El rol del docente y la naturaleza interpersonal del aprendizaje. Frida Díaz Barriga
EL ROL CLAVE DE LAS ALGAS EN LA NATURALEZA ...
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Fundamentales en la composición de la atmósfera actual y en el ciclo global
del carbono
Las Algas: Recordemos su Importancia evolutiva,
ecológica y biotecnológica
Cyanobacteria fueron responsables de transformar la atmósfera original de
la tierra en una atmósfera oxigénica.
A partir de una Cyanobacteria, por endosimbiosis, se originaron y
diversificaron los distintos grupos de algas.
Un ancestro perteneciente a Chlorophyta llevó al origen de las Embriophyta
y de esa manera se logró la conquista y diversificación de las plantas en el
ambiente terrestre.
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Importancia evolutiva, ecológica y biotecnológica
Forman comunidades claves en los diversos ecosistemas, por ej:
Fitoplancton: mantenimiento de cadenas tróficas en
ríos lagos, lagunas, océanos.
Perifiton: sustento de fauna de protozoos y
microinvertebrados
Bosques de macroalgas marinas (Chlorophyta,
Rhodophyta, Phaeophyta): hábitats que permiten
elevada diversidad animal (refugio, alimentación,
desove y cría).
Siendo sólo el 1 % de la biomasa fotosintetizadora del planeta, son
responsables de:
60 % del oxígeno respirable,
50 % del total de la producción primaria del planeta (E
y C reducido para mantener el mundo animal)
sostener el 70 % de la biomasa mundial,
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Son excelentes Organismos Modelo para investigación (estructura
de flagelo, fotosíntesis, desarrollo celular).
Importancia evolutiva, ecológica y biotecnológica
Aplicación científica y tecnológica:
Producción de distintos metabolitos de valor para el desarrollo de
programas biotecnológicos relacionados con acuicultura, industria
farmacéutica, cosmética, alimenticia, combustibles (ej Chlorella,
Dunaliella y Haematococcus)
Macroalgas como alimento (Japón, China y Corea).
Biomonitores de condiciones ambientales, particularmente de
condiciones de contaminación.
Macroalgas son fuente de ficocoloides (alginato: Phaeophyta, agar y
carragenano: Rhodophyta), espesantes en industria farmacéutica,
cosmética, alimenticia, etc (dentífricos, jabones, shampooes,
helados, postres, cremas, etc).
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Los cultivos de algas constituyen una herramienta importantísima
y casi indispensable para diversos estudios, permitiendo por ej:
Resolver delimitaciones taxonómicas en diferentes grupos,
Conocer y entender el ciclo de vida de muchas especies.
Conocer y entender los casos de polimorfismo,
Estudiar la resistencia a antibióticos y efectos de distintos
tóxicos
Comprender la citología, genética y mutaciones
Estudiar y encontrar aplicaciones: fijación de N2; inducción e
inhibición de crecimiento; vitaminas, pigmentos, ácidos grasos,
etc., evaluación de calidad de aguas e impacto ambiental
No cabe duda de la importancia de los estudios científicos sobre algas y
de las acciones que lleven a la conservación de su biodiversidad.
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La importancia del uso de cultivos llevó a lo largo de
los años a un mejoramiento de las técnicas y al
desarrollo y establecimiento de colecciones de
cultivos.
Las colecciones son fuente de estándares biológicos,
indispensables para muchos estudios taxonómicos,
fisiológicos, ecotoxicológicos y de exploración o
búsqueda de productos químicos útiles o nuevas
aplicaciones.
El desarrollo de colecciones se ha logrado
principalmente con una gran diversidad de microalgas
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Cultivos de algas: del siglo XIX a nuestros días
Famintzin (1871, Rusia): el iniciador. Fisiólogo vegetal
que hizo crecer algas verdes en una solución mineral
diseñada por Knop (en 1965) para plantas vasculares.
Beijerink (Holanda): 1º en aislar Chlorella,
Scenedesmus y presuntamente obtener cultivos
axénicos en 1890 (muy cuestionado).
Miquel (1890, 1898, Francia): aisló diatomeas y
estableció el método de aislamiento con micropipeta.
Además desarrolló 2 soluciones minerales para
enriquecer el agua de mar.
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Chodat (1900, Suiza): durante más de 30 años estableció
una colección de más de 300 especies en cultivos puros.
Kuster (1908): 1º en aislar dinoflagelados y Jacobsen
(1910): 1º aisló Volvocales
Allen (1910, UK): padre de la maricultura algal. 1º que
desarrolló cultivos de microalgas marinas como
alimento animal y sentó las bases para el cultivo de
macroalgas
Cultivos de algas: del siglo XIX a nuestros días
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Pringsheim (1912, Alemania): medio bifásico tierra-
agua. 1º en obtener un cultivo axénico de Cyanophyta.
Construyó grandes colecciones (Universidad en Praga
y las famosa CCAP y SAG).
Mainx (1930, Praga) centrifugación y uso de fototaxis
para aislamiento.
En 1949: impulso de la criobiología (glicerol como
protector de espermatozoides) y comienzan los
intentos de mantenimiento de algas en N2 líquido.
Cultivos de algas: del siglo XIX a nuestros días
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CCAP (UK): algas y protozoos (+ 2500 cepas)
UTEX (EEUU): Univ. Texas (3000 cepas)
SAG (Alemania): Univ. Göttingen (+ 2400 cepas)
NCMA (antes CCMP, EEUU): fitoplancton marino (+ 2500 cepas)
ACOI (Portugal): Univ. Coimbra (+ 2000 cepas)
ASIB (Austria): Inst Botánica Insbruck (+ 2000 cepas)
RCC (Francia): Colec cultivos de Roscoff (+ 1300 cepas)
UHCC (Finlandia): Cyanobacteria Univ Helsinski (aprox 1000 cepas)
ATCC (EEUU): Colec americana de cultivos tipo
NIES (Japón): cultivos microbianos Inst Nac de Estudios Ambientales (+ 2500
cepas)
PCC (Francia): cultivos de Cyanobacteria Inst Pasteur (+ 800 cepas)
CSIRO (Australia): Collection of living microalgae (aprox 800 cepas)
Algunas de las Colecciones internacionales de mayor
envergadura
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Conservar ex situ y mantener la diversidad
morfológica, fisiológica y genética de las algas
Objetivo de las Colecciones de cultivo
Valor fundamental: constituyen una fuente de
estándares biológicos para distintos estudios
El potencial uso de cultivos para estudios científicos,
determina que su mantenimiento garantice una
correcta preservación de sus propiedades fisiológicas
y bioquímicas.
El desarrollo y crecimiento de las colecciones apuntó
al establecimiento de una metodología de trabajo con
una rutina precisa de preservación, mantenimiento,
almacenamiento y control.
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Proveen cultivos que son difíciles o imposibles de re-aislar
(especies tipo de descripciones originales, especies de ambientes
extremos, etc)
Proveen un depósito de biodiversidad bien caracterizada para
investigación y/o explotación: fuente de resursos biotecnológicos
Son fuente irremplazable de cultivos derivados de material de
descripciones e identificaciones originales de especies, necesarias
para estudios taxonómicos y filogenéticos
Proveen una base informática sobre cultivos e investigaciones
relacionadas con ellos
Importancia de las colecciones de cultivos de algas
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Las colecciones de cultivo internacionales almacenan un número
significativo de cepas de la región o de otras regiones
Método de mantenimiento más común: rutina de subcultivo seriado
(mantener poblaciones saludables y representativas en morfología y
genética).
Métodos de mantenimiento
Desventajas del método de subcultivo:
Es trabajoso e insume mucho tiempo
Limita la capacidad de mantener un gran número de cepas (personal
especializado y exclusivo)
Existe riesgo de contaminación bacteriana
Existe riesgo de errores de etiquetado o contaminación cruzada
Puede haber cambios morfológicos o fisiológicos con respecto a la
población nativa. Hay evidencia en distintas microalgas
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La estabilidad fenotípica y genética de los cultivos es de
importancia crítica, no sólo para preservar biodiversidad
representativa, sino para la preservación de recursos estables para
estudios científicos y para explotación biotecnológica.
Criopreservación como técnica alternativa para el mantenimiento de
cultivos algales.
Almacenar el organismo a T° ultra-baja (debajo de -130º C), siguiendo un
protocolo de congelamiento y aclimatación con un crioprotector, de
manera tal que sea capaz de sobrevivir luego del descongelamiento.
En teoría permite mantener algas indefinidamente en un estado
metabólicamente inactivo, y evita o disminuye los riesgos asociados al
mantenimiento por subcultivo seriado.
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Da estabilidad contra cambios genéticos debidos a
la presión de selección de las condiciones de
cultivo o debidos a la deriva génica
Protege las cepas de contaminación microbiana,
errores de manipulación, errores de etiquetado,
fallas mecánicas de los equipos de cultivo
Necesita un espacio de almacenamiento mínimo
(volúmenes de cripreservación de 1-2 ml)
Ventajas del método de
criopreservación
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Inversión inicial para entrenamiento y equipo especializado
Necesidad de un resguardo de equipos de alta confiabilidad
Aporte regular de N2 líq y freezer de Tº ultra-baja (- 150º C)
Se necesitan 2 a 3 semanas para obtener un volumen adecuado de
cultivo en activo crecimiento a partir de los viales congelados
Desventajas del método de criopreservación
No puede aplicarse a todas las algas (sin éxito en Dino, Crypto, Synuro
y Rhaphidophyta).
Distintos protocolos de congelamiento influyen en la calidad del
material preservado y puede llevar a mutaciones
Riesgo de selección de subpoblaciones resistentes y de alteraciones
genéticas. Puede inducir estrés vía formación de cristales intracelulares,
shock osmótico y/o toxicidad del crioprotector (PVP, glicerol, DMSO,
MeOH). Ej: Muller et al. (2007) diferencias genómicas luego de
criopreservación en 14 de 28 cepas de Chlorophyta.
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Discutir e impulsar investigaciones relacionadas con los problemas
asociados a las colecciones de cultivos.
Proyecto COBRA (Conservación de recursos biotecnológicos y
científicos europeos en microalgas y cianobacterias)
Objetivos principales: Aplicar criopreservación a especies “reacias”
Monitorear por técnicas moleculares la ocurrencia de cambios en
cultivos post-descongelamiento
Testear los protocolos de congelamiento y establecer pautas de
validación y control de calidad
Lineamientos establecidos: Se recomienda evitar el uso de protocolos de congelamiento subóptimos
(menor número de pasos, crioprotectores menos confiables)
Se establecieron los niveles mínimos aceptables de viabilidad post
descongelado en un 10 a 60 %
Pero se recomiendan viabilidades mayores al 60 % como estándares, ya
que ello, junto con el congelar grandes poblaciones, minimiza el riesgo de
seleccionar variantes genéticamente tolerantes al congelamiento.
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CCAP (UK): algas y protozoos (+ 2500 cepas)
UTEX (EEUU): Univ. Texas (3000 cepas)
SAG (Alemania): Univ. Göttingen (+ 2400 cepas)
NCMA (EEUU): fitoplancton marino (+ 2500 cepas)
ACOI (Portugal): Univ Coimbra (+ 2000 cepas)
ASIB (Austria): Inst Botánica Insbruck (+ 2000 cepas)
RCC (Francia): Colec cultivos de Roscoff (+ 1300 cepas)
UHCC (Finlandia): Cyanobacteria Univ Helsinski (aprox 1000 cepas)
ATCC (EEUU): Colec americana de cultivos tipo
NIES (Japón): cultivos microbianos Inst Nac de Estudios Ambientales (+
2500 cepas)
PCC (Francia): Cyanobacteria Inst Pasteur (+ 800 cepas)
CSIRO (Australia): Collection of living microalgae (aprox 800 cepas)
Colec Cultivos Univ. Leningrado (Rusia): (aprox 700 cepas)
Aumento del número de cepas criopreservadas dentro del proyecto COBRA:
1500 cepas nuevas del 2002 al 2005.
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Algunas iniciativas de desarrollo de cultivos de algas Colección de cultivos del Laboratorio de Microalgas de la Facultad
de Ciencias Naturales Sede Trelelew – Chubut (Univ. Nacional de la
Patagonia San Juan Bosco) (Prof. Isabel Albarracín).
Cultivos en nuestro país
Colección de cultivos de microalgas del Laboratorio de Ficología
(DBBE, FCE-N, UBA) (Dr. Vélez)
Cultivos de cepas marinas y de agua dulce del Lab. Estudios
Básicos y Biotecnológicos en Algas y Hongos y Lab. Ficología y
Micología, Dto. Biología, Bioquímica y Farmacia, Universidad
Nacional del Sur, Bahía Blanca (Dra. Leonardi y Dr. Cáceres)
Laboratorio de Toxicología de la Facultad de Cs. Exactas de la Universidad
Nacional de La Plata, laboratorio dirigido por la Dra. Gianuzzi y el Dr. Andrinolo,
Cultivos de Euglenophyta y microalgas verdes de agua dulce,
incluyendo Volvocales (Lab. Protistas, DBBE, FCE-N, UBA) (Dres.
Conforti, Solari, Juárez)
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Trabajo Práctico:
Técnicas de Cultivo de
Microalgas
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• Muchos estudios necesitarán desarrollar cultivos de microalgas a escala de laboratorio.
• Normalmente se busca optimizar su crecimiento (estudio de requerimientos de la especie utilizada).
• El tipo de estudio a realizar condiciona el medio de cultivo a utilizar y el tipo de cultivo a desarrollar.
• El primer paso para el desarrollo de cultivos es el aislamiento
• DE ESO NOS OCUPAREMOS EN EL TP
Técnicas de cultivos en microalgas
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Técnicas de cultivos en microalgas M
ed
ios d
e c
ultiv
o Minerales definidos
Macronutrientes (Mg, Ca, K, Na, S, N, P, C)
Micronutrientes (Fe, Zn, Cu, Mn, Mo, Co, Vn)
Quelante (EDTA, ác. Nitrilotriacético)
Sistema Buffer ( (Tris, Hepes, KH2PO4 - K2HPO4)
Provisión de CO2
Minerales definidos con
agregado de
compuestos orgánicos
No definidos Con extracto de levadura, peptona o medio tierra agua
(tiamina, cianocobalamina, biotina,
glucosa, acetato)
Se utilizan líquidos o sólidos (agar 1,5-2%), esterilizados
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SW tindalizado (Tierra-agua) (Prinsgheim): Buen crecimiento
de filamentosas (Zygnematales), Volvocales (más CaC03-y B12),
Euglenoideos (más arveja ó cebada, B12).
SW autoclavado (Tierra-agua): mismos grupos anteriores y
permite el crecimiento de Oedogoniales.
BBM (Bold's basal medium): medio mineral para algas sin
requerimientos especiales; de uso generalizado principalmente para
cultivos axénicos. Crecen muy bien las Chlorococcales.
BBMSW: BBM + sobrenadante de tierra-agua: Indicado para
algas de agua dulce en general. Bueno para Chlorococcales y microalgas
de suelo. También algunas diatomeas
MEDIOS DE CULTIVO DE USO GENERALlZADO
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JM (Jaworsky's medium): medio mineral con 3 vitaminas (B12,
tiamina, biotina).Buno para Desmideáceas, algunas Volvocales y
Diatomeas (agregar Na2Si03).
Medios minerales con fuente orgánica de carbono
(acetato de Na ó glucosa): buenos para aumentar el rendimiento de
biomasa de muchas Chlorococcales. Solo para cepas axénicas.
Medios minerales con componentes orgánicos (peptona y
extracto de levadura): bueno para el crecimiento de Euglenoideos. Solo
para cepas axénicas.
MEDIOS DE CULTIVO DE USO GENERALlZADO
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Autoclavado (calor húmedo): 20 min. A 121ºC y 1,5
atm de presión)
Tindalizado (calor húmedo a 100ºC y presión normal):
1 hora 3 días seguidos
Filtración: membranas de 0,22 mm de poro
Radiación: sólo para material plástico (gama, UVC)
Óxido de etileno: material de plástico descartable
Estufa (calor seco): 2 horas a 170-180ºC. Sólo
material de vidrio
MÉTODOS DE ESTERILIZACIÓN
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Métodos de aislamiento
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Irradiación UV
Tratamiento con antibióticos (penicilina,
cloranfenicol, NO estreptomicina)
Tratamiento con detergente de alto peso
molecular
PURIFICACIÓN A AXENICIDAD
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Cultivos en lote (batch): una o más especies suspendidas en un medio
acuoso. Obtención de grandes cantidades de material (Crecimiento,
bioquímica, fisiológicos,dinámica de fitoplancton y bioensayos).
Cultivos sincrónicos: Todas las células en igual estado fisiológico
dividiéndose simultáneamente. Inducción por ciclos L -O, cambios de Tº,
niveles de nutrientes, o selección de tamaño. (÷ celular, ciclo reproductivo, vías
metabólicas).
Cultivos continuos: Siempre en el mismo punto de la curva, rinde altas
cantidades de material homogéneo por períodos largos. (máx. producción
de biomasa o de metabolitos, estudios a largo plazo de respuesta de los
cultivos a cambios ambientales rigurosamente establecidos (luz, Tº, pH,
niveles de nutrientes, acción de inhibidores y sust. tóxicas). Puede
lograrse por renovación periódica del medio de cultivo y cosecha periódica
de células.
TIPOS DE CULTIVOS EN MEDIO LíQUIDO A ESCALA DE LABORATORIO
Importante: mantener agitación, principalmente en cocoides
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