caracterización de los efluentes en los estanques de piscicultura del ...
Transcript of caracterización de los efluentes en los estanques de piscicultura del ...
UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA DE LA SELVA
FACULTAD DE RECURSOS NATURALES RENOVABLES
DEPARTAMENTO ACADÉMICO DE CIENCIAS AMBIENTALES
INFORME FINAL DE PRÁCTICA PRE PROFESIONAL
“CARACTERIZACIÓN DE LOS EFLUENTES EN LOS ESTANQUES DE
PISCICULTURA DEL IIAP - HUANUCO”
EJECUTOR : GARCÍA NAMUCHE, Josué Junnior
ASESOR : Ing. PAREDES SALAZAR, José Luis
INSTITUCIÓN : INSTITUTO DE INVESTIGACION DE
LA AMAZONIA PERUANA
(IIAP) - HUANUCO
LUGAR DE EJECUCIÓN : Saipai – Santa Lucia
DURACIÓN DEL TRABAJO : 15 de Enero al 15 de Abril del 2014
TINGO MARÍA – PERÚ
2014
2
INDICE
Página
I. INTRODUCCIÓN ..................................................................................... 1
1.1. Objetivo general ................................................................................ 2
1.2. Objetivo Específicos ......................................................................... 2
II. REVISIÓN LITERARIA ............................................................................ 3
2.1. Ley de recursos hídricos N° 29338 ................................................... 3
2.1.1. TítuloIII usos de los recursos hídricos ..................................... 3
2.2. Acuicultura ........................................................................................ 4
2.2.1. Aspectos básicos para la crianza de peces ............................. 4
2.3. Definición de calidad de agua ........................................................... 5
2.4. Parámetros fisicoquímicos de calidad del agua ................................ 7
2.4.1. Temperatura ............................................................................ 8
2.4.2. Oxígeno disuelto ...................................................................... 8
2.4.3. pH .......................................................................................... 10
2.4.4. Conductividad eléctrica .......................................................... 11
2.4.5. Sólidos Suspendidos Totales ................................................ 12
2.4.6. Demanda Bioquímicade Oxígeno .......................................... 13
2.5. Aspectos generales del centrode prácticas..................................... 14
2.5.1. Programa AQUAREC ............................................................ 14
2.5.2. Características del área de estudio ....................................... 15
III. MATERIALES Y MÉTODOS ................................................................. 16
3.1. Ubicación de la zona de estudio ..................................................... 16
3.1.1. Ubicación política................................................................... 16
3.1.2. Ubicación geográfica de la estación experimental ................. 16
3.1.3. Clima ..................................................................................... 18
3.1.4. Hidrografía ............................................................................. 18
3.1.5. Fisiografía .............................................................................. 18
3.2. Materiales y Equipos ....................................................................... 18
3.2.1. Materiales .............................................................................. 18
3.2.2. Equipos .................................................................................. 19
3.3. Metodología .................................................................................... 19
3
3.3.1. Medición de los parámetros de calidad del agua ................... 19
3.3.2. Determinación de temperatura .............................................. 20
3.3.3. Determinación de pH y conductividad ................................... 20
3.3.4. Determinación de oxígeno disuelto........................................ 21
3.3.5. Determinación de sólidos suspendidos totales ...................... 21
3.3.6. Determinación de demanda bioquímicade oxígeno ............... 22
3.3.7. Estadística descriptiva de los parámetros de calidad de
agua ............................................................................................ 22
IV. RESULTADOS ..................................................................................... 23
4.1. Valores obtenidos por cada semana de muestreo .......................... 23
4.2. Análisis a través de la metodología deestadística descriptiva ........ 30
4.3. Comparación de los valores obtenidos con la normativa nacional . 33
V. DISCUSIÓN ........................................................................................... 37
VI. CONCLUSIONES ................................................................................. 39
VII. RECOMENDACIONES........................................................................ 40
VIII. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS .................................................. 41
IX. ANEXOS ............................................................................................... 43
4
INDICE DE CUADROS
Cuadro Página
1. Calidad del agua por el nivel de oxígeno disuelto (OD) ......................... 10
2.Ubicación geográfica ............................................................................... 16
3. Estanques de la estación experimental .................................................. 17
4. Parámetros de calidad de agua que se determinarón ............................ 20
5. Valores de los parámetros del efluente del estanque 1 evaluados
semanalmente ....................................................................................... 23
6. Valores de los parámetros del efluente del estanque 2 evaluados
semanalmente ....................................................................................... 23
7. Valores de los parámetros del efluente del estanque 3 evaluados
semanalmente ....................................................................................... 24
8. Valores de los parámetros del efluente del estanque 4 evaluados
semanalmente ....................................................................................... 24
9. Valores de los parámetros del efluente del estanque 6 evaluados
semanalmente ....................................................................................... 25
10. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente del
estanque 1 ............................................................................................. 30
11. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente del
estanque 2 ............................................................................................. 30
12. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente del
estanque 3 ............................................................................................. 31
13. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente del
estanque 4 ............................................................................................. 31
14. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente del
estanque 6 ............................................................................................. 32
15. Normativa nacional de descarga de efluentes ..................................... 33
5
INDICE DE FIGURAS
Figura Página
1. Croquis de los estanques de piscicultura de la estación experimental .. 17
2. Variación del pH de los efluentes en cada semana ............................... 25
3. Variación de la temperatura de los efluentes en cada semana .............. 26
4. Variación del oxígeno disuelto de los efluentes en cada semana .......... 27
5. Variación de la conductividad de los efluentes en cada semana ........... 27
6. Variación de la DBO5 de los efluentes en cada semana ....................... 28
7. Variación de los SST de los efluentes en cada semana ........................ 29
8. Comparación de los valores obtenidos de DBO5 de cada efluente con la
normativa nacional ................................................................................. 33
9. Comparación de los valores obtenidos de pH de cada efluente con la
normativa nacional ................................................................................. 34
10. Comparación de los valores obtenidos de temperatura de cada efluente
con la normativa nacional ...................................................................... 35
11. Comparación de los valores obtenidos de SST de cada efluente con la
normativa nacional ................................................................................. 36
12. Vista panorámica de los estanques de estación experimental ............. 44
13. Toma de muestras en los enfluentes de los estanques ....................... 44
14.Obtención de datos de parámetros fisicoquímicos in-situ ..................... 45
15. Muestras recolectadas de los efluentes de los estanques ................... 45
16. Proceso para la medición de los solidos suspendidos totales .............. 46
17.Paso de la muestra por los filtros para la determinación de los SST .... 46
18. Mapa de ubicación de los estanques de la estación experimental ....... 47
1
I. INTRODUCCIÓN
El agua es una importante fuente para muchas personas alrededor
del mundo, especialmente en zonas rurales. El agua puede contaminarse de
forma natural mediante la descomposición orgánica o artificialmente con las
actividades humanas como actividades extractivas agrícolas y/o minerales. La
contaminación del agua puede resultar de baja calidad para consumo, pérdida
de fuente de agua, costos extremos de limpieza y remediación, además de los
costos altos para el uso de fuentes alternativas de agua y problemas de salud.
Uno de los mayores problemas de la producción acuícola es el
aumento de materia orgánica producida por las excreciones de los peces, por el
alimento no consumido y por otros insumos adicionados en los estanques
(TACON Y FORSTER, 2003). El efluente del estanque va hacia una fuente
natural, generando variaciones como disminución en la concentración de
oxígeno (OD), aumento en la concentración de sólidos en suspensión (SST),
aumento en la demanda biológica de oxígeno (DBO), aumento en la demanda
química de oxígeno (DQO), formas variadas de nitrógeno y fósforo, crecimiento
exagerado de algas, eutrofización, entre otras (TROELL Y NEORI, 2005).
2
El presente estudio está encaminado a caracterizar
fisicoquímicamente los efluentes de los estanques de piscicultura del IIAP. Con
los resultados se podrá establecer algunas medidas preventivas y correctivas.
La caracterización de los efluentes de los estanques de piscicultura
será de gran utilidad para conocer la influencia del efluente sobre la calidad del
agua, a fin de identificar la concentración de materia orgánica para que la
institución defina políticas y planes de desarrollo para el manejo del agua.
1.1. Objetivo general
- Realizar la caracterización fisicoquímica de los efluentes de los
estanques de piscicultura de la estación experimental del IIAP.
1.2. Objetivos específicos
- Medir los parámetros de calidad in situ de los efluentes de los
estanques como temperatura, pH, conductividad y oxígeno disuelto.
- Medir los parámetros de calidad ex situ de los efluentes de los
estanques como sólidos suspendidos totales y demanda bioquímica de oxígeno.
- Comparar los valores obtenidos en las mediciones de los parámetros
de los efluentes de los estanques con los valores establecidos en los límites de
descarga a un cuerpo de agua dulce.
3
II. REVISIÓN DE LITERATURA
2.1. Ley de recursos hídricos N° 29338
2.1.1. Título III usos de los recursos hídricos
Artículo 35°.- Clases de usos de agua y orden de prioridad: La
ley reconoce las siguientes clases de uso de agua:
1. Uso primario. 2. Uso poblacional. 3. Uso productivo.
La prioridad para el otorgamiento y el ejercicio de los usos
anteriormente señalados sigue el orden en que han sido enunciados.
Artículo 42°.- Uso productivo del agua: El uso productivo del agua
consiste en la utilización de la misma en procesos de producción o previos a los
mismos. Se ejerce mediante derechos de uso de agua otorgados por la Autoridad
Nacional.
Artículo 43°.- Tipos de uso productivo del agua: Son tipos de uso
productivo del agua: 1. Agrario: Pecuario y agrícola; 2. Acuícola y pesquero; 3.
Energético; 4. Industrial; 5. Medicinal; 6. Minero; 7. Recreativo; 8. Turístico y 9.
De transporte.
4
2.2. La Acuicultura
Es el conjunto de actividades, técnicas y conocimientos de cultivo de
especies acuáticas vegetales y animales. Es una importante actividad
económica de producción de alimentos, materias primas de uso industrial y
farmacéutico, y organismos vivos para repoblación u ornamentación (IIAP,
2007).
2.2.1. Aspectos básicos para la crianza de peces
La construcción de estanques y de estructuras hidráulicas
representa el mayor esfuerzo en la inversión, el costo de construcción depende
de las características del sitio o área del diseño (topografía, tipo de suelo,
cobertura vegetal y necesidades de drenaje), de la estrategia de construcción de
los estanques, demás instalaciones y también de factores climáticos, entre otros.
Para minimizar los costos es necesaria una adecuada planificación
de las acciones y de las etapas de implementación.
La fase de planificación merece especial atención, pues posibilita
una buena evaluación de los riesgos en cuanto a la inviabilidad económica,
esclarece las dudas en cuanto a la concepción, diseño y operaciones de las
instalaciones, ahorrando gastos innecesarios en la construcción y
funcionamiento.
La construcción de estanques en lugares de difícil acceso, exige el
uso más intenso de mano de obra en las cosechas y el traslado de los peces e
insumos.
5
Las cosechas representan el punto crítico del manejo de una
actividad acuícola y se repiten diversas veces a lo largo del año y en toda la vida
útil de las instalaciones, imponiendo esfuerzos en mano de obra y una inversión
considerable que elevaría los costos de la producción (IIAP ,2007).
Según IIAP, (2007) la planificación para el inicio de la actividad
acuícola, demanda los siguientes aspectos básicos:
- Inspección ocular del terreno: topografía, textura de suelo,
disponibilidad del agua (cantidad y calidad).
- Construcción de estanques: de acuerdo a la disponibilidad del
terreno.
- Disponibilidad de semilla: de ambientes naturales o de centros de
producción cercanos.
- Conocer sus hábitos: Planificar qué tipo de pez sembrar: carnívoro,
omnívoro o herbívoro.
- Disponibilidad de insumos: lo más recomendable es utilizar insumos
de la región para abaratar los costos de transporte.
2.3. Definición de calidad del agua
En vista de la complejidad de los factores que determinan la calidad
del agua y la gran cantidad de variables utilizadas para describir el estado de los
cuerpos de agua en términos cuantitativos, es difícil dar una definición simple de
“calidad del agua”.
6
Además, los conocimientos sobre calidad del agua han
evolucionado a través del tiempo a medida que ha aumentado su demanda en
diferentes usos y han mejorado los métodos para analizar e interpretar sus
características (SIERRA, 2011).
La calidad de un ambiente acuático se puede definir como:
a) Una lista de concentraciones, especificaciones y aspectos físicos de
sustancias orgánicas e inorgánicas.
b) La composición y el estado de la biota acuática presente en el
cuerpo de agua. La calidad presenta variaciones espaciales y temporales debido
a factores externos e internos al cuerpo de agua.
La contaminación de un ambiente acuático significa la introducción
por el hombre directa o indirectamente de sustancias o energía lo cual resulta
en problemas como: daños en los organismos vivos, efectos sobre la salud de
los humanos, impedimento de actividades acuáticas como pesca, etc., e
interferencia sobre actividades económicas como el riego, el abastecimiento de
agua para la industria, etc. La descripción de la calidad del agua puede realizarse
básicamente de dos formas:
- Midiendo variables físicas (turbiedad, solidos totales, temperatura,
etc.), químicos (pH, acidez, etc.), o biológicos (bioensayos).
- Utilizando un índice de calidad del agua.
Ambas formas son aceptadas y las mediciones que se requieren se
realizan, ya sea en el campo o en el laboratorio, y producen varios tipos de datos
que luego es necesario interpretar (SIERRA, 2011).
7
Los peces dependen directamente de una buena calidad de agua
para la supervivencia y su crecimiento, y entre los factores que destacan en este
aspecto, son el tenor de oxígeno disuelto en el medio, la temperatura y el
potencial de hidrogeno ya que son los reguladores de sus actividades
metabólicas (SENHORINI Y FRANSOZO, 1994).
2.4. Parámetros fisicoquímicos de calidad del agua
Para saber qué tan pura o qué tan contaminada está el agua es
necesario medir ciertos parámetros. Los parámetros de calidad del agua están
clasificados en físicos, químicos y microbiológicos. Como se puede intuir existen
muchos parámetros, muchas formas y varios métodos para medir dichos
parámetros. Para obviar estos problemas, las agencias internacionales
encargadas de vigilar y estudiar la calidad del agua han estandarizado
(unificado) los criterios y los métodos para realizar los análisis del agua (EPA,
1999).
Las diferentes variables que intervienen es un estanque como son
las relaciones tróficas, biocenosis establecidas, capacidad de reciclaje de los
nutrientes, autoproducción y autodepuración de los mismos y los parámetros
físico-químicos del agua determinan la variación, cantidad y calidad de los
organismos que viven en él. Toda especie tiene un rango óptimo para
desarrollarse normalmente, el cual está básicamente dado por la temperatura,
oxígeno, tipo y cantidad de nutrientes sólidos disueltos, salinidad, pH, dureza,
alcalinidad, etc. (RODRIGUEZ et al., 2001).
8
2.4.1. Temperatura
Según BARRENECHEA (2004), la temperatura es uno de los
parámetros físicos más importantes en el agua, pues por lo general influye en el
retardo o aceleración de la actividad biológica, la absorción de oxígeno, la
precipitación de compuestos, la formación de depósitos, la desinfección y los
procesos de mezcla, floculación, sedimentación y filtración.
Múltiples factores, principalmente ambientales, pueden hacer que la
temperatura del agua varíe continuamente.
Según DIGESA (2007), la temperatura es un indicador de la calidad
del agua, que influye en el comportamiento de otros indicadores de la calidad del
recurso hídrico, como el pH, el déficit de oxígeno, la conductividad eléctrica y
otras variables fisicoquímicas. El oxígeno es menos soluble en agua caliente que
en agua fría. Es causa frecuente del oxígeno presente en las aguas superficiales,
reduciéndose más en los meses de verano. La temperatura aceptable para el
consumo humano para una concentración máxima aceptable de 15°C, en
temperaturas altas disminuye la concentración de OD, y otras legislaciones
consideran la temperatura del agua de la zona con una variación de 3°C. La
temperatura recomendable en periodos extendidos de inmersión entre 15-35°C.
2.4.2. Oxígeno Disuelto
Según DIGESA (2007), la concentración del oxígeno en el agua
depende, de la presión parcial del oxígeno en la atmósfera y de la temperatura
del agua, se deduce que la concentración del oxígeno en agua a 25°C es 8.32
mg/L.
9
Según ROMERO (1998), el oxígeno disuelto (OD) es la cantidad de
oxígeno que esta disuelto en el agua y que es esencial para los riachuelos y
lagos saludables. El nivel de oxígeno disuelto puede ser un indicador de
contaminación del agua y de los organismos que pueda soportar desarrollen en
ella. Generalmente un nivel más alto de oxígeno disuelto indica agua de mejor
calidad. Si los niveles de oxígeno disuelto son demasiado bajos, algunos peces
y otros organismos no pueden sobrevivir.
Gran parte del OD en el agua proviene del oxígeno en el aire que se
ha disuelto en el agua. Parte del OD en el agua es el resultado de la fotosíntesis
de las plantas acuáticas. Otros factores también afectan los niveles de OD, por
ejemplo, en un día soleado se producen altos niveles de OD en áreas donde hay
muchas algas o plantas debido a la fotosíntesis.
Además, la cantidad de oxígeno que puede disolverse en el agua
depende de la temperatura también. El agua más fría puede guardar más
oxígeno en ella que el agua caliente. Una diferencia en los niveles de OD puede
detectarse en el sitio de la prueba si se hace la prueba temprano en la mañana
cuando el agua está fría y luego se repite en la tarde en un día soleado cuando
la temperatura del agua haya subido (ROMERO, 1998).
El nivel de oxígeno disuelto (OD) presente en un estanque de
acuicultura es el parámetro más importante en la calidad del agua. Si no hay una
buena concentración de oxígeno disuelto los organismos pueden ser vulnerables
a enfermedades, parásitos, o morir por falta de este elemento.
10
Además se ha comprobado que no aceptan el alimento cuando se
presentan niveles bajos de oxígeno, lo cual conlleva a la pérdida de este insumo,
afectando el crecimiento y la tasa de conversión alimenticia (RODRIGUEZ et al.,
2001).
Cuadro 1. Calidad del agua por el nivel de oxígeno disuelto (OD)
Nivel de OD (mg/L) Calidad del agua
0.00 – 4.90 Mala: Algunas poblaciones de peces y macro
invertebrados empezarán a bajar
5.00 – 7.90 Aceptable
8.00 – 12.00 Buena
12.00 a más Muy buena o al agua puede airearse artificialmente
Fuente: Romero (1998.)
2.4.3. pH
Nos indica el comportamiento acido básico del agua. Es una
propiedad de carácter químico de vital importancia para el desarrollo de la vida
acuática. Es un buen parámetro de carácter general para determinar la calidad
de un agua. Habitualmente las aguas naturales tiene un cierto carácter básico
con unos valores de pH correspondidos entre 6.5 a 8.5 (ROMERO, 1998).
Según DIGESA (2007), el pH es uno de los parámetros indicadores
de la calidad del agua. Para que la desinfección con cloro sea eficaz es preferible
que sea un pH inferior a 8, es recomendable la medición in situ, de modo que no
se modifique los equilibrios iónicos. Debido al trasporte o una permanencia
prolongada en recipientes cambia cuando es llevado al laboratorio.
11
Según la EPA los valores recomendados son de 6.5 a 8.5 unidades
de pH. Según la OMS el pH recomendable de 6.5 y 9.5.
Según BARRENECHEA (2004), el pH del agua es de suma
importancia para la vida de los microorganismos acuáticos, ya que valores muy
altos o muy bajos ofrecen a los microorganismos un medio adverso, con
excepción de los quistes de amebas, que soportan pH tan altos como 13 o tan
bajos como 1. Por otra parte, la acción de los desinfectantes es fuertemente
influenciada por el pH del agua. De acuerdo con su naturaleza, cada
desinfectante tiene un rango de pH de mayor efectividad. Sin embargo, la
práctica demuestra que cuanto más alcalina es el agua requiere mayor dosis de
desinfectante para una misma temperatura y tiempo de contacto.
2.4.4. Conductividad eléctrica
Depende de la actividad de los tipos de iones disueltos y de la
temperatura a la que se realiza la medida.
La conductividad es una expresión numérica de la capacidad de una solución
para transportar una corriente eléctrica. Esta capacidad depende de la presencia
de iones y de su concentración total, de su movilidad, valencia y concentraciones
relativas, así como la temperatura de la medición.
El agua pura tiene muy poca conductividad, por lo que la medida de
la conductividad de un agua nos da una idea de los sólidos disueltos en la misma.
12
De la conductividad eléctrica, que indica la presencia de sales en el
agua, lo que hace aumentar su capacidad de transmitir una corriente eléctrica,
propiedad que se utiliza en mediciones de campo o de laboratorio, expresadas
en micro Siemens/l (µS/l) (DIGESA, 2007).
2.4.5. Sólidos Suspendidos Totales.
Según DIGESA (2007), los sólidos suspendidos totales son
productos de la erosión de los suelos, tales como limo, arena y virus, son
generalmente responsables de impurezas visibles. La materia suspendida
consiste en partículas muy pequeñas, que no se pueden quitar por medio de
deposición. Pueden ser identificadas con la descripción de características
visibles del agua, incluyendo turbidez y claridad, gusto, color y olor del agua. Los
sólidos totales pueden afectar negativamente a la calidad del agua o a su
suministro de varias maneras. Las aguas con abundantes sólidos totales sueles
ser de inferior potabilidad y pueden inducir una reacción fisiológica desfavorable
en el consumidor ocasional.
Teóricamente, los sólidos suspendidos totales contenidos en las
aguas son los residuos secos de los productos disueltos que las aguas poseen
en el momento de tomarse la muestra para análisis, es decir partículas como
arcillas, limo y otras, que son arrastradas por el agua de dos maneras: en
suspensión estable (disolución coloidales) o en suspensión que solo dura
mientras el movimiento del agua las arrastra.
13
Todo lo que el agua contenga, excepto el agua misma, puede
considerarse materia sólida. Sin embargo, la definición de sólido se refiere a la
materia que queda como residuos después de la evaporación y del secamiento
(JIMENO, 1998).
2.4.6. Demanda Bioquímica de Oxigeno
La Demanda Bioquímica de Oxígeno (DBO) mide la cantidad de
oxígeno necesaria o consumida para la descomposición microbiológica
(oxidación) de la materia orgánica en el agua, se define como la cantidad total
de oxígeno requerido por los microorganismos para oxidar la materia orgánica
biodegradable (CAN, 2005).
La DBO es un indicador importante para el control de la
contaminación de las corrientes donde la carga orgánica se debe restringir para
mantener los niveles deseados de oxígeno disuelto (SAWYER y MCCARTY,
2001). El aporte de carga orgánica acelera la proliferación de bacterias que
agotan el oxígeno, provocando que algunas especies de peces y otras especies
acuáticas deseables ya no puedan vivir en las aguas donde están presentes
dichos microorganismos (CAN, 2005).
Es útil para medir la capacidad de purificación de las corrientes
monitoreadas y sirve para orientar normas de control de calidad de los efluentes
descargados a estas aguas (SAWYER y MCCARTY, 2001).
14
Según DIGESA (2007), la DBO5 expresa la materia orgánica en
términos generales, pero no indican su composición, la cual es muy variada.
Como su origen proviene de organismos, y sus productos de degradación o de
metabolismo, se puede afirmar que la componen proteínas, carbohidratos y
lípidos y/o sus productos de degradación: aminoácidos, monosacáridos,
hidrocarburos, ácidos grasos, alcoholes, más otros componentes propios de los
vegetales como pigmentos. Determina la cantidad aproximada de oxígeno que
se requerirá para estabilizar biológicamente la materia orgánica presente.
Se define la DBO5 como el monto de oxígeno consumido por
microorganismos para oxidar biológicamente la materia orgánica, cuando se
incuba una muestra en la oscuridad durante 5 días a 20°C. Es un indicador de
consumo de oxigeno por microorganismo, el consumo de esta agua con alto
contenido de DBO5 presenta riesgos a la salud.
2.5. Aspectos generales del centro de prácticas
2.5.1. Programa AQUAREC
La finalidad del programa AQUAREC es desarrollar tecnologías y
herramientas de gestión para el uso y conservación del agua y sus recursos, así
también mejorar los sistemas acuícolas de producción en la Amazonía Peruana,
las cuales tienen como objetivos:
- Fomentar conocimientos e información para el establecimiento de
políticas de gestión del desarrollo que contribuyan al uso y conservación de
cuencas en la Amazonía Peruana.
15
- Generar conocimientos biológicos y pesqueros que contribuyan a la
identificación y adopción de medidas de manejo dirigidas a la conservación y uso
responsable de los recursos pesqueros en la Amazonía Peruana.
- Desarrollar tecnología económica, social, cultural y ambientalmente
viables, que contribuyan al desarrollo de la acuicultura en la Amazonía Peruana.
2.5.2. Características del área de estudio
El IIAP- Tingo María tiene una extensión de 11.5 ha, incluyendo
ambientes acuáticos y terrestres. Constituyen la infraestructura para el manejo
de cultivo de peces amazónicos, donde se desarrollan actividades de
investigación y producción de alevines de Piaractus brachypomus “paco” y
Colossoma Macropomum “gamitana” en convenio con el Municipio Provincial de
Leoncio Prado y la Universidad Nacional Agraria de la Selva así como también
se está iniciando el manejo y mejora del valor agregado de especies forestales
de la región Huánuco.
16
III. MATERIALES Y MÉTODOS
3.1. Ubicación de la zona de estudio
3.1.1. Ubicación política
La zona de estudio (Estación experimental del IIAP) se encuentra
ubicado en la región Huánuco, provincia de Leoncio Prado, distrito de José
Crespo y Castillo, accediendo por la localidad de Santa Lucia (Km. 25 de la
carretera Tingo María – Auca yacu), siguiendo una vía carrozable de
aproximadamente 2 km en sentido Este, próxima al caserío Saipai.
Cuadro 2. Ubicación geográfica.
Departamento: Huánuco
Provincia: Leoncio Prado
Distrito: José Crespo y Castillo
Localidad: Santa Lucía
3.1.2. Ubicación geográfica de la estación experimental del IIAP
La zona de estudio posee un área de 11.4792 hectáreas ubicadas
en la provincia de Leoncio Prado, departamento de Huánuco, el centroide de la
zona de estudio tiene como coordenadas geográficas:
Norte : 388020 m.
Este : 8990999 m.
17
La estación experimental cuenta con 6 estanques de piscicultura
para la investigación y producción de alevines de Piaractus brachypomus “paco”
y Colossoma Macropomum “gamitana”.
Cuadro 3. Estanques de la estación experimental.
Estanques Área (m2) Profundidad(m)
Estanque 1 1619 100
Estanque 2 1026 100
Estanque 3 1138 80
Estanque 4 1122 80
Estanque 5 1112 80
Estanque 6 1031 50
Figura 1. Croquis de los estanques de piscicultura de la estación experimental.
A
A
A
A
A
E6
E4
E3
E2
E1
A = Afluente
E = Efluente
18
3.1.3. Clima
Según el SENAMHI el área de estudio se encuentra ubicado en la
zona de selva alta, por lo que posee un clima tropical, cálido, húmedo y su
morfología nos da como resultado climas que varían de acuerdo a su altitud y
época del año, con características homogéneas en cuanto a su alta precipitación
pluvial.
3.1.4. Hidrografía
El área de estudio se encuentra en la cuenca del río Huallaga, sub
cuenca del río Tulumayo y micro cuenca Cruz de Motupe.
3.1.5. Fisiografía
La fisiografía de la zona corresponde a terrazas medias y altas de 0-
10 % de pendiente, colinas bajas de 10 – 35 % de pendiente.
3.2. Materiales y Equipos
3.2.1. Materiales
- Papel filtro
- Embudo de vidrio
- Matraz erlenmeyer
- Cooler de tecnopor
- Vasos precipitados
- Botellas de plástico y vidrio
- Etiquetas para rotulado
- Cuaderno de campo
19
3.2.2. Equipos
- Balanza analítica
- Multiparámetro Thermo, Orion 4 Star
- Oxímetro DO 6 PLUS
- GPS GARMIN 60 CSX
- Cámara digital
- Estufa
- Termómetro digital
3.3. Metodología
3.3.1. Medición de los parámetros de calidad del agua
Se midió los parámetros de calidad del agua in situ tales como el
oxígeno disuelto, temperatura, pH y conductividad y se colectó las muestras de
efluentes en botellas de vidrio de 500 ml (al borde) de cada uno de los estanques
para la determinación de la demanda bioquímica de oxígeno y sólidos
suspendidos totales en el laboratorio de la especialidad de conservación de
suelos y agua. La frecuencia de muestreo fue una vez por semana. Se trasladó
hacia el laboratorio las muestras en un cooler de tecnopor a 4-8°C para su
conservación. Los parámetros que se determinaron son:
20
Cuadro 4. Parámetros de calidad de agua que se determinaron
Parámetros Unidad de
medida Método usado
Referencia del método
Temperatura °C Campo 2250 B. Standard Methods
APHA-AWWA-WEF.
pH Valor de pH Potenciométrico
4500-H+ B. Standard
Methods APHA-AWWA-WEF.
Conductividad uS/cm Potenciométrico
2510 B. Standard Methods APHA-AWWA-WEF.
Oxígeno Disuelto
mg/L Electrodo de membrana
4500-O G. Standard
Methods APHA-AWWA-WEF.
Sólidos Suspendidos Totales
mg/L Gravimétrico 2540 D. Standard Methods
APHA-AWWA-WEF.
Demanda Bioquímica de Oxígeno
mg/L Prueba de 5 días 5210 B. Standard Methods
APHA-AWWA-WEF.
3.3.2. Determinación de temperatura
Se realizó la medición de la temperatura con un termómetro digital,
esta medición se realizó in situ, en los efluentes de los estanques, esto se realizó
cada semana, por un periodo de 1 mes y medio.
3.3.3. Determinación de pH y conductividad
Se realizó la medición del pH y conductividad utilizando el equipo
Multiparámetro marca Thermo, Orion 4 Star, esta medición se realizó in situ, en
los efluentes de los estanques, esto se realizó cada semana, por un periodo de
1 mes y medio.
21
3.3.4. Determinación de oxígeno disuelto
Se realizó la medición del OD utilizando el método de electrodo de
membrana, in situ con un oxímetro DO 6 PLUS, en los efluentes de los
estanques, esto se realizó cada semana, por un periodo de 1 mes y medio.
3.3.5. Determinación de sólidos suspendidos totales
Este parámetro se realizó en el laboratorio de la especialidad de
conservación de suelos y agua, en el cual se utilizó el método de Solidos totales
secados a 103°C- 105°C.)
Secar el papel filtro durante una hora a 103 - 105 °C hasta
obtener peso constante
Colocar en desecador durante 30 minutos
Pesar el papel filtro antes de usarlo
Colocar el filtro en el embudo y pasar 100 ml de muestra
Secar el filtro en un horno a 103 - 105 °C
Llevarlo al desecador durante 30 minutos y pesar hasta
alcanzar peso constante
SST (mg
l) =
(A − B)x106
muestra(ml)
Donde:
A = Peso filtro + residuo (g)
B = Peso filtro (g)
22
3.3.6. Determinación de la demanda bioquímica de oxigeno
Este parámetro se realizó en el laboratorio de la especialidad de
conservación de suelos y agua, en el cual se utilizó el método de ensayo de DBO
a cinco días.
Medir el OD de la muestra de agua y el OD de agua
destilada
Tomar 10 ml de muestra y colocar en una botella de DBO
de 500 ml y luego aforar hasta el borde con agua destilada.
Incubar a una temperatura constante de 20 °C por 5 días
Medir el OD final.
DBO5 = (ODi − ODb) +Vb
Vm(ODb − ODf)
Donde:
ODi = Oxígeno disuelto inicial de la muestra
ODb = Oxígeno disuelto del agua destilada
ODf = Oxigeno final
Vb =Volumen de botella
Vm =Volumen de la muestra
3.3.7. Estadística descriptiva de los parámetros de calidad de agua
Utilizando los valores obtenidos se realizó un análisis a través de
estadística descriptiva. Los resultados del procesamiento descriptivo de los
datos se colocaron en tablas que muestran para cada parámetro de calidad y
efluente los siguientes elementos estadísticos: Media aritmética, valor máximo,
valor mínimo, desviación estándar y coeficiente de variación.
23
IV. RESULTADOS
4.1. Valores obtenidos por cada semana de muestro.
Cuadro 5. Valores de los parámetros del efluente del estanque 1 evaluados
semanalmente.
Fecha Hora
Valores de los parámetros del efluente del estanque 1
pH Temperatura
°C
Oxígeno Disuelto (mg/L)
Conductividad (uS/cm)
DBO (mg/L)
SST (mg/L)
20/02/2014 8:30 6.79 28.9 5.67 84.1 63.24 268.2
26/02/2014 8:36 6.73 30 5.38 90 49.68 183.9
07/03/2014 8:41 6.95 29.6 3.38 102.9 77.4 190
13/03/2014 8:45 6.89 28.6 2.62 103.5 101.36 226.5
20/03/2014 6:50 6.63 29.8 3.92 103.6 85.44 242.5
28/03/2014 8:55 6.81 29.4 3.78 97.8 76.28 232.6
Cuadro 6. Valores de los parámetros del efluente del estanque 2 evaluados
semanalmente.
Fecha Hora
Valores de los parámetros del efluente del estanque 2
pH Temperatura
°C
Oxígeno Disuelto (mg/L)
Conductividad (uS/cm)
DBO (mg/L)
SST (mg/L)
20/02/2014 13:48 6.46 28.6 2.52 163.1 55.59 192.7
26/02/2014 14:00 6.79 31.4 6.18 172.6 52.37 145.6
07/03/2014 14:10 7.2 29.7 2.85 181.9 87.66 168.7
13/03/2014 14:15 6.99 28.6 3.73 183.4 73.29 146
20/03/2014 14:18 6.95 30 4.82 185.2 46.84 171.4
28/03/2014 14:23 6.79 29.7 3.67 176.6 62.67 156.2
24
Cuadro 7. Valores de los parámetros del efluente del estanque 3 evaluados
semanalmente.
Fecha Hora
Valores de los parámetros del efluente del estanque 3
pH Temperatura
°C
Oxígeno Disuelto (mg/L)
Conductividad (uS/cm)
DBO (mg/L)
SST (mg/L)
20/02/2014 10:16 6.37 28.1 4.13 76.6 101.7 255.3
26/02/2014 10:21 6.53 31 5.43 90.7 56.62 219
07/03/2014 10:28 7.13 29.4 4.1 88.3 94.41 203.3
13/03/2014 10:35 6.91 28 5.59 93.2 74.65 225.3
20/03/2014 10:42 6.89 29.6 4.65 97.8 62.67 196.1
28/03/2014 10:47 6.56 29.3 4.28 91.3 78.28 227.7
Cuadro 8. Parámetros Valores de los parámetros del efluente del estanque 4
evaluados semanalmente.
Fecha Hora
Valores de los parámetros del efluente del estanque 4
pH Temperatura
°C
Oxígeno Disuelto (mg/L)
Conductividad (uS/cm)
DBO (mg/L)
SST (mg/L)
20/02/2014 8:14 6.53 27.7 4.76 87.9 73.33 245.7
26/02/2014 8:25 6.75 31.7 4.44 104.5 65.67 193.2
07/03/2014 8:35 7.21 28.5 4.15 109.4 105.42 179.8
13/03/2014 8:40 7.36 27.4 6.42 113.5 52.98 222.8
20/03/2014 8:46 6.96 28.3 4.54 103.8 82.06 206.8
28/03/2014 8:59 7.15 27.9 4.38 106.3 76.88 189.9
25
Cuadro 9. Valores de los parámetros del efluente del estanque 6 evaluados
semanalmente.
Fecha Hora
Valores de los parámetros del efluente del estanque 6
pH Temperatura
°C
Oxígeno Disuelto (mg/L)
Conductividad (uS/cm)
DBO (mg/L)
SST (mg/L)
20/02/2014 11:22 7.12 29 7.85 157.3 77.52 128.3
26/02/2014 11:26 8.19 32 8.1 121.2 52.2 123.6
07/03/2014 11:32 7.91 28.9 7.18 151 102.08 134
13/03/2014 11:38 7.89 28.1 7.77 129.8 51.83 157.3
20/03/2014 11:45 8.76 30.4 8.6 119.6 107.85 109.9
28/03/2014 11:52 7.96 29.9 7.83 145.5 80.33 120.5
Figura 2. Variación del pH de los efluentes en cada semana.
6
6.5
7
7.5
8
8.5
9
1 2 3 4 5 6
pH
Semanas
E1
E2
E3
E4
E6
26
Interpretación:
Según la figura 2 los valores más altos de pH lo obtuvo el efluente
del estanque 6, los cuales fueron variando en el transcurso de las semanas
obteniendo un valor máximo de 8.76 y un mínimo de 7.12, el efluente estanque
3 obtuvo el valor mínimo de 6.37 en la primera semana.
Figura 3. Variación de la temperatura de los efluentes en cada semana.
Interpretación:
Según la figura 3 la temperatura presenta valores variados, el
efluente del estanque 6 registró el valor más alto de 32 °C en la segunda
semana y el efluente del estanque 4 registró el valor más bajo de 27.4 °C en
la cuarta semana.
26
27
28
29
30
31
32
1 2 3 4 5 6
Tem
per
atu
ra (
°C)
Semanas
E1
E2
E3
E4
E6
27
Figura 4. Variación del oxígeno disuelto de los efluentes en cada semana.
Interpretación:
Según la figura 4 los valores más altos de OD lo obtuvo el efluente
del estanque 6, los cuales fueron variando en el transcurso de las semanas
obteniendo un valor máximo de 8.6 mg/L y un mínimo de 7.18mg/L, el efluente
del estanque 1 obtuvo el valor mínimo de 2.62 mg/L en la primera semana.
Figura 5. Variación de la conductividad de los efluentes en cada semana.
2
3
4
5
6
7
8
9
1 2 3 4 5 6
Oxi
gen
o D
isu
elto
(m
g/L)
Semanas
E1
E2
E3
E4
E6
70
90
110
130
150
170
190
210
1 2 3 4 5 6
Co
nd
uct
ivid
ad (
uS/
cm)
Semanas
E1
E2
E3
E4
E6
28
Interpretación:
Según la figura 5 el valor más alto de conductividad lo obtuvo el
efluente del estanque 2, los cuales fueron variando en el transcurso de las
semanas obteniendo un valor máximo de 185.2 uS/cm y un mínimo de 163.1
uS/cm, el efluente del estanque 3 obtuvo el valor mínimo de 76.6 uS/cm en la
primera semana.
Figura 6. Variación de la DBO5 de los efluentes en cada semana.
Interpretación:
Según la figura 6 la DBO5 presentan valores variados, el efluente
del estanque 6 registró el valor más alto de 107.62 mg/L en la quinta semana
y el efluente del estanque 2 registró el valor más bajo de 46.84mg/L en la
quinta se semana.
40
50
60
70
80
90
100
110
1 2 3 4 5 6
DB
O5(
mg/
L)
Semanas
E1
E2
E3
E4
E6
29
Figura 7. Variación de los SST de los efluentes en cada semana.
Interpretación:
Según la figura 6 los SST presentan valores variados, el efluente
del estanque 1 registró el valor más alto de 268.2 mg/L en la primera semana
y el efluente del estanque 6 registró el valor más bajo de 109.9 mg/L en la
quinta semana.
100
120
140
160
180
200
220
240
260
1 2 3 4 5 6
SST
(mg/
L)
Semanas
E1
E2
E3
E4
E6
30
4.2. Análisis a través de la metodología de estadística descriptiva.
Cuadro 10. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente del estanque 1.
Parámetro pH Temperatura
°C
Oxígeno Disuelto (mg/L)
Conductividad (uS/cm)
DBO5 (mg/L)
Solidos Suspendidos Totales (mg/L)
Media 6.80 29.38 4.13 96.98 75.57 223.95
Desviación estándar 0.11 0.54 1.18 8.21 17.83 32.06
Máximo 6.95 30.00 5.67 103.60 101.36 268.20
Mínimo 6.63 28.60 2.62 84.10 49.68 183.90
Coeficiente de Variación 1.67% 1.83% 28.57% 8.46% 23.59% 14.32%
Cuadro 11. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente del estanque 2.
Parámetro pH Temperatura
°C
Oxígeno Disuelto (mg/L)
Conductividad (uS/cm)
DBO5
(mg/L)
Solidos Suspendidos Totales (mg/L)
Media 6.86 29.67 3.96 177.13 63.07 163.43
Desviación estándar 0.25 1.04 1.35 8.30 15.12 18.01
Máximo 7.20 31.40 6.18 185.20 87.66 192.70
Mínimo 6.46 28.60 2.52 163.10 46.84 145.60
Coeficiente de Variación 3.63% 3.50% 34.07% 4.69% 23.97% 11.02%
31
Cuadro 12. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente del estanque 3.
Parámetro pH Temperatura
°C Oxígeno Disuelto
(mg/L) Conductividad
(uS/cm) DBO5 (mg/L)
Solidos Suspendidos Totales (mg/L)
Media 6.73 29.23 4.70 89.65 78.06 221.12
Desviación estándar 0.29 1.10 0.66 7.14 17.52 20.87
Máximo 7.13 31.00 5.59 97.80 101.70 255.30
Mínimo 6.37 28.00 4.10 76.60 56.62 196.10
Coeficiente de Variación 4.29% 3.78% 14.09% 7.97% 22.44% 9.44%
Cuadro 13. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente del estanque 4.
Parámetro pH Temperatura
°C Oxígeno Disuelto
(mg/L) Conductividad
(uS/cm) DBO5
(mg/L)
Solidos Suspendidos Totales (mg/L)
Media 6.99 28.58 4.78 104.23 76.06 206.37
Desviación estándar 0.31 1.58 0.83 8.76 17.59 24.36
Máximo 7.36 31.70 6.42 113.50 105.42 245.70
Mínimo 6.53 27.40 4.15 87.90 52.98 179.80
Coeficiente de Variación 4.43% 5.52% 17.30% 8.41% 23.13% 11.81%
32
Cuadro 14. Análisis estadístico descriptivo de los valores del efluente estanque 6.
Parámetro pH Temperatura
°C Oxígeno Disuelto
(mg/L) Conductividad
(uS/cm)
DBO5
(mg/L) Solidos Suspendidos
Totales (mg/L)
Media 7.97 29.72 7.89 137.40 78.64 128.93
Desviación estándar 0.53 1.38 0.46 16.02 23.77 16.08
Máximo 8.76 32.00 8.60 157.30 107.85 157.30
Mínimo 7.12 28.10 7.18 119.60 51.83 109.90
Coeficiente de Variación 6.65% 4.64% 5.87% 11.66% 30.23% 12.47%
33
4.3. Comparación de los valores obtenidos con la normatividad nacional
Cuadro 15. Normativa nacional de descarga de efluentes
Parámetro
Límites de descarga a un
cuerpo de agua dulce.
DBO5
(mg/L) ≤ 100
OD (mg/L)
***
pH 5 a 9
Temperatura (°C)
≤ 35
Conductividad (uS/cm)
***
SST (mg/L)
≤ 100
Fuente: MINAM, Normas de calidad ambiental y de descargas de efluentes: recurso agua
Figura 8. Comparación de los valores obtenidos de DBO5 cada efluente con la
normativa nacional.
0.00
20.00
40.00
60.00
80.00
100.00
120.00
E1 E2 E3 E4 E6
DBO5 (mg/L)
Limite de descarga
34
Interpretación:
Los valores promedio obtenidos de DBO5 durante todo el tiempo
de muestreo de los efluentes de cada estanque cumplen con lo establecido
en los límites de descarga a un cuerpo de agua dulce, siendo el efluente del
estanque 6 con mayor valor promedio en DBO5 en el agua (78.64 mg/L).
Figura 9. Comparación de los valores obtenidos de pH de cada efluente con la
normativa nacional
Interpretación:
Los valores promedio obtenidos de pH todos los efluentes
cumplen con lo establecido en los límites de descarga a un cuerpo de agua
dulce ya que no sobrepasan el rango establecido.
0.00
1.00
2.00
3.00
4.00
5.00
6.00
7.00
8.00
9.00
10.00
E1 E2 E3 E4 E6
pH
35
Figura 10. Comparación de los valores obtenidos de temperatura de cada
efluente con la normativa nacional
Interpretación:
Los valores promedio obtenidos de Temperatura todos los
efluentes cumplen con lo establecido en los límites de descarga a un cuerpo
de agua dulce ya que no sobrepasan el límite establecido.
0.00
5.00
10.00
15.00
20.00
25.00
30.00
35.00
E1 E2 E3 E4 E6
Temperatura (°C)
36
Figura 11. Comparación de los valores obtenidos de Sólidos suspendidos totales
de cada estanque con la normativa nacional
Interpretación:
Los valores promedio obtenidos de SST, todos los estanques no
cumplen con lo establecido en el Límites de descarga a un cuerpo de agua
dulce ya que sobrepasan el límite establecido en la normativa.
0.00
25.00
50.00
75.00
100.00
125.00
150.00
175.00
200.00
225.00
E1 E2 E3 E4 E6
SST (mg/L)
37
V. DISCUSIÓN
Según las normas de calidad ambiental y de descargas de efluentes:
recurso agua, los valores de pH, temperatura y DBO5 obtenidos para los efluentes de
los estanques están dentro de los rangos establecidos en el criterio de límite de
descarga a un cuerpo de agua dulce. Los valores de SST obtenidos en los efluentes
exceden los rangos establecidos en el criterio de límite de descarga a un cuerpo de
agua dulce.
Según (ROMERO, 1998), la calidad del agua por el nivel de oxígeno
disuelto (cuadro 1) en el rango de O.D. de 0 – 4.9 mg/L se considera agua de calidad
mala y de 5 – 7.9 mg/L se considera agua aceptable. El valor de O.D. del efluente del
estanque 6 es de 7.89 mg/L se encuentra dentro de lo aceptable y los demás efluentes
se encuentran dentro del rango agua de mala calidad.
Los datos de pH en las semanas muestreadas en los efluentes de los
estanques muestran valores menores de dispersión, estas variaciones pueden
deberse a que el pH del agua se debe sobre todo al equilibrio carbónico y a la actividad
vital de los microorganismos acuáticos. La secuencia de equilibrios de disolución de
CO2 en el agua, y la subsiguiente disolución de carbonatos e insolubilización de
bicarbonatos, alteran drásticamente el pH de cualquier agua. Asimismo, la respiración
de los organismos heterótrofos en el agua produce dióxido de carbono modificando el
pH del medio acuático, (ALVAREZ, 2006).
38
La variación de los valores obtenidos por cada semana de temperatura en
los efluentes de cada estanque tiene menor dispersión, estas variaciones pueden
verse influenciadas por la relación de la intensidad de la radiación con la profundidad
del agua, las capas superiores se calientan más que las capas de agua profunda. Ello
causa una diferencia de temperatura a medida que aumenta la profundidad de la
columna de agua y eventualmente se produce una estratificación vertical de las
diferentes masas de agua (CHANG, 2009).
EL oxígeno disuelto, también presenta mayor variación en los efluentes
de cada estanque, esto se debe a la que el oxígeno disuelto es un gas muy relevante
en dinámica de aguas. Su solubilidad es función de varios factores: temperatura,
presión, coeficiente de solubilidad, tensión de vapor, salinidad y composición
fisicoquímica del agua. Además, el porcentaje de saturación del oxígeno en agua
depende de la turbulencia y de la superficie de contacto entre el gas y el agua
(ALVAREZ, 2006).
Según (BOYD Y GAUTIER 2000), las descargas durante el intercambio
de agua y la cosecha contienen nutrientes, materia orgánica y sólidos en suspensión.
Estas substancias representan un potencial de contaminación ya que pueden
deteriorar la calidad de agua en los cuerpos receptores. Estos efluentes son
considerados como el mayor problema ambiental en el cultivo de los peces; A pesar
de que el agua de los efluentes de los estanques no tienen altas concentraciones de
contaminantes de materia orgánica y generalmente posee valores aceptables en el
pH y temperatura, la variable que parece ser más problemática en cuanto a la calidad
del agua en los efluentes es la cantidad de partículas sólidas en suspensión tiende a
ser algo más alto a lo establecido a la normatividad.
39
VI. CONCLUSIONES
1. Los valores de DBO5, pH y de la temperatura de los efluentes de los estanques
cumple con las Normas de calidad ambiental y de descargas de efluentes. Los
valores obtenidos de solidos suspendidos totales de los efluentes de los estanques
no cumplen con las normas de calidad ambiental y descargas de efluentes
2. Los valores promedio de O.D. del efluente del estanque 6, fluctuaron dentro del
rango aceptable de calidad de agua, mientras que los valores de promedio O.D.
de los efluentes de los otros estanques rango de mala calidad de agua.
3. Los valores obtenidos de los parámetros de pH, temperatura y oxígeno disuelto en
el efluente del estanque 6, son mayores a comparación de los valores de los otros
efluentes, esto se debe a que el estanque 6 presenta menor profundidad.
40
VII. RECOMENDACIONES
1. Deben aplicarse los conceptos y recursos de las tecnologías limpias, emisión
cero y los estudios de impacto ambiental, e incentivar la investigación científica,
procurando una piscicultura sostenible o responsable. Con esto se evitarían
problemas a la salud humana y de los peces cultivados.
2. Aplicar métodos que pueden ser utilizados para disminuir el impacto ambiental
causado por los efluentes; uno de los método a aplicar seria la disminución de
la cantidad de efluentes aplicando mejores prácticas de manejo, como no usar
tasa de siembra ni de alimentación superiores a la capacidad de carga del
efluente, fertilizar solamente lo necesario para promover el fitoplancton y
reducir el recambio de agua tanto como sea posible, esta práctica es efectiva
para reducir impactos ambientales en la calidad del agua.
3. Mejorar la calidad del efluente de los estanques antes de ser vertidos al
ambiente, las técnicas a utilizar serian la sedimentación, remoción de sólidos
hasta la filtración del efluente a través de manglares artificiales, plantas, algas,
moluscos, éstos últimos métodos conocidos como biotransformación; un dato
importante para la toma de decisiones es que la descarga de un estanque es
principalmente contaminante al final del volumen del efluente (20 – 25%)
cuando llevan las mayores cantidades de nutrientes y STS.
41
VIII. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
ALVAREZ, 2006. Calidad del Agua .Panamá. ACP. 240 p.
ANA 2009. Ley de Recursos Hídricos N° 29338 [En línea]:
(http://www.ana.gob.pe/media/532864/ley%2029338.pdf, 20May. 2014).
APHA, AWWA, WPCF. 1992. Métodos Normalizados Para El Análisis De Aguas
Potables y Residuales. España Ediciones Díaz de Santos, S.A.. 1143p.
BARRENECHEA, A. 2004. Aspectos fisicoquímicos de la calidad de agua. Lima, Perú.
58p.
BOYD, C. Y GAUTIER, D. 2000. Effluent composition and water quality standards.
Global Aquaculture Advocate.66p.
CHANG, J. 2009.Limnologia. Guayaquil, Ecuador. ESPOL. 38p
EPA. 2002. Office of Water. National Recommended Eater Quality Criteria-Correction.
Abril de 2002. EPA-822-R-02-047, ítem 1.4, p. 18.
DIGESA. 2007. Análisis Microbiológico de Aguas Residuales por Técnicas de los
Tubos Múltiples de Fermentación (NMP). Lima, Perú. 31p.
IIAP, 2004. Avances del Desarrollo en la Acuicultura. Editorial R&F, Perú. 57p.
IIAP, 2007. Manual de Construcción de Estanques para Piscicultura. Tingo María,
Perú. 19p.
42
JIMENO, E. 1998. Análisis de aguas y desagües. Universidad Nacional de Ingeniería.
Lima, Perú. 76p.
MINAM, Normas de calidad ambiental y de descargas de efluentes: recurso agua. [En
línea]:(http://cdam.minam.gob.pe/publielectro/calidad%20ambiental/normasr
ecursoagua.pdf, 20May.2014)
RODRIGUEZ, G., VICTORIA, D., CARRILLO, A. 2001. Fundamentos de Acuicultura
continental. 2ed. Bogotá, Colombia, Grafimpresos Quinteros. P. 418.
ROMERO, J. A. 1998. Calidad de Aguas. Editorial, NOMOS S.A. Madrid, España. 410
p.
SENHORINI, J. Y FRANZOSO, A. 1994. Influencia da productividad dos viveiros e a
contribuicao da racao na larvicultura do “pacu” Piaractus mesopotamicus. Bol
tec. CEPTA. 7 (único):27, 40 p.
SIERRA, R. 2011. Calidad del agua; Evaluación y diagnóstico. 1ed. Bogotá,
Colombia, Ediciones de la U. p. 460.
TACON A, Y FORSTER I. 2003. Aquafeeds and the environment: policy implications.
Aquaculture. 226p.
TROELL M Y NEORI A. 2005. Biological wastewater treatment in aquaculture–more
than just bacteria. World Aquaculture. 36 p.
42
IX. ANEXOS
44
Figura 12. Vista panorámica de los estanques en la estación experimental.
Figura 13. Toma de muestras en los efluentes de los estanques.
45
Figura 14. Obtención de datos de parámetros fisicoquímicos in-situ.
Figura 15. Muestras recolectadas de los efluentes de los estanques.
46
Figura 16. Proceso para la medición de solidos suspendidos totales.
Figura 17. Paso de la muestra por los filtros para la determinación de los SST.
47
Figura 18. Mapa de ubicación de los estanques de la estación experimental.