Bacterias Fototroficas Anoxigénicas

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BACTERIAS ANOXIGENICAS FOTOTROFICAS

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BACTERIAS FOTOTRÓFICAS ANOXIGÉNICAS

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BACTERIAS ANOXIGENICAS FOTOTROFICAS

ÍNDICE

CONTENIDO Página

- INTRODUCCIÓN 4

- CAPÍTULO I. ACTIVIDAD MICROBIANA. 5

- CAPÍTULO II. FOTOTROFOS: FOTOSÍNTESIS ANOXIGÉNICA: 5

- CAPÍTULO III. GENERALIDADES DE LA FILOGENIA DE

BACTERIAS

B) PHYLLUM PROTEOBACTERIAS:

C) PHYLLUM: BACTERIAS VERDES DEL AZUFRE

D) BACTERIAS VERDES NO DEL AZUFRE:

7

8

10

- CAPÍTULO IV. SISTEME DE VIDA FOTOTRÓFICO 10

- CAPÍTULO V. FUNCIÓN DE LA CLOROFILA Y DE LA

BACTERIOCLOROFILA EN LA FOTOSÍNTESIS.

16

- CAPÍTULO VI. FOTOSÍNTESIS ANOXIGÉNICA 20

- CAPÍTULO VII. GENÉTICA DE LA FOTOSÍNTESIS

BACTERIANA

23

- CAPÍTULO VIII. AUTOTROFIA EN BACTERIAS ROJAS:

DONADORAS DA ELECTRONES Y TRANSPORTE INVERSO

DE ELECTRONES

24

- CAPÍTULO IX. COMPARACIÓN DEL TRANSPORTE

FOTOSINTÉTICO DE ELECTRONES Y LA SÍNTESIS DE

PODER REDUCTOR EN OTROS FOTOTROFOS

ANOXIGÉNICOS

25

- BIBLIOGRAFIA 26

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INTRODUCCIÓN

En la fotosíntesis anoxigénica los organismos fotoautótrofos anoxigénicos

convierten la energía de la luz en energía química necesaria para el

crecimiento; sin embargo, y al contrario que las

plantas, algas y cianobacterias, en este proceso de transformación de la

energía no se produce oxígeno (O2) y por ello se le

llama fotosíntesis anoxigénica. Otra diferencia es que los fotótrofos

anoxigénicos contienen un tipo de clorofila, bacterioclorofila, diferente a la

clorofila de las plantas.

La fotosíntesis anoxigénica también representa otro proceso de producción

primaria exclusivo de procariotas. En este proceso se substituye el agua

como donante de electrones por compuestos inorgánicos sulfurados

reducidos (sulfuro de hidrógeno, tiosulfato o azufre elemental), hidrógeno

gaseoso (H2), hierro (Fe++) o por un compuesto orgánico. En adición se

emplea un solo fotosistema para las reacciones de fotofosforilación cíclica y

no-cíclica. Los pigmentos que permiten la captura y transformación de la

energía radiante a energía química se conocen como bacterioclorofilas. Estos

pigmentos presentan substituyentes en varias posiciones del anillo de

porfirina que los llevan a diferenciarse de las moléculas de clorofila que

encontramos en los fototrofos oxígenicos.

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CAPÍTULO I. ACTIVIDAD MICROBIANA.

La conversión de energía radiante a energía química atrapada en los enlaces

químicos de moléculas orgánicas es la esencia de la productividad primaria

generada por fotógrafos. Se puede definir la productividad primaria como la

cantidad de carbono inorgánico (c) convertido a materia orgánica por

organismos autotróficos (ej. gramos de carbono) o como la cantidad de

energía transformada por los productores primarios para producir materia

orgánica nueva (ej. kilocarías). En ambos casos los valores de productividad

se calculan para un área o volumen determinado, por un intervalo de tiempo

determinado. En el primer caso podemos expresar la productividad primaria

en términos de gramos de carbono fijado/m2/año. En el segundo caso una

expresión apropiada sería kilocalorías/m2/año. Es importante reconocer la

diferencia que existe entre los términos productividad primaria y cosecha en

pie ("standing crop"). Este último alude exclusivamente a la biomasa (gramos

de materia orgánica seca) contenida en una comunidad o grupo de seres

vivientes en un momento dado. La biomasa puede ser convertida a gramos

de carbono multiplicando por un factor de conversión apropiado (ver un

ejemplo en la unidad biomasa fototrofos). Como veremos a continuación, en

nuestro planeta existen varios mecanismos para llevar a cabo la reducción de

CO2 a materia orgánica, pero solo tocaremos el correspondiente a nuestro

tema.

CAPÍTULO II. FOTOTROFOS: FOTOSÍNTESIS ANOXIGÉNICA:

La fotosíntesis anoxigénica también representa otro proceso de producción

primaria exclusivo de procariotas. En este proceso se substituye el agua

como donante de electrones por compuestos inorgánicos sulfurados

reducidos (sulfuro de hidrógeno, tiosulfato o azufre elemental), hidrógeno

gaseoso (H2), hierro (Fe++) o por un compuesto orgánico. En adición se

emplea un solo fotosistema para las reacciones de fotofosforilación cíclica y

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no-cíclica. Los pigmentos que permiten la captura y transformación de la

energía radiante a energía química se conocen como bacterioclorofilas. Estos

pigmentos presentan substituyentes en varias posiciones del anillo de

porfirina que los llevan a diferenciarse de las moléculas de clorofila que

encontramos en los fototrofos oxígenicos.

Dichas modificaciones se traducen en cambios significativos en el espectro

de absorción. La mayoría de las bacterias fototrofas anoxigénicas pertenecen

al grupo de las bacterias púrpuras y las bacterias verdes. Estas bacterias sólo

pueden fotosintetizar bajo condiciones anaeróbicas, dado que el oxígeno (O2)

reprime la síntesis de sus pigmentos fotosintéticos. Podemos encontrar estas

bacterias usualmente en estratos profundas de lagos estratificados. Existe

otro grupo de fototrofos anoxigénicos que necesitan de oxígeno para vivir,

aun cuando no lo producen. Estos fototrofos procariotas de origen marino han

sido ubicados mayormente en el género Erythrobacter, aunque un número

reducido de especímenes ha sido ubicado dentro del género Pseudomonas.

La contribución de la fotosíntesis anoxigénica a la productividad primaria de

algunos cuerpos acuáticos es significativa. En el caso del Mar Negro, el

cuerpo de aguas anóxicas saladas más grande del mundo, dicha contribución

pudiera ser actualmente superior a la contribución de la fotosíntesis

oxigénica, según lo sugieren datos de la abundancia, composición y

distribución de pigmentos en dicho cuerpo de agua.

Por otro lado, estudios realizados por Parkin y Brock (1980) en seis lagos de

Wisconsin revelan que la contribución de fototrofos anoxigénicos a la

productividad primaria diaria total varió entre 0.26% y 6.3%. Estos

investigadores concluyeron que la variabilidad en la contribución de los

fototrofos anoxigénicos a la productividad primaria está determinada

mayormente por las diferencias en la intensidad de la energía radiante y en

menor grado por las concentraciones de sulfuros en la columna de agua.

Es conveniente señalar que aun cuando los productores primarios de mayor

abundancia y biomasa en nuestro planeta son los fototrofos oxigénicos,

algunos de ellos son capaces de llevar a cabo fotosíntesis anoxigénica.

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Algunas algas y cianobacterias (ej. Oscillatoria sp.) son capaces de utilizar H2

ó H2S respectivamente, para reducir CO2. Esta variación se produce cuando

se generan condiciones anóxicas en el ambiente y se encuentran disponibles

H2 ó H2S. En este patrón metabólico anoxigénico se emplea únicamente el

fotosistema-I. Ignorar este fenómeno nos puede llevar a subestimar la

productividad primaria en ambientes anóxicos, cuando utilizamos la

producción de O2 como indicador de la productividad primaria.

PRODUCTIVIDAD PRIMARIA: INDICADOR DE ESTATUS NUTRICIONAL:

Los estimados de productividad primaria pueden ser utilizados como

indicadores del estatus nutricional de cuerpos de agua naturales. Esta

clasificación es válida para lagos autotróficos, aquellos donde la materia

orgánica producida proviene mayormente de la actividad fotosintética y no de

materia orgánica importada. Es necesario tomar en consideración algunas

excepciones a esta clasificación, particularmente en áreas desérticas, donde

la radiación solar es intensa, la temporada de crecimiento o cosecha es larga

y los nutrientes están concentrados. A menudo en estas áreas se registran

valores de productividad que sobrepasan los límites aquí señalados para

aguas contaminadas (ej. salitrales, lagos de soda).

CAPÍTULO III. GENERALIDADES DE LA FILOGENIA DE BACTERIAS

Al menos se conocen 17 linajes principales (Phyla) de Bacteria que derivan

del estudio de cultivo de laboratorio, y otros muchos han sido identificados al

secuenciar genes de rRNA de Bacteria en hábita naturales. Con respecto a

bacterias fototrofas anoxigénicas se considera a los Thermosulfobacterium,

Thermotoga y la bacteria verde no del asufre (grupo Chloroflexus) tambien

contiene especies termofílicas. Otras bacterias del rubro fototróficas son

Grampositivas identificadas por su relación de GC en las basesde sus ADNs.

El grupo Proteobacteria, es un grupo más grande y más diverso

fisiologicamente de todo Bacteria. Las Proteobacterias contienen 5 grupos

con varios géneros cada uno designados por las letras griegas alfa, beta,

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gamma, delta y epsilon. Filogenéticamente solo nos importa las que

presentan un carácter fototrofo anoxigénicos.

A) PHYLLUM PROTEOBACTERIAS:

Son un lije principal bacteriano que comprende un gran número de bacterias y

cocos Gram negativos., que presentan una gran diversidad metabólica y

representan la mayoría de las bacterias con importancia clínica, industrial o

agrícola. La descripción a continuación tocará a las proteobacterias

fototróficas: Bacterias rojas.

Bacterias rojas fototróficas:

Género clave:

Chromatium

Rhodobacter

Rhodospirillum

Ectothirhodospira

Las bacterias rojas fototróficas llevan a cabo la fotosíntesis no oxigénica; a

diferencia de las cianobacterias el oxígeno (O2) no está implicado. Las

bacterias rojas contienen pigmentos de clorofila llamados bacterioclorofíla y

además, una variedad de pigmentos carotenoicos. En conjunto, estos

pigmentos dan a estas bacterias rojas sus espectaculares colores,

generalmente rojos, púrpura o marrón. Estas bacterias son un grupo

morfológicamente diverso y su taxonomía ha implicado diversas líneas

filogenéticas, morfológicas y fisiológicas.

Las bacterias rojas forman sistemas fotosintéticos membranosos

intracelulares que contienen los pingmentos fotosintéticos. Estas membranas

pueden poseer varias morfologías pero en todos los casos se generan por

invaginación de la membrana citoplasmática, lo que les permite incrementar

el contenido específico de los pigmentos y así utilizar mejor la luz disponible.

Cuando crecen con alta disponibilidad de luz poseen pocas membranas, pero

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cuando escasea la luz, las células están llenas de formaciones membranosas

y fotopigmentos.

1) BACTERIAS ROJAS DEL AZUFRE:

Las bacterias rojas que utilizan sulfuro de hidrógeno (H2S) como un donador

de electrones para la reducción fotosintética del C02, se las conoce como

bacterias rojas del azufre. El sulfuro es oxidado a sufre elemental (S0) que es

almacenado como granulo dentro de las células; más tarde el azufre

desaparece a medida que se oxida a sulfato. Muchas de estas bacterias rojas

también pueden reducir otros compuestos azufrados como donadores de

electrones fotosintéticos tales como el tiosulfato, siendo ése un compuesto

clave para cultivar estos microorganismos en el laboratorio. Actualmente, se

incluyen en el grupo gamma de Proteobacteria.

Las bacterias rojas del azufre se encuentran habitualmente en zonas

anóxicas de lagos bien iluminados y otro hábitat acuáticos donde el H2S se

acumula. También en los manantiales sulfurosos en los que el H2S de origen

biológico o geoquímico puede disparar el rápido crecimiento de este tipo de

bacterias rojas del azufre. Los lagos son favorables para el crecimiento de las

bacterias rojas del azufre se denominan lagos meromícticos

(permanentemente estratificados). Los lagos meromícticos se estratifican

porque poseen aguas más densa en el fondo (normalmente salina) y en

menos densa (normalmente agua dulce) cerca de la superficie. Si existe

suficiente sulfato para que sea reducido, el sulfuro originado en los

sedimentos difunde hacia arriba, hacia las capas anóxicas de las aguas y allí

las bacterias rojas del azufre crecen masivamente, por lo general, asociadas

con las bacterias fototróficas verdes del azufre.

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El género Ectothiorhodospira y halorhodospira tienen un interés especial

porque, a diferencia de otras bacterias rojas del azufre, estos organismos

oxidan H2S y producen S0 fuera de la célula y también porque algunas de sus

especies son halófilas extremas, encontrándose entre las más halófilos del

mundo procariótico. Estos organismos se encuentran típicamente en

ambientes marinos, lagos salados, lagos bicarbonatados y salinas.

2) BACTERIAS ROJAS NO DEL AZUFRE

Estas bacterias se denominan no del azufre porque inicialmente se pensaba

que eran incapaces de usar sulfuros como donadores de electrones para la

reducción del C02 hasta material celular. Sin embargo, el sulfuro si puede ser

utilizado por la mayoría de las especies, aunque los niveles de este

compuesto que pueden utilizar las bacterias rojas del azufre son tóxicos para

la mayoría de las bacterias rojas no del azufre. Algunas de las bacterias rojas

no del azufre también pueden crecer anaeróbicamente en la oscuridad

utilizando la fermentación o la respiración anaeróbica, y la mayoría puede

crecer anaeróbicamente en la oscuridad por respiración.

Estas bacterias son de nutrición muy diversa y pueden utilizar como fuente de

carbono sustancias diversas. La mayoría pueden crecer también

fotoautotroficamente con (CO2 + H2) o (CO2 + bajos niveles de H2S).

El enriquecimiento y aislamiento de las bacterias rojas no del azufre son

fáciles, utilizando un medio de sale minerales suplementado con un ácido

orgánico como fuente de carbono. Tales tipos de medios, inoculados con

lodo, agua de un lago o de una alcantarilla, se incuban anaeróbicamente con

luz e invariablemente favorecen el crecimiento de bacterias rojas no del

azufre. Los medios de enriquecimiento puede hacerse aún más selectivos

omitiendo fuentes de nitrógeno de tipo orgánico (como por ejemplo el extracto

de levadura de nitrógeno N2); prácticamente todas las bacterias rojas no del

azufre pueden fijar N2 y crecer en estas condiciones más que otros posibles

competidores.

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La diversidad morfológica de las bacterias rojas no del azufre es típicamente

la de las bacterias rojas del azufre, siendo, por tanto, un grupo heterogéneo

en este sentido. Todas las bacterias rojas no del azufre que se han aislado

hasta la fecha son invariablemente Proteobacterias alfa o beta.

B) PHYLLUM: BACTERIAS VERDES DEL AZUFRE

B.1) CHLOROBIUM Y OTRAS BACERIAS VERDES DEL AZUFRE:

Género clave:

Chlorobium

Prosthechochloris

Chlorochoromatium

Las bacterias verdes del azufre constituyen un grupo filogenético distintivo

inmóviles anoxigénico y anaeróbios estrictos. Es un grupo morfológicamente

variado e incluye desde bacilos cortos hasta muy largos. Como las bacterias

rojas utilizan H2S como donador de electrones oxidando primero hasta S0 y

-2

después hasta S04 . Pero al contrario que en ellas, el azufre que pueda

originarse, permanece en el exterior de la célula. La mayoría de las especies

pueden también asimilar un puñado de compuestos orgánicos en presencia

de luz. La autotrofía sin embargo, no depende de las reacciones del ciclo de

Calvin como en el caso de las bacterias rojas sino del ciclo reverso del ácido

cítrico, una forma única de metabolismo entre los seres fototróficos.

Pigmentos y ecología:

Las bacterioclorofilas que se encuentran en las bacterias verdes del azufre

incluyen la bacterioclorofila a o bien la c, d o e. Estas últimas funcionan como

recolectores de luz y se depositan en estructuras típicas conocidas como

clorosomas. Los clorosomas son cuerpos oblongos con membrana sin

estrucutura de unidad de membrana y se encuentran unidas a la membrana

citoplasmática en la periferia de las células. Estudios sobre transferencia de

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energía en estas bacterias han demostrado que la luz absorbida por las

bacterioclorofilas c, d o e en el clorosoma es embocada hacia la

bacterioclorofilas a que se encuentra en la membrana citoplasmática, que es

donde ocurre la síntesis real de ATP. Se conocen tanto especies verdes

como marrones.

Como en el caso de las bacterias rojas del azufre, las verdes viven en

ambiente acuícolas anaerobios con abundante H2S (en general, son más

tolerantes al sulfidrico que las rojas). Debido a que el clorosoma es muy

eficiente como recolector de luz, se requiere muy poca luz para soportar la

función fotosintética en estas bacterias y normalmente se encuentran a

mayores profundidades que el resto de los organismos fotosintéticos. Una

especie del género Cholorobium, C. tepidum es termofilo y forma matas muy

densas en manantiales azufrados de agua caliente. Su genoma de 2.1

megabases ya se ha secuencia completamente y de hecho ha sido el primer

genoma de un fotótrofo anoxigénico; también es importante por ser

transformable y presentar una conjugación definida.

Los consorcios de bacterias verdes del azufre:

Ciertas bacterias verdes del azufre pueden formar asociaciones estrechas

con bacterias quimiorganotrofos en las que ambos se benefician, tales

asociaciones se denominan consorcios. El componente fototrófico se

denomina epibionte y aparece físicamente unido al componente no fototrófico,

aunque el mecanismo de unión no está claro. El termino Chlorocromatium

aggregatum; se ha utilizado para decribir uno de estos consorcios; este

término sin embargo no tiene implicaciones taxonómicas porque se refiere a

dos organismos más que a uno solo.

El consorcio C. aggregatum es de color verde porque el epibionte es una

bacteria verde asufrada que contiene bactericlorofila c o d y carotenoides de

color verde y que rodean una célula no fotosintética. Una estructura similar

conocida como Pelochromatium roseum es de color pardo. En otros

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consorcios el epibionte tiene forma de media luna por lo que es razonable

asumir que en la naturaleza puede existir una gran variedad de consorcios.

Algunos han sido crecidos en el laboratorio. Por término medio el consorcio

C. aggregatum contiene 12 epibiontes por célula central mientras que el P.

roseum contiene alrededor de 20. Existe evidencias sólidas para pensar que

los epibiontes son de hecho bacterias verde de azufre; estas evidencias

incluyen el que sus cromosomas procarioticos son bien visible en cortes finos.

Por otra parte, el tratamiento del consorcio con un oligonucleótido

fluorescente específico para el 16S rRNA de bacterias verdes del azufre

induce específicamente fluorescencia en el epibionte y no en la célula central.

Los estudios de laboratorio han demostrado también que ambas células

también que ambas células se dividen en sincronía, lo que sugiere una forma

de intercomunicación entre ambas. La razón de por qué se forman estas

asociaciones no está claro; los estudios combinados de laboratorio y de

campo sugieren que los epibiontes en estos consorciones se han adaptado a

bajo régimen de luz y sulfíbrico y que la función de la célula central es

movilizar al epibionte en la columna de agua buscando las condiciones

óptimas para la fotosíntesis.

C) BACTERIAS VERDES NO DEL AZUFRE:

Géneros clave

Chloroflexus

Thermomicrobium

Este phylum de bacterias es filogenéticamente diferente y contiene unos

pocos géneros, siendo Chloroflexus el mejor conocido. Thermomicrobium es

un miembro quimiorganotrófico del grupo y es aerobio estricto por lo que solo

se lo nombrará en este párrafo para solo atañar a el género de importancia

por su carácter fototrófico anoxigénico que es Chloroflexus.

Chloroflexus.

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Chloroflexus y la mayor parte de bacterias verdes no del azufre son

procariotas filamentosas que forman matas espesas en manantiales termales

de tipo neutro. Organismos semejantes a Chloroflexus también se aíslan en

ambientes marinos no termales. Aunque son anoxifototrofos, es en realidad

un fototrofo hibrido, en el sentido de que la fotosíntesis recuerda a la de

bacterias rojas del azufre y verdes del azufre. Como estas últimas

Chloroflexus contiene bacterioclorofila c y clorosomas. Sin embargo, la

bacterioclorfila a, localizada en la membrana citoplasmática dela célula de

Chlorflexus, se organiza formando un centro de reacción fotoquímica

semejante al que se encuentra en las bacterias verdes del azufre es

estructuramente muy diferente. Se ha propuesto que el Chlorflexus actual

puede ser un vestigio de una forma de vida fototrófica ancestral, que quizá

evolucionó con un centro de reacción fotoquimímico primario y más tarde

recibío de forma colateral genes cromosomales de fotosíntesis, en una

evolución secundaria.

Fisiológicamente, Chloroflexus se parece a las bacterias rojas del azufre en el

sentido de que la fotoautotrofia puede apoyarse en (H2S + CO2) o (H2 +

CO2). Sin embargo, en Chloroflexus, el fototropismo es idóneo con

compuestos orgánicos como fuente de carbono (fotoheterotrofia). Tambien

crece bien en la oscuridad como un quimiorganotrofo por respiración

aeróbica. Interesantemente y esto debería ser tenido en cuenta bajo un

prisma de posición evolutiva que localiza a Chloroflexus como el fototrofo

anoxigénico más antiguo, la autotrofia en este microorganismo tiene lugar por

incorporación de CO2 a través del ciclo del hidroxipropionato que es exclusivo

de este microorganismo.

CAPÍTULO IV. SISTEME DE VIDA FOTOTRÓFICO

La fototrofía, utilización de la luz como fuente de energía, está ampliamente

distribuida en el mundo microbiano. Uno de los procesos biológicos más

importantes den la tierra es este. Los organismos que realizan la fotosíntesis

se llaman fototrofos. La mayor parte de los organismos fototrofos son también

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autótrofos, es decir capaces de crecer con CO2 como única fuente de

carbono. La energía de luz se usa entonces en la reducción del CO2 a

compuestos orgánicos.

Hay también algunos fototrofos que utilizan la luz como fuente de energía,

pero que usan carbono orgánico como fuente de carbono; representan un

estilo de vida denominado fotoheterotrofía. La capacidad de realizar

fotosíntesis depende de la presencia de pigmentos fotosensibles, la clorofila,

que se encuentran en las plantas, algas y algunas bacterias. La luz llega a los

organismos fototróficos en unidades concretas de energía llamadas cuantos.

La absorción de cuantos de luz por la clorofila inicia el proceso de conversión

de energía por fotosíntesis.

REACCIONES DE LA FASE LUMINOSA Y DE LA FASE OSCURA

Se puede considerar que el crecimiento de un fotoautotrodo se caracteriza

por dos tipos de reacciones: las reacciones de la fase luminosa, por las que la

energía de la luz se conserva como energía química y las reacciones de la

fase oscura, en las que esa energía química se usa para recudir el CO2 a

compuestos orgánicos. En el crecimiento autotrófico la energía se produce en

forma de trifosfato de adenosina (ATP), mientras que los electrones para la

reducción de CO2 proceden del NADH o del NADPH*. Estos últimos son

producidos por la reducción de NAD+ o NADP+ mediante electrones que se

originan en una variedad de donadores.

Las reacciones de la fase luminosa, por tanto conservan una parte de la

energía contenida en la luz en forma química, ATP, que las células utilizan.

Para impulsar las reacciones autotróficas, algunas bacterias fototróficas

obtienen poder reductor de los donadores de electrones de su ambiente,

generalmente fuentes de azufre reducido (H2S, S0, S2O32-) o H2. Por el

contrario, las plantas verdes, las algas y las cianobacterias usan H20, por si

mismo un donador de electrones débil, como fuente de poder reductor para

reducir NADP+ A NADPH, produciendo oxígeno molecular, O2, como

subproducto (fotosíntesis oxigénica). En otras bacterias fototróficas, donde no

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hay producción de 02, el proceso se denomina fotosíntesis anoxigénica.

Veremos mas adelante que en tanto que la producción de NADH a partir de

sustancias como el H2S por los fototrofos oxigénicos si lo es; en

consecuencia, estos organismos necesitan luz tanto para obtener poder

reductor como para la conservación de energía.

CAPÍTULO V. FUNCIÓN DE LA CLOROFILA Y DE LA

BACTERIOCLOROFILA EN LA FOTOSÍNTESIS.

La fotosíntesis solo se produce en organismos que producen algún tipo de

clorofila. La clorofila es una porfirina, como los citocromos, pero a diferencia

de estos, las clorofilas contienen un átomo de magnesio, en vez de un

aátomo de hierro, en el centro del anillo de porfirina. La clorofila también

contiene radicales específicos unidos al anillo de porfirina, así como una

molécula de alcohol de cadena lateral hidrofóbica. Esa cadena laterla permite

la asociación de las membranas fotosintéticas.

La estructura de la clorofila a, que es la clorofila principal de las plantas

superiores, la mayor parte de lasalgas y cianobacterias. La clorofila a es de

color verde porque absorbe con preferencia la luz roja y azul y transmite la luz

verde. Las propiedades de un pigmento se expresan por su espectro de

absorción, que indica el grado en el que el pigmento absorbe luz de diferentes

longitudes de onda. El espectro de absorción de células que contiene clorofila

a muestran una fuerte absorción de la luz roja (absorción máxima a 430 nm)

Existen varias clorofilas distintas que se distinguen por sus fierente espectros

de absorción. La clorofila b, por ejemplo, tiene una absorción máxima a 660

nm, en vez de a 680 nm. Muchas plantas tiene más de una clorofila, pero las

mapas comunes son al a y b. Entre los procariotas m las cianobacterias tiene

clorofila a, pero los fototrofos anoxgénicos, como las bacterias rojas y las

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verdes, pueden tener diversas bacterioclorofilas. La bacterioclorofila a,

presente en la mayoría de bacterias rojas, tiene su máximo de absorción etre

800 y 925 nm, dependiendo de la especie. Diferentes especies presentan

distintas proteínas asociadas a pigmentos y a la absorción máxima de la

bacterioclorofila a de pende hasta cierto punto de la naturaleza de esas

proteínas y de la forma en que se ordenan en fotocomplejos. Otras

bacterioclorofilas, presentes en diversas líneas filogenéticas, absorben en

otras regiones del espectro visible e infrarrojo.

Una razón por la que existen varios tipos de clorofilas es para el mejor uso de

la energía del espectro electromagnético. Solo la energía de luz que se

absorbe puede usarse para producir energía; al tener diferentes pigmentos,

dos microorganismos no relacionados pueden coexistir en un mismo hábitat,

donde cada uno usa longitud de onda que el otro no utiliza. Por tanto, la

diversidad en la pigmentación tiene significado ecológico.

MEMBRANA SINTÉTICAS Y CLOROPLASTOS:

Los pigmentos clorofílicos y todos los demás componentes del aparato captador de

luz se encuentran en el interior de la célula, dentro de sistemas de membrana

especiales, las membranas fotosintéticas. Su localización en la célula es diferente

en los microorganismos procariotas y en los eucariotas. En los eucariotas, la

fotosíntesis está asociada con orgánulos intracelulares especiales, los cloroplastos.

Los pigmentos clorofílicos se fijan a estructuras membranosas lamelares del

cloroplasto. Estos sistemas membranosos se denominan tilacoides. Los tilacoides

apiladas forman los grana. Los tilacoides se disponen de tal modo que el cloroplasto

queda dividido en dos regiones, la matriz que los rodea y el espacio interior dentro de

las capas de tilacoides (Figura 17.5b). Esta disposición permite el desarrollo de un gra-

diente electroq9uímico de protones con energía de la luz que puede usarse para

sintetizar ATP.

No existen cloroplastos en los procariotas y los pigmentos fotosintéticos están

integrados en sistemas de membrana internos que se forman por invaginación de la

membrana citoplasmatica (bacterias rojas) por la membrana citoplasmática misma

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(heliobacterias), tanto por la membrana citoplasmática como por estructuras

especializadas rodeadas por membranas no unitarias llamadas clorosomas (bacterias

verdes), o en membranas de tilacoides en las cianobacterias.

CENTROS DE REACCIÓN Y PIGMENTOS ANTENA

Dentro de una membrana fotosintética, las moléculas de clorofila o bacterioclorofila se

asocian con proteínas en complejos que contienen de 50 a 300 moléculas. Pero sólo

un número muy reducido de estas moléculas participan directamente en la conversión

de la energía luminosa en ATP —se trata de las clorofilas o bacterioclorofilas de los

centros de reacción. Aparecen rodeadas por otras moléculas de clorofila más

numerosas que actúan como captadores de luz o antenas. Los pigmentos antena

captan la luz y transfieren la energía lumínica al centro de reacción. A las bajas

intensidades de luz que suelen darse en la naturaleza, esta ordenación de las

moléculas de pigmento permite capturar y utilizar los fotones que de otra forma serían

insuficientes por sí mismos para llevar a cabo la fotoquímica de los centros de

reacción. El máximo de eficiencia a baja intensidad de luz se encuentra en el

clorosoma de las bacterias verdes del azufre y de Chloroflexus. Esta estructura

funciona como un sistema de antena gigante pero, a diferencia de las antenas de las

bacterias rojas, las bacterioclorofilas del clorosoma no están asociadas con proteínas.

En su lugar, funcionan más bien como un circuito de estado sólido, absorbiendo

intensidades extremadamente bajas de luz y transfiriendo la energía a la

bacterioclorofila a en el centro de reacción localizado en la membrana citoplasmática.

Esta disposición es altamente eficiente en la absorción de luz a bajas intensidades y,

de hecho, se ha comprobado que las bacterias verdes del azufre puden crecer a

intensidades más bajas de luz que cualquier otro fototrofo conocido

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CAROTENOIDES Y FICOBILINAS

Aunque la presencia de clorofila o bacterioclorofila es condición imprescindible para

que pueda haber fotosíntesis, los organismos fototrofos tienen diversos pigmentos

accesorios que intervienen en la captura y procesado de la energía luminosa. Entre

éstos se encuentran los carotenoides y las ficobilinas. Estos pigmentos

desempeñan principalmente una función fotoprotectora (los carotenoides) o de

captación de la luz (ficobilinas).

CAROTENOIDES

Los pigmentos accesorios más frecuentes son los carotenoides, que se encuentran

en todos los organismos fototrofos. Los carotenoides son pigmentos hidrofóbicos

firmemente insertados en la membrana; Los carotenoides tienen largas cadenas

hidrocarbonadas con enlaces sencillos (C—C) y dobles (C=C), alternados en un

sistema de dobles enlaces conjugados. En general, los carotenoides son de color

amarillo, rojo, marrón o verde y absorben luz en la región azul del espectro. Los

tipos y estructuras de los carotenoides de diversos fototrofos están bien estudiados.

Estos pigmentos son los responsables de los colores brillantes rojo, rosa, verde,

amarillo o marrón que se observan en diferentes especies de fototrofos

anoxigénicos. Los carotenoides se asocian estrechamente con la clorofila en la

membrana fotosintética, pero no participan directamente en las reacciones de

fotofosforilación. Sin embargo, pueden transferir energía a los centros de reacción

para ser usada en la fotofosforilación, del mismo modo que la energía luminosa

capturada directamente por la clorofila. Los carotenoides actúan también como

agentes fotoprotectores. Con frecuencia, la luz brillante resulta perjudicial para las

células porque causa reacciones fotooxidativas que producen oxígeno tóxico, como

por ejemplo oxígeno singlete, 1O2, y pueden destruir el propio aparato fotosintético.

Los carotenoides atenúan esas especies de oxígeno tóxico y absorben buena parte

de la luz perjudicial. La función fotoprotectora de los carotenoides constituye una

ventaja evidente, puesto que los organismos fototrofos tienen que vivir en presencia

de luz.

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BACTERIAS ANOXIGENICAS FOTOTROFICAS

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FICOBILINAS Y FICOBILISOMAS

Los cloroplastos de cianobacterias y algas rojas contienen fícobiliproteínas, que son

los principales pigmentos captadores de luz en estos organismos. Las

fícobiliproteínas son de color rojo o azul y son cadenas tetrapirrólicas abiertas

acopladas a proteínas. El pigmento rojo ficoeritrina presenta absorción máxima de

luz a longitudes de onda próximas a 550 nm, mientras que el pigmento azul

ficocianina presenta absorción máxima a 620 nm. Un tercer pigmento, llamado

aloficocianina, absorbe a 650 nm.

Las ficobíliproteínas se presentan como agregados de alto peso molecular, llamados

ficobilisomas, unidos a las membranas fotosintéticas. Los ficobilisomas están

construidos de modo que las moléculas de aloficocianina establecen contacto físico

con la membrana fotosintética y están rodeados por moléculas de ficocianina y

ficoeritrina. Estos últimos pigmentos absorben luz de longitud de onda más corta (de

mayor energía) y transfieren la energía a la aloficocianina, que está estrechamente

ligada a la clorofila del centro de reacción. Los ficobilisomas permiten, por tanto, un

transporte eficiente de la energía desde los complejos de biliproteínas a la clorofila a,

permitiendo el crecimiento de las cianobacterias incluso a bajas intensidades

luminosas. De hecho, el contenido celular de ficobilisomas aumenta cuando la

intensidad luminosa disminuye, de modo que las células que crecen a intensidades

más bajas son las que más ficobilisomas contienen. La función concentradora de luz

de los pigmentos accesorios, como los carotenoides y las ficobilinas, constituyó una

ventaja para el organismo. La luz solar se distribuye por todo el rango del espectro

visible, pero las clorofilas sólo absorben bien en una parte de este espectro. Con los

pigmentos accesorios el organismo es capaz de capturar más luz.

CAPÍTULO VI. FOTOSÍNTESIS ANOXIGÉNICA

En todos los organismos fototrofos, el proceso de síntesis de ATP mediante la luz

comprende un transporte de electrones a través de una secuencia de

transportadores de electrones. Estos transportadores se disponen en la membrana

fotosintética formando series que van desde aquellos que muestran un potencial de

reducción electronegativo a los que tienen un potencial más electropositivo.

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BACTERIAS ANOXIGENICAS FOTOTROFICAS

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ESTRUCTURA DEL APARATO FOTOSINTÉTICO DO LAS BACTERIAS

ROJAS

El aparato fotosintético de las bacterias rojas se localiza en sistemas membranosos

intracitoplasmáticos de morfología variada. Un tipo observado comúnmente consiste

en vesículas membranosas (cromatóforos) o lamelas. El aparato fotosintético consta

de cuatro complejos pigmento-proteína unidos a membrana, más un complejo de

ATPasa que permite la síntesis de ATP a expensas de una fuerza protón motriz.

Tres de los cuatro complejos, el centro de reacción, el componente captador de

luz I y el componente captador de luz II, son específicos de la fotosíntesis; el

cuarto complejo del aparato fotosintético, el complejo del citocrorno bc1 es común

tanto a la respiración como a la fotosíntesis.

Mediante difracción de rayos X, se ha cristalizado el centro de reacción fotosintético

de las bacterias rojas y se ha determinado su estructura hasta una resolución de ni-

vel atómico. Los centros de reacción de las bacterias rojas contienen tres

polipéptidos designados como subunidades L, M y H. Estas proteínas están firme-

mente embebidas en la membrana fotosintética y la atraviesan varias veces. Los

polipéptidos L, M y H unen el complejo del centro fotoquímico de reacción, que

consta de dos moléculas de bacteroclorofila a, denominadas el par especial, dos

moléculas adicionales de bacteríoclorofila a, cuya función es desconocida, dos mo-

léculas de bacteriofeofitina (bacteríoclorofila a menos su átomo de magnesio), dos

moléculas de quinona y dos moléculas de un carotenoide. Todos los componentes

del centro de reacción se integran de tal modo que pueden interaccíonar en

reacciones rápidas de transferencia de electrones que conducen finalmente a la

producción de ATP.

FLUJO FOTOSINTÉTICO DE ELECTRONES EN LAS BACTERIAS ROJAS

Recordemos que el centro de reacción fotosintético está rodeado por moléculas

antena de bacterioclorofila a captadoras de luz, que funcionan canalizando la

energía luminosa hacia el centro de reacción. La energía de la luz se transfiere

desde la antena al centro de reacción en paquetes llamados excitones, estados

electrónicos móviles que se desplazan con alta eficacia desde la antena al centro de

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BACTERIAS ANOXIGENICAS FOTOTROFICAS

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reacción. La fotosíntesis comienza cuando la energía de un excitón alcanza las

moléculas del par especial de bacterioclorofila a. La absorción de la energía excita

el par especial con virtiéndolo en un fuerte donador de electrones, con un potencial

de reducción muy bajo (E0‘). Tras la producción de este fuerte donador de

electrones, se llevan a cabo los pasos siguientes en el flujo fotosintético de

electrones para conservar la energía liberada cuando los electrones son

transportados a través de la membrana desde los portadores de bajo E0' a los de

elevado E0'.

Antes de la excitación, el centro de reacción denominado P870 tiene un E0' de cerca

de +0,5 V; tras la excitación, el potencial se aproxima a -1,0 V. El electrón excitado

dentro de P870 pasa a reducir una molécula de bacteriofeofitina del centro de

reacción. Esta transición es extraordinariamente rápida, con una duración de tres

billonésimas de segundo (3 X 1012s). Una vez reducida, la bacteriofeofitina a reduce

primero varias quinonas intermediarías y finalmente una quinona del depósito de

quinónas, que se encuentran en la membrana. Esta transición es también muy

rápida, dura menos de una mil millonésima de segundo. En comparación con las

que ocurren en el centro de reacción, las reacciones posteriores de transporte de

electrones son más bien lentas, del orden de micro o milisegundos. Desde la

quinona, los electrones se transportan en la membrana a través de una serie de fe-

rro-sulfoproteínas y citocromos, volviendo finalmente al centro de reacción, las

proteínas clave en este transporte son el citocromo bc1, y el citocromo c2. El

citocromo c2 es periplasmático y sirve como transportador de electrones entre el

complejo bc1, unido a membrana, y el centro de reacción.

FOTOFOSFORILACIÓN

La síntesis de ATP durante el flujo fotosintético de electrones es el resultado de la

formación de un gradiente electroquímico de protones o fuerza protón motriz,

generada por la salida de protones durante el transporte de electrones, y la

actividad de ATPasas que acoplan la desaparición del gradiente de protones a la

formación de ATP. La serie de reacciones se completa cuando el citocromo c2

dona un electrón al par espedal de bacterioclorofilas, volviendo estas moléculas a

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BACTERIAS ANOXIGENICAS FOTOTROFICAS

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su estado original de potencial (E0́ = +0,5 V). Entonces, el centro de reacción es

capaz de absorber nueva energía repitiendo el proceso. Este método de producir

ATP se llama fotofosforilación cíclica, porque los electrones se mueven repetida-

mente en círculo. La fotofosforilación cíclica se parece a la respiración en la que el

flujo de electrones a través de la membrana establece una fuerza protón motriz.

Sin embargo, a diferencia de la respiración, en la fotofosforilación cíclica no hay

entrada neta ni consumo de electrones; los electrones viajan simplemente por

una vía cerrada. Como en el flujo respiratorio de electrones el complejo del citocro-

mo bc1, interacciona con el depósito de quinonas durante el flujo fotosintético de

electrones como medio fundamental para establecer la fuerza protón motriz que

alimenta la síntesis de ATP.

CAPÍTULO VII. GENÉTICA DE LA FOTOSÍNTESIS BACTERIANA

Las bacterias fotosintéticas rojas son procariotas Gram negativos, y algunas

especies son muy adecuadas para la manipulación genética. Especies del género

Rhodobacter, especialmente R. capsulatus y R sphaeroides, han sido los

principales sistemas de investigación genética en fotosíntesis bacteriana. En R.

capsulatus, la mayor parte de los genes que intervienen en la fotosíntesis están

agrupados en varios operones que ocupan en el cromosoma una región de 50 kb

llamada agrupación (cluster) génica fotosintética. Estos genes codifican

proteínas implicadas en la biosíntesis de bacterioclorofilas (genes bch) y la de

carotenoides (genes crt), así como la de polipéptidos que unen moléculas de

pigmentos de los centros de reacción con los complejos captadores de luz (genes

puf y puh).

Como es de suponer, en las bacterias fototrofas la síntesis de las proteínas que se

unen a la bacteríoclorofila, carotenoides y pigmentos tiene que ser un proceso muy

coordinado. Cuando se sintetizan nuevos complejos fotosintéticos deben

encontrarse dentro de la célula las proporciones correctas de cada uno de los

componentes para el ensamblaje final. El análisis bioquímico y genético de la

fotosíntesis en Rhodobacter capsulatus ha demostrado la existencia de esta

expresión coordinada de los componentes fotosintéticos debido a que los operones

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BACTERIAS ANOXIGENICAS FOTOTROFICAS

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se disponen formando superoperones. Los transcritos de los operones

relacionados con la biosíntesis de pigmentos (bch y crt), en vez de terminar

al final de un operón, se alargan por los promotores y genes estructurales

que codifican los polipéptido de los complejos fotosintéticos, constituyendo

largos transcritos que codifican más de una proteína. Los superoperones

de la fotosíntesis permiten así la transcripción de muchos genes

relacionados funcionalmente, cuyos productos interaccionan y forman los

complejos fotosintéticos que posteriormente se incorporan a la membrana.

La señal reguladora que controla la transcripción del agrupamiento génico

fotosintético en estos organismos es el C2. El oxígeno molecular reprime la

síntesis de pigmentos, de tal modo que la fotosíntesis en los fototrofos

anoxigénicos sólo se produce bajo condiciones anóxicas. Para el análisis

genético de la fotosíntesis de las bacterias rojas ha sido de gran ayuda la

diversidad bioenergética de las especies de Rhodobacter; además de su

capacidad para la fotosíntesis, estos microorganismos pueden crecer en la

oscuridad por respiración en presencia o ausencia de oxígeno. De esta

forma, se pueden obtener fácilmente mutantes incapaces de fotosintetizar

que se han utilizado en experimentos de intercambio genético para

caracterizar el número, organización y expresión de genes fotosintéticos.

CAPÍTULO VIII. AUTOTROFIA EN BACTERIAS ROJAS: DONADORAS

DA ELECTRONES Y TRANSPORTE INVERSO DE ELECTRONES

La formación de ATP no es suficiente para el crecimiento autotrófico de una

bacteria roja; es necesaria la formación de poder reductor (NADH o NADPH), de

manera que el C02 se pueda reducir hasta el nivel del material celular. Como se ha

mencionado anteriormente, en las bacterias rojas del azufre esto se hace

2- habitualmente con H2S, aunque también se puede emplear S0, S2O3 e incluso

Fe2+ en diferentes especies. Cuando el donador de electrones es H2S, se

almacenan glóbulos de S0 en el interior de las células. ¿Cómo reducen estas

sustancias el NAD+ a NADH?

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BACTERIAS ANOXIGENICAS FOTOTROFICAS

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3 Las sustancias reducidas como el sulfuro de hidrógeno (H2S) o el tiosulfato (S2O 2)

son oxidadas por citocromos del tipo c y sus electrones acaban en el «depósito de

quinonas» de la membrana fotosintética. Sin embargo, el E0́ de la quinona

(alrededor de 0 voltios) no es lo suficientemente negativo para reducir NAD+ (-0,32

voltios) directamente, de manera que en esas condiciones los electrones del

depósito de quinonas son forzados a retroceder, contra el gradiente

termodinámico, para reducir el NAD+ a NADH. Este proceso que consume energía

recibe el nombre de transporte inverso de electrones y está impulsado por la

energía de la fuerza protón motriz. El transporte inverso de electrones es también

el mecanismo por el cual los quimiolitotrofos obtienen su poder reductor, a menudo

de donadores de electrones E0́ extremadamente positivos.

CAPÍTULO IX. COMPARACIÓN DEL TRANSPORTE FOTOSINTÉTICO

DE ELECTRONES Y LA SÍNTESIS DE PODER REDUCTOR EN OTROS

FOTOTROFOS ANOXIGÉNICOS

Hasta aquí hemos centrado la discusión del transporte fotosintético de electrones

en las bacterias rojas. Aunque componentes similares de membranas impulsan la

foto- fosforilación en otros microorganismos fototrofos anoxigénicos, existen

diferencias en algunas de las reacciones fotoquímicas que influyen en la biosíntesis

de poder reductor. Adviértase que, en los dos últimos grupos, el estado de exci-

tación de las bacteriocloro filas del centro de reacción reside en un mucho más

negativo, y que la propia clorofila a (en las bacterias verdes), o una forma

estructural mente modificada de clorofila a llamada hidroxiclorofila a (en las

heliobacterias), está presente en el centro de reacción. Esto significa que a

diferencia de las bacterias rojas, donde la primera molécula aceptora estable (la

quinona) tiene un E0 de unos 0 voltios, el E0́ los aceptores de las bacterias verdes

y de las heliobacterias (proteínas FeS) es mucho más electronegativo que el

NADH. En las bacterias verdes, la ferredoxina (reducida por la proteína FeS) sirve

directamente como donador de electrones para las reacciones de fijación de C02

en el ciclo inverso del ácido cítrico. De esta forma, al igual que los fototrofos

oxigenicos (que se tratan a continuación), en las bacterias verdes y en las

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heliobacterias tanto el ATP como el poder reductor son productos directos de las

reacciones luminosas. Cuando el donador de electrones para la síntesis de poder

reductor en las bacterias verdes es el sulfuro, se producen glóbulos de S° igual que

en el caso de las bacterias rojas, pero los glóbulos permanecen en el exterior de

Ia célula, en vez de en el interior.

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