6. Distribución de Anastrepha en Perú

“Distribución Geográfica del Complejo Anastrepha spp. Schiner (Diptera: Tephritidae)

“Moscas de la fruta” en Perú”

Blg. NORMA GLADYS NOLAZCO ALVARADOEspecialista en Taxonomía de Moscas de la Fruta

Laboratorio de EntomologíaUnidad del Centro de Diagnóstico de Sanidad Vegetal (UCDSV)

Responsable del Área de Desarrollo de Métodos Unidad del Centro de Producción de Moscas de la Fruta (UCPMF)

Servicio Nacional de Sanidad Agraria (SENASA)LA MOLINA - PERÚ

Ministerio de Agricultura

S E N A S AServicio Nacional de Sanidad Agraria Perú

El Perú tiene condiciones óptimas para convertirse en un gran productor y exportador de frutas, por contar con condiciones favorables para una fruticultura próspera y diversificada.

La diversidad de climas y zonas ecológicas para la producción hortofrutícola, hace propicia la proliferación de las “Moscas de las Frutas”, cuyo ciclo biológico resulta ininterrumpido, a causa de la variedad de hospederos de diferente ciclo vegetativo que fructifican todo el año.

Es necesario conocer que especies predominan, zona ecológica y proporción en que se encuentran; Los trabajos taxonómicos en Perú, de Korytkowski (2001) y otros autores han sido producidos principalmente a través de colectas de especimenes en las actuales redes de trampeo y muestreo de frutos que efectúa el SENASA.

Intr

od

ucció

n Ministerio de Agricultura

S E N A S A Servicio Nacional de Sanidad Agraria

Perú

Blga. Norma Nolazco Alvarado

Anastrepha spp. Schiner Ceratitis capitata (Wiedemann)

MOSCAS DE LA FRUTA



Perú

GÉN

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ESPECIES DE MOSCAS DE LA FRUTA :

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Perú

Ceratitis capitata

Anastrepha distincta

Anastrepha fraterculus

Anastrepha serpentinaAnastrepha grandis

Anastrepha striata

Anastrepha chiclayae

Anastrepha obliqua

Anastrepha punensisAnastrepha kuhlmanni Anastrepha barnesi

ANASTREPHA EN PERÚ:Esp

ecie

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Anastrepha alveata Stone, 1942 Anastrepha leptozona Hendel, 1914

Anastrepha atrox (Aldrich, 1925) Anastrepha macrura Hendel, 1914

Anastrepha bahiensis Lima, 1937 Anastrepha manihoti Lima, 1934

Anastrepha barnesi Aldrich, 1925 Anastrepha montei Lima, 1934

Anastrepha chiclayae Greene, 1934 Anastrepha nigripalpis Hendel, 1914

Anastrepha cryptostrepha Hendel, 1914 Anastrepha obliqua (Macquart, 1835)

Anastrepha curitis Stone, 1942 Anastrepha ornata Aldrich, 1925

Anastrepha dissimilis Stone, 1942 Anastrepha pickeli Lima, 1934

Anastrepha distans Hendel, 1914 Anastrepha pseudoparallela (Loew, 1873)

Anastrepha distincta Greene, 1934 Anastrepha schultzi Blanchard, 1938

Anastrepha fraterculus (Wiedemann, 1830) Anastrepha serpentina (Wiedemann), 1830

Anastrepha freidbergi Norrbom, 1993 Anastrepha shannoni Stone, 1942

Anastrepha grandis (Macquart, 1846) Anastrepha steyskali Korytkowski, 1975

Anastrepha hermosa Norrbom, 1988 Anastrepha striata Schiner, 1868

Anastrepha kuhlmanni Lima, 1934 Anastrepha tecta Zucchi, 1979

Anastrepha lambda Hendel, 1914 Anastrepha turicai Blanchard, 1961

Anastrepha lanceola Stone, 1942 Anastrepha willei Korytkowski, 2001



Perú




Perú

Esp

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SENASAServicio Nacional de Sanidad Agraria

Perú



Perú



Perú

Hospedero: Al parecer exclusivamente,

viven en frutos de Pasiflorácea.

Distribución:

Es común en la Costa norte del Perú. Reportada en

México, Panamá, Venezuela, Ecuador y

Argentina

Blga. Norma Nolazco



Perú

An

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Genitalia masculina, con

lámina del surstyli redondeado.

Alas con área hialina completa, bandas C, S y V separadas.

Presentan subscutellum y mediotergito uniformemente

anaranjado.

Aculeus ahusado, provisto de gran número

de dientes pequeños, de 2 a

2.35 mm.Blga. Norma Nolazco



Perú

An

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yae



Perú



Perú



Perú



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Perú



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú

Hospedero: Probablemente todas las

especies de Inga.

Distribución:Es una de las especies

más frecuentes y comunes en trampas alimenticias especialmente en zonas

de Costa y Selva del Perú.

Blga. Norma Nolazco AlvaradoAn

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Perú



Perú



Perú



Perú

Genitalias masculinas con surstyli con la base ancha

y angosto en la parte apical.

Presenta manchas oscuras (nunca intensamente negras) en el mediotergito y nunca en

el subscutellum, lo que permite diferenciarla de A.

fraterculus y A. schultzi.

Aculeus delgado de 2.1 a 2.9

mm.

Blga. Norma Nolazco AlvaradoAn

astr

ep

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Perú



Perú



Perú

Hospedero: Está estrechamente

relacionada con frutos de Cucurbitaceae.

Distribución:Está distribuida en la

costa norte, valles interandinos y

vertientes andinas de la zona selvática.

Blga. Norma Nolazco

An

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Perú



Perú



Perú



Perú

Ausencia de área hialina costal y con banda S incompleta así como la banda V apenas definida en su brazo interno.

Aculeus, casi paralelos hasta

el ápice.Genitalia masculina con lámina de los surstyli amplia y prensisetae ubicada más cerca del ápice que de la base. Blga. Norma Nolazco

An

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Perú



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú

Hospedero: Infestan mango, a altitudes mayor a 1,500-2,000 infesta Psidium guajava. Es polífaga.

Distribución:Es una especie considerada

como la de mayor importancia y más amplia distribución geográfica.


An

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ep

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Perú



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú

Genitalia masculina con el surstyli ancho en forma paralela.

El subscutellum con franjas negruzas lateralmente, el

mediotergito castaño oscuro lateral o manchas ausentes.

Longitud del aculeus de 0.20 a 0.28 mm con dientecillos en los 2/3

apicales.Blga. Norma Nolazco Alvarado

An

astr

ep

ha

frate

rcu

lus



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú

Hospedero:

Muy estrechamente relacionada con plantas de

Anacardiaceae y probablemente sus

hospederos nativos han sido especies de Spondias;

aunque actualmente es considerada una especie

polífaga.

Distribución:

Es una de las especies más comunes, de amplia

distribución.




Perú

An

astr

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Perú



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú

Puede diferenciarse de A. fraterculus por presentar

manchas débilmente oscurecidas y restringidas a los lados del mediotergito, nunca en el subscutellum.

Ala generalmente con las bandas C, S y V completas,

sin área hialina, suele existir unión entre la banda S y V.

El aculeus presenta dientes grandes

La genitalita masculina presenta la lámina de los surstyli casi paralelos con

una ligera sinuosidad interna y borde casi romo.




Perú

An

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Perú



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú

Hospedero:

Está estrechamente relacionada con gran número

de plantas de la familia Sapotaceae, donde se

alimenta de la pulpa y sólo ocasionalmente afecta a plantas de otras familias.

Distribución:

Está ampliamente distribuida desde el Sur de Estados Unidos hasta el Norte de

Argentina.

Blga. Norma Nolazco



Perú

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tin

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Perú



Perú



Perú



Perú

Abdomen castaño o castaño-rojizo con una

marca media amarilla en forma de “T”.

Ala con banda S conectada a la banda C en la vena R4+5.

Longitud del aculeus: 2.8 – 3.7 mm. Punta de 0.4 mm

de longitud con mitad apical finamente dentada.

Blga. Norma Nolazco



Perú

An

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Perú



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú

Hospedero: Es muy estrechamente

relacionada a Myrtaceae del género Psidium

“guayaba”, por cuyo fruto parece competir con A.

fraterculus.

Distribución:Reportado en Piura,

Ancash, Loreto, Ucayali, Junín y Madre de Dios.




Perú

An

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Perú



Perú



Perú



Perú



Perú



Perú

Las hembras presentan el 7mo. sintergosternito corto y grueso, igual que el aculeus es romo y

constricto hacia el extremo.Se caracteriza porque presenta escuto

con franjas oscuras unidas en el margen posterior para formar una “U”.

El macho presenta surstyli externo con lóbulo mediolateral redondeado y con el

extremo apical recurvado posteriormente.




Perú

An

astr

ep

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tria

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Toma y Envío de Material Biológico para la Identificación Taxonómica de Moscas de la

Fruta



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00

MÉTODO DE ENSAYO: IDENTIFICACIÓN TAXONÓMICA DE INSECTOS

CAPTURADOS EN TRAMPAS OFICIALES DE MOSCAS DE LA FRUTA

MET-UCDSV/Ent-003

Unidad del Centro de Diagnóstico de Sanidad

VegetalOFICINA DE CENTROS DE DIAGNÓSTICO Y PRODUCCIÓN


Perú

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PROCEDIMIENTO: RECEPCIÓN, CODIFICACIÓN, EJECUCIÓN DEL

ENSAYO Y EMISION DE RESULTADOS DE MOSCAS DE LA FRUTA

PRO-UCDSV/Ent-001




Perú

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00

INSTRUCTIVO DE TRABAJO: EXTRACCIÓN Y MONTAJE DE GENITALIAS DE

MOSCAS DE LA FRUTA

ITR-UCDSV/Ent-005




Perú

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OFICINA DE CENTROS DE DIAGNÓSTICO Y PRODUCCIÓN

Unidad del Centro de Diagnóstico de Sanidad Vegetal

PRO-UCDSV/Ent-001

PROCEDIMIENTO: RECEPCIÓN, CODIFICACIÓN, EJECUCIÓN DEL

ENSAYO Y EMISION DE RESULTADOS DE MOSCAS DE LA FRUTA

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1. OBJETIVOEl presente documento describe el procedimiento de recepción, codificación, identificación, conservación post-identificación y emisión de resultados de identificación taxonómica de moscas de la fruta y otros relacionados.

2. ALCANCEAplica a todas las muestras recibidas para identificación taxonómica capturadas en trampas de la Red Oficial de Monitoreo de moscas de la fruta y Red de Vigilancia de Especies Exóticas A-1, recibidas de usuarios internos y externos.


Perú


Trampa McPhail

Proceso de colocación de una trampa McPhail sobre un árbol de mango

Proceso de cebado de una trampa McPhail

Proceso de servicio de una trampa McPhail

El contenido de la trampa se viertea un envase con alcohol al 70 %

Tom

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Perú


Cada envase debe ser rotulado y con la información

completaLos envases

de plástico se colocan

dentro de una caja de cartón

grueso.

Tener tapa hermética y

de preferencia

ser de plásticoLa muestra se

pone dentro de una bolsa de papel y luego

una bolsa plástica. Si la

muestra posee un código de

origen, indicarla.

Si se cuenta con bolitas de tecnopor,

colocarla, lo ideal es que los frascos que son enviados queden cubiertos

por éstas.



Perú

En

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6.1. Verificación previa de la solicitud y muestras para

identificación taxonómica de moscas de la fruta. Las muestras son verificadas antes de su recepción por el Técnico

del Área de Recepción.

Usuario Interno: Las muestras deben cumplir lo siguiente:

ITR-UCDSV/Ent-001: Toma y envío de insectos, ácaros y moluscos con fines de identificación

Directiva General Nº 012-2001-SENASA-DGSV/PNMF Oficio o Carta de la Dirección Ejecutiva solicitante REG-UCDSV/Ent-005: Ficha de Envío de Material Biológico (FEM)

llenada Envases de plástico, tapados, etiquetados, embalados. FEM c/firmas, sellos, número de FEM.

* Si falta información, 02 días p/subsanación.PR

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Perú


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Perú

6.2. Causales de rechazo de una muestra de moscas de la fruta.

6.3 Recepción de envases con especimenes de moscas de la fruta.

6.4 Codificación de la muestra.

6.5 Envío de muestra al Laboratorio de Entomología.

6.6 Preparación de envases para conservación pre-identificación.

6.7 Ejecución del ensayo.

Con

serv

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Iden

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Perú

La identificación taxonómica se realiza según:

MET-UCDSV/Ent-003: Identificación Taxonómica de insectos capturados en trampas oficiales de moscas de la fruta;

MET-UCDSV/Ent-001: Identificación de insectos con preparaciones no microscópicas;

ITR-UCDSV/Ent-005: Extracción y montaje de genitalias de Moscas de la fruta


OFICINA DE CENTROS DE DIAGNÓSTICO Y PRODUCCIÓN


Vegetal

MET - UCDSV /Ent-003

MÉTODO DE ENSAYOIDENTIFICACIÓN TAXONÓMICA DE

INSECTOS CAPTURADOS EN TRAMPAS OFICIALES DE MOSCAS DE LA FRUTA

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5.4. PROCEDIMIENTO5.4.1. Extracción de especimenes e identificación preliminar5.4.2. Identificación de especimenes5.4.3. Extracción y Montaje de genitalias femeninas y masculinas5.4.4. Montaje y preservación de insectos5.4.5. Etiquetado5.4.6. Incorporación de material biológico a la Colección Referencial de Moscas de la Fruta

1. OBJETIVO: Describe el proceso de identificación taxonómica de especies de Anastrepha “Moscas de la Fruta” y otros grupos relacionados.

2. CAMPO DE APLICACIÓN: Todos las muestras recibidas para identificación

taxonómica capturadas en trampas de la Red Oficial de Monitoreo de moscas

de la fruta y Red de Vigilancia de Especies Exóticas A-1.

MET-U

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03



Perú


Perú


OFICINA DE CENTROS DE DIAGNOSTICO Y PRODUCCIÓN


Vegetal

ITR-UCDSV/Ent-005

INSTRUCTIVO DE TRABAJO: EXTRACCIÓN Y MONTAJE DE GENITALIAS DE

MOSCAS DE LA FRUTA

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6.2. Metodología6.2.1. Hidratación de especimenes6.2.2.Extracción y montaje de genitalias femeninas

6.2.3. Extracción y montaje de genitalias masculinas

ITR

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00

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Perú

6.8 Ingreso de Información a la base de datos del SIIMF

Los resultados se registran en REG-UCDSV/Ent 005: FEM, además de sellar y firmar en el recuadro de Taxonomía y Sistemática y el código de identificador.

También se ingresan al SIIMF, si hubiera error en la ficha del sistema, entonces la FEM se devuelve y se informa vía e-mail al Responsable de Mosca de la Fruta.



Perú

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Anastrepha chiclayae X X X X X X X X

Anastrepha dissimilis X X X X

Anastrepha distincta X X X X X X X X X X X X X X X X X X X

Anastrepha fraterculus X X X X X X X X X X X X X X X X X X X

Anastrepha grandis X X X X X X X X X X

Anastrepha kuhlmanni X X X* X

Anastrepha lanceola X X X

Anastrepha leptozona X X X X X

Anastrepha macrura X* X X X* X X

Anastrepha manihoti X X X X X X X X

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Anastrepha obliqua X X X X X X X X X

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Anastrepha pickeli X X X

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Anastrepha striata X X X X X X X X X X X

Anastrepha tecta X

Anastrepha willei X

Anastrepha sp. X X X X X X X X X X X X X



Perú

Fuente: TXS-NNA/Laboratorio de Entomología/UCDSV/SENASA – Diciembre 2007* Primer Reporte para el Departamento

Especies de Anastrepha capturadas en Trampas McPhail y su distribución en PerúR

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Anastrepha distincta Anastrepha fraterculus Anastrepha serpentina

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Anastrepha striata

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Anastrepha grandis

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Anastrepha distincta Anastrepha fraterculus


Anastrepha grandis Anastrepha macrura

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Anastrepha obliqua


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Las especies de Anastrepha capturadas en Trampas McPhail durante 2003-2007 en el Perú son 22, pero las más frecuentes son: Anastrepha fraterculus, A. distincta, A. serpentina, A. striata y A. obliqua.

Las especies de mayor distribución son Anastrepha fraterculus y Anastrepha distincta y las de menor distribución es A. willei y A. tecta.

Los Departamentos de mayor diversidad son Cajamarca, Junín, Tumbes, Lambayeque y Huánuco.



Perú

[email protected]@yahoo.es



6. Distribución de Anastrepha en Perú

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