto probablemente alteró el proceso evolutivo de las
larvas, ya que, se presentó una diapausa en el desarrollo embrionario, reflejado
en la cantidad de eclosiones de pupas y el tiempo requerido para completar el
ciclo vital, en comparación con la cantidad inicial de larvas y el grupo testigo.
Se utiliza la siguiente fórmula para identificar el porcentaje de larvas que
posiblemente fueron afectadas por el extracto de Amanita muscaria.
% 𝐸𝐶𝐿𝑂𝑆𝐼𝑂𝑁 =𝑡𝑜𝑡𝑎𝑙 𝑑𝑒 𝑝𝑢𝑝𝑎𝑠 𝑁𝑜 𝑒𝑐𝑙𝑜𝑠𝑖𝑜𝑛𝑎𝑑𝑎𝑠 − 𝑡𝑜𝑡𝑎𝑙 𝑑𝑒 𝑝𝑢𝑝𝑎𝑠 𝑒𝑐𝑙𝑜𝑠𝑖𝑜𝑛𝑎𝑑𝑎𝑠
𝑡𝑜𝑡𝑎𝑙 𝑑𝑒 𝑝𝑢𝑝𝑎𝑠 𝑥100
% 𝐸𝐶𝐿𝑂𝑆𝐼𝑂𝑁 =259 𝑝𝑢𝑝𝑎𝑠 𝑁𝑜 𝑒𝑐𝑙𝑜𝑠𝑖𝑜𝑛𝑎𝑑𝑎𝑠 − 113 𝑝𝑢𝑝𝑎𝑠 𝑒𝑐𝑙𝑜𝑠𝑖𝑜𝑛𝑎𝑑𝑎𝑠
372 𝑝𝑢𝑝𝑎𝑠 𝑥 100
% 𝐸𝐶𝐿𝑂𝑆𝐼𝑂𝑁 = 39,24%
Basados en la fórmula utilizada (% eclosión), se observa que el 60,76%
(porcentaje de pupas que no eclosionaron) de larvas se pudieron ver afectadas
42
por la aplicación del extracto, puesto que su ciclo biológico no supero su
estadio de pupa. Razón por la cual se sugiere realizar un nuevo estudio
cimentado en esta suposición.
6.2. ANALISIS DESCRIPTIVO EXPLORATORIO: ADULTOS-
ASPERSION
De acuerdo a los bioensayos realizados por aspersión en adultos se obtienen los
primeros resultados partiendo de las concentraciones del grupo 1: 250, 500, 750,
1000, 1250, 1500, 2500, 3000, 3500, 4000, 5000 y 5500 ppm (Gráfico 1).
Gráfico 1 - Aspersión adultos: grupo 1
Los resultados que nos arrojan las pruebas realizadas con bajas
concentraciones (Gráfico 1), no superan pasadas las 72 horas el 15% de la
mortalidad, lo cual representa una letalidad realmente muy baja.
Por consiguiente se decide utilizar concentraciones de 5%, 25%, 50%, 75% y
100% del extracto puro por aspersión comprendidas en el grupo 2, obteniendo
los siguientes resultados:
0
2
4
6
8
10
12
14
16
0 12 24 48 72
PO
RC
ENTA
JE D
E M
OR
TALI
DA
D
TIEMPO (h)
Aspersión adultos: Grupo 1
250 ppm
500 ppm
750 ppm
1000 ppm
1250 ppm
1500 ppm
2500 ppm
3000 ppm
3500 ppm
4000 ppm
5000 ppm
5500 ppm
43
Gráfico 2 Aspersión adultos: Grupo 2
Concentraciones correspondientes al 75% y 100% producen la mortalidad de la
totalidad de los individuos experimentales a las 48 horas, la concentración
correspondiente al 50% alcanza un 75% de mortalidad al final de las 72 horas de
exposición, los tratamientos experimentales utilizando dosis inferiores
disminuyen drásticamente su efecto letal sin superar el 20% al final del periodo
de seguimiento (Gráfico 2). Cabe resaltar que se consideran concentraciones
muy altas para su fin, que adicionalmente, pueden presentar otras alteraciones
al entorno en caso de ser usadas en diferentes espacios.
6.3. ANÁLISIS ESTADÍSTICO MODELO PROBIT: ADULTOS-
ASPERSIÓN
Se analizan los datos resultantes a las pruebas realizadas por aspersión con
concentraciones desde el 5% hasta el 100% del extracto puro, mediante el
programa estadístico SPSS que nos permite establecer una curva basada en el
modelo Probit para hallar: CL50, y CL90, posteriormente se establecen basada en
CL: TL50 y TL90 de cada concentración.
-5
15
35
55
75
95
0 12 24 48 72
PO
RC
ENTA
JE D
E M
OR
TALI
DA
D
TIEMPO (h)
Aspersión adultos: Grupo 2
5%
25%
50%
75%
100%
44
Gráfico 3 - PROBIT: ADULTOS - ASPERSIÓN
Contrastando el porcentaje de mortalidad contra el porcentaje de concentración
usado para cada uno de los tratamientos (Gráfico 3), se establece una relación
dosis – casos que nos permite identificar CL50 y CL90 como la concentración en
la cual se presentan el 50% y el 90% de los casos respectivamente.
6.3.1. CONCENTRACIÓN LETAL 50
Basado en la Curva del modelo Probit (Gráfico 3) definimos que la concentración
que presenta el 50% de los casos sobre la totalidad de individuos expuestos es:
CL50= 33%
Centrados en esta concentración correspondiente a la concentración dada sobre
porcentaje el extracto madre usado para su elaboración, se estima que 25%
corresponde a la concentración letal más cercana usada en bioensayos en el
laboratorio, razón por la cual se aproxima y se utiliza para hallar los datos
correspondientes a tiempos letales.
Luego de encontrar dicha concentración se procede a la búsqueda de los
tiempos letales que si bien, pasadas las 72 horas de exposición no lograban
superar la letalidad mayor al 50% de los casos, mediante el programa SPSS se
realiza una proyección de los tiempos estimados en los que la concentración letal
33; 50
50; 90
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
16
18
20
22
24
26
28
30
32
34
36
38
40
42
44
46
48
50
52
54
56
58
60
62
64
66
68
PO
RC
ENTA
JE D
E M
OR
TALI
DA
D (
%)
CONCENTRACION (%)
PROBIT: ADULTOS - ASPERSIÓN
45
50 (CL50), lograría una letalidad del 50% y el 90% de los casos y se
expresa a través de la siguiente curva:
Gráfico 4 - TIEMPOS LETALES: CL 50
6.3.1.1. TIEMPO LETAL 50
Como se puede observar en la proyección realizada en base de la concentración
letal 50 (Gráfico 4), se estima que el tiempo que debe transcurrir desde la
aplicación hasta que se presente la muerte del 50% de los individuos expuestos
es:
TL50: 92 horas
Bajo la aplicación de un tratamiento correspondiente al 25% de la concentración
del extracto madre, se requiere que transcurran 92h para que muera el 50% de
los individuos expuestos.
6.3.1.2. TIEMPO LETAL 90
Mediante la proyección de la curva que responde al modelo Probit por el cual se
analizan los resultados de las pruebas realizadas en la concentración que
92; 0,5
203; 0,9
0,0
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
0,6
0,7
0,8
0,9
1,0
22 53 81 112 142 173 203 234 265 295 326 356
MO
RTA
LID
AD
TIEMPO (h)
TIEMPOS LETALES: CL50
46
presenta la mortalidad del 90% de los individuos en exposición (Gráfico
4) se precisa:
TL90: 203 horas
Trascurridas 203 horas de la aplicación del 25% de la concentración del extracto
puro se espera que el 90% de los individuos expuestos mueran a causa de su
efecto.
6.3.2. CONCENTRACIÓN LETAL 90
Aplicando un análisis por medio del modelo Probit a los bioensayos realizados
en individuos adultos mediante aspersión (Gráfico 3), se encuentra que la
concentración en la que muere el 90% de los individuos expuestos corresponde
a:
CL90: 50%
Es decir, se necesita un 50% de extracto puro para que se presente una letalidad
del 90% de casos.
Una vez obtenida la concentración mediante la cual se presenta el 90% de los
casos, se utiliza el programa SPSS que realiza una proyección de los tiempos
estimados en los que la concentración letal (CL90), lograría una letalidad del 50%
y el 90% de los casos en respuesta del análisis realizado por el programa se
elabora la siguiente curva:
53; 0,5
73; 0,9
0,0
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
0,6
0,7
0,8
0,9
1,0
30
37
44
51
58
65
72
79
86
93
MO
RTA
LID
AD
TIEMPO (h)
TIEMPOS LETALES: CL 90
Gráfico 5 - TIEMPOS LETALES: CL 90
47
6.3.2.1. TIEMPO LETAL 50
A diferencia de la concentración letal 50 o el tiempo letal 90 de la concentración
letal 90, el tiempo que letal 50 correspondiente a concentración letal 90 no
responde a una proyección pese a que de igual manera se utiliza el modelo
Probit basado en los resultados de los individuos expuestos a la aplicación del
50% del extracto puro (Gráfico 5), así obtenemos:
TL50: 53 horas.
Se necesitan entonces 53 horas para que el 50% de concentración aplicada
produzca la muerte del 50% de los individuos expuestos.
6.3.2.2. TIEMPO LETAL 90
Al igual que con la concentración letal 50, para la concentración letal 90 se realiza
una proyección basada en el modelo Probit que permitirá identificar el tiempo
letal 90 que es el tiempo transcurrido desde la exposición, hasta la muerte del
90% de los individuos expuestos (Gráfico 5), así se puede identificar que:
TL90: 73 horas.
Lo que nos permite identificar que 73 horas son necesarias a partir a la aplicación
del 50% del extracto puro para que el 90% de los individuos expuestos se vean
afectados letalmente.
6.4. ANÁLISIS ESTADÍSTICO DISEÑO COMPLETAMENTE AL AZAR:
ADULTOS – ASPERSIÓN
Con base en el procedimiento planteado en la metodología y con el objetivo de
identificar la variabilidad de las pruebas realizadas se procede a la elaboración
de la siguiente tabla donde se expresan los valores correspondientes a
concentración del tratamiento del extracto de Amanita muscaria y la tasa de
48
mortalidad de su aplicación a Sarcophaga carnaria en adultos por
aspersión mostrando las diferentes repeticiones.
Tabla 7 - Ilustración numérica: adultos - aspersión
ILUSTRACION NUMERICA ADULTOS ASPERSION
TRATAMIENTO
MORTALIDAD A LAS 72 HORAS
TOTAL R1 R2 R3
1 5% 2 3 1 6
2 25% 6 7 4 17
3 50% 7 10 8 25
4 75% 19 20 20 59
5 100% 20 20 20 60
167
Para la construcción de la tabla de análisis de varianza, se utiliza entonces:
𝐹𝐶 = 𝑇𝑜𝑡𝑎𝑙2
𝑟 𝑥 𝑡=
1672
15= 1859,26
𝑆. 𝐶. 𝑇𝑜𝑡𝑎𝑙 = 22 + 32 + ⋯ + 202 − 𝐹𝐶 = 829,73
𝑆. 𝐶. 𝑇𝑟𝑎𝑡. = 62 + ⋯ + 602
3− 𝐹𝐶 = 817,73
𝑆. 𝐶. 𝐸𝑟𝑟𝑜𝑟 = 𝑆𝐶 𝑇𝑜𝑡𝑎𝑙 − 𝑆𝐶 𝑇𝑟𝑎𝑡. = 12
Por medio de las ecuaciones anteriores obtenemos la tabla del análisis de
varianza:
Variables que para nuestro caso toman los siguientes valores:
Tabla 8 - Análisis de varianza: Adultos – aspersión
TABLA DE ANÁLISIS DE VARIANZA
F. de V. G.L. S.C. C.M. FC
Tratamientos 4 817,73 204,43 170,36
Error 10 12 1,2
Total 14 829,73
49
Se plantean las siguientes hipótesis:
HO: Igualdad del efecto en los tratamientos utilizados.
Ha: Al menos uno de los tratamientos utilizados es diferente.
El criterio de decisión se obtiene a partir de F tabulado:
F (4; 10; 0,05)= 3,47
F (4; 10; 0.01)= 5,99
(El F tabulado se calcula estableciendo 4 y 10 como los límites y 5% o 1% como
los grados de libertad mediante la fórmula “INV.F.CD”, que devuelve los valores
críticos de la función F, disponible en EXCEL).
Se puede concluir entonces que las concentraciones utilizadas de Amanita
muscaria sobre Sarcophaga carnaria por el método de aspersión hace que la
tasa de mortalidad cambie significativamente, esto se debe a que Fc es mayor
que el F de las tablas al 5% y el 1% de probabilidad, razón por la cual se rechaza
HO.
6.4.1. GRADO DE TECNICA EXPERIMENTAL
Para determinar el grado de buena técnica experimental, basados en los cálculos
elaborados anteriormente, se utiliza el coeficiente de variación (C.V.) por medio
de la siguiente formula:
𝐶. 𝑉. = √𝐶𝑀𝐸
�̅� 𝑥 100
Así se establece que:
𝐶. 𝑉. = √1,2
11,13 𝑥 100
𝐶. 𝑉. = 9,83%
Se espera en general que para el caso del diseño completamente al azar el
coeficiente de variación sea inferior al 15%. (Martínez, 2009)
50
Al ser 9,83% el coeficiente de variación hallado para nuestro caso se
permite establecer según el diseño completamente al azar que se aplicó una
buena técnica experimental en el campo.
6.5. ANÁLISIS DESCRIPTIVO EXPLORATORIO: ADULTOS-
INGESTIÓN
Los primeros bio-ensayos realizados en adultos por aspersión arrojan datos que
presentan menos del 5% de la mortalidad al transcurrir las 72 horas (Gráfico 6)
de exposición frente al extracto utilizando concentraciones del grupo 3
correspondientes a 250 ppm, 500 ppm, 750 ppm y 1000.
Gráfico 6 - Adultos ingestión: grupo 3
En base a los resultados obtenidos, se deciden tomar concentraciones más altas,
con el fin de obtener al transcurrir 72 horas de exposición al extracto resultados
más letales, se utilizan entonces concentraciones de: 1250ppm, 1500ppm,
2000ppm, 2500ppm, 3000ppm, 4000ppm y 5000ppm.Concentraciones
comprendidas en el grupo 4.
-2
0
2
4
6
8
10
0 12 24 48 72
PO
RC
ENTA
JE D
E M
OR
TALI
DA
D
TIEMPO (h)
Adultos ingestión: Grupo 3
250
500
750
1000
51
Se establece entonces, en base a los resultados arrojados durante la
experimentación la siguiente gráfica (Gráfico 7) que permite diferenciar por
concentración usada, la mortalidad en relación al tiempo.
Gráfico 7 - Descriptivo exploratorio: Adultos – ingestión Grupo 4
Es fácil observar en la relación establecida entre mortalidad y tiempo (Gráfico 6)
que dentro de los tratamientos usados, al final del periodo de seguimiento las 4
concentraciones más bajas (1250ppm, 1500ppm, 2000ppm, 2500ppm)
presentan un porcentaje de mortalidad menor al 50%, sin embargo
concentraciones como 2000ppm y 2500ppm muestran una tendencia al
crecimiento del porcentaje de mortalidad que podría alcanzar e inclusive superar
el 50% de la mortalidad en horas adicionales.
Concentraciones como: 3000ppm, 4000ppm y 5000ppm superan el 50% del
porcentaje de mortalidad pasadas las 72 horas, tiempo en el cual tan solo la
concentración correspondiente a las 5000ppm logra el 100% de la mortalidad,
siendo esta la concentración más alta usada en el caso de ingestión para adultos
de Sarcophaga carnaria.
-10
10
30
50
70
90
12 24 48 72
MO
RTA
LID
AD
(%
)
TIEMPO (horas)
1250 ppm
1500 ppm
2000 ppm
2500 ppm
3000 ppm
4000 ppm
5000 ppm
52
De acuerdo a los bioensayos realizados por aspersión e ingestión en
adultos se observaron notables diferencias entre los métodos utilizados.
Resaltando que, por el método de ingestión se presentó mayor mortalidad con
concentraciones hasta 5000 ppm a diferencia, del método por aspersión con el
cual no se presentó ningún caso de mortalidad con dicha concentración. Esta
caracterización hace el método de ingestión más viable y más efectivo en
comparación a los otros métodos usados durante la experimentación.
6.6. ANÁLISIS ESTADISTICO MODELO PROBIT: ADULTOS-
INGESTIÓN
Utilizando el programa estadístico SPSS se analizan los datos resultantes a las
pruebas realizadas por ingestión con concentraciones desde las 1250 ppm hasta
las 5000 ppm. Con el fin de encontrar CL 50, CL 90, TL 50 Y TL 90 del método que
se encuentra más viable basado en características como la cantidad necesaria
del principio activo que se necesita para su elaboración y la existencia de casos
de mortalidad.
Con los datos obtenidos se establece la curva basada en el modelo Probit (Gráfico 8) con el objetivo de encontrar concentraciones letales.
Gráfico 8 - CURVA PROBIT
2558; 0,5
3897; 0,9
0
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
0,6
0,7
0,8
0,9
1
115
6
134
0
152
2
170
6
188
7
207
1
225
2
243
6
261
7
280
1
298
3
316
7
334
8
353
2
371
3
389
7
407
8
426
2
444
4
462
8
480
9
499
3
517
4
535
8
MO
RTA
LID
AD
CONCENTRACIÓN (ppm)
PROBIT: ADULTOS - INGESTIÓN
53
La curva (Gráfico 8) nos establece una relación dosis – casos que nos
permite identificar dentro del procedimiento llevado por ingestión, la
concentración en la cual muere el 50% de los individuos expuestos (CL50), así
como la concentración en la cual muere el 90% (CL90).
6.6.1. CONCENTRACION LETAL 50
Para identificar que concentración presentó el 50% de la mortalidad, se utiliza la
curva Probit (Grafico 8), la cual nos arroja un resultado de:
CL50= 2558 ppm
Se estima, que 2500 ppm concierne a dicha letalidad. (Valor aproximado a la
concentración más cercana usada en el laboratorio).
Basados en esta concentración se procede a encontrar los tiempos en los cuales
mueren el 50% y 90% de los individuos evaluados mediante la gráfica: “Tiempos
letales CL50” (Gráfico 9) que se basa en una proyección realizada por el
programa SPSS tomando los datos resultantes de los bio-ensayos realizados, la
proyección nos permite entonces, identificar los tiempos aproximados en los
cuales dicha concentración lograría la mortalidad del 50% y 90% de los
individuos expuestos.
Gráfico 9 - TIEMPOS LETALES: CL50
75; 0,5
127; 0,9
0
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
0,6
0,7
0,8
0,9
1
28
35
42
49
56
63
70
77
84
91
98
105
112
119
126
133
140
147
154
161
168
175
182
189
MO
RTA
LID
AD
TIEMPO (Horas)
TIEMPOS LETALES: CL50
54
6.6.1.1. TIEMPO LETAL 50
Con los datos obtenidos de la concentración letal 50 y apoyado en la proyección
realizada a partir de los datos (Gráfico 9), se determina que la cantidad de horas
necesarias para que la concentración letal 50 sea letal en el 50% de los
individuos expuestos es:
TL50= 75 horas
TL50, es entonces, el tiempo requerido en el cual se presentarían el 50% de los
casos posterior a la aplicación.
6.6.1.2. TIEMPO LETAL 90
En base a los datos tomados en la realización del bio-ensayo de CL50 y en la
proyección realizada, tal y como se muestra en gráfica (grafica 8), se determina
que la cantidad de horas necesarias para que se presenten el 90% de los casos
de esta concentración es:
TL90= 127 horas.
TL90 corresponde a la relación horas – casos de la concentración letal 50.
6.6.2. CONCENTRACION LETAL 90
En búsqueda de la concentración mediante la cual se identifica el 90% de
muertes del total de los individuos expuestos, se acude a la curva basada en el
modelo Probit (Grafico 7), y se obtiene:
CL90= 3897 ppm
Dentro de las concentraciones usadas para los bio-ensayos realizados en el
laboratorio, se aproxima a:
55
CL90= 4000 ppm
Siendo CL90 la concentración en la cual se presentan el 90% de los casos de los
individuos expuestos, se procede a hallar los tiempos en los cuales se presenta
el 50% y el 90% de los casos de esta concentración apoyados en la siguiente
gráfica:
Gráfico 10 - TIEMPOS LETALES: CL 90
El gráfico resultante responde a un análisis realizado bajo el programa SPSS
soportado en el modelo Probit, con el fin de determinar los tiempos en los cuales
se presentaría dicha mortalidad con la concentración seleccionada.
6.6.2.1. TIEMPO LETAL 50
De acuerdo a los resultados arrojados por el gráfico (Gráfico 10), se busca la
cantidad de horas, siendo este valor un análisis resultante de los datos obtenidos
en los bioensayos con la concentración letal 90.
33; 0,5
67; 0,9
0
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
0,6
0,7
0,8
0,9
1
9 16
23
30
37
44
51
58
65
72
79
86
93
100
107
114
MO
RTA
LID
AD
TIEMPO (Horas)
TIEMPOS LETALES: CL 90
56
Se determina que la cantidad de horas que pasan, posterior a la
aplicación de extracto a 4000 ppm, necesarias para que se presenten el 50% de
los casos en los individuos expuestos es:
TL50 = 33 horas.
Siendo entonces, 33 horas la cantidad de horas que deben transcurrir posterior
a la aplicación de la concentración para que se presente el 50% de la mortalidad
de los individuos expuestos.
6.6.2.2. TIEMPO LETAL 90
Teniendo en cuenta que TL90 se toma como la cantidad de horas que transcurren
posterior a la aplicación del extracto de Amanita muscaria a una concentración
de 4000 ppm, en el que muere el 90% de la población expuesta, se determina
según el grafico (Grafico 10) que:
TL90= 67 Horas.
Así se determina que pasadas las 67 horas a la aplicación del extracto en la
concentración que respondo a CL90 el 90% de los individuos expuestos se han
visto afectados letalmente.
6.7. ANÁLISIS ESTADISTICO DISEÑO COMPLETAMENTE AL AZAR:
ADULTOS – INGESTIÓN
Se escoge un diseño completamente al azar para el análisis de los resultados
obtenidos en la investigación con adultos mediante ingestión, dicho diseño
responde al modelo planteado previamente en la metodología.
Se usa la siguiente ilustración numérica (Tabla 8) para representar por medio de
la elaboración de una tabla los valores correspondientes a la tasa de mortalidad
de Sarcophaga carnaria, respecto a las concentraciones de los tratamientos
utilizados de Amanita muscaria en adultos por ingestión, variando según sus
repeticiones.
57
Tabla 9 - Ilustración numérica: Adultos- ingestión
ILUSTRACIÓN NUMÉRICA ADULTOS INGESTION
TRATAMIENTO
MORTALIDAD A LAS 72 HORAS
TOTAL R1 R2 R3
1 1250 2 1 2 5
2 1500 2 2 1 5
3 2000 5 7 4 16
4 2500 10 9 7 26
5 3000 15 17 13 45
6 4000 20 19 18 57
7 5000 20 20 20 60
214
En búsqueda de la elaboración de la tabla de varianza y fundamentados en los
datos ordenados (tabla 7) se utilizan las siguientes ecuaciones:
𝐹𝐶 = 𝑇𝑜𝑡𝑎𝑙2
𝑟 𝑥 𝑡=
2142
21= 2180,76
𝑆. 𝐶. 𝑇𝑜𝑡𝑎𝑙 = 22 + 12 + ⋯ + 202 − 𝐹𝐶 = 1125,23
𝑆. 𝐶. 𝑇𝑟𝑎𝑡. = 52 + ⋯ + 602
3− 𝐹𝐶 = 1104,57
𝑆. 𝐶. 𝐸𝑟𝑟𝑜𝑟 = 𝑆𝐶 𝑇𝑜𝑡𝑎𝑙 − 𝑆𝐶 𝑇𝑟𝑎𝑡. = 20,66
En base a lo anterior, y a al procedimiento planteado en la metodología (Tabla
5) se construye la tabla del análisis de varianza:
58
Tabla 10- Análisis de varianza: Adultos ingestión
TABLA DE ANÁLISIS DE VARIANZA
F. de V. G.L. S.C. C.M. FC
Tratamientos 2 1104,57 184,09 124,70
Error 14 20,66 1,47
Total 20 1125,23
Se plantean las siguientes hipótesis con el fin de ser precisada o en su defecto
rechazada según sea el caso de acuerdo con el criterio de decisión:
Ho: Los tratamientos usados tienen el mismo efecto.
Ha: Al menos uno de los tratamientos utilizados causa diferentes efectos.
Establecer el criterio de decisión yace en hallar F tabulado que para este caso
se obtiene que:
F (2; 14; 0.05) = 3,73
F (2; 14; 0.01) = 6,51
(El F tabulado se calcula estableciendo 2 y 14 como los límites y 5% o 1% como
los grados de libertad mediante la fórmula “INV.F.CD”, que devuelve los valores
críticos de la función F, disponible en EXCEL).
Al ser FC (Tabla 10) mayor que los F tabulados como criterio de decisión, en las
tablas al 5% y al 1%, se rechaza Ho. Se concluye entonces que los tratamientos
suministrados a los adultos mediante ingestión difieren en la tasa de mortalidad
significativamente.
6.7.1. GRADO DE TÉCNICA EXPERIMENTAL
El coeficiente de variación (C.V.) descripto por:
59
𝐶. 𝑉. = √𝐶𝑀𝐸
�̅� 𝑥 100
Nos permite indicar en cierto grado la buena técnica experimental en campo,
regido bajo en diseño completamente al azar, para el caso del método aplicado
a adultos mediante ingestión se obtiene que:
𝐶. 𝑉. = √1,47
10,19 𝑥 100
𝐶. 𝑉. = 11,92%
Teniendo como resultado 11,92% en el coeficiente de variación se permite
indicar que se aplicó una buena técnica en campo puesto que:
Se espera en general que para el caso del diseño completamente al azar el
coeficiente de variación sea inferior al 15% (Martínez, 2009).
Finalmente, cabe resaltar que según lo analizado en base a los resultados tanto
descriptiva como estadísticamente, el método más eficiente para el presente
proyecto es la ingestión.
60
7. CONCLUSIONES
El extracto de Amanita muscaria contiene las características necesarias
para el control de Sarcophaga carnaria en especímenes adultos a
condiciones de laboratorio.
En principio, el extracto de Amanita muscaria no presenta ningún efecto
letal sobre las larvas de Sarcophaga carnaria, pero su desarrollo puede
verse afectado bajo su exposición impidiendo la emergencia del 60,79%
de los imagos en forma de moscas adultas.
El método más efectivo para el control de adultos de Sarcophaga carnaria
utilizando el extracto de Amanita muscaria es la ingestión puesto que se
presentó mortalidad cercana al 100% de los especímenes en
concentraciones superiores a 4.000 ppm.
Las concentraciones letales CL50 y CL90 de los extractos de Amanita
muscaria por ingestión en adultos de Sarcophaga carnaria fueron de 2558
y 3897 ppm respectivamente, siendo 33 horas y 67 horas los valores
correspondientes a TL50 Y TL90 para la CL50 y 33 horas y 67 horas el TL50
y el TL90 de la CL90.
Se establece 33% y 50% ppm como los valores correspondientes a las
CL50 y CL90 respectivamente, de los extractos de Amanita muscaria por
aspersión en adultos de Sarcophaga carnaria, y se determina para CL50:
TL50 Y TL90 como 92 y 203 horas, así como para CL90: TL50 Y TL90 como
53 y 73 horas.
El efecto insecticida del extracto de Amanita muscaria utilizando el
método de aspersión sobre adultos de Sarcophaga carnaria, solamente
muestra eficacia cuando se utilizan concentraciones elevadas del
extracto, requiriendo utilizar concentraciones entre el 50% y el 100% del
extracto puro para obtener mortalidades considerables. Por esta razón se
61
considera como el método menos efectivo e inviable, ya que puede
traer efectos adversos en el entorno al que sea aplicado.
Para el método de ingestión el tiempo de exposición de Sarcophaga
carnaria frente al extracto de Amanita muscaria es una variable que influye
notablemente, puesto que, a mayor tiempo de exposición, mayor son los
casos que se presentan de mortalidad.
62
8. RECOMENDACIONES
Siendo la ingestión el método más efectivo para el control de Sarcophaga
carnaria, es conveniente investigar acerca de la elaboración de cebos con
extracto de Amanita muscaria que puedan ser utilizados con seguridad
para el control de moscas únicamente.
Es adecuado comprobar el efecto insecticida “in situ” de Amanita muscaria
para el control de Sarcophaga carnaria en lugares que puedan ser
frecuentados por este vector, como expendios y plantas procesadoras de
cárnicos.
Existen varias características que permiten identificar en el extracto de
Amanita muscaria efectos letales, sería interesante realizar un
investigación utilizando otro tipo de plaga.
Es importante revisar experimentalmente que posibles efectos adversos
se pueden generar a partir de la aplicación del extracto de Amanita
muscaria al medio, esto debido a los componentes tóxicos que presenta
su principio activo.
Dadas las características de Amanita muscaria, sería conveniente
identificar qué parte del hongo es más efectiva o contiene el principio
activo.
Se sugiere profundizar mediante otra investigación si existe alguna
incidencia o resultado adverso en el desarrollo de la larva al estar
expuesta al extracto de Amanita muscaria durante su periodo larvario, así
como en su proceso de eclosión.
63
9. BIBLIOGRAFÍA
- Agrociencia. (2013). Musca domestica como huésped para la cría masiva del
parasitoide Palmistichus elaeisis (Hymenoptera: Eulophidae). Obtenido de
http://www.fagro.edu.uy/~agrociencia/index.php/directorio/article/view/761
- Alvarez, f. p., & lopez, a. c. (2003). zoologia aplicada. dias de santos . Obtenido de
https://books.google.com.co/books?id=isqKkb_ujccC&pg=PA190&dq=habitos+de+sarc
ophaga+carnaria&hl=es&sa=X&ei=8e0_VYC3OtTasAT4toCwBA&ved=0CBoQ6AEwAA#v
=onepage&q=habitos%20de%20sarcophaga%20carnaria&f=false
- Antropología, L. d., & Forense, I. A. (2001). la entomologia forense y su aplicacion a la
medicina legal, data de la muerte. Obtenido de
http://entomologia.rediris.es/aracnet/7/06forense/index.htm
- AQUATERRARIA the social nature web . (15 de marzo de 2011). crianza y caceria de
moscas comunes. Obtenido de http://www.aquaterraria.com/tarantulas/1298-crianza-
y-caceria-de-moscas-comunes-para-alimento.html
- Berenguer, G. (2001). Manual de Parasitologia: Morfologia I Biologia. españa: edicions
universidad de barcelona . Obtenido de
https://books.google.com.co/books?id=gME51vlgyr8C&pg=PA519&lpg=PA519&dq=m
orfologia+SARCOPHAGA+CARNARIA&source=bl&ots=qkCJ-
ME5oD&sig=xwS1R2QT7lpbjNaLp5Qw_gYIFM0&hl=es&sa=X&ei=i0c-VaG6JoykNo_-
gKAK&ved=0CF8Q6AEwDQ#v=onepage&q=morfologia%20SARCOPHAGA%20CARNAR
- Berenguer, J. G. (2006). Manual de Parasitologia, morfologia y biologia de los parasitos
de interes sanitario . españa : publicaciones universidad de barcelona . Obtenido de
https://books.google.com.co/books?id=XH4yn_OANn4C&pg=PA478&dq=morfologia+S
ARCOPHAGA+CARNARIA&hl=es&sa=X&ei=rVQ-
VZCLNMm1sAS18YCwBA&ved=0CBoQ6AEwAA#v=onepage&q=morfologia%20SARCOP
HAGA%20CARNARIA&f=false
- Bowman, D. D. (2004). parasitologia para veterinarios . elsevier. Obtenido de
https://books.google.com.co/books?id=7tz60l7GVO8C&pg=PA19&dq=Ciclo+vital+de+
mosca+de+la+carne&hl=es&sa=X&ei=Q9g_VcHfOIHQgwSas4L4Bg&ved=0CBoQ6AEwA
A#v=onepage&q=Ciclo%20vital%20de%20mosca%20de%20la%20carne&f=false
- CENTRO UNIVERSITARIO DE CIENCIAS BIOLOGICAS Y AGROPECUARIAS. (2014).
MANUAL SOBRE ECTOPARÁSITOS EN ANIMALES DE PRODUCCIÓN. Obtenido de
http://biblioteca.cucba.udg.mx:8080/xmlui/bitstream/handle/123456789/5422/Rosad
o_Casillas_Joel.pdf?sequence=1#page=16
- College of agricultural sciences ENTOMOLOGY. (agosto de 2013). MOSCAS CASERAS.
Obtenido de http://ento.psu.edu/extension/factsheets/es/es-house-flies
- Colombia cultiva . (2010). Amanita muscaria. Obtenido de
http://www.colombiacultiva.org/foro/viewtopic.php?t=590
64
- Cornwall, c. (septiembre de 2009). AMANITA MUSKARIA (Recogida, secada,
consumo...) . Obtenido de
http://www.cannabiscafe.net/foros/showthread.php/167483-AMANITA-MUSKARIA-
(Recogida-secada-consumo-)
- Fericgla, J. (mayo de 2010). Entogenos en el mediterraneo . Obtenido de
http://www.onirogenia.com/otros-enteogenos/enteogenos-en-el-mediterraneo.pdf
- IBM SPSS STADISTICS 22 (64 bits), Software de uso comercial.
- INIA Tierra Adentro. (septiembre-octubre de 2007). ALTERNATIVAS DE CONTROL
BIOLOGICO DE LA MOSCA EN EXPLOTACIONES PECUARIAS. Obtenido de
http://www2.inia.cl/medios/biblioteca/ta/NR34462.pdf
- INIFAP. (2005). elaboracion artesanal de bioplaguicidas. Obtenido de
www.oeidrusbcs.gob.mx/info_dependencias/inifap/publicaciones_archivos/bioplaguic
idas.pdf
- Instituto Nacional De Seguridad e Higiene En El Trabajo . (1999). Plaguicidas
organofosforados (I): aspectos generales y toxicocinética. Obtenido de
http://comisionnacional.insht.es/InshtWeb/Contenidos/Documentacion/FichasTecnica
s/NTP/Ficheros/501a600/ntp_512.pdf
- Jacobs, S. B. (Agsoto de 2013). Universidad de Pennsylvania State. Recuperado el 20 de
Agosto de 2014, de Universidad de Pennsylvania State:
http://ento.psu.edu/extension/factsheets/pdf/spanish-pdfs/HouseFliesSp.pdf
- Linnaeus, c., magnus, e., & baptiste, j. (1984). AMANITA MUSCARIA.
- Manual de saneamento e proteção ambiental para os municipios. Departamento de
Engenharia Sanitária e Ambiental, DESA/UPMG. Fundação Estadual do Meio Ambiente.
FEMA/MG. 1995.
- Microsoft EXCEL 2013 (64 bits), Software de uso comercial.
- Martínez, O. (2009). Técnicas estadísticas y diseño de experimentos para la
investigación agropecuaria. Colombia: Produmedios.
- Martiradonna ochipinti, G., soto vivas, A., & gonzalez, J. (AGOSTO de 2009). Protocolo
de cria de Musca domestica en laboratorio. Obtenido de
http://www.scielo.org.ve/pdf/bmsa/v49n2/art15.pdf
- Organizacion Mundial De La Salud . (MARZO de 2015). Intoxicación aguda por
plaguicidas: propuesta de instrumento de clasificación. Obtenido de
http://www.who.int/bulletin/volumes/86/3/07-041814-ab/es/
- ORKIN . (2015). Ciclo de vida de la Mosca Doméstica. Obtenido de
http://es.orkin.com/moscas/la-mosca-domestica/ciclo-de-vida-de-la-mosca-
domestica/
- PARASITIPEDIA. (2013). MOSCA DOMÉSTICA - Musca domestica - en el ganado, en el
estiércol y en establos, granjas, gallineros, porquerizas, cuadras y otras explotaciones
ganaderas: biología, prevención y control. Obtenido de
65
http://parasitipedia.net/index.php?option=com_content&view=article&id=30&Itemid
=100
- PRÁCTICAS DE ENTOMOLOGIA AMBIENTAL Y APLICADA. (2004). Sarcofágidos.
Obtenido de
http://escalera.bio.ucm.es/usuarios/eaa/sesiones.php?sesion=110&bloque=3
- Priego, E. T. (2009). MOSCA DE LA CARNE (Familia Sarcophagidae). Obtenido de
http://www.quimix.com.mx/informacion/44/mosca_de_l
- Quirce, C., Vargas, G., & Maikel, R. (2005). Los Alucinogenos, El Cerebro Y La Mente .
Obtenido de http://www.incocr.org/biblioteca/0015.PDF
- Revista catalana de Micología. (2014). Revista catalana de micología, 35, 3-41.
- Ripa, R., & Rodriguez, F. (1998). Manejo integrado de plagas en cítricos y uva de mesa.
Revista Chile Agricola , XXIII, 235.
- ROINRA sanidad ambiental . (2013). SARCOPHAGA CARNARIA (mosca de la carne).
Obtenido de http://www.roinra.es/moscacarne.php
- Smith, e. (1996). MOSCAS NO PICADORAS. Obtenido de
http://rodicafumigaciones.com/4426/pdf/MOSCAS%20(NO%20PICADORAS).pdf
- The British Mycological Society. (2003). Amanita muscaria: chemestry, biology,
(UNODC united nations office on drugs and crime , 2000)toxicology, and
ethnomycology. United Kingdom.
- Tomberlin, J. (2010). Control de moscas domesticas. Obtenido de
http://texashelp.tamu.edu/008-spanish/pdf/ER025S.pdf
- UNODC united nations office on drugs and crime . (1 de enero de 2000). Amanita
muscaria: la compresion actual de la quimica . Obtenido de
https://www.unodc.org/unodc/en/data-and-analysis/bulletin/bulletin_1970-01-
66
ANEXOS
Anexo 1: Tabla de enfermedades transmitidas por Sarcophaga carnaria.
Anexo 1- Tabla de enfermedades
TABLA DE ENFERMEDADES TRANSMITIDAS POR SARCOPHAGA CARNARIA
FORMA DE TRANSMISIÓN
PRINCIPALES ENFERMEDADES
ENFERMEDAD SINTOMAS CAUSAS
Directa (lanzadas desde el díptero) o indirecta (foresia).
MIASIS Enfermedad
parasitaria trasmitida por las larvas de las moscas, que afectan los tejidos y órganos
de vertebrados
Los síntomas que producen en los
humanos dependen del sitio del cuerpo
en el que se localizan, pero
generalmente sus síntomas son
Diarrea, gastroenteritis
intestinal, miasis de heridas
Malas condiciones sociales, la falta de higiene, una edad avanzada o muy
temprana, enfermedades psiquiátricas, alcoholismo, diabetes, una
enfermedad vascular periférica, higiene dental deficiente y
discapacidades físicas que limitan la
capacidad de disuadir a las moscas
Vía mecánica
FIEBRE TIFOIDEA Enfermedad
infecciosa intestinal producida por un
microbio transmitido por la mosca.
Ulceración de los intestinos
Fiebres altas y prolongadas
Dolor abdominal
La bacteria que causa la fiebre tifoidea,
Salmonella typhi, se propaga a través de alimentos, agua o
bebidas contaminadas.
CÓLERA Es una infección del
intestino delgado que ocasiona una gran
cantidad de diarrea acuosa.
Diarrea intensa Vomito
Dolor abdominal Ojos vidriosos
Letargo Pulso rápido
Comer o beber agua
o alimentos que contengan la
bacteria del cólera.
DISENTERÍA Trastornos
gastrointestinales caracterizados por una inflamación de
los intestinos.
Diarrea
Higiene inadecuada.
Fuente: autor, (Bowman, 2004).
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Anexo 2: Imagen ciclo de vida y medios de transmisión de enfermedades por
medio de Sarcophaga carnaria.
Anexo 2 - Imagen ciclo de vida y medios de transmisión de enfermedades
Fuente: (Manual de saneamento e proteção ambiental para os municipios, 1995).
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Anexo 3: Características insecticidas de Amanita muscaria sobre las
moscas.
Anexo 3 - Características insecticidas de Amanita muscaria sobre las moscas.
FUENTE: (Revista catalana de micología, 2014)
