Estudio dE la ExprEsión difErEncial dE factorEs

dE virulEncia por distintos aislamiEntos clínicos atípicos

dE Pseudomonas sP.

UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE CIUDAD JUÁREZ

Ricardo Duarte JáquezRector

David Ramírez PereaSecretario General

Manuel Loera de la RosaSecretario Académico

Daniel Constandse CortezDirector del Instituto de Ciencias Biomédicas

Luis Enrique Gutiérrez CasasCoordinador General de Investigación y Posgrado

Ramón Chavira ChaviraDirector General de Difusión Cultural y Divulgación Científica

Estudio dE la ExprEsión difErEncial dE factorEs

dE virulEncia por distintos aislamiEntos clínicos atípicos

dE Pseudomonas sP.

Universidad Autónoma de Ciudad Juárez

marisEla aguirrE ramírEz

ciEncias naturalEs y Exactas

CoordinaCión General de investiGaCión y PosGrado

Lisbeily Domínguez Ruvalcaba Coordinadora de la ColeCCión

Aguirre Ramírez, Marisela.

Estudio de la expresión diferencial de factores de virulencia por distin-tos aislamientos clínicos atípicos de Pseudomonas sp. / Marisela Agui-rre Ramírez. Ciudad Juárez, Chih. : Universidad Autónoma de Ciudad Juárez, 2013. (Colección Textos Universitarios, Serie Investigación)

24 p.; 30 cm.

Incluye bibliografía Colección Reportes Técnicos de Investigación ISbN: 978-607-7953-80-7Serie ICb, Vol. 9. ISbN: 978-607-9224-99-8

Contenido:

1.– Introducción. 2.– Planteamiento. 3.– Metodología. 4.– Resultados. 5.– Conclusiones.

D. R. © Aguirre Ramírez, Marisela.

La edición, diseño y producción editorial de este documento estuvo a cargo de la Direc-ción General de Difusión Cultural y Divulgación Científica, a través de la Subdirección de Publicaciones.

índicEResumen 6Abstract 8Palabras clave 9Usuarios potenciales 9Reconocimientos 9

i. introducción

El genoma de Pseudomonas aeruginosa 11La respuesta sensora de quórum de Pseudomonas aeruginosa 12

ii. plantEamiEnto

iii. mEtodología

iv. rEsultados

v. conclusionEsReferencias 21

7

rEsumEn

Pseudomonas aeruginosa es una Gama-proteobacteria y patógeno oportu-nista de humanos. Es la principal bacteria Gram negativa responsable de muertes a nivel hospitalario. El sistema sensor de quórum (QS por sus si-glas en inglés) es la respuesta que regula la expresión de varios compuestos

citotóxicos y enzimas hidrolíticas que determinan la patogenicidad de la bacteria. La piocianina derivada de las fenacinas, inhibe la respiración celular y produce el estrés oxidativo. Elastasa, además de su actividad proteolítica de tejidos, es un inmuno-modulador. Los ramnolípidos son biosurfactantes que tienen actividad hemolítica y quimiotáctica neutrófilica.

Veinte y dos cepas fueron aisladas de pacientes adultos que presentaron neumonía en el Hospital de Especialidades del “Centro Médico Nacional Siglo XXI_IMSS”. Estas cepas comparten algunas características de Pseudomonas aeruginosa (crecimiento a 42º C expresión de oxidasa, el gen toxA), y fueron clasificadas fenotípicamente como P. aeruginosa. Sin embargo, producen diferencialmente sus factores de virulencia y la genotipificación por 16S y 23S no corresponde a la especie P. aeruginosa. Razón por la cual se les dio el nombre de atípicas.

El objetivo de este proyecto es cuantificar la producción de piocianina, elastasa y ramnolípidos patógeno atípico Pseudomonas spp. Para ello crecimos la bacteria en condiciones de alta producción ramnolípidos (medio PPGAS) durante 24 horas. Utili-zamos los métodos espectrofotométricos para cuantificar los tres tipos de factores de virulencia antes mencionados. Por los resultados, se clasificaron las cepas en cuatro grupos según el tipo de los patrones de expresión: 1) el que no produce ninguno de los tres factores de virulencia; 2) la cepa que sobre expresa la de los tres factores de virulencia; 3) el grupo que sobre expresa dos de los tres factores de virulencia y 4) el grupo que sobre se expresa sólo uno de los tres factores de virulencia.

8

Estudio de la expresión diferencial de factores de virulencia por distintos aislamientos clínicos atípicos de Pseudomonas sp.

abstract

abstract

Pseudomonas aeruginosa is an opportunistic human pathogen Gammapro-teobacteria. It is the main Gram-negative bacterium responsible of nosoco-mial deaths. The quorum sensing (QS) response regulates the expression of several cytotoxic compounds and hydrolytic enzymes that determine the

bacteria pathogenesis. The phenazyne derivative pyocyanin, inhibits cellular respi-ration and produces oxidative stress. Elastase, besides its broad tissue proteolitic activity, is an immunomodulator. Rhamnolipids biosurfactans have haemolytic and neutrophil chemotactic activity.

Twenty-two strains were isolated from patients of Hospital “Centro Médico Na-cional Siglo XXI_IMSS”. These strains share some characteristics of Pseudomonas aeruginosa (growth at 42o C, toxA gene, oxidase expression) and were phenotipicaly clasified as they would be the same species. However, they produce diferentially their virulence factors and the genotypification by 16S and 23S do not correspond to PAO1 strain. That is its atipical name.

The aim of this project is quantify the production of pyocyanin, elastase and rham-nolipids by the atypical pathogen Pseudomonas spp. For this purpose we grew the bac-teria in high rhamnolipids production conditions (PPGAS medium) for 24 h. We used spectrophotometric methods to quantify the three types of virulence factors. by the re-sults, we classified the strains in four kind groups according to the expression patterns: 1) the one that do not produce any of the three virulence factors; 2) the strain that over expresses the all three 3) the group that over expresses two of the three virulence factor and 4) the group that over expresses just one of the three virulence factors.

Estudio de la expresión diferencial de factores de virulencia por distintos aislamientos clínicos atípicos de Pseudomonas sp.

9

abstract

Palabras clave:Pseudomonas aeruginosa, factores de virulencia.

Usuarios potenciales:Los datos son de calidad suficiente para ser publicables en una revista de arbitra-

je internacional. Por lo que podrían ser de referencia para cualquier institución que haga investigación básica y/o aplicada del tema.

Reconocimientos:

El presente trabajo es producto de la tesis de licenciatura de la alumna Alejándra Cárdenas Rodríguez, que pertenece al programa de Química de ICb, UACJ.

El presente proyecto se ha realizado en colaboración con la Dra. Rosario Morales Espinosa, la Mtra. Gabriela Delgado Sapién y el Técnico Juan Luis Sánchez Mén-dez del Departamento de Microbiología y Parasitología de la Facultad de Medicina, UNAM. Este equipo nos proporcionó las cepas de trabajo se ha abocado a la caracte-rización genotípica y fenotípica de las muestras.

Se reconoce, además, el apoyo del Departamento de Ciencias Químico-biológicas del Instituto de Ciencias biomédicas de la UACJ en el suministro de material e infra-estructura para la realización del presente proyecto.

11

i. introducción

Pseudomonas aeruginosa es una γ-proteobacteria ubicua en la naturaleza, ya que se puede encontrar en ambientes tan diversos como suelos, hábitats ma-rinos, aguas someras, aguas prístinas y residuales y en tejidos de plantas y animales (Soberón-Chávez, 2001). Asimismo, es de gran importancia médica

por ser un patógeno oportunista que infecta principalmente a pacientes con fibrosis quística o inmunocomprometidos y por su alta resistencia natural a antibióticos. Adi-cionalmente, esta bacteria es capaz de degradar una gran variedad de compuestos or-gánicos como hidrocarburos alifáticos, compuestos aromáticos y disolventes halogena-dos (Maier y Soberón-Chávez, 2000). La respuesta sensora de quorum en P. aeruginosa regula la secreción de varios compuestos tóxicos y enzimas hidrolíticas involucrados en la patogenicidad de la bacteria (Smith e Iglewski, 2003) y la producción de ramnolípi-dos, que es un biosurfactante relacionado en la formación de biopelículas (Davey y col., 2003) y la utilización de hidrocarburos como fuente de carbono (Zhang y Miller, 1992).

El genoma de Pseudomonas aeruginosa

El “core” del genoma de P. aeruginosas se caracteriza por presentar una sintenia altamente conservada y un bajo porcentaje de substitución nucleotídica (5%) (Kiewitz y Tümmler, 2000; Spencer y col., 2003); incluso en aislamientos de hábitats aleja-dos temporal y espacialmente, conservan dicha estabilidad genómica (Römling y col., 1994). La presencia de islas e isletas genómicas determinan la parte variable del genoma de distintas clonas o cepas específicas (Ernst y col., 2003; Wolfgang y col., 2003); por lo que el tamaño del genoma de P. aeruginosa puede varía entre 5.2 y 7 Mpb (Schmidt y col., 1996). Asimismo, todos los factores de virulencia se encuentran formando parte del “core” (Mathee y col., 2008) y no se observa una correlación entre el contenido genómico de las cepas infecciosas y el medio ambiente en el que fueron aisladas (Wolfgang y col., 2003); lo cual indica que todas las cepas de P. aeruginosa son potencialmente patógenas.

12

Estudio de la expresión diferencial de factores de virulencia por distintos aislamientos clínicos atípicos de Pseudomonas sp.

La respuesta sensora de quórum de Pseudomonas aeruginosa

La respuesta sensora de quorum (QS, por sus siglas en inglés) fue descrita inicialmente en la bacteria marina Vibrio fischeri, la cual produce luz al colonizar y aumentar su población en los órganos de luz de algunos peces y calamares (Fuqua y col. 2001). El QS es un mecanismo genético que regula la expresión de los genes de bioluminiscencia en condiciones de alta densidad poblacional. Esto se debe a que la bacteria sintetiza y secreta al medio una molécula inductora (3-oxo-hexanoil homo-serina lactona), que al aumentar su concentración interactúa con el factor transcrip-cional LuxR e induce la producción de luciferasa (Greenberg, 1997; Urbanowski y col., 2004). La respuesta QS en P. aeruginosa es de mayor complejidad con respecto a V. fischeri, no sólo por ser un sistema que involucra múltiples reguladores como se describirá mas adelante, sino porque ser modulada por factores medioambientales y diversas condiciones de estrés (Soberón-Chávez y col., 2005).

La expresión de los genes regulados por la respuesta QS en P. aeruginosa depende de la síntesis de dos autoinductores (AI), la butanoil-homoserina lactona (C4-HSL) y el 3-oxo-dodecanoil-homoserina lactona (3-O-C12-HSL), que al unirse a los regula-dores transcripcionales RhlR y LasR, respectivamente, activan la transcripción de diversos genes (Schuster y col., 2003; Wagner y col., 2003). Alrededor del 6% de geno-ma de P. aeruginosa es regulado por la respuesta QS (Schuster y col., 2003; Wagner y col., 2003). Éste es un sistema jerárquico en el que LasR-3-O-C12-HSL activa la transcripción de los genes rhlR (Latifi y col., 1996; Pesci y col., 1997; Medina y col., 2003), rhlI (butanoil homoserina lactona sintasa, de Kievit y col., 2002) y lasI (3-oxo-dodecanoil homoserina lactona sintasa, Seed y col., 1995), además de la de varios ge-nes que codifican para factores de virulencia (van Delden y col., 1998). La regulación dependiente de RhlR es un poco más compleja, promueve la expresión, entre otros, de los genes encargados de la biosíntesis de ramnolípidos (rhlAB). En ausencia de C4-HSL, RhlR puede actuar como represor de algunos genes como rhlR, rhlA, y lasB (elastasa b) (Medina y col., 2003; Anderson y col., 1999) y en presencia de su AI puede activar la expresión de rhlA, lecA (lectina PA-IL), y del operón phzA-G1 (biosíntesis de piocianina) (Medina y col., 2003; Winzer y col., 2000; Gallagher y col., 2002).

P. aeruginosa produce una tercera molécula que regula la expresión de la respues-ta QS, la 2-heptil-3-hidroxi-4-(1H)-quinolina, llamada PQS por sus siglas en inglés Pseudomonas quinolone signal (Pesci y col., 1999). La señalización dependiente de esta molécula afecta principalmente la expresión de los genes dependientes de RhlR (lecA y phzA1) (McKnight y col, 2000; Diggle y col., 2003).

Estudio de la expresión diferencial de factores de virulencia por distintos aislamientos clínicos atípicos de Pseudomonas sp.

13

ii. plantEamiEnto

Se aislaron 130 cepas, en su mayoría, de secreciones bronquiales de pacientes que presentaron neumonía en el Hospital de Especialidades del Centro Mé-dico Nacional Siglo XXI del IMSS por los doctores Gerardo González Valen-cia y Luis Casanova. En el laboratorio de la Dra. Rosario Morales, se llevó a

cabo una primer caracterización de las cepas a través de algunos marcadores carac-terísticos de P. aeruginosa. En todas las cepas se amplificó típicamente el gene toxA (exotoxina A exclusiva de P. aeruginosa) (Wretlind y Pavlocskis, 1981); asimismo, todas las cepas crecieron a 42° C (Gilardi, 1972) y presentaron actividad de oxidasa. Aunque todas ellas coinciden con P. aeruginosa por el método de fenotipificación por prueba de Api20 para Enterobacterias, veintitrés son diferentes en su patrón de corte del operón 16S con al enzima I-CeuI (que corta específicamente en una secuencia de 19 pares de bases en el gen 23S del operón ribosómico), por lo cual se les denominó atípicas (comunicación personal Gabriela Delgado). Adicionalmente, el grupo de la Dra. Morales, a través de protocolos de hibridación con sondas específicas para los genes 16S y 23S sobre los perfiles ribosómicos de las cepas atípicas, mostró la pre-sencia de más de cuatro operones ribosómicos; los cual no se han reportado para aislamientos de P. aeruginosa (comunicación personal Dra. Morales). Algunas de las cepas atípicas presentan además, diferentes patrones de expresión de algunos facto-res de virulencia, como son la producción de espuma (ramnolípidos) en medio bajo de fosfatos (PPGAS) y de pigmento verde-azul (piocinanina).

Por lo anterior, resulta importante la caracterización a nivel molecular de su sis-tema QS y la regulación de la expresión de sus factores de virulencia. De manera particular, aquellas cepas que no sintetizan dichos factores pudieran formar parte de un tipo poblacional recientemente caracterizado en aislamientos clínicos denomi-nados “cheaters” (Sandoz y col., 2007; Diggle y col., 2007). P. aeruginosa se comporta socialmente a través de la respuesta QS para la síntesis de exoproductos. Sin embar-go, algunos individuos mutantes (principalmente en el gene lasR) de la población no pueden responder a la señales QS, pero se aprovechan de los recursos de la población general. En una población silvestre, después de nueve días de cultivo el 80% de las cepas se vuelve mutantes en lasR (Köhler y col., 2009). Por lo que las “cheaters” son

14

Estudio de la expresión diferencial de factores de virulencia por distintos aislamientos clínicos atípicos de Pseudomonas sp.

poblaciones celulares que surgen a partir de cultivos silvestres de cepas patógenas que se aprovechan de los recursos públicos sin un costo metabólico (Dunny y col., 2008). Resulta interesante averiguar si los mecanismos de regulación del sistema QS en éstas cepas atípicas es semejante al de una cepa tipo de P. aeruginosa; así como, determinar si existe una correlación con su arreglo genómico.

Por lo que en esta parte el proyecto nos dimos a la tarea de cuantificar la produc-ción de tres distintos factores de virulencia (piocianina, ramnolípidos y proteasas), para posteriromente correlacioarla con la expresión de los genes biosintéticos en las cepas atípicas y su producción de autoinductores.

Estudio de la expresión diferencial de factores de virulencia por distintos aislamientos clínicos atípicos de Pseudomonas sp.

15

iii. mEtodología

P. aeruginosa dirige la expresión de tres distinos factores de virulencia, como son la piocinanina, las proteasas y los ramnolípidos, en respuesta a la regu-lación genética por el sistema QS (Soberón-Chávez y col., 2005). Las cepas atípicas, de las cuales se hace mención en los antecedentes, presentan un

patrón variable de producción de algunos factores de virulencia. Por lo que quisimos determinar la producción de los factores de virulencia. Para lo cual, crecimos las dis-tintas cepas atípicas 24 h de crecimiento en medio PPGAS a 37° C. Las cepas PAO1 y PAO1 (∆rhlR) se usaron como controles de produción positivo y negativo, respectiva-mente. La cuantificación de ramnolípidos totales se hizo por el método de detección de azúcares reductores por orcinol (Chandrasekaran y bemiller, 1980). brevemente, los ramnolípidos se extrajeron con éter a partir de un volumen de cultivo, éstos se re-suspendieron en agua e hidrolizan con una solución de orcinol y ácido sulfúrico a 80° C y se cuantificó a 421 nm en un espectrofotómetro. Las lecturas se interpolaron en una curva de ramnosa y la concentración de los ramnolípidos se determimnó usando el coeficiente de extinción molar del crotonato.

Para la cuantificación de piocianina en cultivos de 24 h a 37° C de las cepas atí-picas de P. aeruginosa se llevó a cabo el protocolo descrito por Essar y col. (1990). brevemente, la extracción del pigmento azul se hizo con cloroformo a partir del sobre-nadante de los cultivos. Dicha fase orgánica se acidificó con HCl 0.2N, la cual cambió a color rojo y se midió a 520 nm en un espectrofotómetro. Los valores obtenidos se multiplicaron por el coeficiente de extinción molar de la piocianina.

Se cuantificó la producción de elastasas a través de la hidrólisis de elastina acopla-da a rojo congo (modificado de Kessler y col., 1993). 25 ul de cada cultivo de las cepas atípicas crecidas en medio PPGAS a 37°C se agregaron a 20 mg de elastina-rojo congo en 1ml de bueffer de reacción en agitación (120 rpm) por 16 hrs a 37° C. El rojo congo liberado se cuantificó en un espectrofotómetro a 495 nm.

17

iv. rEsultados

Se llevó a cabo la cuantificación de la producción de tres factores de virulencia a partir de las cepas atípicas en medio PPGAS a 37º C por 24 h. Los datos se ordenaron de acuerdo a su producción de piocianina (Figura 1a). La pro-ducción de elastasa (Figura 1b) y ramnolípidos (Figura 1c) se representó en

relación al histograma de piocianina. De acuerdo a los niveles de producción de los tres factores de virulencia propusimos la siguiente clasificación de las cepas: grupo 1), cepas que no produce ninguno de los tres factores de virulencia; grupo 2), cepas que sobre expresan los tres factores de virulencia; grupo 3), cepas que sobre expresan dos de los tres factores de virulencia y grupo 4), cepas que sobre se expresa sólo uno de los tres factores de virulencia.

18

Estudio de la expresión diferencial de factores de virulencia por distintos aislamientos clínicos atípicos de Pseudomonas sp.

Piocianina (DO 520 nm)a)

b)

c)

Elastasa (DO 495 nm)

Ramnolípidos (µg/ml)

Estudio de la expresión diferencial de factores de virulencia por distintos aislamientos clínicos atípicos de Pseudomonas sp.

19

v. conclusionEs

Los datos preliminares muestran que existe una producción diferencial de los fac-tores de virulencia de la cepas atípicas de Pseudomonas sp.

Los presentes datos se han hecho púbicos en cuatro foros nacionales distintos:

Aguirre-Ramírez, M. “Caracterización del sistema sensor de quorum y la pro-1. ducción de factores de virulencia de aislamientos ambientales y clínicos atípi-cos de Pseudomonas aeruginosa”. Primer Simposio de Investigación del Insti-tuto de Ciencias biomédicas, UACJ. Ciudad Juárez, Chi. 19 de agosto 2010. Cárdenas-Rodríguez A., Morales-Espinosa M.R., Delgado-Sapién G., Soberón-2. Chávez G. y Aguirre-Ramírez M. (2010) “Estudio de la expresión diferencial de factores de virulencia por distintos aislamientos clínicos atípicos de Pseu-domonas aeruginosa”. Memorias de la Segunda sesión de la Cátedra Nacional Cumex “Mario Molina Henríquez 2010”. Pag. 37. Aceptado.Cárdenas-Rodríguez, A.; Morales-Espinosa, M. R.; Delgado-Sapién, G.; Sán-3. chez-Méndez, J. L. y Aguirre-Ramírez, M. Estudio de la expresión diferencial de los factores de virulencia en aislamientos clínicos atípicos de Pseudomonas spp. Segundo Simposio de Investigación del Instituto de Ciencias biomédicas, UACJ. Ciudad Juárez, Chi. 19 de agosto 2011. Cárdenas-Rodríguez, A.; Morales-Espinosa, M. R.; Delgado-Sapién, G.; Sán-4. chez-Méndez, J. L. y Aguirre-Ramírez, M. Differential expression of virulence factors by clinical atypical Pseudomonas spp. isolates. Second Meeting of bio-chemistry and Molecular biology of bacteria Huatusco, Veracruz. November 7 – 11, 2011 (memoria).

21

rEfErEncias

Chandrasekaran, E. V. y bemiller, J. N. (1980) Constituent analyses of glycosamino-glycans. Methods. Carbohydr. Chem. 8: 89-96.

Davey, M. E.; Caiazza, N. C. y O´Toole, G. A. (2003) Rhamnolipid surfactant produc-tion affects biofilm architecture in Pseudomonas aeruginosa PAO1. J. bacteriol. 185: 1027-1036.

de Kievit, T. R.; Kakai, Y.; Register, J. K.; Pesci, E. C. y Iglewski, b. H. (2002) Role of the Pseudomonas aeruginosa las and rhl quorum-sensing systems in rhlI regu-lation. FEMS. Microbiol. Lett. 212 (1): 101-6.

Diggle, S. P.; Griffin, A. S.; Campbell, G. S. y West, S. A. (2007) Cooperation and con-flict in quorum-sensing bacterial populations. Nature. 450 (7168): 411-4.

Diggle, S. P.; Winzer, K.; Chhabra, S. R.; Worrall, K.; Cámara, M. y Williams, P. (2003) The Pseudomonas aeruginosa signal overcomes the cell density-depen-dency of quorum sensing hierarchy, regulates rhl-dependent genes at the onset of stationary phase and can be produced in the absence of LasR. Mol. Microbiol. 50: 29-43.

Dunny, G. M.; brickman, T. J. y Dworkin, M. (2008) Multicellular behavior in bac-teria: communication, cooperation, competition and cheating. bioessays. 30 (4): 296-8.

Ernst, R. K.; D’Argenio, D. A.; Ichikawa, J. K.; bangera, M. G.; Selgrade, S.; burns, J. L.; Hiatt, P.; McCoy, K.; brittnacher, M.; Kas, A.; Spencer, D. H.; Olson, M. V.; Ramsey, b. W.; Lory, S. y Miller, S. I. (2003) Genome mosaicism is conserved but not unique in Pseudomonas aeruginosa isolates from the airways of young chil-dren with cystic fibrosis. Environ. Microbiol. 5 (12): 1341-9.

Essar, D. W.; Eberly, L.; Hadero, A. y Crawford, I. P. (1990) Identification and char-acterization of genes for a second anthranilate synthase in Pseudomonas aerug-inosa: interchangeability of the two anthranilate synthases and evolutionary implications. J. bacteriol. 172: 884-900.

Fuqua, W. C.; Parsek, M. y Greenberg, E. P. (2001) Regulation of the gene expression by cell-to-cell communication: Acyl-homoserine lactone quorum-sensing. Annu. Rev. Genet. 35: 439-468.

22

Estudio de la expresión diferencial de factores de virulencia por distintos aislamientos clínicos atípicos de Pseudomonas sp.

rEfErEncias

Gallagher, L. A.; McKnight, S. L.; Kuznetsova, M. S.; Pesci, E. C. y Manoil, C. (2002) Functions required for extracellular quinolone signaling by Pseudomonas aeruginosa. J. bacteriol. 184: 6472-6480.

Gilardi, G. L. (1972) Practical schema for the identification of nonfermentative gram negative bacteria encountered in medical bacteriology. Am. J. Med. Technol. 38 (3): 65-72.

Kessler, E.; Safrin, M.; Olson, J. C.; Ohman, D. E. (1993) Secreted LasA of Pseudomo-nas aeruginosa is a staphylolytic protease. J. biol. Chem. 268 (10): 7503-8.

Kiewitz, C. y Tummler, b. (2000) Sequence Diversity of Pseudomonas aeruginosa: Impact on Population Structure and Genome Evolution. J. bacteriol. 182 (11): 3125-35.

Köhler, T.; buckling, A. y van Delden, C. (2009) Cooperation and virulence of clinical Pseudomonas aeruginosa populations. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 106 (15): 6339-44.

Latifi, A., Foglino, M., Tanaka, K., Williams, P. y Lazdunski, A. (1996) A hierarchical quorum-sensing cascade in Pseudomonas aeruginosa links the transcriptional activators LasR and RhlR (VsmR) to expression of the stationary sigma factor RpoS. Mol. Microbiol. 21: 1137-46.

Maier, R. M y Soberón-Chavez, G. (2000) Pseudomonas aeruginosa rhamnolipids: biosynthesis and potential applications. Appl. Microbiol. biotechnol. 54:625-33.

Mathee, K.; Narasimhan, G.; Valdes, C.; Qiu, X.; Matewish, J. M.; Koehrsen, M.; Ro-kas, A.; Yandava, C. N.; Engels, R.; Zeng, E.; Olavarietta, R.; Doud, M.; Smith, R. S.; Montgomery, P.; White, J. R.; Godfrey, P.A.; Kodira, C.; birren, b.; Hala-gan, J. E. y Lory, S. (2008) Dynamics of Pseudomonas aeruginosa genome evo-lution. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 105 (8): 3100-5.

McKnight, S. L.; Iglewski, b. H. y Pesci, E. C. (2000) The Pseudomonas quinolone signal regulates rhl quorum sensing in Pseudomonas aeruginosa. J. bacteriol. 182: 2702-8.

Medina, G.; Juárez, K.; Valderrama, b. y Soberón-Chávez, G. (2003) Mechanism of Pseudomonas aeruginosa RhlR transcriptional regulation of rhlAB promoter. J. bacterial. 185: 377-380.

Minckley, W. L. (1969) “Environments of the bolson of Cuatrocienegas, Coahuila, Mexico, with special reference to the aquatic biota”, en Science Series, núm. 2, pp. 1-65, University of Texas at El Paso.

Pesci, E. C.; Milbank, J.b., J. P. Pearson, S. McKnight, A. S. Kende, E. P. Greenberg e Iglewski, b. H. (1999) Quinolone signaling in the cell to cell communication sys-tem of Pseudomonas aeruginosa. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 96: 11229-11234.

Pesci, E. C.; Pearson, J. P.; Seed, P. C. e Iglewski, b. H. (1997) Regulation of las and rhl quorum sensing in Pseudomonas aeruginosa J. bacteriol. 179: 3127-3132.

Römling, U.; Wingender, J.; Muller, H. y Tummler, b. (1994) A Major Pseudomonas aeruginosa Clone Common to Patients and Aquatic Habitats. Appl. Environ. Microbiol. 60 (6): 1734-8.

Estudio de la expresión diferencial de factores de virulencia por distintos aislamientos clínicos atípicos de Pseudomonas sp.

23

rEfErEncias

Sandoz, K. M.; Mitzimberg, S. M. y Schuster, M. (2007) Social cheating in Pseudomo-nas aeruginosa quorum sensing. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 104 (40): 15876-81.

Schmidt, K. D.; Tümmler, b. y Römling, U. (1996) Comparative genome mapping of Pseudomonas aeruginosa PAO1 with P. aeruginosa C, which belongs to a major clone in cystic fibrosis patients and aquatic habitats. J. bacteriol. 178 (1): 85-93.

Schuster, M.; Lostroh, C. P.; Ogi, T. y Greenberg, E. P. (2003) Identificarion, timing and signal specificity of Pseudomonas aeruginosa quorum-controlled genes: A transcriptome analysis. J. bacteriol. 185: 2066-2079.

Smith, R. S. e Iglewski, b. H. (2003) Pseudomonas aeruginosa quorum-sensing sys-tems and virulence. Curr. Opin. Microbiol. 6:56-60.

Soberón-Chávez, G. (2001) Pseudomonas aeruginosa. En: Microbios en línea, capítu-lo 3. Martínez Romero E. y Martínez Romero J. (eds). DGSCA, UNAM, http://www.microbiologia.org.mx/microbiosenlinea/

Soberón-Chávez, G.; Aguirre-Ramírez, M. y Ordóñez, L. (2005) Is Pseudomonas aeruginosa only “sensing quórum”? Crit. Rev. Microbiol. 31: 171-182.

Spencer, D. H.; Kas, A.; Smith, E. E.; Raymond, C. K.; Sims, E. H.; Hastings, M.; burns, J. L.; Kaul, R. y Olson, M. V. (2003) Whole-Genome, Sequence Varia-tion among Multiple Isolates of Pseudomonas aeruginosa. J. bacteriol. 185 (4): 1316-25.

Urbanowski, M. L.; Lostroh, C. P. y Greenberg, E. P. (2004) Reversible acyl-homos-erine lactone binding to purified Vibrio fischeri LuxR protein. J. bacteriol. 186: 631-637.

van Delden, C.; Pesci, E. C.; Pearson, J. P. e Iglewski, b. H. (1998) Starvation selec-tion restores elastase and rhamnolipid production in a Pseudomonas aerugi-nosa quorum-sensing mutant. Infect. Immun. 66 (9): 4499-502.

Wagner, E. V.; bushnell, D.; Passador, L.; brooks, A. I. e Iglewski, b. H. (2003) Mi-croarray analysis of Pseudomonas aeruginosa quorum-sensing regulon: Effects of growth phase and environment. J. bacteriol. 185: 2080-2095.

Winzer, K.; Falconer, C.; Garber, N. C.; Diggle, S. P.; Cámara, M. y Williams, P. (2000) The Pseudomonas aeruginosa lectins PA-IL and PA-IIL are controlled by quorum sensing and by RpoS. J. bacteriol. 182: 6401-6411.

Wolfgang, M. C.; Kulasekara, b. R.; Liang, X.; boyd, D.; Wu, K.; Yang, Q.; Miyada, C. G. y Lory, S. (2003) Conservation of genome content and virulence determi-nants among clinical and environmental isolates of Pseudomonas aeruginosa. Proc. Natl. Acad. Sci. U S A. 100 (14): 8484-9.

Wretlind b. y Pavlovskis, O. R. (1981) The role of proteases and exotoxin A in the pathogenecity of Pseudomonas aeruginosa. Scand. J. Infect. Dis. Suppl. 29: 13-9.

Zhang, Y. y Miller, R. M. (1992) Enhancenment of octadecane dispersion and bio-degradation by a Pseudomonas rhamnolipid surfactant (biosurfactant). Appl. Environ. Microbiol. 58: 3276-3282.