Boletín Latinoamericano y del Caribe de

Plantas Medicinales y Aromáticas

ISSN: 0717-7917

editor.blacpma@usach.cl

Universidad de Santiago de Chile

Chile

M. Battista, Stella; F. García, Gabriela; F. Vugin, Aqlejandro; Gurni, Alberto A.; Wagner,

Marcelo L.

ESTUDIO PRELIMINAR DE ACTIVIDAD ANTIMICÓTICA EN Fagara coco (Gillies), Engl -

RUTACEAE

Boletín Latinoamericano y del Caribe de Plantas Medicinales y Aromáticas, vol. 6, núm. 6,

2007, pp. 328-329

Universidad de Santiago de Chile

Santiago, Chile

Disponible en: http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=85617472008

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Especial IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano de Farmacobotánica Farmacología y Actividad Biologica

70- ESTUDIO PRELIMINAR DE ACTIVIDAD ANTIMICÓTICA EN Fagara coco (Gillies), Engl –

RUTACEAE – [Preliminary study of antifungal activity from Fagara coco (Gillies), Engl. Rutaceae]

Stella M. Battista, Gabriela F. García, Aqlejandro F. Vugin,Alberto A. Gurni & Marcelo L. Wagner Cátedra de Farmacobotanica, Facultad de Farmacia y Bioquímica, Universidad de Buenos Aires, Junín 956, (1113) Ciudad Autónoma

de Buenos Aires, República Argentina alevug@hotmail.com

RESUMEN Fagara coco (Gillies) Engl -Rutaceae- es una planta nativa del noroeste argentino, tiene varios usos conocidos en medicina popular. Especies relacionadas han demostrado actividad antimicrobiana. El objetivo del presente trabajo fue determinar los tipos de compuestos químicos y la actividad antimicótica del extracto metanólico del tallo de F. coco. La presencia de quinonas se puede relacionar con la actividad antimicótica PALABRAS CLAVES: Fagara coco, antimicótico, análisis fitoquímico, quinonas ABSTRACT Fagara coco (Gillies) Engl -Rutaceae- is a native plant from N-W Argentina. It is used for several purposes in folk medicine. Related species showed activity against microorganisms. The aim of this paper is to analyze the different chemical compounds present in this species and to establish if methanolic extracts have any antifungal activity. The presence of chinones could be related to the antifungal activity of the extracts. KEYWORDS: Fagara coco, antifungal activity, phytochemistry survey, Quinone. INTRODUCCIÓN Fagara coco (Gillies) Engl -Rutaceae- es una planta nativa de la Argentina, que crece en las provincias de Córdoba, San Luis, Catamarca, La Rioja, Tucumán, Salta y Jujuy, además de extenderse hasta los países limítrofes de Bolivia y Chile. La corteza y las hojas se utilizan en medicina popular, como sudorífica, diurética, emética, salivatoria y astringente, además, son usadas contra el dolor de oído o de dientes, por un posible efecto analgésico. La corteza, por otro lado, se la utiliza en el curtido de los cueros. Se ha detectado en especies relacionadas actividad antimicrobiana, por lo tanto, el presente estudio tiene por objeto evaluar la actividad antimicótica de extractos y determinar los grupos fitoquímicos involucrados. MATERIALES Y MÉTODOS Se utilizaron tallos de Fagara coco, recolectados en la localidad de El Duraznillo, fueron secados al aire a temperatura ambiente. Se molieron 10 g del material y se lo dejó en contacto con metanol 80° durante 7 días. Los extractos obtenidos fueron filtrados y llevados a un volumen final de 10 ml de extracto con agua destilada (10% P/V). Luego se realizaron tres cromatografías bidimensionales, en capa fina de celulosa. Fueron efectuadas siembras puntuales con 20 μl de cada extracto y las cromatografías fueron desarrolladas en forma bidimensional. Para la primera dimensión se utilizó TBA (ter butanol-ácido acético-agua; 3 :1 :2; v: v: v) y, para la segunda dimensión, ácido acético al 15%. Una vez que los cromatogramas estuvieron secos se observaron con luz ultravioleta antes y después de exponerlos a los vapores de amoníaco (Markham, 1982; Wagner, 1996; Stahl, 1969). Luego, cada uno de los tres cromatogramas fue rociado con uno de los siguientes reactivos: AEDBE, Borntrager y Dragendorff Para sembrar los hongos levaduriformes y probar los extractos se utilizó medio Müeller Hinton modificado con 1% de glucosa mejorado con azul de metileno. Las suspensiones de Candida albicans 106 UFC/ml, fueron incubadas a 37 ºC durante 24 h. Para sembrar los hongos miceliares y probar los extractos se utilizó medio de extracto de malta agar (medio natural complejo y sólido). Las suspensiones de Aspergillus niger 106 UFC/ml, fueron incubadas a 28ºC durante 3 días. Se realizaron curvas con distintas concentraciones de Ketoconazol frente a las distintas cepas de hongos aislados. El n utilizado fue de 5. Discos de papel filtro 589/1 de 0,5 cm, fueron cargados con Ketoconazol 1% y otros discos con 1μl de extracto (20 mg de extracto crudo en 0,5 ml de metanol y 0,06 ml de agua). Se realizaron controles con metanol 80%. Se graficaron los diámetros promedios al cuadrado frente a las distintas concentraciones de ketoconazol, para cada cepa. Se extrapolaron los diámetros promedios al cuadrado producido por el extracto del tallo de F. coco.

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Especial IX Simposio Argentino y XII Simposio Latinoamericano de Farmacobotánica Farmacología y Actividad Biologica

RESULTADOS En el extracto metanólico se encontraron los siguientes grupos fitoquímicos: Alcaloides +++ Flavonoides ++ Cumarinas ++ Quinonas + El porcentaje de inhibición de los extractos para Candida albicans (diámetro promedio al cuadrado de 0,25 cm) fue de 36% y de 67% para Aspergillus níger (diámetro promedio al cuadrado de 1,82 cm). CONCLUSIÓN De acuerdo con los resultados obtenidos, el extracto metanol 80° de los tallos de F. coco presenta diferentes grupos fitoquímicos que podrían explicar su uso en medicina popular. La presencia de quinonas se puede relacionar con la actividad antimicótica. Además, se observó que presenta mayor actividad frente a Aspergillus niger que contra la Candida.albicans. AGRADECIMIENTOS Dr. Rafael Ricco por su aporte en el diseño del experimento. REFERENCIAS Markham, K (1982). “Tecniques of Flavonoids Identification” Academic press Ed., New York: 1-113. Wagner, H y Bladt, S (1996) “Plant Drug Analysis” 2da. Edition. Berlin: 195-244 Piontelli lL. & Toro SM (1994) Manual de identificación para microhongos comunes en alimentos. 57-81. Shah, MA, Bokadia, MM (1988). Fitoterapia, volumen LIX, N.2:126-128. Stahl, E (1969) “Thin layer chromatography”. Springer-Verlang. Berlin: 421-905. Waterman, P y Mole, S (1994) “Analysis of Phenolic Plant Metabolites” Blackwell Scietific Publication, Oxford: 1-238.

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