Bioquimica Metabólica Natalia Buitrago - Johana Olmos (Autoguardado)
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UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA –UNADEscuela de Ciencias Agrícolas, Pecuarias y del Medio Ambiente-ECAPMA
Programas: Zootecnia; Agronomía; Ingeniería Agroforestal
LABORATORIOS DE BIOQUÍMICA METABÓLICA-LBMProf: Jairo Granados., MSc
PRÁCTICA 1
Determinación de Actividad Ureásica (AU) en suelos, pastos y Forrajes
INTEGRANTES DEL GRUPO
NATALIA ROCÍO BUITRAGO RAMOS
COD. 1049617604
GLORIA JOHANA OLMOS
COD.
Grupo de plataforma: 352001_23
DIRECTOR DE CURSO
GRANADOS MORENO JAIRO / jairo . granados @unad.edu.co
CEADTUNJA
PROGRAMA INGENIERÍA AGROFORESTAL
16/05/2015
RESUMEN
La ureasa es una exoenzima que cataliza la reacción de hidrólisis de la urea, el principal producto celular nitrogenado de la degradación de las proteínas y los ácidos nucleicos, el cual es más fácil de eliminar que otras formas de nitrógeno (como el amoniaco) porque es soluble en agua y menos
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tóxico (Science in School, 2008). En dicha reacción, la urea se rompe para formar dióxido de Técnicas para el análisis de actividad enzimática en suelos 21 carbono y amonio, como se describe en la siguiente reacción (Quintero-Lizaola et al., 2005):
H2NCONH2 + H2 O ------ 2NH3 + CO2
La ureasa se encuentra principalmente en semillas, microorganismos e invertebrados. En las plantas, es un hexámero (consiste en seis cadenas idénticas) y se encuentra en el citoplasma. Su pH óptimo es 7.4, y su temperatura óptima 60 °C (Kandeler y Gerber, 1988). Se midió la actividad enzimática de la ureasa en muestras de suelo y forraje. La metodología consistió básicamente en extraer con NaCl mediante centrifugación el sobrenadante el cual se tituló posteriormente con HCl e indicador de tashiro que viro a color verde esmeralda. Los resultados arrojaron que la actividad Ureásica medida para muestras de suelo y forraje fue de 980 y 755 micromoles de urea/ g. min respectivamente. Siendo mayor la actividad metabólica de esta enzima superior en suelos con respecto a la actividad en forrajes.
PALABRAS CLAVES: Actividad Ureásica, forraje, suelo, urea, enzimas.
ABSTRACT
Urease Is A exoenzyme that catalyzes the hydrolysis reaction of the urea, the main cell product nitrogen degradation of proteins and nucleic acids, which is easier to remove than other forms of nitrogen (as ammonia) is why Less soluble in water and toxic (Science in School, 2008). In this reaction, the urea breaks para train dioxide techniques for the analysis of soil enzyme activity 21 Carbon and ammonium, as described in the following reaction (Quintero-Lizaola et al., 2005):
H2NCONH2 + H2 O ------ 2NH3 + CO2
Urease is found mainly in seeds, micro-organisms and invertebrates. In plants, it is hexamer UN (consists of six identical chains) and is located in the cytoplasm. Optimum pH is 7.4 and its optimum temperature 60 ° C (Kandeler and Gerber, 1988). The enzymatic activity of urease in soil and forage samples was measured. The methodology consisted basically removing NaCl by centrifugation the supernatant which is itself subsequently with HCl title and Tashiro indicator Viro an emerald green color. The results showed that the activity of urease paragraph Measure soil and forage samples WAS 980 and 755 micromoles of urea / g. min respectively. Being mayor of the metabolic activity of soil enzyme in excess esta regarding the activity in fodder.
KEYWORDS: urease activity, feed, soil, urea, enzymes.
INTRODUCCIÓN
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La calidad y la salud de los suelos se miden a través de distintos indicadores que evalúan su funcionamiento (Doran et al., 1999). Para medir la calidad, se considera qué tan adecuadas son sus propiedades físicas y químicas para permitir el intercambio de gases, la retención de humedad y de nutrientes, la penetración de raíces, entre otros. En este contexto, uno de los indicadores que se ha utilizado es la magnitud de la actividad enzimática de la ureasa involucrada en los procesos antes mencionados. La mayoría de las enzimas actúan dentro de las células, pero algunas son extracelulares. La actividad enzimática del suelo es importante porque refleja el estado en el que se encuentran sus poblaciones microbianas (Doran, 2002; Gianfreda y Ruggiero, 2006). Dado a la elevada tecnificación empleada para uso con monocultivos se ha producido un rápido deterioro de los suelos. En vista de esta problemática, en los últimos años se han planteado investigaciones dirigidas al establecimiento de sistemas de manejo conservacionista de suelos, estos han vinculado la tasa de mineralización de los mismos con sus propiedades bioquímicas, tales como: el contenido de N (Bending et al., 1998), la relación C/N (Rivero y Paolini, 1995), contenido de lignina (L) y celulosa (Fioretto et al., 2005), contenido de polifenoles (PP) (Palm y Sánchez, 1991), las relaciones L/N, PP/N y (L+PP)/N (Palm y Sánchez, 1991; Singh et al., 2007). Dentro de este marco, la actividad enzimática es considerada como una de las características más dinámicas del suelo, ya que responde rápidamente a los cambios en las prácticas de manejo dentro de un sistema. Se utiliza la medición de la actividad de distintas enzimas del suelo, como por ejemplo la ureasa, para seguir la dinámica de la mineralización del N, ya que permite evaluar los cambios producidos en las transformaciones de este elemento esencial en los suelos, como efecto del uso de residuos orgánicos de distintos orígenes, debido a su participación como enzimas hidrolíticas en la descomposición de residuos. El objetivo de este trabajo fue evaluar la actividad enzimática de la ureasa en algunas muestras biológicas.
1. FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA
1.1 MAPA CONCEPTUAL
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CONCEPTO CONCEPTO
Ureasa Enzima amidohidrolasa
Lizosomas Células animales y vegetales
Sustrato Urea
RBE hidrólisis H2N-CO-NH2 + H2O NH4OH + CO2
Cinética Michaeliana Rumiantes
Coenzima Apoenzima
NNP Amonio
Parámetros Cinéticos Km y Vmáx
1.2 Con base en la revisión detallada de los videos relacionados con actividad enzimática y mostrados en los siguientes link:
http://www.youtube.com/watch?v=CpYWD7AQEjchttp://www.youtube.com/watch?v=GTTgS-xf7XIhttp://www.youtube.com/watch?v=UZI15VqFAq8
Deben elaborar un diagrama de flujo que integre los temas relacionados allí.
2. MATERIALES Y MÉTODOS
2.1 LISTA DE MATERIALES Y EQUIPOS UTILIZADOS
Cuadro 1. Lista de materiales y equipos utilizados en la práctica
Material ó equipo(marca)
Aplicación (Operación
unitaria)
Capacidad y Precisión
Fotografía Real
Balanza analítica Ohaus
Pesada(Gravimetría)
210g;0,0001g
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Tubos de ensayo con gradilla
Depósito de las muestras
-
Pinzas para bureta Sostenimiento -
Erlenmeyer Volumétrica 125 ml
Pipetas Volumétrica 5 y 10 ml
Matraz aforado Volumétrica 100 ml
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Baño termostato Mantenimiento de temperatura
-
Beaker Volumetría 400 ml
Bureta Volumetría 25 ml
Soporte universal Base -
2.2 LISTA DE REACTIVOS UTILIZADOS
Cuadro 2. Reactivos utilizados en la práctica
Reactivo (nombre) Fórmula MolecularPeso
Molecular (g/ concentración
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mol)
Urea H2N-CO-NH2 60 0,25M
Ureasa en búfer fosfato de pH 7
- - 0.1%
Cloruro de mercurio
HgCl2 271.6 1%
Ácido clorhídrico HCl 36.5 0.1 N
Indicador de tashiro
C15H14N3O2Na + C16H18N3SCl ----
3H20 + C2H60291.29 5 gotas
2.3 PROCEDIMIENTOS
2.3.1 Protocolos de muestras analizadas
MUESTRA LUGAR DE MUESTREO
CONDICIONES DESCRIPCIÓN
Forraje (kikuyo)(pennisetm Clandestinum)
Los mismos orígenes que para Suelo se aplican para el forraje. Muestras tomadas en la finca el Molino, de propiedad del señor Carlos López
Iguales condiciones que para el suelo.
Textura suaveOlor hierba frescaColor verde intensoSabor agradable al paladarSe tomaron 300 gramos para la realización del laboratorio de Bioquímica
Suelo Belén Boyacá, coordenadas geográficas de Belén, Latitud: 5.98957, Longitud: -72.9134, localizado en la cordillera oriental provincia del tundama al norte del departamento de Boyacá en la ruta, Tunja, Duitama, Santa Rosa, Cerinza Belén
En Belén existen tres climas bien marcadosClima frio húmedo, entre los 2.500 a 3.000 m.s.n.mClima frio subparamo seco, terrenos que están entre los 3.000 y 3.600 m.s.n.m Clima de paramo seco entre los 3,600 y 3.800. m.s.n.mCon una temperatura
Color pardo rojizoTextura, franco arcillosoAcidez ph 5.8Olor no característico
Sabor ligeramente a tierra
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promedio de 14ºC y una altitud de 2.630 m.s.n.m.
2.3.2 Flujograma general de los procedimientos desarrollados.
Tomar 1g de forraje , suelo y depositarlo en la centrifuga
Adicionar a la centrifuga 10 mL de NaCl 1%
Agitar durante 3 minutos
Centrifugar a 3500 rpm durante 5 minutos
Tomar el sobrenadante (Fase liquida)
Descartar el precipitado (Fase solida)
Medir el sobrenadante en una probeta y adicionar NaCl hasta 25
Agitar durante 30 segundos
Rotular
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3. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
3.1 TABLAS DE DATOS
MuestraWm (g) VHCL(ml)
Alistar el montaje de titulación: lavar, purgar ,cargar y enrasar la bureta con HCl 0,1N
Colocar el Erlenmeyer que contiene la solución blanca, agregar 5 gotas del indicador tashiro, debajo la bureta y adicionar lentamente el HCl, hasta que aparezca y
permanezca un color verde esmeralda. Esto indica que los equivalentes-gramo del hidróxido de amonio fueron neutralizados por los equivalentes-gramo del ácido
clorhídrico.
Registrar en su tabla de datos, los mL de HCl gastados en la titulación del blanco.
Repetir el procedimiento anterior, con el tubo St y anotar los mL empleados de HCl
Continuar el proceso con los tubos 1, 2, 3 y 4 ; registrar los mL gastados de HCl en la tabla de
datos.
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suelo 1.0200gr 1.4
forraje 1.0800gr 1.3
estándar - 1.2
blanco - 0.2
3.2. Cálculos
3.2.1 Actividad Ureásica en el tubo estándar
AU=(mLHCl St−mL HClB )×0,1×1000 µmol
2×t(min)× Fd
Fd=50mL5mL
3.2.2. Actividad Ureásica del suelo
AU=(mLHCl para tubo1−mL HClB )×0,1×1000 µmol
2×t(30min)× Fd
Fd= 50mLV f (mL)
×100gW Suelo
3.2.3 Actividad Ureásica del forraje
AU=(mLHCl para tubo2−0,2 )×0,1×1000µmol
2×t (min)×Fd
Fd= 50mLV f (mL)
×100 gW Forraje
3.3TABLA DE RESULTADOS
Tabla 2. Actividad Ureásica de las muestras biológicas
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TUBO TIPO DE MUESTRA AU(µmolurea /g .min ¿
1 Estándar 16.6
2 Suelo 980
3 Forraje 755
3.3.1 GRÁFICAS
estándar suelo forraje0
200
400
600
800
1000
1200
Grafica 1. Actividad ureasa en mues-tras biologicas
mic
rom
oles
de
urea
/g.
min
3.4 DISCUSIÓN DE RESULTADOS
En la gráfica podemos observar que la actividad de la enzima fue mayor en la muestra de suelo que en la muestra de forraje. La mayoría de las técnicas empleadas en la determinación de la ureasa cuantifican la liberación de amonio de un suelo incubado. Varias de ellas difieren en el uso de soluciones tampón o de tolueno. Otros métodos utilizan la urea residual para estimar la propia hidrólisis de este compuesto (Douglas y Bremner, 1970). Es claro que la mayor transformación de urea en subproductos, en las muestras analizadas está determinada por su interacción con el medio ambiente y factores que influyen sobre la actividad de ureasa como cantidad de materia orgánica,
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humedad cerca de capacidad de campo, mayor temperatura, pH de suelo cercano a la neutralidad, mayor aportación de residuos al suelos.
4. CONCLUSIONES
La mayor Actividad Ureásica del suelo, se puede atribuir a una alta presencia de Materia Orgánica en el mismo y a la gran actividad de la Fijación Biológica del Nitrógeno (FBN).
5. BIBLIOGRAFÍA
BENDING, G.; M. TURNER Y I. BURNS. 1998. Fate of nitrogen from crop residues as affected by biochemical quality and the microbial biomass. Soil Biol. Biochem. 30:2055-2065
Doran, J.W., Jones, A.J., Arshad, M.A., Gilley, J.E. 1999. Determinants of soil quality and health. En: Rattan, L. (editor). Soil quality and soil erosion. CRC Press, Florida, EUA.
Doran, J.W. 2002. Soil health and global sustainability, translating science into practice. Agriculture Ecosystems and Environment. 88, 119-127
Douglas, L.A., Bremner., J.M. 1970. Extraction and colorimetric determination of urea in soils. Soil Science Society of American Proceedings. 34, 859-862
Gianfreda, L., Ruggiero, P. 2006. Enzyme activities in soil. En: Nannipieri, P., Smalla., K. (editores). Nucleic acids and proteins in soil. Capítulo 12. Springer Publishing Company. Alemania
Kandeler, E., Gerber, H. 1988. Short-term assay of soil urease activity using colorimetric determination of amonium. Biology and Fertility of Soils. 6, 68-72.
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Quintero-Lizaola R., Ferrera-Cerrato R., Etchevers-Barra J.D. 2005. Manual para la medición de actividades enzimáticas en compost y vermicompost. Colegio de Postgraduados. Campus Montecillo. México
RIVERO, C. Y J. PAOLINI. 1995. Efecto de la incorporación de residuos orgánicos sobre algunas propiedades químicas de dos suelos en Venezuela. Venesuelos 3:24-30.
Science in School, 2008. http://www.scienceinschool.org/print/1074. Consultado en octubre de 2010.
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PRÁCTICA 2
Carbono Orgánico y Capacidad Amortiguadora de suelos
RESUMEN
(Redactar en máximo 10 líneas, en un solo texto: Qué se hizo, cómo se desarrolló, qué resultados se encontraron, cómo se interpretaron estos resultados, qué se
concluyó):
PALABRAS CLAVES: (Escribir 5):
ABSTRACT
(This text is based on that described in the above summary)
(Paragraph 5 lines)
Key Words: (Write 5)
INTRODUCCIÓN
(se debe escribir en 18 líneas)
Consultar el siguiente link para tener información de apoyo
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http://www.exactas.unlpam.edu.ar/academica/catedras/edafologia/practicos/mo-04.htm
1. FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA
1.1 MAPA CONCEPTUAL (Con base en los conceptos mostrados , elaboren un mapa conceptual, en este espacio)
CONCEPTOS CONCEPTOS
Suelo Actividad Microbiana
Aminoácidos Carbono orgánico
Grupos Funcionales Fases
Fertilidad Mezcla heterogénea
Ácidos Orgánicos Enzimas
Componentes Bioquímicos Humus
Materia inorgánica Materia orgánica
Reacciones Bioquímicas Enzimáticas (RBE)
Sales Minerales
pH Nitrógeno total
Equilibrio ácido-base Carbohidratos
1.2 MENTEFACTO CONCEPTUAL (Con base en los conceptos mostrados , elaboren un mentefacto conceptual, en este espacio)
Fertilidad pHMicroorganismo
sBases
intercambiables
PotenciometríaTécnicas analíticas
Titulación REDOX
Gravimetría
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Composición Bioquímica
Volumetría Materia orgánicaConductividad
eléctrica
Espectrofotometría CIC Sales Minerales Carbono orgánico
Características Fisicoquímicas
Amonio (NH4+) FBN Suelo
1.3 Con base en la revisión detallada de los videos relacionados con análisis de suelo y mostrado en los siguientes link:
http://www.youtube.com/watch?v=Gm4Be6qHCRMhttp://www.youtube.com/watch?v=5eo-Fiuf1rY
http://www.youtube.com/watch?v=lXOAwkG_D2I
Deben elaborar un diagrama de flujo que integre los temas relacionados allí.
1.4 En este espacio, deben elaborar un Diagrama UVE heurístico, relacionado con el artículo científico anexo, denominado: Evaluación de parámetros de calidad para la determinación de carbono orgánico en suelos., J,García Galvis y Ballesteros, M (2005), Revista Colombiana de Química
2. MATERIALES Y MÉTODOS
2.1 LISTA DE MATERIALES Y EQUIPOS UTILIZADOS (completar el cuadro)
Cuadro 1.lista de materiales y equipos utilizados en la práctica
Material ó equipo(marca)
Aplicación(Operación
unitaria)
Capacidad y Precisión
Fotografía Real
Balanza analítica OhausPesada
(Gravimetría)210g;
0,0001g
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2.2 LISTA DE REACTIVOS UTILIZADOS (Completar el cuadro)
Cuadro 2.Reactivos utilizados en la práctica
Reactivo(nombre) Fórmula MolecularPeso Molecular
(g/ mol)Concentración
Sulfato ferroso 1N
Dicromato de potasio 1N
2.3 PROCEDIMIENTOS (Completar el cuadro)
Cuadro 3.Técnicas analíticas utilizadas en el análisis fisicoquímico de suelos
VARIABLE(INDICADOR) EVALUADA(O)
TÉCNICA ANALÍTICA UTILIZADA
pH Método potenciométrico
Carbono Orgánico(CO) %Método de titulación (Walkey-
Black)
Carbono Orgánico(CO) %
Capacidad Amortiguadora
Nitrógeno total (NT) %
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Materia Orgánica(MO) %
2.3.1 Protocolos de muestras analizadas (Elaborar una ficha ó formato que muestre la información fundamental sobre el origen de cada una. Por ej: especie, nombre científico, lugar de muestreo, datos agroclimatológicos)
2.3.2 Flujograma general de los procedimientos desarrollados que puede incluír: Video ó fotografías que sustentan los procesos desarrollados ( en Word : hacer click en insertar, formas y diagrama de flujo)
3. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
3.1 TABLAS DE DATOS
*Incluír aquí las enviadas al profesor.*
3.2 ECUACIONES DE CÁLCULO
%Carbono Orgánico, Método de titulación volumétrica
%CO = (V FeSO4−B ¿×N FeSO4¿
W m
×0,003× Fd
Dónde:%CO= porcentaje de carbono orgánicoVFeSO4= Volumen(mL) de sulfato ferroso B = Volumen del sulfato ferroso gastado en el blanco= 0,4 mLN = normalidad del sulfato ferroso0.003= peso miliequivalente del carbono en gramos Wm= peso de la muestra en gramo Fd=Factor dedilución :10
Materia Orgánica (%MO)
%MO= %CO ×1,724
Dónde: %MO = Materia orgánica%CO= porcentaje de carbono orgánico1,724= constante de Van Bemmelen
Nitrógeno Total ( %NT)
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%NT= %MO/20Donde:
%NT= Nitrógeno total %MO = Materia orgánica
Carbono Orgánico por método colorimétrico-espectrofotométrico
%CO=[ Am+0,00170,0111 ]×[ 2,88
Wm×M S ]Donde:
Am=Absorbancia de lamuestra desuelo
Wm=Pesode lamuestrade suelo
M S=PesoMolecular de la sacarosa
Sacarosa: C12H22O11
Capacidad amortiguadora (β), Método Potenciométrico
Capacidad Amortiguadora(β ) Con respecto a NaOH, para muestras de suelos:
β=mLNaOH ×0,1×40
(pH 2−pH 1 )×Wm×1000mEq
Capacidad Amortiguadora(β ) Con respecto a NaOH, para muestras de agua y solución buffer
β=mLNaOH ×0,1×20
( pH 2−pH 1 )×Vm×1000mEq
Vm :Volumende lamuestra¿
3.3 TABLAS DE RESULTADOS (Completar)
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Tabla 1.Resultados obtenidos en el análisis fisicoquímico
VARIABLE EVALUADA
DESCRIPCIÓN Valor obtenido por:
TitulaciónEspectrofotomet
ria
MOMateria orgánica
(%)
NT Nitrógeno total (%)
COCarbono
orgánico(%)
pH Potencial de Hidrógenos
Capacidad
Amortiguadora
3.3.1 GRÁFICAS (*POR EJEMPLO*)
PH CE(dS/m) CO(%) MO(%) NT(%) Ai (%meq)0
0.51
1.52
2.53
3.54
4.55 4.44 4.66
2.36
4.06
0.2
2.3
Gráfica 1.Resultados análisis Fisicoquímico de suelo
Indicadores Fisicoquímicos
Val
ore
s p
orc
entu
ales
21
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3.4 . DISCUSIÓN DE RESULTADOS
*EN ESTE ESPACIO SE DEBE REALIZAR UN ANÁLISIS INTERPRETATIVO Y COMPARATIVO DE LOS RESULTADOS OBTENIDOS, TRATANDO DE CONFRONTAR LOS VALORES CON LA FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA Y CON LA LITERATURA*
4. CONCLUSIONES
(Escribir mínimo Cinco)
ESTAS SE DERIVAN DE LA DISCUSIÓN DE RESULTADOS
5. BIBLIOGRAFÍA
(UTILIZADA Y CONSULTADA, MÍNIMO 6 REFERENCIAS EN NORMAS APA)
PRÁCTICA 4
Actividad Catalítica de Catalasa (ACAT) en muestras de origen Biológico
RESUMEN
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(Redactar en máximo 10 líneas, en un solo texto: Qué se hizo, cómo se desarrolló, qué resultados se encontraron, cómo se interpretaron estos resultados, qué se
concluyó):
PALABRAS CLAVES: (Escribir 5):
ABSTRACT
(This text is based on that described in the above summary)
(Paragraph 5 lines)
Key Words: (Write 5)
INTRODUCCIÓN
(Se debe escribir en 18 líneas, Incluír breve revisión de literatura)Consultar el siguiente link para tener información de apoyo)
http://www.scielo.cl/scielo.php?pid=S0718-27912006000200004&script=sci_arttext
1. FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA
1.1 MENTEFACTO CONCEPTUAL (elaboren un mentefacto conceptual, en este espacio, con base en los siguientes conceptos)
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CONCEPTO CONCEPTO
Desdobla el Radical H2O2 Actividad catalítica
El sustrato es el peróxido pH y T óptimos
Óxido-reductasa Catalasa (CAT)
El sustrato es la úrea Peroxidasa
Peroxisoma Produce H2O y O2
Cinética enzimática de Michaellis-Menten
Parámetros cinéticos(Km y Vmáx)
Impide la acumulación de peróxido
Participa en la foto-respiración
Es amidohidrolasa RBE REDOX
1.2 MAPA CONCEPTUAL (Con base en los siguientes conceptos claves elaboren un mapa conceptual en este espacio, utilizando conectores adecuados)
CONCEPTO CONCEPTO
Catalasa(CAT) Enzima óxido-reductasa
Familia peroxidasas Células animales y vegetales
Peroxisoma Peroxidación lipídica
RBE REDOX H2O2 H2O + O2
Cinética Michaeliana Permanganometría
Coenzima Apoenzima
Grupo Hemo(Fe+3) Proteína cuaternaria
Homotetramérica Grasas
Mitocondria Oxidación
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1.3 Con base en la revisión detallada de los videos relacionados con actividad enzimática y mostrados en los siguientes link:
http://www.youtube.com/watch?v=WOAcp15VLJ0http://www.youtube.com/watch?v=0Jr7gxy3bKI
Deben elaborar un diagrama de flujo que integre los temas relacionados allí.
1.4 En este espacio, deben elaborar un Diagrama UVE Heurístico relacionado con el artículo científico anexo, denominado: Catalasa, Peroxidasa y Polifenoloxidasa en pitaya amarilla (acanthocereus pitajaya): maduración y senescencia
2. MATERIALES Y MÉTODOS
2.1 LISTA DE MATERIALES Y EQUIPOS UTILIZADOS(completar el cuadro)
Cuadro 1. Lista de materiales y equipos utilizados en la práctica
Material ó equipo(marca)
Aplicación(Operación
unitaria)
Capacidad y Precisión
Fotografía Real
Balanza analítica OhausPesada
(Gravimetría)210g;
0,0001g
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2.2 LISTA DE REACTIVOS UTILIZADOS(Completar el cuadro)
Cuadro 7. Reactivos utilizados en la práctica
Reactivo(nombre) Fórmula MolecularPeso Molecular
(g/ mol)Concentración
Peróxido de hidrógeno
H2O2 0,05M
2.3 PROCEDIMIENTOS
2.3.1 Protocolos de muestras analizadas (Elaborar una ficha ó formato que muestre la información fundamental sobre el origen de cada una. Por ej: especie, nombre científico, lugar de muestreo, datos agroclimatológicos, animales, etapa productiva, alimentación etc.)
2.3.2 Flujograma general de los procedimientos desarrollados que puede incluír : Video ó fotografías que sustentan los procesos desarrollados ( en Word : hacer click en insertar, formas y diagrama de flujo)
3. RESULTADOS Y DISCUSIÓN
3.1 TABLAS DE DATOS (Completar)
INCLUÍ AQUÍ LAS ENVIADAS AL PROFESOR
3.2 CÁLCULOS
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Calcular la actividad catalítica de la catalasa (ACAT) de cada una de las muestras trabajadas; ver la ecuación en el documento: protocolo de prácticas; tener en cuenta lo siguiente:
mL de KMnO4 gastados en el blanco= 4,7 mL
3.3 TABLAS DE RESULTADOS (Completar)
Tabla 5. Valores de actividad de catalasa en las muestras estudiadas
Tubos Muestras Analizadas ACAT (µmoles de H2O2 / min)
1
2
3
4
3.3.1 GRÁFICAS
(Realizarlas en Excel y luego importarlas a Word en este documento)
3.4 . DISCUSIÓN DE GRÁFICAS Y RESULTADOS
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*EN ESTE ESPACIO SE DEBE REALIZAR UN ANÁLISIS INTERPRETATIVO Y COMPARATIVO DE LOS RESULTADOS OBTENIDOS, TRATANDO DE CONFRONTAR LOS VALORES CON LA FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA Y CON LA LITERATURA*
4. CONCLUSIONES
(Escribir mínimo Cinco)
*ESTAS SE DERIVAN DE LA DISCUSIÓN DE RESULTADOS
5. BIBLIOGRAFÍA
(UTILIZADA Y CONSULTADA, MÍNIMO 6 REFERENCIAS EN NORMAS APA)