Anteproyecto Tesis Gardini Aprobado

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UNIVERSIDAD NACIONAL DE LA AMAZONIA PERUANA FACULTAD DE CIENCIAS BIOLOGICAS ESCUELA PROFESIONAL DE ACUICULTURA ANTEPROYECTO DE TESIS USO DE LA HARINA DE CASTAÑA, Bertholletia excelsa EN DIETAS PARA JUVENILES DEL HIBRIDO, PACOTANA Piaractus brachypomus x Colossoma macropomum (Pisces, Serrasalmidae) CRIADOS EN CORRALES. Autor : Bach. Kiss Douglas Gardini Arimuya Asesor : Dr. Luis Alfredo Mori Pinedo Institución Cooperativa : Fondo Nacional de Desarrollo Pesquero

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UNIVERSIDAD NACIONAL DE LA AMAZONIA PERUANA

FACULTAD DE CIENCIAS BIOLOGICAS

ESCUELA PROFESIONAL DE ACUICULTURA

ANTEPROYECTO DE TESIS

USO DE LA HARINA DE CASTAÑA, Bertholletia excelsa EN DIETAS PARA JUVENILES DEL HIBRIDO, PACOTANA Piaractus brachypomus ♀ x Colossoma macropomum ♂ (Pisces, Serrasalmidae)

CRIADOS EN CORRALES.

Autor : Bach. Kiss Douglas Gardini Arimuya

Asesor : Dr. Luis Alfredo Mori Pinedo

Institución Cooperativa : Fondo Nacional de Desarrollo Pesquero

Duración Estimada : 05 Meses

MADRE DE DIOS –PERÚ

2011

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I. JUSTIFICACIÓN

La región amazónica del Perú presenta excelentes condiciones para la

práctica de la piscicultura debido a su gran disponibilidad de tierra,

abundancia de agua, mercados crecientes tanto a nivel local, nacional y

extranjero; la presencia de suelos marginales para la práctica de actividades

agrícolas y forestales, en los cuales se puede realizar el cultivo de peces

mejorando el uso de la tierra, con implicancias en la generación de empleo

y renta de los pobladores locales dedicados a la actividad (GUERRA et al.,

1996).

El potencial de crecimiento de la piscicultura está basado en la habilidad

para explorar nuevas especies que puedan ser cultivadas de una manera

sostenida. De otro lado, discusiones sobre el impacto de la introducción de

especies exóticas han generado siempre la preocupación de los

conservacionistas por lo que existe un gran interés de desarrollar

tecnologías para promover el cultivo de especies nativas que reemplacen a

las exóticas o para diversificar las comúnmente cultivadas. (Pérez et al.,

2004)

Los serrasálmidos están considerados como uno de los grupos más

utilizados en piscicultura. Entre ellos, la gamitana, Colossoma

macropomum y el Paco Piaractus brachypomus que fueron adaptadas con

éxito para el cultivo en cautiverio, siendo las más indicadas para el cultivo,

por su capacidad de aprovechar diferentes tipos de alimentos y por su

rápido crecimiento.

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Hacia la década de los 90’, la investigación en nutrición de organismos

acuáticos tuvo poco énfasis en los aspectos de formulación y composición

de alimento balanceado específico para peces amazónicos serrasálmidos

tales como la gamitana, que fue cultivada con alimento comercial

formulado para pollos (15 - 17% PT), conejos (16% PT), entre otros

(LUNA, 1987).

Razón por la cual el conocimiento de los requerimientos nutricionales y

niveles de energía necesarios para peces, es de gran trascendencia en la

acuicultura por encontrarse profundamente relacionado con sus funciones

de crecimiento, reproducción y mantenimiento de otras funciones vitales

básicas (GUTIERREZ, 1999).

Una gran variabilidad en los insumos que componen las dietas, sean estas

purificadas o practicas, tasa de crecimiento, tamaño del pez y condiciones

del cultivo, son factores que influyen en el contenido de proteína necesaria

para cubrir los requerimientos mínimos de las especies (KAUSHIK, 1995

en GUTIERREZ, 1999); convirtiendo a la nutrición en uno de los factores

más importantes para la piscicultura ya que, conforme se intensifica el

sistema de cultivo cobra mayor relevancia la calidad y la cantidad de

alimento suministrado.

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Producto de esto, diversas investigaciones se vienen realizando en todo el

mundo para encontrar fuentes alternas para la substitución total o parcial de

la harina de pescado y otros insumos que son necesarias para la elaboración

de raciones. Hasta la fecha, pocos productos se utilizan a nivel comercial

por diversos motivos, tales como baja disponibilidad de los productos o

altos costos de los procesos de producción, altos niveles de antinutrientes,

bajos niveles de aminoácidos, entre otros.

En la Amazonía, existe un buen número de insumos de origen vegetal que

pueden ser utilizados como insumos alimenticios, tales como: el plátano,

yuca, umarí, pijuayo, witina, etc.

El presente trabajo está destinado a facilitar información a cerca de la

harina de Castaña en la formulación de dietas utilizadas en piscicultura, a

través del estudio del efecto de la misma en relación con el crecimiento del

hibrido Pacotana.

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II. OBJETIVOS

General:

Determinar los efectos del uso de harina de Castaña (Bertholletia

excelsa) en el crecimiento y composición corporal de juveniles del

Hibrido “Pacotana”.

Específicos:

Determinar el efecto del uso de la harina de castaña (Bertholletia

excelsa) sobre el crecimiento en peso de los juveniles del hibrido

“Pacotana”

Determinar el efecto del uso de la harina de castaña (Bertholletia

excelsa) sobre el crecimiento en longitud de los juveniles del hibrido

“Pacotana”.

Determinar el efecto del uso de la harina de castaña (Bertholletia

excelsa) sobre la composición corporal de los juveniles del hibrido

“Pacotana”.

Determinar los índices zootécnicos del proceso de cultivo de los

juveniles del hibrido “Pacotana”.

Evaluar la calidad del agua de cultivo mediante el monitoreo de los

parámetros físicos y químicos.

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III. ANTECEDENTES

WERDER & SAINT-PAUL (1977) condujeron experimentos en

Colossoma macropomum, Mylossoma sp, y Semaprochilodus

theropanura. Fueron alimentados con dietas peletizadas conteniendo

varios niveles de proteína animal (0, 25, 50, 75 y 95%). Las tres

especies testadas tuvieron preferencia en la utilización de dietas

conteniendo bajos tenores de proteína animal, en cantidades debajo de

25%.

CASTAGNOLLI (1979) citado por CAMPOS & PADILLA (1985)

menciona que la necesidad proteica en la alimentación de peces, varía

de acuerdo a la especie, hábitos alimenticios, tamaño, edad, densidad de

carga, temperatura y calidad de agua.

MACEDO (1979) empleó cuatro diferentes niveles de proteína bruta

(14, 18, 22 y 26%) y el nivel calórico en torno de 3,200 Kcal/Kg. en la

alimentación de la gamitana, Colossoma macropomum tanto en acuarios

de vidrio como en tanques de tierra. Señala que al inicio esta especie

necesita un tenor de proteína bruta de 22% y posteriormente este

porcentaje puede ser reducido a 18% sin perjudicar el crecimiento de los

ejemplares.

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CARNEIRO (1981) en un ensayo de digestibilidad, verificó que la

gamitana, Colossoma macropomum digiere mejor la fracción proteica

de los alimentos cuando la ración contiene entre 18 y 22% de este

nutriente.

DA SILVA et al. (1984) evaluaron la eficiencia del maíz (Zea mays),

14% de proteína bruta en la alimentación de alevinos de gamitana, C.

macropomum. Los peces tuvieron una ganancia de peso de 11.8% y un

crecimiento diario de 2,18 g. Además en el mismo año realizaron otro

experimento para evaluar la eficiencia de una dieta compuesta con

100% de torta de babazú (Orbignya martiana) conteniendo 24% de

proteína bruta, en el crecimiento del C. macropomum. La ganancia de

peso fue de 44.8% en el periodo de 360 días, con crecimiento de 1,54

g/día.

SAINT-PAUL (1986) evaluó la eficiencia del arroz bravo (Oryza

glumaepatula), con 0.91% de proteína bruta, sobre el desempeño en el

crecimiento de la gamitana. Los peces crecieron de 97,4 a 117,6 g. (0,5

g/día) en 43 días, con una taza de conversión alimenticia de 3,9.

Comparados con la dieta control, con 42,1% de proteína bruta, los peces

crecieron en el mismo periodo de 91,5 a 147,9 g (1,3 g/día) con una

taza de conversión de 1,5.

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CANTELMO & DE SOUZA (1986) estudiaron el efecto de raciones

balanceadas con cuatro diferentes niveles proteicos (20, 25, 30 y 35%)

en el crecimiento de juveniles de Piaractus brachypomus, no

encontrando hasta el final del periodo experimental, diferencia

significativa entre los tratamientos evaluados.

LUNA (1987) comenta que debido al aumento de la demanda, se hizo

necesario crear tecnologías de cultivo para peces nativos, de ese modo

tenemos al Colossoma macropomum que ha demostrado grandes

ventajas para el cultivo en ambientes artificiales, pudiéndose constituir

en una fuente importante en la producción de proteína animal.

ECKMANN (1987) alimento juveniles de gamitana, Colossoma

macropomum con 6 tipos de raciones conteniendo harina de pescado y

harina de sangre de vacuno en varias proporciones. El autor registró

promedios de tasas de crecimiento específico entre 1.1 a 2.5% de peso

seco /día, concluyendo que estos eran directamente proporcionales a los

niveles de proteína bruta presentes en las raciones, las cuales variaban

entre 25 y 37% como máximo.

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GOULDING et al. (1988) afirma que en la ictiofauna de la Amazonia

existe una gran diversidad de los tipos de dentición especialmente de los

carácidos, lo que posibilita la utilización de muchos tipos de alimentos.

LUNA & HERNÁNDEZ (1988) compararon dos dietas a base de maíz

(9% de PB) y la otra peletizada (14% de PB), en la alimentación natural

de Colossoma macropomum en sistema de cultivo semi-intensivo.

Observaron que la tasa de crecimiento de los peces con alimentación

natural varió entre 0,51-1,61 g/día y la conversión alimenticia de la dieta

con harina de maíz fue más eficiente que con los pellets, 1,77:1 y 2,23:1

respectivamente.

CANTELMO (1989) hace mención que el desarrollo y rentabilidad de

los cultivos depende inevitablemente de la obtención de dietas que

satisfagan los requerimientos nutricionales de las especies, a fin de

asegurar su crecimiento óptimo.

PEREIRA (1995) afirma que los niveles dietarios de proteína,

carbohidratos, lípidos, fibra y energía están despertando la atención de

los investigadores en lo que respecta a sus efectos sobre el crecimiento y

la composición corporal de los peces.

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PEZZATO (2001) probó diferentes niveles de lípidos de origen animal

y vegetal sobre el desempeño del paco, Piaractus mesopotamicus,

utilizando dietas isoproteicas (26% de PB). En las raciones

experimentales fueron aumentadas 8, 16 y 24% de grasa de origen

vegetal (aceite de soya) o grasa animal (manteca de chancho). Según

este autor, las mejores ganancias de peso y conversión alimenticia

fueron obtenidas con las raciones que contenían 16% de grasa animal, y

niveles superiores a 8% de grasa vegetal perjudican el desempeño de la

especie. El mismo autor concluye que el paco tiene la capacidad de

utilizar, con eficiencia, lípidos tanto de origen animal como vegetal,

como reserva energética o como fuente “ahorradora de proteínas”.

ROUBACH (1992) evaluó el efecto de cuatro dietas en base a frutos y

semillas de Pseudobombax munguga, Hevea spp., Oriza sativa y

Cepropia spp., sobre el crecimiento, ganancia de peso y composición

corporal de alevinos de C. macropomum, concluyendo que

Pseudobomax munguba, proporcionó una mejor ganancia de peso,

probablemente por presentar mayor porcentaje proteico (21,3% MS). El

mismo autor constató una relación directa entre la composición físico-

química de los peces con la composición de los frutos y de las semillas

que ingirieron, predominando la mayor cantidad de extracto etéreo (EE)

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en los peces que consumieron los alimentos más energéticos (Hevea

spp. y Pseudobombax munguba).

KOHLA et al. (1992) utilizando juveniles de Colossoma macropomum

para evaluar la eficiencia con que esta especie metaboliza la proteína

vegetal. Para un grupo, la fuente proteica fue la harina de pescado y, en

el segundo, la fuente proteica fue una mezcla de proteína animal y

vegetal (45:55), sin harina de pescado. Se formularon dietas con niveles

de 30 y 50% de proteína de ambas fuentes. Concluyeron que,

comparando las raciones de 30% de proteína, los peces mostraron

idéntico crecimiento. Entretanto, el crecimiento del C. macropomum

con 50% de proteína vegetal fue mayor cuando la dieta no contenía

harina de pescado. Estos resultados son semejantes a la alimentación

natural de esta especie, que tiene preferencias por frutos y semillas.

MORI (1993) evaluó el crecimiento de alevinos de Colossoma

macropomum, comparando una ración patrón con tres niveles de

substitución de harina de maíz, Zea mays por harina de pijuayo, Bactris

gasipaes en el Brasil, y concluyó que no hubo diferencias significativas

(P>0.05) en el crecimiento, ganancia de peso, ni en la composición

corporal de los peces entre las cuatro raciones estudiadas.

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IV. MATERIALES Y METODOS

4.1. UBICACIÓN GEOGRÁFICA DEL ÁREA DE ESTUDIO

El presente trabajo se desarrollará en el Centro de Acuicultura la

Cachuela (FONDEPES) ubicado en el Sector de la Cachuela km 1.5

localizado en las coordenadas geográficas UTM 479435 y 8611464 a

173 msnm de la Ciudad de Puerto Maldonado, Distrito de Tambopata,

Provincia de Tambopata, Región de Madre de Dios.

4.2. DISEÑO EXPERIMENTAL

Para este trabajo se utilizarán 3 tratamientos con 3 repeticiones cada

una, dando un total de 9 unidades experimentales (Corrales). Los

resultados serán evaluados a través del análisis de varianza, por la

prueba de “F”, en el caso de existir significancia en esta prueba, será

aplicada la prueba de comparación de los promedios (Prueba de

Tuckey) a nivel de 5% de probabilidad, de acuerdo con Banzatto &

Kronka (1989).

4.3. OBTENCIÓN DE LA HARINA DE CASTAÑA

El proceso de elaboración de la harina de Castaña se realizará dentro de

las instalaciones del Centro de Acuicultura La Cachuela (FONDEPES).

Las semillas de Castaña una vez descapsuladas serán distribuidas en

planchas de calamina y expuestas al sol para su secado, posteriormente

serán molidos con la ayuda de un molino manual de gramos. El

producto final (harina) será almacenada en bolsa para su posterior

utilización.

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4.4. RACIONES EXPERIMENTALES

Los insumos para la elaboración de las raciones experimentales serán

utilizados en forma de harina. Se hará uso de la maquina peletizadora

con dados de criba de 4mm de diámetro para peletizar las raciones. Se

elaborará la cantidad necesaria de alimento para cubrir las necesidades

alimenticias por espacio de 120 días. Las raciones experimentales

serán almacenadas en sacos de polietileno para protegerlo de la

humedad y conservarlas a temperatura ambiente. A continuación se

muestra la composición bromatológica de los insumos a utilizar en la

elaboración de las raciones.

Tabla. 1 Composición Bromatológica de los Insumos a Usarse en la Formulación de las Raciones Experimentales

INSUMOS HUMEDAD

(%)

PROTEINA

BRUTA (%)

ESTRACTO

ETÉREO(%)

FIBRA

BRUTA

(%)

CENIZA

(%)

CHO

(%)

Harina de pescado

12.30 54.06 9.24 1.51 22.92 -

Harina Castaña

0.8 14.0 59.0 1.2 2.1 15.7

Polvillo de arroz

10.40 12.50 13.00 12.00 9.40 42.70

Harina de maíz

12.55 8.68 3.84 2.17 1.78 70.90

Las raciones experimentales estarán s por los siguientes tenores proteicos:

R1 20%; R2 22% y R3 25%. La composición porcentual de las raciones

experimentales se muestra en la siguiente tabla.

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Tabla 2. Composición Porcentual de las Raciones Experimentales

INSUMOSTRATAMIENTOS (%)

R1=20% PB R2=22% PB R3=25% PB

Harina de castaña 30 35 40

Harina de pescado 22 25 30

Polvillo de arroz 23 20 20

Harina de maíz 25 20 10

4.5. FRECUENCIA ALIMENTICIA

Los peces a utilizarse en este experimento serán juveniles del hibrido

de Pacotana, provenientes del mismo Centro (FONDEPES). La

alimentación de los juveniles se efectuará 3 veces por día a razón del

6% de la biomasa de cada Corral.

4.6. DENSIDAD DE SIEMBRA

En cada corral se tendrá una densidad de 06 peces con peso promedio

inicial de 150 g. y una longitud promedio inicial de 15 cm., los cuales

serán sometidos a un proceso de adaptación a las condiciones

experimentales por un lapso de 3 días.

4.7. UNIDADES EXPERIMENTALES

Se construirán 9 corrales experimentales de 3.0m x 2.0m, contará con

un armazón de tubos de PVC de 1’ cubiertas por mallas de plástico de

2 mm de cocada.

Los corrales se construirán dentro del estanque formando 3 hileras de

3 unidades, cada cual estará separada con mallas plásticas sujetas a

maderas estacas prendidas en el fondo del estanque. Cada corral

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recibirá un tipo de ración que fue definida al azar, tal como se muestra

en la figura siguiente:

Tabla 3. Distribución de los corrales experimentales

T2 T3 T1

T3 T1 T2

T1 T2 T3

4.8. BIOMETRIA DE LOS PECES

La primera evaluación biométrica se tomará luego del periodo de

adaptación de los peces, como son: peso total (g) y longitud total

(cm.), para luego distribuirlos con promedios similares en cada corral.

Las evaluaciones biométricas estarán espaciadas a intervalos de 28

días. (Dejando de alimentarlos el día del muestreo continuando con la

alimentación normal al día siguiente). Se capturara a los peces del

corral experimental con redes pequeñas y colocados en bandejas para

la toma de los datos biométricos, pasándolos luego a una bandeja

conteniendo una solución salina (32g. de Sal disueltos en 20 L de agua

+ 1ml de formol comercial + 5ml de permanganato de potasio) por un

lapso de tiempo de 3 minutos, de la misma forma se procederá a

desinfectar todos los materiales utilizados en el muestreo como

tratamiento preventivo de hongos y bacterias; y una vez realizada la

desinfección de los peces, estos serán devueltos a sus respectivos

corrales.

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4.9. FACTORES FISICO-QUIMICOS DEL AGUA

Los factores físico-químicos del agua serán medidos dentro de 3

corrales tomados al azar, estos para determinar su influencia en el

desarrollo y crecimiento de los peces. Los parámetros serán los

siguientes: Temperatura, Oxígeno disuelto y pH sarán medidos

diariamente mientras que, CO2, Alcalinidad, transparencia, Dureza y

Nitratos serán monitoreados cada 15 días. Todos estos parámetros

serán medidos con aparatos específicos.

4.10. ANÁLISIS BROMATOLÓGICOS

Los análisis bromatológicos se realizarán en el Laboratorio de Control

de Calidad de los Alimentos, de la Facultad de Agro Industrial de la

UNAMAD, Los análisis bromatológicos servirán para calcular los

tenores de proteína bruta (PB), extracto etéreo (EE), o grasa, extractos

no nitrogenados o carbohidratos (ENN), fibra bruta (FB), material

mineral (MM), y humedad (HU) en el ingrediente a probar; en las

raciones al inicio del experimento; y en una muestra de peces de cada

tratamiento al finalizar el experimento.

Proteína Bruta (PB)

Se determinará el tenor de nitrógeno total por el método de Micro-

Kjeldahl usando 6.25 como factor de conversión. De esta forma el tenor

de proteína determinado para cada análisis será:

PB = tenor de N (%) x 6.25

Extracto Etéreo (EE)

Se determinará en extractor de Soxleth, a través de la extracción

continua con éter de petróleo.

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Fibra Bruta (FB)

Se determinará por digestión ácida (H2SO4 1.25N) y alcalina (NaOH

1.25N), secando en estufa a 105º C por tres horas e incinerado a 550º C

en mufla durante una hora.

Material Mineral (MM)

Se realizará mediante las muestras en la mufla a una temperatura de 550º

C por tres horas.

Humedad (HU)

Se determinará con la pérdida de peso de pequeñas cantidades de

material, cuando se sometan a una temperatura de 105º C hasta

conseguir un peso constante.

Extracto No Nitrogenado (ENN)

Se determinará mediante la siguiente formula:

ENN = 100-(PB+ EE+ FB+ MM +HU)

4.11. ÍNDICES ZOOTÉCNICOS

Para verificar la ganancia de longitud de peso de los peces y su

aprovechamiento del alimento proporcionado se considerarán los

siguientes parámetros:

Índice Conversión Alimenticia Aparente (I.C.A.A)

Se calculará según la formula descrita por Castell & Tiews (1980).

I.C.A.A = Cantidad de alimento consumido

Ganancia de peso

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Ganancia de peso (G.P)

Se determinará de la siguiente manera:

G.P = peso promedio final – peso promedio inicial

Incremento de peso (I.P %)

Se obtendrá multiplicando por cien el resultado de la división de la

ganancia de peso entre el peso inicial.

I.P % = 100 (ganancia de peso/peso inicial)

Coeficiente de variación de peso (C.V.P %)

Se obtendrá multiplicando por cien el resultado de la división de la

desviación estándar del peso final entre el peso promedio final.

C.V.P % = 100 (desviación estándar del peso final/peso promedio

final)

Tasa crecimiento específico (T.C.E)

Estará expresada por el peso y la longitud como porcentaje del

crecimiento/día con respecto al peso y a la longitud inicial.

T.C.E = (Ln.Pf – Ln.Pi) x 100 Tiempo (días)

Supervivencia

S (%) = Nº Cosechado x 100 Nº Sembrado

Índice Hepatosomático (IHS)

IHS = Peso del hígado x 100 Peso total

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V. CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES

ACTIVIDADES/MESES 1 2 3 4 5

Revisión de Literatura x x x x x

Construcción de Corrales x

Formulación de raciones x

Análisis Bromatológicos x

Adaptación de los peces a las condiciones

experimentales

x

Crianza de los peces x x x x

Muestreos Biológicos x x x x

Monitoreo de los Factores Físico-Químicos

del Agua.

x x x x

Análisis de los datos x x x x

Redacción de la tesis x

Sustentación de tesis x

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VI. PREPUESTO

Nº PARTIDA DESCRIPCION COSTO

22 Vestuario

01 pares de botas

01 capas para lluvia

01 gorra

01 camisas (manga larga)

15.00

20.00

15.00

25.00

29

Insumos para La

preparacion de

Alimento

Harina de Castaña

Harina de pescado

Harina de maíz

Torta de soya

Polvillo de arroz

40.00

80.00

40.00

30.00

30.00

30Materiales de construcción

72 m de malla plástica

36 listones de madera

aserrada

1 ½ Kg clavos sin cabeza

60.00

126.00

8.00

45

Bienes de consumo

Adquisición de peces 115.00

20

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49 Materiales de escritorio

02 millares de papel bond

80 gr. A4

06 lapiceros

02 borradores de goma

01 Kits para análisis de

agua

04 rollos de película x 36

80.00

6.00

2.00

80.00

1500.00

60.00

50Materiales de campo

05 libretas de campo

01 balanza

01 ictiometro milimetrado

06 bandejas de 10 l. c/ u

10.00

10.00

50.00

90.00

55

Otros servicios de

terceros

Revelado de fotos

Servicio de impresión

Fotocopiado

Servicio de encuadernado

130.00

200.00

150.00

150.00

TOTAL 3122.00

21

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VII. REFERENCIA BIBLIOGRAFICA

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